CRECIMIENTO Y REPRODUCCION DE UNA POBLACIONDE CARACOL CHINO Hexaplex erytbrostomus (Swainson, 1831),

DE BAHIA CONCEPCION, B.C.S.

Erik Baqueira C.JoséA. Massó R.Alfonso Vélez 8.

RESUMEN

Se determinan los parámetros de crecimiento en la ecuación de Von Bertalanffy deuna población de Hexaplex erytbrostomus por medio del análisis de curvas de frecuenciay marcaje—re captura múltiple.

La curva de crecimiento estimada es:

¡t = 128.36 (l—e—'2107 ("º)Según técnicas de Cassie y Walford. El peso infinito (Wºº) estimado es de 154 gr.Asimismo, se analizan las variaciones del cielo gonádieo por técnicas histológicas,

encontrando que la gametogénesis se prolongó de agosto a mayo, cuando se inicia eldesove que dura hasta ag03to, siendo en mayo-julio cuando se presenta con mayorintensidad.

La población se estima como un grupo autónomo de número constante, con reclu-tamiento y pérdidas en equilibrio.

SUMMARY

The Von Bertalanffy growth equation of a population of the sea snaii “Hexaplexerystbrostomus” was determined by mark—recapture method and size frecuencyhistograms, through Cassie and Walford methods:

—.2107 (t—1)[t = 128.36 (1—e )

Wºº was estimated to be 154 g.The reproductive cycle was determined thomgh histological analisis and its major

characteristics are given. Gamctogenesis goes from august to my, followed by spawningwhich has its highest frequency in may—july.The population is estimated to be an autonomous group with a more or less constant

number where recruitment and losscs are in equilibrium.

INTRODUCCION

El caracol chino rosa (Hexaplex erytbros—tomas) tiene amplia distribución en la provinciapanámica (Keen, 1971). Es explotado a lo largode todo su rango de distribución, ya sea por suconcha para ornato o para consumo humano.Su explotación puede ser incidental por re-

des de arrastre o específica por buceo y trampas.Para Baja California Sur representa un promedioanual de 158 toneladas métricas con valor de$1.200,000.00 (Un millón doscientosmil pesos),

explotándose como especie complementariacuando otros recursos de mayor demanda es-casean.

De las evaluaciones llevadas a cabo por elCentro de Investigaciones "Pesqueras en la cos—

ta oriental de Baja California Sur (*Baqueiro yGuajardo, 1978) se detectaron bancos abundan-tes en Bahía Concepción con densidades de has—

ta 25 individuos por metro cuadrado y una den—

sidad media de 1 a S/mº.Los hábitos carnívoros de la especie hacen

que se congreguen en los lugares de alimenta—

' Guajardo, B.H. y líaqueiro, GB., 1978. Prospección y evaluación de los bancos de almeja y caracol de las costas de Loreto aMulegé,incluyendoBahíaConcepción,Baja CaliforniaSur,México.

20 E. BAQUEIRO c.. J.A. MASSO R., A VELEZ B.

ción; siendo su principal dieta otros moluscosbivalvos, almeja chocolata (Megapitaria squalida)y almeja indio (Glycymeris gigantea) en BahíaConcepción.

Las posibilidades de establecer una pesque—ría permanente, así como de incrementar su ex—

plotación, determinaron la necesidad de cono-cer el potencial del recurso, al igual que su po—

der de recuperación, para lo que se planteó el pre-sente estudio sobre variaciones, crecimiento yreproducción; tomándose como ejemplo la po-blación de una localidad.

AREADE ESTUDIO

Bahía Concepción se localiza entre los 26º 3 1'—26º53' latitud N y 111º41'—111º 56” longi—

tud W. Su longitud es de 43 Km y ancho máxi-mo de 11 Km, corriendo paralela al Golfo deCalifornia, con la boca hacia el Norte (Fig. 1).La profundidad media es de 22 m con máximade 37 m en la porción media.

LOCALIZACAON

ZONA DE IUE $TRE0

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FIG. 1. MAPA DE LOCALIZACION DEL AREA DEMUESTR EO EN BAHIA CONCEPCION, 8.0.3.

La costa oriental -dominantemente arenosacon pendiente suave, la occidental es rocosa conacantilados y algunas playas arenosas.

El clima es del subtipo BW (h”) w(x') (e') osea desértico, cálido con lluvias de verano conmás de 10% en invierno, muy extremoso con va—

riaciones de más de 14—ºC (CETENAL, 1970).La precipitación media anual es de 165 mm y laevaporación de 2354 mm. Los vientos en veranoseplan del Sureste y en otoño e invierno delNoroeste.Para el estudio se escogió una ensenada pe—

queña en la porción media oriental de la bahía,conocida como Punta Santa Rosalía. Presentaplayas arenosas de pendiente suave alcanzando laprofundidad de 15 m en aproximadamente500 m.En la zona abundan las almejas indio (Glycy-

men's gigantea) y chocolata (Megapitaría squa—lida).

MATERIAL Y METODOS

Los muestreos se efectuaron mensualmentea partir del 3 de marzo de 1979. Concluyendoel 24 de septiembre de 1980. Para el acceso a losbancos se empleó una lancha de fibra de vidriode 6.5 m de eslora con motor fuera de borda de40 HP. Los organismos se colectaron por mediode buceo autónomo, entre 4 y 15 m de profun—didad, rascando con la mano o un rastrillo de jar-dinería en la superficie, para extraer tanto losque se encontraban visibles como enterrados.Con el fin de conocer la abundancia relativa, seempleó una cuerda de 10 m, a lo largo de la cualse colectó, usando como referencia una barrade aluminio de 1 m. '

Para determinar el número adecuado de or-ganismos a muestrear mensualmente, se em-pleó la técnica de Buesa (1977) encontrando 75organismos como óptimo; 50 fueron marcadosmensualmente a partir de septiembre de 1979con el Objeto de conocer migraciones, crecimientoindividual y estimar el tamaño de la población.

El marcaje se realizó perforando un orifi-cio de 2 mm en el labio exterior en la parte an-terior de la concha, donde se inicia el canal si—

fonal (Lám. 1). En el orificio se insertó un frag-mento de 1 cm de largo de hilo de nylon de 2

mm de grosor, al cual se sujetó una etiqueta deplástico con numeración progresiva grabada.Para sujetarla a la concha se quemaron los ex—

tremos del hilo, formando un reborde de ma-yor diámetro que el orificio.

CRECIMIENTO Y REPRODUCCION DE UNA POBLACION DE CARACOL CHINO 21

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LAM. 1. MARCAS Y MARCAJE DE H. erythrosz'omus:A) MARCAS, B) ORGANISMOS MARCADOS, CI ORGANISMOS CON LA CONCHA RECONSTITUIDA.

22 E. naounrno c., LA.msso R., A. VELEZ B.

El color y forma de la etiqueta identificó elmes de marcaje (Fig. 2), identificando el nú-mero, al individuo.Todos los organismos eran medidos en su lar-

go total (amero—posterior) hasta décimas de mmcon Vernier y pesados con concha en balanzade triple brazo hasta décimas de gramo. De 20de los organismos se sacaron las partes blandaspor fracturación de la concha, fijándolos enBouin para su procesamiento por técnicas his-tológicas para la determinación del estado demadurez gonadal.

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FIG. 2. CODIGO DE MARCAS EMPLEADO EN ELENUD")DEMABCAHTÍRBMWWURADE

H. erythrostomusLa información fue tabulada y graficada, ha—

ciendo un análisis gráfico de las variaciones dela población, así como el método de Cassie(1954), mismo que se usó para el análisis de cre—cimiento en forma comparativa con lo deter—minado por marcaje—recaptura.Empleando las técnicas de Walford (Conover,

1978) para la estimación de los parámetros de lafórmula de Von Bertalanffy (Beverton y Holt,1957).Para la estimación del tamaño de la población

se emplearon las técnicas de Robson y Reigier(1971) y ]olly (Begon, 1979).Para la descripción del ciclo reproductor se

empleó el criterio dado porWebber (1977) pa-ra definir el grado de madurez del huevo y es-permas, haciéndose una división para este casoen seis fases:

] Indiferenciado IV Desovell Gametogénesis V Post DesoveIll Madurez VI Reposo

RE S U LTAD0 S

En la Fig. 3 se presentan las variaciones de laestructura de la población por medio de histo—

gramas de frecuencia mensuales, así como el aná—

lisis por el método de Cassie.Se constata para el mes de marzo, en que se

iniciaron los muestreos, una población formadapor tres grupos, pudiéndose seguir el crecimien-to de dos de éstos (A y B) hasta el mes de mayo(Fig. 3d) en el que se funden para formar unsolo grupo (II).En este mes aumenta el número de organis—

mos menores de 70 mm, los cuales habían sidodetectados por el método de Cassie, formandodos grupos, pudiendo seguir el crecimiento delprimero (1) hasta el mes de septiembre.En junio… (Fig. 3e) continúa el reclutamiento

de organismos jóvenes por lo que se hace posi-ble detectar un nuevo grupo (D), del cual sepuede seguir su crecimiento hasta el mes de oc-tubre (Ill, Fig. 3h).Durante los meses de agosto y septiembre

(Fig. 3f y g) continúa el reclutamiento, formán—dose dos grupos bien diferenciados, uno en agos—

to (E) y otro en septiembre (F), de los cuales esposible seguir su crecimiento hasta el mes de di-ciembre (Fig. 3j) en donde se detectan tres gru—

pos muy aglomerados.En enero (Fig. 3k) el ingreso de otro nuevo

grupo de reclutas vuelve a ampliar el rango detallas,. haciéndose posible la separación en tresgrupos. Creciendo el primero (H) hasta el mes demayo y el segundo (I) hasta abril. El tercergrupo (G) detectado inicialmente en diciembre,se mantiene hasta marzo."

El reclutamiento detectado en enero se con—tinúa en forma incipiente durante febrero ymarzo, haciéndose más aparente en abril (Fig.3n) en que se detecta nuevamente un grupo (J)al cual se puede seguir su crecimiento hasta junio.El constante reclutamiento en esos meses hacedifícil la determinación real de los incrementospor la sobreposición de un grupo con otro.Del desplazamiento sufrido por los diferentes

grupos, a través del método de Cassie, asi comode las variaciones en talla de los organismos mar-cados y recapturados ha sido posible estimar losparámetros de crecimiento de la población (Ta-bla 1 y Fígs. 4a y b).

CRECIMIENTO Y REPRODUCCION DE UNA POBLACION DE CARACOL CHINO

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FIG. 3.VARIACIONESMENSUALES DE LA POBLACION, HISTOGRAMAS DE FRECUENCIA Y AJUSTE POR-CENTUAL DE CASSIE (1954):Números íomanos gruposmensuales.Letras mayúsculas

III

clases con crecimiento detectable.

24 E. BAQUEIRO C., J.A. MASSO R., A, VELEZ B.

TABLA 1. PARAMETROS CALCULADOS POR ELMETODO DE CASSIE (195 4) Y

PORMARCAJE—RECAHURA PARA LAECUACION DE VON BERTALANFFY

TABLA 1

Método deWalfordEstimación de

Cassie Marcaje—Recamea

N = 28 N = 24X = 73.46 X = 64.35Y = 83.67 Y = 74.50x = 15.9 x = 20.46y = 13.85 y = 13.94r = 0.93 ¡' = 0.66h = 24.34=l b = 43.19=10m = 0.81 m = 0.451xy= 3.65 xy= 2.43

K = 0.2107 K = 0.796lºº = 128.36 diferendacntre lºº = 78.67to = —1 métodos tº = —-1

t = 10.676

Método deFord—Walford

N = 28 N = 24-

X = 73.46 )( = 72.43Y = 10.22 Y = 2.13x = 15.89 x = 15.66y = 6.04 y = 4.50b = 24.34=1º b = 12.5=1ºm = —-.192 m = —.143r = —-.$05 ¡' = —-.498

xy= 4.82 xy= 8.2K = .1756 K = 1.943

lº = 126.77 diferenciaentre lºº = 87.31to" = —.129 métodos to = —.O79

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t= .1379 -

Los valores calculados por la técnica deWalford para la ecuación de. Von Bertalanffyson:

&) Estima por método de Cassie:

lt= 128.36 (1—e "2107 (t 1)) Fórmula 1

b) Estima por marcaje—recaptura:

1t= 78.67(1—e "796“ 1)) FórmulaZ

Según la técnica de Ford—Walford:

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¡20 1 nrsmc¡ou STANDMI 95%

lºº

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FIG.4 &) CURVAS DE CRECIMIENTO DE LARGOTOTAL (|¿ CONTRA LARGO TOTAL A UNMES ¡¡ + 1) b) CURVA DE CRECIMIENTOLARGO TOTAL (¡t) CONTRA INCREMENTOA UN MES ( g 1).

c) Estima por método de Cassie:

1t = 126.77 (l—e—ºl756 ““”) Fórmula 3

d) Estima por marcaje—recaptura:

1t = 87.31 (1—c'1-9437 (*“'9)) Fórmula 4

El organismo de mayor talla colectado fue de123 mm, por lo que las mejores estimas de loason las dadas por el método de Cassie, tomán-dose los valores de la fórmula— 3 para estimar losparámetros de peso (W) en la fórmula de VonBertalanffy.

De la tabla 2 en que se presenta el análisis deregresión largo—peso con concha mensual y lamedia de la población, se han tomado estos úl—

timos para estimar el peso infinito (Woo) segúnla fórmula:

Woo mm“ 2.979wºº —.0081 (128.36) — 154 gr

Fórmula 5

CRECIMIENTO Y REPRODUCCION DE UNA POBLACION DE CARACOL CHINO 25

Siendo esta la ecuación promedio, ya que se-gún se puede apreciar en la Tabla 2 y Figura 5la relación peso—largo varía mes a mes según elestado de condición de los organismos, lo cualestá asociado al ciclo reproductor y determi-nado por la talla de los organismos y época delaño.Con el objeto de determinar el efecto del mar-

caje en los caracoles, se marcaron 20 individuosque fueron mantenidos en un acuario de 200litros, junto con 20 individuos no marcados.

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¡b ¿o 30 ¿o 50 ¿o 10 ¿o 90 meloq I

FIG. 5 AJUSTE DE REGRESION LARGO—PESO MEN—

SUAL DE H. eryúhrostomusSEGUN TABLA 2 .

No se detecu'3 ningún efecto en el comporta—miento y sobrevivencia de los organismos mar—cados, teniendo cicatrización completa en 21días (Lámina 1). Con lo que quedan perfecta-mente aseguradas las marcas.

En el laboratorio no se detectó pérdida demarcas; sin embargo, en el campo se colectarontres ejemplares menores de 60 mm que presen-taron perforación de la concha sin marca.

En la Tabla 3 se presenta el récord de recap-turas, .constatándose la recuperación de marcas

hasta 9 meses después del marcado. El númerode organismos recapturado mensualmente fueelevado en proporción al número marcado; es—

timándose la población como una unidad peque—ña con escaso desplazamiento durante el periodode estudio, compuesta por 9977 i 1 500 orga—nismos según lo estimado por el método de Jolly,y de 4197 i 1 159 según el método de Robsony Reigier.

CICLO REPRODUCTOR

En el análisis de 17 meses es posible consta—

tar un periodo anual de desove bien marcado,que va de mayo a agosto con el máximo entremayo y julio del 92% de los organismos.

Se observa un periodo de indiferenciacióno reposo entre junio y febrero en un máximo del44% de los organismos; que es seguido por unperiodo de gametogénesis entre agosto y mayocon el máximo de marzo a abril en que se detec-tó al 83% de los organismos.Los períodos de madurez típica son muy cor-

tos, preceden a los de gametogénesis y se puedendetectar justo antes del desove.La etapa de posdesove sólo fue posible de—

tectarla en la primera parte del ciclo, con el má—ximo de frecuencia en julio, lo que puede sig—

nificar un rápido paso a la etapa de reposo.En las Láminas 2 y 3 Se presentan diferentes

fases del desarrollo gonádico.El periodo de gametogénesis femenina se ca-

racteriza por un constante crecimiento de losfolículos de paredes gruesas (epitelio germinal)que son de 50Pm al inicio de la gametogénesishasta 250 pm cuando se encuentran maduros loshuevos. Los oocistos forman sincicio con las cé—

lulas foliculares, llegando a ocupar toda la luzdel folículo (65—80 pm). Posteriormente se di-vide para dar lugar a dos o más huevos. Algunasde estas células no se dividen, llenándose el ci-toplasma de vacuolas, las que son liberadas pos-teriormente al romperse la célula. Esta liberaciónde gránulos aumenta conforme avanza el desove,observándose al final de éste sólo folículos va—

cíos y gránulos acidóñlos.En el macho durante el periodo de reposo, pue—

den diferenciarse los folículos claramente porlas paredes gruesas de células alineadas, for—

mando canalículos de 40 a 60 pm. Conformeavanza la gametogénesis estas células se diferen-cian en dos tipos: aquellas que van a dar origena espermas típicos o eupirinos y los que origi-nan los espermas atípicos de tipo apirino(Webber, 1977). En la segmentación normal es

E. BAQUEIRO C.. ].A. MASSOR.. A. VELEZ B.26

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CRECIMIENTO Y REPRODUCCION DE UNA POBLACION DE CARACOL CHINO 27

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LAM. 2 CARACTERISTICAS MICROSCOPICAS DE LAS DIFERENTES FASES GONADICAS DE Hexaplex ery-throstomus, HEMBRAS. &) y b) GAMETOGENESIS, c) y d) DESOVE, e) y f) POSDESOVE. Cf. CELULASFOLICULARES, Fr. FOLICULOS EN REABSORCION, Gr. GRANULOS DE RESERVA, H. HUEVOS NOR—

MALES, Hn. HUEVOS NUTRITIVOS, Sc. SINCICIOS CELULARES (OOCITOS). (200 x).

28 E. BAQUEIRO C.. j.A. MASSO R., A. VELEZ B.

LAM. 3 CARACTERISTICAS MICROSCOPICAS DE LAS DIFERENTESFASES GONADICAS DE Hexaplexerythrostomus, MACHO a) GAMETOGENESIS INICIAL b) Y c) GAMETOGENESIS AVANZADA, d) MA-DUREZ, e) Y f) DESOVE. e. ESPERMATOCITOS. Es. ESPERMA'ÍOZOIDES TIPICOS, EUPERINICOSEa. ESPERMATOZOIDES APIRINICOS, Cf. CELULAS FOLICULARES.(200 ¡(I.

CRECIMIENTO Y REPRODUCCION DE UNA POBLACION DE CARACOL CHINO 2-9

posible observar cadenas de espermatocitos in—

maduros ocupando toda la luz del folículo, con—forme van madurando los espermas van ocu-pando la parte central del folículo, hasta ocupartoda la luz. Los espermas atípicos puedenocupar el mismo folículo que los típicos, siendolo más común que se trate de folículos indepen-dientes y más aún de un diferente nivel de la gó-nada. En la porción anterior se encuentramayorproporción de espermas típicos y en la poste-rior es lo contrario.Se presenta tanto una maduración y evacua-

ción continua de la gónada como una acumula-ción de células maduras con una evacuaciónmasiva.La talla de los organismos analizados fluctuó

de 40 a 110 mm, habiendo encontrado la primergametogénesis en organismºs de 42.4— mm. Porobservación en el campo y laboratorio sólo sedetectaron organismos en cópula de más de70 mm.

DISCUSION

La técnica de Cassie ayuda a separar los di-ferentes componentes de una población (Tesch,1971) sobre todo cuando se trata de especiescon un solo desove anual, no así con desove con—tinuo. Aunque es evidente un continuo reclu-tamiento (F ig. 3) se pueden detectar tres perio-dos de máximo ingreso de juveniles a la pobla-ción, uno de junio a octubre dos meses despuésde iniciado el periodo de desove y otro de me—

nor intensidad en enero, el cual también corres—ponde a un periodo de desove de poca intensi—dad entre noviembre y diciembre y otro más dereclutamiento de mayor intensidad entre marzoy julio; en este caso no se observa una clara re-lación con el periodo de máximo desove.Al estimar la edad de los organismos de 40

mm (primera talla detectada en el reclutamien-to) a partir de las fórmulas l, 2 y 3 se obtieneque son de una edad de 1.7 a 2,3 meses;lo cualconcuerda con la presencia de los periodos dedesove (Fig. 7) y la aparición de reclutas (Fig. 3).

El valor estimado para la loo por el método deWalford (Fórmula 1) es muy aceptable ya que seencuentra sólo ligeramente por encima del má-ximo largo detectado en la población, dentro delos límites de la desviación estándar (Fig. 4a).Mas, sin embargo, el cálculo del peso infinito(W… ) es muy bajo (Fórmula 5) debido segura-mente a la gran variabilidad que se presenta en—

tre las regresiones de los diferentes meses.

Los valores calculados de l (largo inicial) enninguno de los casos es aceptable, pues se conocepor estudios en el laboratorio (Baqueira y Mu—ciño, sin publicar) que la larva al fijarse tiene unlargo de 1500 a 2500 Nm. El tiempo inicial (to)de —-1 (treinta días antes de reclutarse a la vidabentónica) es muy aceptable si se considera eltiempo en las cápsulas ovígeras (2 semanas) ydos semanas de vida planctónica.Según Bayne y Womall (1980) y Sainsbury

(1980) el análisis de crecimiento a partir de in—

crementos individuales (marcaje y recaptura) daun gran error en los valores de Von Bertalanffypor la gran variabilidad en el crecimiento, sobretodo en moluscos. Lo que también influye en laestructura de la población, que va aunado a lamortalidad diferencial que existe en estos grupos.

De la figura 6 se puede constatar que existecierta relación entre los periodos de máximo in-cremento y la época del año, lo cual puede es-tar asociado a cambios de temperatura como seconstata en los meses de julio de 1979 a abrilde 1980, y con los periodos de reproducción.

Del análisis del tamaño de la población se con—cluye que se trata de grupos de poblaciónaislados, con un constante ingreso de organis-mos marcados en otros grupos de poblacióncercanos; pero se desconoce si éstos se mezclenen aguas más profundas en alguna época del año.Parte de la población fue capturada por pescacomercial mas no fue posible obtener informa—ción alguna de los pescadores.

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FIG. 6 VARIACIONES MENSUALES DE |NCREMEN-

ro PROMEDIO DEL LARGO, SEGUN LO ES-TIMADO POR EL METODO_DE CASSIE, ENRELACION A LA EPOCADEL Ano, TEM-PE RATUR.A Y SALIN|DADDEL AGUA.

30 E. BAQUEIRO c., J.A. masso R.. A. vauaz B.

De la Tabla 2 y Figura 5 de regresiones, sedetectó una amplia variabilidad en el peso, dadotanto por el estado fisiológico del animal comopor fracturas y adherencias a la concha.

De la Figura 7 se constata que la máxima ac-tividad gonádica va asociada a incrementos detemperatura, mas sin embargo, no se observa unpunto crítico que defina el desove. Debido pro—bablemente a que este organismo acumula losgametos en la glándula del albumen y glándulamucosa () de la cápsula para ser usados durantela cópula; mas se tiene que el máximo desove loalcanzan cuando la temperatura es mayor de28 C.

CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES

= 128.36 (1— “2107“ 1])

puede ser aceptada para la especie en las aguasde Baja California Sur, ya que los valores calcu-lados se apegan a la realidad. Es necesario tomarla corrección de 10 según lo determinadopor mé-todos directos.La especie presenta un rápido crecimiento por

lo que puede soportar una explotación constan—te: sin embargo,_ el número reducido de los

La fórmula: 1t

grupos poblacionales hacen necesario un controlestricto de los volúmenes de explotación.

Es recomendable la talla de 90 mm de largocomo talla mínima de captura, ya que aunqueinician la actividad gonádica desde los 45 mm,no inician la reproducción hasta los 70 mm, conlo que se daría un lapso mínimo de 3 mesespara reproducción.Siendo que el máximo de actividad repro—

ductora es entre los meses de mayo a julio, esrecomendable no permitir la explotación hastaagosto y cerrarla & fines de marzo, permitien-do un tiempo para maduración y respetando elperiodo de reproducción

AGRADECIMIENTOS

Se desea hacer patente nuestro agradecimien-to al personal del Programa por su colaboraciónen las actividades de campº, al personal del la—

boratorio de histología por el procesamiento delmaterial gonádico y en particular a las autori-dades del Centro de Investigaciones Pesqueras yDelegación Federal de Pesca por las facilidadesprestadas que hicieron posible realizar esta in-vestigación.

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HG. 7 VARIACIONES MENSUALES DE LA FRECUENCIA DE CADA UNA DE LAS FASES DEL DESARROLLOGONADICO, MACHOS Y HEMBRAS COMBINADOS DE H. erythrostamus.

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