introduccion.dspace.ucacue.edu.ec/bitstream/reducacue/5239/4... · 2016-05-03 · determinar las...
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INTRODUCCION.
La alta incidencia de los procesos infecciosos en la población, junto con sus
elevados índices de morbi-mortalidad entre determinados grupos como el de
niños hacen que este tipo de patología constituya un motivo de especial interés
tanto desde el punto de vista clínico como microbiológico.
El número de microorganismos implicados en cuadros entéricos se ha ampliado
durante los últimos años debido, entre otros factores, al mejor conocimiento de
la clasificación taxonómica de los diferentes agentes etiológicos y al desarrollo de
métodos diagnósticos cada vez más sensibles.
Ante la sospecha de un cuadro de infección gastrointestinal debe hacerse una
detallada historia clínica y un correcto estudio microbiológico.
Los antecedentes epidemiológicos (edad, aparición esporádica o como parte de
un brote, tipo de alimento sospechoso, período de incubación), la presencia de
signos y síntomas clínicos (fiebre, dolor abdominal, manifestación de náuseas y
vómitos) y el tipo de diarrea (acuosa, mucosa o sanguinolenta) pueden orientar
acerca del microorganismo implicado.
No obstante, el diagnóstico definitivo clínicamente se deberá de obtener
mediante pruebas de laboratorio.
La toma de las muestras fecales y su transporte al laboratorio de microbiología
se ha comentado en el número 1 de los Procedimientos en Microbiología Clínica.
En este número se aborda una aproximación al conocimiento de diferentes
agentes bacterianos, víricos y parasitarios implicados en procesos diarreicos y se
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proponen un conjunto de recomendaciones para un correcto diagnóstico de las
infecciones gastrointestinales.
La calidad de los resultados de los análisis clínicos de muestras biológicas de
pacientes en unidad de cuidados intensivos pediátricos y neonatales comienza
con la solicitud del facultativo y una correcta obtención de la muestra. Igual de
importante es su manipulación, conservación, transporte y proceso.
Una buena metodología de trabajo por parte del personal de enfermería y el
resto del equipo asegura la fiabilidad de los datos obtenidos reduciendo al
mínimo errores que conllevan el rechazo de las muestras, repetición de los
análisis y un perjuicio para el paciente disminuyendo la calidad del servicio,
aumentando la exposición del profesional y el gasto económico.
Una vez obtenida la muestra, se seguirán normas para la correcta manipulación,
conservación y transporte para un correcto procesamiento en laboratorio.
Donde se realizará la identificación de la bacterias causante de la infección y si el
médico solicita se realizará un antibiograma, que no es más que el estudio de la
sensibilidad "in vitro" de las bacterias frente a los antibióticos. Siendo un método
de diagnóstico rápido y preciso con la ayuda del antibiograma se puede escoger
el antibiótico más adecuado para el tratamiento de una enfermedad.
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OBJETIVO GENERAL.
Determinar las principales bacterias causantes de infecciones intestinales en
niños, mediante la revisión bibliográfica para obtener un manual de ayuda para
los profesionales de la Salud.
OBJETIVOS ESPECIFICOS.
1. Identificar la sintomatología en los niños que presentan Infecciones
Intestinales.
2. Conocer las principales bacterias patógenas causantes de infecciones
intestinales.
3. Determinar los pasos a seguir para la realización de un correcto
coprocultivo y antibiograma.
4. Señalar las principales medidas de prevención para evitar posibles
infecciones producidas por bacterias.
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CAPITULO
I
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1. INFECCIONES INTESTINALES EN NIÑOS.
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1.1 Infección intestinal en niños.
Se le llama infección intestinal, debido a que afectan el sistema digestivo, es
decir, es una inflamación del estómago e intestinos causada por bacterias. Es uno
de los principales motivos por los cuales la gente acude al médico.
La alta incidencia de los procesos infecciosos entéricos en la población general
junto con sus elevados índices de morbi-mortalidad entre determinados grupos
etarios (en este caso niños) hacen que este tipo de patología constituya un
motivo de especial interés tanto desde el punto de vista clínico como
microbiológico.
El número de microorganismos implicados en cuadros entéricos se ha ampliado
durante los últimos años debido, entre otros factores, al mejor conocimiento de
la clasificación taxonómica de los diferentes agentes etiológicos y al desarrollo de
métodos diagnósticos cada vez más sensibles.
Ante la sospecha de un cuadro de infección gastrointestinal debe hacerse una
detallada historia clínica y un correcto estudio microbiológico. No obstante, el
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diagnóstico definitivo clínicamente se debe de obtener mediante pruebas de
laboratorio.
1.2 Causas.
La gastroenteritis bacteriana o infección intestinal puede afectar a un niño o
grupo de niños que consumieron el mismo alimento contaminado.
Comúnmente se presenta después de consumir alimentos en comidas al aire
libre, restaurantes de autoservicio en escuelas, grandes eventos sociales o
restaurantes, también se presentan sobre todo en la temporadas de calor
porque la presencia de bacterias aumenta debido a las altas temperaturas
durante el día y las constantes lluvias que humedecen el ambiente, otra causa
posible de esta enfermedad es la alteración de la flora bacteriana natural del
tracto digestivo.
Cuando un niño padece una dolencia que la debilita, o si cambia su dieta de
manera radical, puede alterar este equilibrio y algunas cepas bacterianas se
reforzarán a costa del debilitamiento o de la desaparición de otras, con el
resultado de una indisposición. También los antibióticos pueden tener un efecto
parecido, ya que actúan sobre la población bacteriana intestinal, alterando su
equilibrio natural.
Los gérmenes pueden introducirse en el alimento que usted consume (lo que se
denomina contaminación) de diferentes maneras:
La carne de res o de aves puede entrar en contacto con las bacterias
normales de los intestinos de un animal que está siendo procesado.
El agua que se utiliza durante el cultivo o embarque puede contener
estiércol o desechos humanos.
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Manipulación o preparación de alimentos en tiendas de comestibles,
restaurantes o casas.
La intoxicación alimentaria con frecuencia ocurre por comer o beber:
Cualquier alimento preparado por alguien que no use las técnicas
apropiadas de lavado de las manos.
Cualquier alimento preparado usando utensilios de cocina, tablas
cortadoras y otras herramientas que no estén totalmente limpias.
Productos lácteos o alimentos que contengan mayonesa (como ensalada
de col o de papas) que han permanecido por fuera del refrigerador por
mucho tiempo.
Alimentos congelados o refrigerados que no se guarden a la temperatura
apropiada o que no se recalienten adecuadamente.
Pescados u ostras crudas.
Frutas o verduras crudas que no se hayan lavado bien.
Jugos de verduras o frutas crudas y productos lácteos.
Carnes o huevos mal cocidos.
Agua proveniente de un pozo o arroyo, o agua de una ciudad o pueblo
que no haya sido tratada.
1.3 Síntomas.
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Los síntomas de una infección son variables dependiendo del tipo y la cantidad
de microorganismos (colonias) o toxinas que se encuentren presentes en el
organismo, también varían de acuerdo a la resistencia del niño a la enfermedad.
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Primeros síntomas de una infección intestinal:
La pérdida de apetito
Las náuseas
Diarrea
Poco después se producen:
Accesos de vómito
Movimientos intestinales
Diarrea acuosa
Dolores y espasmos abdominales
Fiebre y extrema debilidad
Las deposiciones suelen ser muy líquidas y algunas veces si la
enfermedad se prolonga mucho tiempo, pueden llegar a contener
sangre y mucosidades.
Por lo general, cualesquiera que sean los síntomas de la enfermedad,
desaparecen de forma espontánea al cabo de dos o tres días.
Cuando hay más de una persona, de una misma familia o de una comunidad
(escuela, residencia,) que presenta los mismos síntomas, es muy probable que la
causa de la infección sea una intoxicación por alimentos contaminados, aunque
con frecuencia resulta difícil establecer la causa, ya que los síntomas pueden no
manifestarse hasta después de varias horas de la ingestión del alimento, o en el
término de uno o dos días si la causa es una infección bacteriana.
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1.4 Posibles complicaciones
Los riesgos que conlleva una infección intestinal depende de la edad, del estado
de salud general del paciente y de las causas que la provocan, como, por
ejemplo, el tipo y el número de agentes infecciosos existentes o la cantidad y el
carácter patógeno de las sustancias alimenticias ingeridas.
La diarrea y los vómitos que se presentan en un ataque de infección originan una
rápida pérdida de líquido y de elementos químicos, como sodio o potasio, lo cual
puede causar una deshidratación grave, que alteraría la función química del
organismo y, si no se remedia, puede afectar la función del hígado y de los
riñones.
Los riesgos son mayores en el caso de los niños, sobre todo de los menores de 18
meses, también pueden ocasionar una anemia e infección sistémica del torrente
sanguíneo.
Si se presenta un episodio prolongado de diarrea, hay fiebre alta, vómito o dolor
abdominal intenso o si la diarrea contiene sangre o moco, se debe acudir al
médico de inmediato si se presentan signos de deshidratación tales como lengua
y labios secos, piel pálida y reseca, ojos hundidos, poca frecuencia al orinar (en
los bebés menos de 6 pañales mojados al día). En casos de deshidratación severa
es necesaria la hospitalización y la reposición de líquidos por vía intravenosa.
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CAPITULO
II
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2. BACTERIAS PATOGENAS EN INFECCIONES
INTESTINALES EN NIÑOS.
2.1 SALMONELLA.
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El gráfico muestra bacterias de Salmonella sembradas en Medio de Cultivo SS
(Salmonella-Shigella).
La salmonelosis constituye un grupo de infecciones producidas por
microorganismos del género Salmonella, adquiridas por la ingestión de alimentos
o bebidas contaminadas y caracterizadas por presentar síndromes febriles
asociados a manifestaciones gastrointestinales o sistémicas, con frecuencia
severas.
El género Salmonella, definido por su conjunto de características bioquímicas,
reúne cerca de 2.000 tipos serológicos. Cada tipo serológico a su vez está
caracterizado por antígenos específicos que pueden ser identificados mediante
pruebas serológicas.
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2.1.1 CLASIFICACIÓN:
Existen tres tipos de Salmonella:
Salmonella Choleraesuis.
Salmonella typhi
Salmonella enteritidis.
2.1.2 PATOGENIA.
Salmonella typhi.
Son bacterias invasoras y enterotoxigénicas. La infección se localiza
principalmente en el íleo terminal y en el intestino grueso. Las salmonellas tíficas
normalmente invaden la circulación, mientras que las otras están limitadas a la
mucosa intestinal.
El mecanismo de producción de la diarrea, está relacionado más directamente
con el de las diarreas de tipo secretorio, en el que la respuesta inflamatoria
debida a la penetración de la salmonella produce liberación de prostaglandinas,
que a su vez estimulan la producción de AMP cíclico y como consecuencia,
secreción activa de líquidos. El papel de las enterotoxinas es aún discutible.
La puerta de entrada es la vía digestiva. El bacilo debe sobrepasar la barrera
defensiva representada por la acidez gástrica. Son más susceptibles los
individuos con aclorhidria y aquellos que ingieren antiácidos. El agente que
consigue sobrevivir las primeras 24 a 72 horas en el intestino, penetra el epitelio
donde se multiplica y produce alteraciones histopatológicas.
2.1.3 MEDIOS DE CULTIVO
*Se lo realizara en un medio de cultivo selectivo y diferencial.
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* Selectividad, está dada por las sales biliares y el verde brillante, que inhiben el
desarrollo de bacterias Gram positivas, de la mayoría de los Coliformes.
* Diferencial debido a la fermentación de la lactosa, y a la formación de ácido
sulfhídrico a partir del tiosulfato de sodio.
Los pocos microorganismos fermentadores de lactosa capaces de desarrollar,
acidifican el medio haciendo virar al rojo el indicador de pH, obteniéndose
colonias rosadas o rojas sobre un fondo rojizo.
Salmonella, y otros microorganismos no fermentadores de lactosa, crecen bien
en el medio de cultivo, y producen colonias transparentes.
La producción de ácido sulfhídrico se evidencia como colonias con centro negro
debido a la formación de sulfuro de hierro.
Para aumentar la selectividad, se recomienda incubar previamente la muestra en
Selenito caldo o caldo de tetrationato.
Coprocultivo: puede ser positivo desde el comienzo de la infección, aunque su
máxima positividad en la infección aguda, se observa durante la tercera semana.
Es particularmente útil para el control pos tratamiento de los pacientes y para
detectar los portadores crónicos.
2.1.4 PRUEBAS BIOQUÍMICAS.
Dadas las variadas manifestaciones clínicas de las salmonelosis, la confirmación
del diagnóstico de estas infecciones, requiere de métodos microbiológicos que
permitan el aislamiento o identificación del agente causal o de pruebas
serológicas que facilitan reconocer anticuerpos específicos presentes en el suero
de los pacientes.
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Hemocultivo: es el procedimiento de elección, cuando se realiza apropiadamente
y en medios selectivos a base de bilis. Coincidiendo con la fisiopatología de la
infección, son positivos especialmente durante la primera semana de la
infección; se calcula que al final de la tercera semana de positividad solamente
alcanza un 50%.
Mielocultivo: el cultivo del aspirado de médula ósea se considera como el mejor
método para el aislamiento de salmonella en los pacientes con fiebre tifoidea y
paratifoidea. Aunque el procedimiento produce una molestia transitoria, en
general es bien tolerado y los cultivos son más rápidamente positivos. Se
recomienda sea practicado por personal con experiencia. Pueden ser positivos
aun cuando los hemocultivos sean negativos.
2.2 SHIGELLA.
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El gráfico muestra colonias de bacterias de Shigella sembradas en medio en
Agar McConkey Lactosa
Shigella es un bacilo Gram negativo perteneciente a la familia
Enterobacteriáceas, que se encuentra estrechamente relacionada con el género
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Se caracteriza por no fermentar la lactosa, ser inmóvil, no produce lisina
decarboxilasa y raramente produce gas a partir de hidratos de carbono.
Su identificación se basa en características bioquímicas y antigénicas. En base a
ello se escriben cuatro especies, todas ellas pueden causar disentería,
conteniendo pus, sangre y/o mucus.
El ser humano es el único reservorio conocido de este agente. La mayoría de los
casos ocurren en niños, en general trasmitidos por contacto directo. Los brotes a
gran escala, están vinculados a alimentos.
2.2.1 CLASIFICACIÓN.
Hay varias especies diferentes de bacterias Shigella, clasificados en cuatro
subgrupos:
Serogrupo A: Shigella dysenteriae.
Serogrupo B: Shigella flexneri
Serogrupo C: Shigella boydii
Serogrupo D: Shigella sonnei
2.2.2 PATOGENIA.
Shigella dysenteriae.
La infección por Shigella, típicamente comienza por contaminación fecal-oral.
Dependiendo de la edad y la condición del hospedador, puede que solo sea
suficiente alrededor de 200 organismos para causar una infección. La Shigella
causa disentería, resultando en destrucción de las células epiteliales de la
mucosa intestinal a nivel del recto.
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La Shigella invade su hospedador penetrando las células epiteliales del intestino
delgado. Usando un sistema de secreción específico, la bacteria inyecta una
proteína en la célula intestinal, lo que subsecuentemente causa lisis de las
membranas vacuolares. Utiliza un mecanismo que le provee de motilidad en la
que se dispara una polimerización de actina en la célula intestinal, contagiando
una célula después de la otra.
2.2.3 MEDIOS DE CULTIVO.
En los medios de cultivo diferenciales, empleados habitualmente para cultivo de
bacilos Gram negativos entéricos, aparecen como colonia no fermentan la
lactosa en medios de cultivo diferenciales (agar MacConkey lactosa, agar
Salmonella, Shigella,).
Todas son inmóviles, no producen H2S y la producción de gas a partir de la
glucosa sólo se observa en algunas cepas de Shigella.
2.2.4 PRUEBAS BIOQUÍMICAS:
* Entre especies de Shigella
En la diferenciación de los cuatro miembros del género se deben tener en cuenta
algunas propiedades bioquímicas:
Shigella dysenteriae: la mayoría de las cepas no fermentan el manitol, son
ornitina decarboxilasa negativa y tienen propiedades bioquímicas diferenciales
entre los serotipos, particularmente, Shigella dysenteriae 1 es arabinosa e indol
negativo y ONPG positivo muy rápido.
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2.3 CAMPYLOBACTER.
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El gráfico nos muestra colonias de Campylobacter jejuni sembradas en Agar
Sangre.
Es un género perteneciente a la familia Campylobacteraceae. Las especies de
este género son bacilos Gram negativo con forma de coma y móviles por la
presencia de uno o dos flagelos polares. Miden entre 0,5 y 5 micras de largo por
0,2 a 0,5 micras de ancho, tomando forma cocoide en cultivos antiguos o
expuestos de forma prolongada al aire.
2.3.1 CLASIFICACIÓN
Muchas especies del género son capaces de causar enfermedad transmitida por
alimentos en seres humanos, destacándose:
Campylobacter jejuni
Campylobacter coli (C.coli)
2.3.2 MEDIOS DE CULTIVO.
Campylobacter jejuni
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Aislamiento e identificación: Para el aislamiento a partir de materias fecales, los
medios de cultivo selectivos más comunes se basan en agar sangre y antibióticos;
los más usados son Skirrow, Butzler y Campy-BAP.
Los caldos de enriquecimiento no suelen ser necesarios ya que los individuos
enfermos excretan grandes cantidades de bacterias por gramo de materia fecal.
El desarrollo de técnicas de filtración, con filtros que permiten el pasaje de estas
pequeñas bacterias pero retienen las de mayor tamaño como las de la flora
entérica, seguidas del cultivo en medios no selectivos como agar sangre, ha
representado un avance significativo sobre el uso de medios selectivos y es
actualmente el método recomendado para el aislamiento primario de
Campylobacter.
El género Campylobacter constituye un grupo de microorganismos que requieren
medios selectivos de cultivo, como el agar de Skirrow -constituido por 10%
sangre humana y un suplemento de varios antibióticos. La incubación de las
placas sembradas con estos organismos debe efectuarse en una atmósfera con
10% CO2 y 5% de O2, los cuales crecen mejor entre 37 y 42 °C por 48 horas.
2.3.3 PATOGENIA.
El daño al huésped y las manifestaciones clínicas dependen principalmente de
dos factores: el inóculo ingerido y el estado inmunológico del huésped.
Aunque se ha demostrado en voluntarios que Campylobacter es capaz de
producir síntomas de diarrea.
El principal mecanismo de patogenicidad es la invasión de la mucosa intestinal.
La invasión de la lámina propia se observa tanto a nivel del intestino delgado
como del colon, y el resultado es generalmente una enterocolitis inespecífica,
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que puede incluir los siguientes hallazgos: degeneración y atrofia glandular,
pérdida de la producción de mucus, abscesos de las criptas, y ulceración de la
mucosa epitelial. En otros casos, las características patológicas son similares a las
observadas en infecciones por Salmonella o Shigella. Parece evidente que el
lipopolisacárido de la pared bacteriana, con actividad endotoxina típica,
desempeña un rol central en el daño inflamatorio.
2.3.4 MEDIOS DE CULTIVO Y PRUEBAS BIOQUÍMICAS IMPORTANTES.
Se emplean medios enriquecidos y selectivos (adicionando antibióticos), son
adecuados los medios SET, Duffty y BU7.Caldo tioglicolato-Agar Brúcela con
bacitracina y novobiocina (medio selectivo). Es necesario incubar en
microaerobiosis y diferentes temperaturas 37 C y 42 C (C. jejuni). Las colonias
son grises, convexas y brillantes de 1-2 mm de diámetro, no producen hemólisis
y son oxidasa positiva.
No son espatulados, reaccionan positivamente a la oxidasa y la catalasa y su
temperatura óptima de crecimiento oscila entre los 25 y 42 º C. Las colonias de
este género no suelen presentar pigmentación y poseen metabolismo
respiratorio microaerófilo (3-5 % de O2) con un grado bajo de oxigeno 5%,
dióxido de carbono 10% y 85% en nitrogeno. Los medios de cultivo de
Campylobacter son medios nutritivos enriquecidos como el Preston 1/10 y el
Park-Sanders 1/10, y en algunos casos cultivados a 42 °C. Por razón de su flagelo,
son organismos muy móviles, con un movimiento peculiar por razón de su forma
morfológica, al igual que los Helicobacter, se desplazan en forma de sacacorcho.
Se destruyen por cloración y pasteurización.
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2.4 ESCHERICHA COLI ENTEROINVASIVA.
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Este gráfico nos muestra bacterias de Escherichia coli enteroinvasiva
sembradas en Agar sangre.
Es inmóvil, no fermenta la lactosa. Invade el epitelio intestinal causando diarrea
sanguinolenta en niños y adultos. Libera el calcio en grandes cantidades
impidiendo la solidificación ósea, produciendo artritis y en algunos casos
arterioesclerosis.
Es una de las E. coli que causa más daño debido a la invasión que produce en el
epitelio intestinal.
Coloniza el colon. Las propiedades de colonizar, invadir y destruir los enterocitos
del colon se codifican genéticamente por ADN cromosomal y por plásmidos.
Elabora una citotoxina que se presenta con mayor intensidad en un medio bajo
en hierro. Se adhiere al epitelio intestinal y causa muerte celular y una rápida
respuesta inflamatoria.
2.4.1 PATOGENIA
E. coli Enteroinvasiva tiene como único reservorio al hombre, por lo tanto la
transmisión es directa o a través de alimentos o agua contaminada.
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Su distribución epidemiológica y los alimentos implicados no se conocen muy
bien, sólo se estudia la presencia de la bacteria cuando aparecen brotes
esporádicos en viajeros o brotes por consumo de alimentos o agua contaminada.
Por los momentos se ha asociado con alimentos como los quesos blandos, leche
no pasteurizada, carne para hamburguesas y también en frutas y vegetales.
En la infección por E. coli enteroinvasiva puede observarse un aumento de
leucocitos con las heces fecales, al igual que como ocurre en la infección por
otras bacterias invasivas.
Así podrá existir:
Invasividad.
Adherencia a la superficie de la mucosa.
Producción de enterotoxina.
Producción de citotoxina.
2.4.2 MEDIOS DE CULTIVO.
Medio Kligler
Medio citrato de Simmons
Medio SIM(sulfuro, indol, motilidad)
Medio RMVP(rojo de metilo, voges proskauer)
Medio de urea indol
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2.5 ESCHERICHA COLI ENTEROTOXICA.
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Este grafico nos muestra Escherichia coli enterotóxica sembrada en medio EMB
Se adhiere a la mucosa del intestino delgado, no la invade, y elabora toxinas que
producen diarrea. No hay cambios histológicos en las células de la mucosa y muy
poca inflamación. Produce diarrea no sanguinolenta en niños y adultos, sobre
todo en países en vías de desarrollo, aunque los desarrollados también se ven
afectados.
2.5.1 PATOGENIA.
Entre todos estos microorganismos el que produce más frecuentemente dicha
diarrea es Escherichia coli enterotóxica. Esta bacteria actúa colonizando el
intestino en unas 24-48 horas adhiriéndose a las paredes intestinales
produciendo las toxinas responsables de la sintomatología consistente en varias
deposiciones diarias, náuseas y vómitos todo ello acompañado de un aumento
de la deshidratación que se debe controlar desde un principio sobre todo si se
trata de niños y de personas mayores, los síntomas generalmente suelen durar
unos 4 días aunque a veces el cuadro clínico puede agravarse.
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Coloniza el intestino delgado. Posee fimbrias que le permiten adherirse
fuertemente y suministrar la toxina al epitelio. Produce 2 toxinas, una termolábil
(TL) y otra termoestable (TE), o ambas a la vez.
Las 2 enterotoxinas de este agente originan diarrea secretora. El cuadro clínico
es más grave cuando es producido por la toxina termolábil. Puede haber
deshidratación y acidosis grave por la pérdida importante de agua y electrólitos.
Es una de las principales causas de deshidratación y mala nutrición.
La E. coli enterotoxigénica está aumentando la resistencia a los agentes
antimicrobianos disponibles, y es probable que este fenómeno se presente
también para el resto de los grupos. Ante una diarrea acuosa, además de la
causa viral, pensar en la posibilidad de E. coli enteropatogénica, con adherencia
difusa o enterotoxigénica, sobre todo en niños menores de 2 años.
2.5.2 MEDIOS DE CULTIVO Y PRUEBAS BIOQUÍMICAS.
El diagnóstico es fundamentalmente directo, mediante cultivo e identificación.
Crecen bien en medios de cultivo comunes (agar sangre) y selectivos (agar
McConkey) y una vez obtenido el crecimiento de colonias, se lleva a cabo la
identificación mediante pruebas bioquímicas y enzimáticas.
Las pruebas bioquímicas son un conjunto de reacciones basadas en el
metabolismo de los microorganismos que generalmente se realizan en sistemas
miniaturizados y automáticos. Entre otros aspectos, se analiza la acción de la
bacteria sobre los hidratos de carbono, la liberación de enzimas y metabolitos al
medio de cultivo, etc.
A partir del conocimiento del metabolismo, las pruebas bioquímicas nos
permiten determinar el género y la especie de la bacteria en estudio.
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Esta identificación debe hacerse a partir de un cultivo puro y fresco (18-24
horas). Hay que tener en cuenta, además, que las características metabólicas de
los microorganismos pueden variar en función de distintos factores de manera
que para realizar una caracterización fiable es necesario realizar las pruebas en
condiciones estandarizadas (en cuanto al inóculo, los reactivos, las condiciones
de incubación y el tiempo de lectura) y utilizar más de una prueba en cada caso.
La elección de las mismas se hará en base a la familia en estudio.
2.6 YERSINIA.
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Este grafico muestra Yersinia sembrada en medio agar sangre.
2.6.1 YERSINIA ENTEROCOLICA.
Yersinia son bacilos del tipo gramnegativos aerobios y anaerobios facultativos;
son mótiles a 22°C, pero no a 37°C, por flagelos anfitricos, o peritricos, forman
pilis, y fimbrias. No forman cápsulas de gran espesor ni esporas.
Yersinia es un género de bacterias que pertenece a la familia de las
enterobacteriáceas. Son patógenos de animales, de donde pasan al ser humano
produciendo enfermedades.
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2.6.2 CLASIFICACIÓN.
El género Yersinia incluye tres especies:
Yersinia pestis,
Yersinia enterocolitica
Yersinia pseudotuberculosis
2.6.3 PATOGENIA.
La Yersinia enterocolitica invade la mucosa intestinal donde se multiplican
causando una reacción inflamatoria, produciendo un cuadro de diarrea e
invadiendo en algún caso los ganglios mesentéricos produciendo adenitis
supurada.
Los mecanismos moleculares de patogenicidad han sido muy estudiados y son de
enorme complejidad. La codificación de las proteínas involucradas en la
patogenicidad (adhesinas e invasinas) es para algunas plasmídica y para otra
cromosómica. Su expresión es variable y está regulada por la temperatura y la
concentración de calcio. Estas bacterias poseen factores anticomplementarios y
antifagocitarios.
Aunque en diversas infecciones causadas por patógenos primarios como el
estreptococo del grupo A, M. tuberculosis, las clamidias y otros, se producen
fenómenos patológicos tardíos de base inmunitaria como artritis reactiva, iritis,
uretritis (Síndrome de Reiter) y otros, alguno de los cuales se dan
mayoritariamente en personas con determinados grupos de HLA; estos
fenómenos reactivos son particularmente frecuentes tras las infecciones por
Yersinia.
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El diagnóstico depende del aislamiento y la identificación del microorganismo. El
serodiagnóstico está limitado por el gran número de serotipos.
2.6.4 MEDIOS DE CULTIVO.
Medios no selectivos: agar sangre
Medios selectivos-diferenciales: agar McConkey, agar EMB
McConkey: colonias rosadas (fermentan lactosa) y colonias transparentes
(No fermentan lactosa).
Agar EMB: colonias azules (fermentan lactosa) y colonias transparentes
(No fermentan lactosa).
Medios altamente selectivos: SS agar, agar XLD, agar Hektoen entérico.
2.6.5 PRUEBAS BIOQUÍMICAS.
Prueba TSI (triple azúcar hierro) Contiene lactosa 10 g, sacarosa 10 g y glucosa.
Alcalina/ácida: Bacterias no fermentadoras de lactosa. Salmonella, Shigella,
Yersinia.
OTRAS PRUEBAS BIOQUÍMICAS
Producción de ureasa
Producción de indol
Utilización del citrato
Motilidad
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2.7 VIBRIO PARAHEMOLYTICUS.
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El gráfico muestra colonias de Vibrio parahaemolyticus sembrada en Agar
Sangre
El Vibrio parahaemolyticus es una bacteria entérica Gram negativa, es móvil y no
presenta cápsula ni espora halofílica (requiere sal para su desarrollo mar y puede
crecer a pH 9). Esta bacteria se encuentra presente en forma permanente en el
mar de nuestro territorio, lo que no implica que exista riesgo permanente de
infección. Este existe sólo cuando condiciones especiales en el mar, como el
aumento de su temperatura, favorecen su alta concentración.
Cuando hay aumento de la temperatura ambiental, como por ejemplo en el
verano, esta bacteria se masifica, creciendo su número en los mariscos y que lo
contienen, provocando la contaminación.
2.7.1 PATOGENIA
La patogénesis de la gastroenteritis producida por el V. parahaemolyticus aún no
es clara. El período de incubación de la infección gastrointestinal es de 4-96
horas después de la ingestión, con un promedio de 15 horas. La rapidez con la
que se presenta el cuadro clínico sugiere la participación de una enterotoxina
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aún por identificar. La virulencia del Vibrio ha sido asociada a la producción de
hemolisina termoestable directa, la cual es responsable de la beta-hemólisis
producida sobre eritrocitos humanos in vitro, sin embargo, se han descrito en el
último tiempo cepas patogénicas que no producen la hemolisina. El cuadro
intestinal es el más frecuente, caracterizado por diarrea acuosa y cólicos
abdominales, que pueden acompañarse de náuseas, vómitos, fiebre y cefalea.
Generalmente es autolimitado, la persona se recupera luego de un período de
aproximadamente 3 días, que puede variar entre 1 a 7 días, tiempo que no
depende del tratamiento con antibióticos. En los casos más severos puede
producirse un síndrome disentérico, caracterizado por heces sangrinolientas y
fiebre alta.
2.7.2 MEDIOS DE CULTIVO.
Requiere de medios de cultivo especiales en muestras provenientes de sitios con
microbiota comensal. Para su aislamiento a partir de deposiciones, se utiliza
generalmente el agar TCBS (thiosulfate citrate bile-salts sucrose), en el cual
forma colonias verdosas no fermentadoras de sacarosa10. Cuando la muestra
proviene de sitio estéril, V. parahaemolyticus crece bien en agar sangre y otros
medios de cultivo no selectivos. Dado su carácter halofílica estricto, se requiere
agregar NaCl al 2-3% a las pruebas bioquímicas necesarias para la identificación
de especies. Entre las características fenotípicas que permiten su identificación,
destaca su incapacidad de metabolizar la lactosa y una reacción de oxidasa
positiva.
2.7.3 PRUEBAS BIOQUÍMICAS.
Las pruebas realizadas fueron entre otras: producción de Indol y H2S; RM-VP;
descarboxilación de lisina y ornitina; producción de arginina dehidrolasa;
hidrólisis de citrato, urea y gelatina; oxidación - fermentación de glucosa y
fermentación de sacarosa, lactosa, arabinosa, celobiosa y manitol; reducción de
NO3; crecimiento a 0,1%, 6% y 8% de NaCl; motilidad y presencia de flagelo polar
29
(coloración de Leifson). Estos medios fueron incubados a 37oC y leídos a las 24 h
de sembrados.
2.8 VIBRIO CHOLERAE.
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Este grafico nos muestra Vibrio cholerae sembrado en medio TCBS.
Vibrio cholerae es un bacilo Gram negativos, curvados, no capsulados, móviles
por un flagelo polar, aerobios y anaerobios facultativos, de crecimiento rápido,
fermentadores de glucosa y oxidasa positivo.
Toleran pH alcalinos. Algunas especies necesitan medios con altas
concentraciones de sal para crecer (halófilos).
Se encuentran ampliamente distribuidos en la naturaleza fundamentalmente en
ambientes acuáticos tanto marinos como de agua dulce, principalmente en
aguas templadas.
La infección en el niño se produce por la ingestión de agua o alimentos
contaminados por Vibrio, también por heridas expuestas a aguas contaminadas.
30
2.8.1 CLASIFICACIÓN:
Destacan tres especies:
Vibrio cholerae
Vibrio parahaemolyticus
Vibrio vulnificus
2.8.2 PATOGENIA.
Los principales factores de virulencia son el flagelo, pilis y la toxina colérica. V.
cholerae coloniza el intestino delgado liberando la toxina colérica que es una
enterotoxina termolábil. La toxina colérica es una proteína oligomérica formada
por una subunidad A y cinco subunidades El pentámero B se une al gangliósido
GM glucolípido situado en la membrana de las células epiteliales que actúa como
receptor para la toxina.
La subunidad A funcional activa el sistema adenilato ciclasa produciendo un
incremento en los niveles de AMP cíclico dando lugar a una hipersecreción de
agua y electrólitos, esto causa una diarrea severa produciendo una fuerte
deshidratación. Es una diarrea no invasiva.
2.8.3 MEDIOS DE CULTIVO.
El diagnóstico directo se realiza a partir de una muestra de heces. Un diagnóstico
presuntivo se puede hacer mediante una preparación en fresco de las heces por
microscopia de campo oscuro o contraste de fases para detectar el movimiento
helicoidal de los vibriones.
31
El cultivo se realiza utilizando un medio de enriquecimiento de agua de peptona
alcalina incubándolo a 37ºC 6-8 horas y un medio selectivo sólido Tiosulfato-
citrato-bilis-sacarosa (TCBS), en el que Vibrio cholerae aparece como una colonia
amarilla.
2.8.4 PRUEBAS BIOQUÍMICAS.
Existen pruebas rápidas de aglutinación mediante anticuerpos monoclonales
para V. cholerae El diagnóstico indirecto se realiza por técnicas de biología
molecular mediante PCR o ELISA.
2.9 PROTEUS.
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Este grafico muestra Proteus sembrado en medio EMB
PROTEUS MIRABILIS.
Proteus se trata de un género (o grupo de) de bacterias. Pertenece a la familia de
las enterobacterias y es un bacilo gramnegativo. Cuando una de estas te infecta,
entonces tienes infección por Proteus.
32
Este grupo de microorganismos se encuentran generalmente en el suelo, agua,
alcantarillas, alimentos. Forman parte de la flora fecal normal esto quiere decir
que normalmente son parte de la inmensa cantidad de bacterias que viven en
nuestro intestino sin provocarnos infecciones.
Cuando hay infección por Proteus, generalmente ocurre en niños o personas con
compromiso inmunitario (con defensas bajas), o bien que se ha sometido a una
gran cantidad de tratamientos antibióticos con anterioridad y que estos han
destruido otros organismos sensibles y por lo tanto permitido su proliferación.
2.9.1 CLASIFICACIÓN:
Proteus mirabilis.
Proteus vulgaris.
Proteus penneri.
2.9.2 MEDIOS DE CULTIVO Y PRUEBA BIOQUÍMICAS.
Proteus mirabilis puede diagnosticarse en el laboratorio debido a su
característica motilidad agrupada, e inhabilidad para metabolizar lactosa en el
medio agar McConkey , por ejemplo. Y P. mirabilis produce un muy distintivo
olor a pescado podrido.
El microorganismo testea:
Indol negativo y Nitrógeno Reductasa positivo (no produce burbujas de
gas).
Rojo Metilo positivo y Vogues-Proskauer negativo.
Catalasa positiva y Citocromo Oxidasa negativa.
Fenilalanina Deaminasa positiva
33
2.10 HELICOBACTER PYLORI.
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El gráfico nos muestra colonias de Helicobacter pylori en Agar sangre
Helicobacter pylori es un microorganismo Gram. (-), microaerófilo, aislado por
primera vez en 1982 por Warren y Marshall y que presenta característicamente
múltiples flagelos en uno de sus polos.
Este microorganismo es de difícil cultivo en los medios habituales pero puede ser
aislado en medios de cultivos apropiados.
Tiene la capacidad de segregar diversas enzimas dentro de las cuales se
encuentra, la ureasa que le permitiría el desdoblamiento de la urea en dióxido de
carbono y amonio. Este último volvería mucho más alcalino el medio gástrico
haciéndolo propicio para el desarrollo del agente en cuestión.
2.10.1 PATOGENIA.
Existirían varios mecanismos patogénicos que explicarían el fenómeno de
relación entre la infección por el germen y la aparición de la úlcera péptica:
Los pacientes infectados por Helicobacter pylori presentan signos de gastritis
crónica que afecta principalmente la zona del antro, pudiendo extenderse
34
incluso hacia el cuerpo gástrico en individuos de edad avanzada. Algunos autores
consideran la existencia de dos formas de gastritis crónicas:
TIPO A: que se localiza fundamentalmente a nivel del cuerpo gástrico y suele
acompañar a la anemia perniciosa. Se le responsabiliza a mecanismos
inmunológicos.
TIPO B: de localización antral (antritis), que suele asociarse a úlcera duodenal y
presenta una fuerte asociación con la infección con Helicobacter pylori.
El proceso inflamatorio en la gastritis crónica por Helicobacter pylori se explica
de la siguiente manera. El sistema inmunológico que es el encargado de erradicar
el germen en cualquier proceso infeccioso, es incapaz en este caso en particular,
lo que origina una inflamación crónica. Para posteriormente evolucionar en una
atrofia de la mucosa gástrica, seguida de una alteración en la secreción de ácido
pepsinógeno y factor intrínseco.
La transmisión es un punto que actualmente no se conoce con certeza, aunque
se supone pudiera ser de persona a persona ya sea a través de la vía respiratoria
o por vía fecal- oral como lo indican algunos estudios. Incluso en algunos de ellos
han puesto de manifiesto el fenómeno de transmisión dentro del grupo. Sin
embargo la prevalencia se hallaría condicionada también por otros factores
además de la edad, como el factor socioeconómico, como lo demuestra el hecho
de una mayor prevalencia y una más temprana colonización por el germen en
países no desarrollados.
2.10.2 MEDIOS DE CULTIVO.
Existen diversos métodos para el diagnóstico de la infección por Helicobacter
pylori. Estos podrían agruparse en métodos invasivos y no invasivos. Dentro de
35
los primeros a su vez se cuenta a aquellos que se pueden denominar directos,
tales como la observación directa (Endoscopia) y cultivo y aquellos indirectos,
como el test de la ureasa. Los métodos no invasivos comprenderían el test del
aliento y las pruebas serológicas.
H. pylori es un microorganismo capaz de crecer en distintos medios de cultivo si
bien requiere diferentes factores de crecimiento. Es difícil de cultivar en medio
líquido aunque se logra con menor dificultad a partir de caldo de Brucella,
cerebro-corazón, Mueller-Hinton y tripticasa soja, todos ellos suplementados con
nutrientes, siendo el más común el suero bovino fetal.
Los medios de cultivo sólidos base más frecuentes son agar Mueller-Hinton y
agar Columbia y los suplementos más comúnmente empleados son la sangre o
derivados de ella. Otros suplementos son el suero de caballo, lisado de
eritrocitos y hemina, extracto de levadura, peptona, e Isovitalex, si bien los
resultados no son mejores que los obtenidos con suero bovino fetal o sangre.
Recientemente se ha mostrado prometedor en el cultivo del microorganismo un
extracto obtenido de cianobacterias.
Puede diagnosticarse mediante una técnica que utiliza urea marcada
radioactivamente conocida como prueba del aliento. También puede cultivarse
aunque la única muestra válida es la biopsia gástrica. El medio Skirrow, muy
parecido a los utilizados para Campylobacter, es selectivo para Helicobacter. Es
menos exigente en sus necesidades nutricionales y crece bien en las placas de
cultivo, sin embargo dada la dificultad en la obtención de la muestra idónea su
aislamiento es poco frecuente.
2.10.3 PRUEBAS BIOQUÍMICAS.
La identificación de Helicobacter pylori
36
Al cabo de 3 - 7 días de incubación en condiciones microaerofílicas y a una
temperatura de 37 °C se observaron las colonias y las características
microscópica revelaron la presencia de bacilos curvos Gram negativos.
Las pruebas bioquímicas para ureasa, oxidasa, catalasa y la coloración GRAM
confirmaron la identificación de este agente patógeno.
Coloración GRAM modificada Se siguió el método estándar, excepto que se
contratiñó con fucsina fenicada usada para Ziehl Neelsen en vez de safranina
Prueba de la catalasa, consistió en recoger el centro de una colonia pura y
colocarla sobre una lámina porta objetos limpia, inmediatamente se agregó con
una pipeta Pasteur o un gotero una gota de peróxido de hidrógeno (H2O2) al 3%,
y se procedió a observar la formación de burbujas (liberación de gas), lo que
indicó un resultado positivo.
Prueba de la ureasa rápida, se recogió una colonia pura e introdujo en un vial
limpio conteniendo la urea al 6% con el indicador de pH (rojo de fenol), se
observó el cambio de color de la suspensión de un color amarillo a un color
rosado fucsia dentro de los primeros 10 minutos.
Prueba de la oxidasa Se agregó de 2 - 3 gotas de reactivo de Oxidasa sobre el
centro de un trozo de papel filtro estéril, se hizo un extendido con el asa de
inoculación de una colonia sospechosa en el papel impregnado con el reactivo,
siguiendo una línea de 3 - 6 cm de longitud. La reacción positiva se produjo de 5 -
10 segundos y se evidenció por el viraje de las colonias oxidasa positivas a un
color púrpura intenso o azul.
37
Pruebas no invasivas
La prueba de sangre. Se extrae una muestra de sangre de la vena del paciente,
que se examina para detectar anticuerpos contra H. pylori. Los anticuerpos son
sustancias que el cuerpo produce para combatir sustancias nocivas e invasoras—
llamados antígenos—tal como la bacteria H. pylori.
La prueba de aliento con urea.
El paciente ingiere una capsula, líquido o pudín que contiene urea “marcada” con
un átomo de carbono especial. Luego de pocos minutos, el paciente respira
dentro de un recipiente, soltando dióxido de carbono. Si el átomo de carbono
especial se encuentra en el aire expulsado.
H. pylori está presente, pues la bacteria contiene grandes cantidades de ureasa,
una sustancia química que descompone la urea en dióxido de carbono y
amoniaco.
La prueba de antígeno en heces.
El paciente proporciona una muestra de heces, que se analiza para detectar
antígenos de H. pylori.
* Pruebas Serológicas: test de enzimoinmunoabsorción (ELISA). Las
concentraciones de anticuerpos disminuyen con la erradicación, pero en forma
lenta y progresiva, por lo que el ELISA no es fiable para medir la respuesta al
tratamiento hasta pasados 6 meses, cuando la titulación de anticuerpos alcanza
los valores normales.
38
Pruebas invasivas
* Ureasa Tisular: esta prueba rápida permite detectar la ureasa producida por el
microorganismo directamente, a partir de muestras de biopsia obtenidas por
endoscopia, gracias a un detector de pH.
39
CAPITULO
III
40
3 COPROCULTIVO.
La finalidad del coprocultivo es determinar el pronóstico del o los agentes
causantes de las infecciones intestinales que por lo general son producidas por la
familia de las enterobacterias.
3.1 INDICACIONES DEL COPROCULTIVO.
Generalmente suele indicarse en un cuadro entérico infeccioso persistente de
más de 2 ó 3 días, se aconseja la toma de muestras para exámenes de
laboratorio.
Se recomienda la evaluación del cuadro: su duración, su gravedad (grado de
deshidratación, fiebre, sangre en heces, pérdida de peso, etc.); y la evaluación de
los antecedentes clínicos del paciente: uso reciente de antibióticos (diarreas
asociadas a uso de antibióticos), edad del paciente (los rota virus son la primera
causa de gastroenteritis deshidratante en niños), los viajes a zonas tropicales
(aumentarían las infecciones por parásitos, virus, y E. coli).
3.2 OBTENCIÓN DE LA MUESTRA
Se utilizarán heces recientes en un recipiente limpio de boca ancha y cierre
hermético con un volumen mínimo de 2 a 4 g en heces pastosas y 5 a 10 ml en
heces líquidas.
En general debe desaconsejarse el uso de hisopos rectales y restringirlo a casos
excepcionales como en neonatos. En muestras digestivas se puede utilizar
aspirado gástrico o duodenal.
41
La obtención de la muestra se hará depositando directamente la misma en un
recipiente estéril, para lo cual puede servir una placa de Petri o un frasco de boca
ancha. En caso de no ser posible esta toma directa, se recogerá con una cuchara
estéril alguna porción del material fecal recién emitido, que no haya entrado en
contacto con el frasco receptor (orinal), y se verterá en un contenedor estéril.
Se recomienda procesar las muestras en el menor tiempo posible puesto que no
sobreviven a los cambios en el PH lo cual ocurre cuando baja la temperatura,
esto es especialmente importante cuando se trata de Shigella y un número
apreciable de salmonellas.
El producto así recogido se debe sembrar inmediatamente, incluso en la misma
habitación del paciente si ello es posible, pues algunos patógenos intestinales,
concretamente Shigella y la Salmonella, sobreviven muy poco tiempo a los
cambios de pH que sufren las heces en contacto con el ambiente. En caso de no
poder sembrar la muestra «in situ», y ante la necesidad de mandarla a un
laboratorio, debemos cerciorarnos que la muestra llegue inmediatamente al
laboratorio.
3.3 AISLAMIENTO Y CULTIVO
Para hacer el coprocultivo, es decir, la siembra de las muestras fecales, se
recogerán aquellas partes del contenido intestinal que llamen más la atención
por su aspecto sanguinolento o mucoso, pues es allí donde abundan los
microorganismos patógenos. La inoculación se efectuará sobre medios de cultivo
propios y selectivos de los principales patógenos intestinales, incluyendo, dada
su importancia, un medio de enriquecimiento para Salmonella (Selenito o
tetrationato). Las cepas de Salmonella aisladas se identificarán por pruebas
bioquímicas.
42
Es discutible la inclusión rutinaria de métodos y medios para el diagnóstico de
Vibrio cholerae y Campylobacter. El primero porque es poco frecuente y además
porque las características clínicas del paciente y las de la muestra ya orientarían
hacia ello en caso necesario. El segundo porque, aunque actualmente ocupa el
primer puesto en incidencia patológica intestinal, su metodología de cultivo e
incubación resulta cara para una práctica sistemática de todas y cada una de las
solicitudes. En este caso se valorará individualmente cada muestra, concediendo
especial importancia a la edad del paciente y a la consistencia del producto.
El medio de cultivo más utilizado es el selectivo llamado SS, o Salmonella-
Shigella, que se siembra con un inóculo abundante.
3.4 MATERIAL A UTILIZAR:
Asa bacteriológica
Mechero
Estufa de incubación a 37ºC
Agares estériles de SS, EMB, McConkey,
Caldo tetrationato, agar sulfito bismuto
Agar verde brillante.
Una muestra de heces recolectada en frasco estéril
Hisopos estériles
3.5 PROCEDIMIENTO:
1. Introducir un hisopo estéril en varios puntos de la muestra.
2. Descargar la muestra en un área pequeña de los medios de cultivo: SS,
McConkey y EMB y realizar el estriado.
3. Incubar las cajas a 37ºC durante 24 o 48 horas.
43
4. Observar las características morfológicas de las colonias desarrolladas
indicando si existen cambios en el medio, pigmentos en la colonia etc.
5. Tratar de identificar si existe crecimiento de Salmonella o Shigella que se
manifiestan como colonias de color blanco en McConkey e incoloras en
EMB.
6. Al mismo tiempo que las placas, con la muestra fecal se inocula un medio
de enriquecimiento como el caldo tetrationato, colocando el hisopo
impregnado con la muestra en el caldo al cual se le agregó previamente
0.2 ml de yodo por gramo de materia fecal.
7. Incubar este medio de enriquecimiento por 12 o 18 horas a 37ºC
8. A partir del caldo tetrationato se siembran placas con medios inhibitorios
como el agar verde brillante y el agar sulfito de bismuto, este último si se
está buscando S. typhi. Después de incubar a 37ºC durante 24 horas la
placa de verde brillante y 48 horas la de sulfito bismuto, se revisan
cuidadosamente en busca de colonias sospechosas. En el verde brillante
Salmonella crece como colonias rojas y en sulfito de bismuto como
colonias negras.
9. Para mayor seguridad en la identificación de Enterobacterias es necesario
realizar pruebas bioquímicas a las cepas aisladas en los medios de cultivo.
44
COPROCULTIVO
w
g
ASPECTO MACROSCOPICO Color Consistencia Presencia de sangre moco o pus
MUESTRA
SUSPENSIÓN 1gr de heces en 10 ml de solución salina (no realizar en caso de heces líquidas)
IDENTIFICACIÓN TINCIÓN DE GRAM
ANTIBIOGRAMA
SEROTIPIFICACIÓN
Hektoen o SS Salmonella o Shigella
Skirrow Campylobacter
Hektoen o SS, Salmonella, Shigella
Gelosa alcalina, Vibrionaceas y pseudomonadaceas
TCBS Vibrio cholerae
MacConkey e.coli +flora total
Caldo Selenito o tetrationato enriquecido de salmonella
ASPECTO MICROSCOPICO Estado fresco (solución salina lugol) Gram (riqueza, equilibrio flora) Zleh Neelsen
45
2.6 Siembra.
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Un método fundamental para estudiar las bacterias es cultivarlas en un medio
líquido o en la superficie de un medio sólido de agar. Los medios de cultivo
contienen distintos nutrientes que van, desde azúcares simples hasta sustancias
complejas como la sangre o el extracto de caldo de carne.
Para aislar o purificar una especie bacteriana a partir de una muestra formada
por muchos tipos de bacterias, se siembra en un medio de cultivo sólido donde
las células que se multiplican no cambian de localización; tras muchos ciclos
reproductivos, cada bacteria individual genera por escisión binaria una colonia
macroscópica compuesta por decenas de millones de células similares a la
original.
Si esta colonia individual se siembra a su vez en un nuevo medio crecerá como
cultivo puro de un solo tipo de bacteria.
Para hacer el coprocultivo, es decir, la siembra de las muestras fecales, se
recogerán aquellas partes del contenido intestinal que llamen más la atención
46
por su aspecto sanguinolento o mucoso, pues es allí donde abundan los
microorganismos patógenos.
La inoculación se efectuará sobre medios de cultivos propios y selectivos de los
principales patógenos intestinales, incluyendo, dada su importancia, un medio de
enriquecimiento para Salmonella (selenito o tetrationato).
Las cepas de Salmonella aisladas se identificarán por pruebas bioquímicas y se
confirmará su identidad mediante un polivalente serológico. No es necesario que
los pequeños laboratorios dispongan de todo el amplio material perecedero para
serotipificar a Salmonella.
La presencia de Shigella también se confirmará serológicamente. Es discutible la
inclusión rutinaria de métodos y medios para el diagnóstico de Vibrio cholerae y
Campylobacter.
El primero porque es poco frecuente y además porque las características clínicas
del paciente y las de la muestra ya orientarían hacia ello en caso necesario.
El segundo porque, aunque actualmente ocupa el primer puesto en incidencia
patológica intestinal, su metodología de cultivo e incubación resulta cara para
una práctica sistemática de todas y cada una de las solicitudes.
En este caso se valorará individualmente cada muestra, concediendo especial
importancia a la edad del paciente y a la consistencia del producto.
Todo lo tratado demuestra que la Microbiología es una ciencia viva, en constante
desarrollo, y que su investigador, aunque tenga establecidos unos esquemas
teóricos a seguir, deberá en ocasiones hacer uso de improvisaciones prácticas,
vinculadas a su experiencia científica.
47
Las muestras obtenidas según los métodos señalados estas deben ser procesadas
en el menor tiempo posible utilizando para ello una torunda o una asa de kolle
sembrar más o menos 1 g de muestra en los medios de enriquecimiento
escogiendo de preferencia las porciones que presentan mucosidad y sangre
paralelamente se deben sembrar en placas con agar Salmonella - Shigella , agar
verde brillante , xld agar y agar Mac McConkey este último con la finalidad de
aislar E. coli entero patógeno (EPI) muy común en las diarreas infantiles , los
medios sembrados deben dejarse en incubación por 24- 48 horas a 37°C .
3.7 Identificación del microorganismo.
El sistema más importante para la identificación de microorganismos es observar
su crecimiento en sustancias alimenticias artificiales preparadas en el
laboratorio. El material alimenticio en el que crecen los microorganismos es el
Medio de Cultivo y el crecimiento de los microorganismos es el Cultivo. Se han
preparado más de 10.000 medios de cultivo diferentes.
Para que las bacterias crezcan adecuadamente en un medio de cultivo artificial
debe reunir una serie de condiciones como son: temperatura, grado de humedad
y presión de oxígeno adecuada, así como un grado correcto de acidez o
alcalinidad. Un medio de cultivo debe contener los nutrientes y factores de
crecimiento necesarios y debe estar exento de todo microorganismo
contaminante.
La mayoría de las bacterias patógenas requieren nutrientes complejos similares
en composición a los líquidos orgánicos del cuerpo humano. Por eso, la base de
muchos medios de cultivo es una infusión de extractos de carne y Peptona a la
que se añadirán otros ingredientes.
48
El agar es un elemento solidificante muy empleado para la preparación de
medios de cultivo. Se licúa completamente a la temperatura del agua hirviendo y
se solidifica al enfriarse a 40 grados. Con mínimas excepciones no tiene efecto
sobre el crecimiento de las bacterias y no es atacado por aquellas que crecen en
él.
La Gelatina es otro agente solidificante pero se emplea mucho menos ya que
bastantes bacterias provocan su licuación.
En los diferentes medios de cultivo se encuentran numerosos materiales de
enriquecimiento como hidratos de carbono, suero, sangre completa, bilis, etc.
Los hidratos de carbono se adicionan por dos motivos fundamentales: para
incrementar el valor nutritivo del medio y para detectar reacciones de
fermentación de los microorganismos que ayuden a identificarlos. El suero y la
sangre completa se añaden para promover el crecimiento de los
microorganismos menos resistentes.
También se añaden colorantes que actúan como indicadores para detectar, por
ejemplo, la formación de ácido o como inhibidores del crecimiento de unas
bacterias y no de otras (el Rojo Fenol se usa como indicador ya que es rojo en pH
básico y amarillo en pH ácido. La Violeta de Genciana se usa como inhibidor ya
que impide el crecimiento de la mayoría de las bacterias Gram-positivas).
La coloración de Gram fue descubierta hace algo más de 100 años por Hans
Chistian Gram, se usa principalmente para el examen microscópico directo de
muestras y de subcultivos.
El cristal violeta (violeta de genciana) sirve como colorante primario, y se une a la
pared celular bacteriana luego de un tratamiento con una solución débil de yodo
que sirve como mordiente para la unión del colorante.
49
Algunas especies de bacterias, debido a la naturaleza química de sus paredes
celulares, tiene la capacidad de retener el cristal violeta incluso después de un
tratamiento con un decolorante orgánico, como por ejemplo una mezcla en
partes iguales de alcohol etílico al 95% y acetona.
Las bacterias que retienen el colorante se ven negro azuladas cuando se
observan al microscopio, y se denominan entonces grampositivos.
Algunas bacterias pierden la coloración primaria con cristal violeta cuando son
tratadas con el colorante, presumiblemente debido al alto contenido de lípidos
de su pared celular.
Estas bacterias decoloradas toman el colorante de contraste, la safranina, y se
ven rojas cuando se observan al microscopio, denominándose gramnegativo.
DIFERENCIAS ENTRE BACTERIAS GRAMPOSITIVAS Y GRAMNEGATIVAS
La diferencia principal entre estos dos grupos consiste en que la pared celular de
las bacterias grampositivos está constituida por 50 a 90% de mucopéptidos,
mientras que la fracción de éstos en las bacterias gramnegativo es de solo 5 a
10%; estas últimas tienen una gruesa capa externa formada por un complejo de
fosfolípidos, polisacáridos y proteínas.
En la pared de las bacterias grampositivos, pero no en las gramnegativo, se
presentan polímeros de glicerol-fosfato o de ribitol-fosfato, los cuales se conocen
como ácidos teicoicos.
50
3.8 Antibiograma.
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Se entiende por antibiograma el estudio de la sensibilidad "in vitro" de las
bacterias a los antibióticos.
La razón por la cual es conveniente el estudio del antibiograma de una bacteria
determinada radica en el hecho de la diferente sensibilidad a los antibióticos de
las distintas especies bacterianas y, más aún, en el hecho de que en numerosas
especies existen grandes diferencias de sensibilidad a un determinado
antibiótico entre unas y otras cepas.
El antibiograma es un método de diagnóstico rápido y preciso.
Con ayuda del antibiograma se puede escoger el antibiótico más adecuado para
el tratamiento de una enfermedad.
3.8.1 ANTIBIOTICOS UTILIZADOS EN UN COPROCULTIVO.
Los antibióticos más utilizados en un antibiograma para niños son:
Trimetroprim Sulfa
Ampicilina
51
Amoxicilina
Cefalexina
Metilmicina
Tianfenicol
Clotrimoxazol
Kanamicina
Cloranfenicol
Eritromicina
Gentamicina
Fosfomicina
Ácido Clavulánico
Debemos de tener en cuenta que ningún medicamento de tercera generación
(Quinolonas) deberá ser administrado en niños.
3.8.2 EQUIPOS, MATERIALES Y REACTIVOS PARA ANTIBIOGRAMA
Equipos
• Incubadora a 350C
• Estereoscopio
• Refrigerador doméstico
Materiales
• Aplicadores de algodón
• Asas de nicrón
• Pinzas y agujas de inoculación
• Placas de Petri 38
Reactivos
Discos de antibiótico
Medios de cultivo
52
Método de la difusión en medio sólido se siembra, con el germen a estudiar, una
placa de un medio de cultivo adecuado. Sobre la superficie del medio se colocan
discos de papel impregnados con el antibiótico o quimioterápico a ensayar. Si el
germen estudiado es sensible, en torno al disco se observará un halo, en el cual
no hay proliferación de bacterias. Si el germen es resistente al antibiótico,
crecerá uniformemente y no habrá ningún halo de inhibición en torno al disco de
papel.
Se usa para establecer de una forma relativamente cuantitativa, la actividad de
un conjunto de antibióticos. El método se basa en la formación de halos de
inhibición del crecimiento en una placa inoculada homogéneamente por acción
de discos antibióticos de concentración conocida, la difusión de este hacia el
medio va a originar la inhibición del crecimiento. Posteriormente mediremos el
diámetro del halo generado, para comprobar la efectividad del antibiótico
(existen tablas que en función de los mm del halo, determinan si la bacteria es
resistente o no).
En esta técnica de difusión en agar, debemos de preparar una disolución de
concentración bacteriana conocida, concretamente de 108 u.f.c./ml, que
corresponde con el 0,5 Mc Farland. Posteriormente con un escobillón de algodón
tomamos parte de la disolución y lo sembramos de forma homogénea en placas
con medio Müller Hinton Después incubamos 24 h. a 37 ºC, y realizamos:
Lectura de los resultados.
Lectura del antibiograma.
Una vez sembrada una placa de un medio de cultivo adecuado y colocados los
distintos discos impregnados de antibiótico y una vez colocada a incubación en la
53
estufa durante unas horas, se procede a la lectura de los resultados, que puede
hacerse a intervalos periódicos, basada en la medición del halo de inhibición.
Sensibilidad bacteriana a los antibióticos.
La determinación de la Concentración Inhibidora Mínima (CIM) es la base de la
medida de la sensibilidad de una bacteria a un determinado antibiótico. La CIM
se define como la menor concentración de una gama de diluciones de antibiótico
que provoca una inhibición de cualquier crecimiento bacteriano visible. Es el
valor fundamental de referencia que permite establecer una escala de actividad
del antibiótico frente a diferentes especies bacterianas.
Sensible, si existe una buena probabilidad de éxito terapéutico en el caso de un
tratamiento a la dosis habitual.
Resistente, si la probabilidad de éxito terapéutico es nula o muy reducida. No es
de esperar ningún efecto terapéutico sea cual fuere el tipo de tratamiento.
Intermedia, cuando el éxito terapéutico es imprevisible. Se puede conseguir
efecto terapéutico en ciertas condiciones (fuertes concentraciones locales o
aumento de la posología).
Debe tenerse presente que el diámetro del halo de inhibición depende también
de la di fusibilidad del antibiótico y, por tanto, no es una medida absoluta de la
eficacia.
Los datos que proporciona el antibiograma son muy valiosos pero su aplicación
no es tan sencilla. Para la prescripción correcta de los antibióticos hay que tener
en cuenta siempre la naturaleza del proceso infeccioso, la historia clínica del
54
paciente, el mecanismo de acción del antibiótico, la toxicidad, las posibles
sensibilizaciones del paciente, la vía de administración, etc.
55
CAPITULO
IV
56
VI. TRATAMIENTO Y PREVENCIÓN.
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4.1 TRATAMIENTO.
Cuando un paciente con gastroenteritis llega a un área de urgencias, se debe
evaluar el ABC, siendo en este caso el apartado de la circulación, el que más va a
interesar pudiendo, incluso, llegar a prescindir de una anamnesis reglada si el
estado hemodinámica así lo exigiera; esto va a ocurrir cuando el paciente llegue
hipotenso, deshidratado, en situación de shock, donde lo prioritario será
canalizar una vía venosa y comenzar a reponer volumen de la forma más precoz
posible.
La administración de microorganismos antidiarreicos, para recuperar la flora
intestinal normal, tiene una eficacia clínica muy discutida dada la, muy probable,
inactivación, de la carga bacteriana administrada, por la acidez gástrica.
Pertenece a este grupo de microorganismos el Saccharomyces boulardii a dosis
de 6-8 cápsulas/24h en el cuadro agudo y 2 cápsulas/24h como mantenimiento.
57
4.1.1 Reposición hidroelectrolítica:
La mayoría de las formas clínicas de diarrea infecciosa se resuelven
espontáneamente, siendo la reposición de agua y electrolitos el factor más
importante en el tratamiento.
El consumo de bebidas hidratantes (pedialyte, hidraplus), ayudaran a compensar
la pérdida de electrolitos del organismo siempre y cuando la perdida de líquido
unas deshidratación severa esta debe ser tratada en un centro médico.
La vía oral es eficaz en diarreas leves y moderadas, y se puede utilizar en la
diarrea severa tras cierta reposición inicial por vía parenteral.
4.1.2 Antidiarreicos:
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Están contraindicados, su uso, en gastroenteritis causadas por gérmenes
enteroinvasivos, debido al riesgo de bacteriemia o prolongación del cuadro. Sólo
deben utilizarse cuando el número de deposiciones sea importante (> de 7-
10/día) en las gastroenteritis toxigénicas.
58
Puede usarse loperamida a dosis de 4 mg v.o. inicialmente, seguidos de 2 mg tras
cada deposición durante un máximo de 5 días, con un máximo de 16 mg/día.
Si no cesa la diarrea en 48 horas, hay que considerar que el fármaco no es
efectivo.
4.1.3 Tratamiento antibiótico:
Está indicado en caso de gastroenteritis enteroinvasivos grave, y en función de la
identificación previa del agente etiológico.
Independientemente de la causa, se deben tratar siempre las gastroenteritis en
inmunodeprimidos, en presencia de neoplasias, prótesis vasculares, anemia
hemolítica asociada y en edades extremas de la vida.
Para el tratamiento empírico, se recomienda en nuestro medio: cotrimoxazol de
acuerdo a peso y edad de los niños durante 7 días.
59
4.1.4 TRATAMIENTO ESPECÍFICO DE LA
DIARREA INFECCIOSA Microorganismo
Fármaco
Campylobacter Amoxicilina suspensión Ácido Clavulánico
suspensión, Eritromicina suspensión 250
mg cada 6horas x 5 días.
E. Coli enterotoxigénico Cotrimoxazol suspensión cada 12horas x
3 días, Trimetroprim sulfa suspensión.
Salmonella Cotrimoxazol suspensión cada 12 horas x
5-7 días, Ampicilina suspensión,
cloranfenicol suspensión.
Shigella Cotrimoxazol 160/800 mg cada 12 horas x
3 días, Ampicilina suspensión
Yersinia Cotrimoxazol 160/800 mg cada 12 horas.
Vibrio cholerae
E. coli enteroinvasivos
Vibrio parahaemolyticus
Cotrimoxazol 160/800 mg cada 12 horas x
3 días, Tianenicol
Cefalexina suspensión, Trimetroprim Sulfa
en suspensión, No tomar medicamentos
para parar la diarrea.
Tomar bastante agua, hidratación oral.
Ampicilina suspensión mg x kg de peso.
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Proteus mirabilis
Cefalexina, Amoxicilina suspensión
Claritromicina suspensión y Eritromicina
suspensión 3 veces al día.
Helicobacter pylori Claritromicina, amoxicilina, y
metronidazol, Junto con un
protector gástrico como omeprazol.
4.1.5 Tratamiento analgésico:
El dolor mejora con la dieta y con el calor local, pudiendo en ocasiones añadirse
analgesia mediante cualquier preparado con Paracetamol.
Para las molestias perianales se recomiendan los lavados y baños de asiento y,
en algunos casos, cremas de hidrocortisona al1% (1 aplicación /12-24h.).
4.2 PREVENCIÓN.
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61
4.2.1 PREVENCIÓN DE ENFERMEDADES INFECCIOSAS INTESTINALES.
Entre las enfermedades entéricas más comunes del verano se encuentran las
diarreas, la hepatitis A, la fiebre tifoidea y el cólera. Los factores que impiden su
contagio son:
1. La higiene de las personas, especialmente el lavado de las manos.
2. La higiene de los alimentos, en su almacenamiento, preparación y
consumo.
3. La higiene del medio ambiente, del agua y de la disposición de
excretas.
Lavado de manos.
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* Antes de preparar alimentos.
* Antes de consumir alimentos.
* Después de manipular dinero.
* Después de usar el servicio higiénico;
* Después de toser o estornudar, cuando se ha tapado la boca con ellas.
* Si no dispone de agua potable, debe asearse y lavarse las manos con agua
limpia hervida o con cloro.
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Higiene de los alimentos.
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* Beba sólo agua potable o, si no dispone de ella, hiérvala durante 1 a 2 minutos.
Si mantiene agua almacenada, hiérvala un minuto antes de consumirla.
* Consuma hervida la leche que no viene envasada.
* Lave cuidadosamente las verduras que crecen a ras de suelo y hágalas hervir de
uno a dos minutos.
* Lave y deje en agua con cloro (10 minutos) las verduras con cáscara (como
tomates, pepinos, pimentón o zapallitos italianos), enjuagando después varias
veces bajo el chorro de agua.
* Lave prolijamente pescados y mariscos y luego hiérvalos por lo menos un
minuto.
* Una cucharada de cloro en un litro de agua es un buen desinfectante.
Cuidados en la preparación de alimentos.
* Limpie los mesones y cubiertas donde prepara los alimentos con agua con cloro
* No mezcle alimentos limpios con alimentos sin lavar, ni los alimentos cocidos
con alimentos sin cocer.
* Mantenga los alimentos tapados, para protegerlos de moscas, roedores y
medio ambiente.
* Una vez que descongele un alimento preparado, no lo congele nuevamente.
63
* Todo alimento preparado y guardado, debe hervirse por lo menos durante un
minuto antes de comerlo.
* No reciba dinero mientras manipula alimentos.
* Lave los utensilios de cocina inmediatamente después de usar, con agua
hervida o con cloro si no dispone de agua potable
* No consuma mariscos o pescados provenientes de zonas de ríos o mar
contaminado.
Eliminación de excretas y cuidado del medio ambiente.
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* Lave diariamente los artefactos del baño (lavamanos, taza, baño) con agua,
detergente y cloro.
* Preocúpese del mantenimiento e higiene de las letrinas sanitarias.
* Las excretas humanas deben eliminarse adecuadamente (entierro, pozo
séptico, letrina, desagüe)
* Cuide los cursos de agua, a fin de no contaminarlos con bacterias provenientes
de excrementos, de lavado de alimentos y utensilios o de baños recreacionales.
* Use sólo agua limpia para regar las hortalizas de su casa.
64
Como en toda época del año, existe el riesgo de intoxicación alimentaria, por lo
que se recomienda:
* Comer solamente en locales autorizados, evitando los puestos ambulantes.
* Comer los huevos y carnes de ave perfectamente cocidos.
* Ingerir solamente mayonesa proveniente de fábricas autorizadas.
* Mantener los huevos refrigerados a -5 ºC, tanto en los domicilios como en las
salas de venta.
En resumen, las recomendaciones para evitar infectarse son:
* Asegurar la correcta cocción de la carne
* Tener especial cuidado con la cocción de la carne picada, ya que es habitual
que se cocine bien la parte superficial y la bacteria permanezca en el interior.
También de las hamburguesas.
* Utilizar distintos utensilios de cocina para trozar la carne cruda y la cocida.
* Asegurar la correcta higiene de las manos (lavarse con agua y jabón) antes de
preparar los alimentos.
* Respetar la prohibición de bañarse en aguas de ríos. Consumir agua potable y,
ante la duda, hervirla.
Pero, además de las medidas que pueden tomar las mamás, es fundamental que
haya mayor control. "Sin duda, debería haber mayor control sobre los frigoríficos
porque si no se respetan todas las medidas higiénicas -por ejemplo, que el
personal utilice guantes- la bacteria puede expandirse".
Por último, se está realizando irradiación de la carne antes de que llegue a
supermercados y carnicerías, con el fin de aniquilar a la bacteria antes de que
entre en la comunidad.
65
V. CONCLUSIONES
Al concluir el informe de Prácticas de Laboratorio de Microbiología y
Bromatología de Alimentos es posible determinar el cumplimiento de los
objetivos planteados mediante las siguientes conclusiones:
OBJETIVO 1.
“Identificar la sintomatología en los niños que presentan Infecciones
Intestinales”.
La infección bacteriana o infección intestinal puede afectar a un niño o grupo de
niños que consumieron el mismo alimento contaminado. Comúnmente se
presenta después de consumir alimentos en comidas al aire libre, restaurantes
de autoservicio en escuelas, grandes eventos sociales o restaurantes, también se
presentan sobre todo en la temporadas de calor porque la presencia de bacterias
aumenta debido a las altas temperaturas durante el día y las constantes lluvias
que humedecen el ambiente, otra causa posible de esta enfermedad es la
alteración de la flora bacteriana natural del tracto digestivo.
Hay que tener siempre en cuenta los síntomas que pueden presentar un niño en
una infección bacteriana es varían dependiendo del tipo y la cantidad de
microorganismos (colonias) o toxinas que se encuentren presentes en el
organismo de los niños, también varían de acuerdo a la resistencia del niño a la
enfermedad.
Primeros síntomas de una infección intestinal:
La pérdida de apetito
Las náuseas
Diarrea
Poco después se producen:
Accesos de vómito
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Movimientos intestinales
Diarrea acuosa,
Dolores y espasmos abdominales
Fiebre y extrema debilidad
Las deposiciones suelen ser muy líquidas y algunas veces si la
enfermedad se prolonga mucho tiempo, pueden llegar a contener
sangre y mucosidades.
En conclusión podemos decir que conociendo todos los síntomas podremos de
manera breve acudir al médico el cual nos dará un correcto diagnóstico y
tratamiento.
OBJETIVO 2.
“Conocer las principales bacterias patógenas causantes de infecciones
intestinales.”
Con la elaboración de este trabajo, podremos llegar a conocer un gran número
de enfermedades infantiles que afectan a los niños hoy en día principalmente las
infecciones causadas por bacteria. Es importante manejar este tipo de
información ya que por medio de esta podrá ser útil en el momento.
A continuación se describen las más importantes:
Salmonella.
Shigella.
Campylobacter.
Escherichia coli Enteroinvasiva.
Escherichia coli enterotóxica.
Yersinia enterocolitica.
Vibrio parahaemolyticus.
Vibrio cholerae.
Proteus.
Helicobacter pylori.
67
Podemos concluir indicando que las diferentes bacterias patógenas, pueden
estar presentes tanto en los alimentos como en los sistemas de agua potable, ya
que estos microorganismos se pueden transmitir a través de las heces fecales,
cuando no existe un adecuado tratamiento los de los alimentos consumidos.
OBJETIVO 3:
“Determinar los pasos a seguir para la realización de un correcto coprocultivo
y antibiograma.”
Coprocultivo: se utiliza para la identificación de diferentes bacterias patógenas
las cuales son causantes de diversas enfermedades, la siembra de una muestra
adecuada de heces en medios de cultivo apropiados nos ayudan para un correcto
examen de laboratorio el médico indicara si necesita un antibiograma en la
orden que envía el médico.
Antibiograma: es estudio de la sensibilidad "in vitro" de las bacterias a los
antibióticos.
La razón por la cual es conveniente el estudio del antibiograma de una bacteria
determinada radica en el hecho de la diferente sensibilidad a los antibióticos de
las distintas especies bacterianas y, más aún, en el hecho de que en numerosas
especies existen grandes diferencias de sensibilidad a un determinado
antibiótico entre unas y otras cepas. El antibiograma es un método de
diagnóstico rápido y preciso.
Concluimos indicando los importante que es la realización de un examen de
laboratorio junto con el antibiograma por que con estos resultamos ayudamos al
médico en el diagnóstico de la enfermedad del paciente y un correcto
tratamiento.
68
COPROCULTIVO
w
g
ASPECTO MACROSCOPICO Color Consistencia Presencia de sangre moco o pus
MUESTRA
SUSPENSIÓN 1gr de heces en 10 ml de solución salina (no realizar en caso de heces liquidas)
IDENTIFICACIÓN TINCIÓN DE GRAM
ANTIBIOGRAMA
SEROTIPIFICACIÓN
Hektoen o SS Salmonella o Shigella
Skirrow Campylobacter
Hektoen o SS, Salmonella, Shigella
Gelosa alcalina, Vibrionaceas y pseudomonadaceas
TCBS Vibrio cholerae
MacConkey e.coli +flora total
Caldo Selenito o tetrationato enriquecido de salmonella
ASPECTO MICROSCOPICO Estado fresco (solución salina lugol) Gram (riqueza, equilibrio flora) Zleh Neelsen
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OBJETIVO 4:
“Señalar los principales medidas de prevención y tratamiento para evitar
posibles infecciones intestinales producidas por bacterias.”
Los principales métodos para poder prevenir y dar un correcto tratamiento para
combatir las infecciones bacterianas causantes de infecciones en los niños serán:
La higiene de las personas, especialmente el lavado de las manos.
La higiene de los alimentos, en su almacenamiento, preparación y consumo.
La higiene del medio ambiente, del agua y de la disposición de excretas.
Lavado de manos antes de preparar alimentos.
Correcto cocción de alimentos, carnes, mariscos.
Concluye indicando que con una correcta higiene podemos evitar infecciones
intestinales más severas, en caso de haberlas se deberá de rehidratar el niño y
llevarlos de inmediato a un centro médico para que le administren un
tratamiento correcto y seguro.
TRATAMIENTO
ESPECÍFICO DE LA
DIARREA INFECCIOSA
Microorganismos
FÁRMACO
Campylobacter Amoxicilina suspensión Ácido Clavulánico suspensión,
Eritromicina suspensión 250 mg cada 6horas x 5 días
E. Coli enterotoxigénico Cotrimoxazol suspensión cada 12horas x 3 días
Salmonella Cotrimoxazol suspensión cada 12 horas x 5-7 días, ampicilina
suspensión, cloranfenicol suspensión.
Shigella Cotrimoxazol 160/800 mg cada 12 horas x 3 días, ampicilina
suspensión
70
Yersinia Cotrimoxazol 160/800 mg cada 12 horas.
Vibrio cholerae Cotrimoxazol 160/800 mg cada 12 horas x 3 días
E. coli enteroinvasivos
Cefalexina suspensión, Trimetroprim Sulfa en suspensión, No
tomar medicamentos para parar la diarrea.
Tomar bastante agua, hidratación oral.
Vibrio parahaemolyticus Ampicilina suspensión mg x kg de peso.
Proteus mirabilis
Cefalexina, Amoxicilina suspensión Claritromicina suspensión
y Eritromicina suspensión 3 veces al día.
Helicobacter pylori Claritromicina, amoxicilina, y metronidazol, Junto con un
protector gástrico como omeprazol.
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VI. BIBLIOGRAFÍA.
ANGEL, Gilberto. Interpretación clínica de laboratorio, Editorial Panamericana
Bogotá-Colombia
D’ONCON NAVAZA, María del Carmen. Fundamentos y técnicas de análisis
bioquímico, Editorial Thompson Paraninfo Madrid – España.
Dr. Alejandro Bozzolo, Dr. Osvaldo Ceruzzi, Dra. Carmen Gutiérrez, Dra. Ana
Bianchi. Cap. 7 Toxoplasmosis y Embarazo. 613-623 p. 2ª Edición. Año 1999.
FARRERAS, Rozman. Medicina Interna, Ediciones Harcourt, S. A. Velázquez, 24, 5.
º Dcha. 28001 Madrid. España.
RUOTI, Antonio M. Y Colaboradores. Salud Reproductiva. Obstetricia y
perinatología.
www.pubmed.com.es
www.biocientifica.com.ar
www.tuotromedico.com
www.elportalmedico.com
www.medlineplus.com
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UNIDAD ACADEMICA DE INGENIERIA QUIMICA, BIOFARMACIA, INDUSTRIAS Y PRODUCCION.
DETERMINACION MICROBIOLOGICA DE BACTERIAS CAUSANTES DE INFECCIONES INTESTINALES EN
NIÑOS.
Monografía previa a la obtención Del Título de QUÍMICO FARMACEUTA.
DIRECTORA: DRA. PAOLA PATRICIA ORELLANA BRAVO. INVESTIGADOR: AURORA ELIZABETH GUAMAN REMACHE.
CUENCA, DICIEMBRE 2011