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UNIVERSIDAD REGIONAL AUTÓNOMA DE LOS ANDES
“UNIANDES”
FACULTAD DE CIENCIAS MÉDICAS
CARRERA DE ODONTOLOGÍA
PROYECTO DE INVESTIGACIÓN PREVIO A LA OBTENCIÓN DEL TÍTULO DE
ODONTÓLOGA.
TEMA:
IDENTIFICACIÓN DE MICROORGANISMOS PRESENTES EN IMPRESIONES
DENTALES DE ALGINATO EN PACIENTES QUE ASISTEN A LA UNIDAD DE
ATENCIÓN ODONTOLÓGICA UNIANDES.
AUTORA: VILLEGAS AMÁN XIMENA ALEXANDRA
ASESOR: DR. SALGUERO VARGAS JUAN FREDDY
AMBATO – ECUADOR
2017
APROBACIÓN DEL ASESOR DEL TRABAJO DE TITULACIÓN
CERTIFICACIÓN:
Quien suscribe, legalmente CERTIFICA QUE: El presente Trabajo de Titulación
realizado por la señorita Ximena Alexandra Villegas Amán, estudiante de la
Carrera de Odontología, Facultad de Ciencias Médicas, con el tema
“IDENTIFICACIÓN DE MICROORGANISMOS PRESENTES EN IMPRESIONES
DENTALES DE ALGINATO EN PACIENTES QUE ASISTEN A LA UNIDAD DE
ATENCIÓN ODONTOLÓGICA UNIANDES.”, ha sido prolijamente revisado, y
cumple con todos los requisitos establecidos en la normativa pertinente de la
Universidad Regional Autónoma de los Andes -UNIANDES-, por lo que apruebo su
presentación.
Ambato, agosto del 2017
Dr. Juan Freddy Salguero Vargas ASESOR
DECLARACIÓN DE AUTENTICIDAD
Yo, Ximena Alexandra Villegas Amán, estudiante de la Carrera de Odontología,
Facultad de Ciencias Médicas, declaro que todos los resultados obtenidos en el
presente trabajo de investigación, Titulado: : “IDENTIFICACIÓN DE
MICROORGANISMOS PRESENTES EN IMPRESIONES DENTALES DE
ALGINATO EN PACIENTES QUE ASISTEN A LA UNIDAD DE ATENCIÓN
ODONTOLÓGICA UNIANDES.”, previo a la obtención del título de
ODONTÓLOGA, son absolutamente originales, auténticos y personales; a
excepción de las citas, por lo que son de mi exclusiva responsabilidad.
Ambato, agosto del 2017
Ximena Alexandra Villegas Amán
CI. 1804787958
AUTORA
DERECHOS DE AUTOR
Yo, Ximena Alexandra Villegas Amán, declaro de forma libre y voluntaria y acepto
la disposición constante en el literal d) del Art. 85 del Estatuto de la Universidad
Regional Autónoma de los Andes, que en su parte pertinente textualmente dice: El
Patrimonio de la UNIANDES, está constituido por: La propiedad intelectual sobre
las Investigaciones, trabajos científicos o técnicos, proyectos profesionales o
consultaría que se realicen en la Universidad o por cuenta de ella.
Ambato, Agosto del 2017
Ximena Alexandra Villegas Amán
CI. 1804787958
AUTORA
DEDICATORIA
A Dios, ya que gracias a él he logrado cumplir con lo que para mí ha sido mi más
grande sueño.
A mis padres Pedro y Narcisa, porque ellos siempre estuvieron a mi lado
brindándome su apoyo, sus consejos, alentándome y bendiciéndome todos los días
durante esta etapa maravillosa de mi carrera universitaria.
A mi esposo Diego y a la bendición más grande de Dios en nuestras vidas; nuestro
hijito.
A mis hermanos Leandro y Andrés por su apoyo constante, por la fuerza que tuve
en ellos para seguir adelante, sabiendo que sería para ellos un ejemplo de lucha y
perseverancia.
A toda mi familia; mi abuelita mi tía y mis primos.
Ximena Villegas
AGRADECIMIENTO
Agradezco a Dios porque día a día me bendijo y me levantó cuando sentía no tener
fuerzas para continuar, a las personas que tanto amo y extraño, mis padres quienes
me brindaron su apoyo moral y económico, pero sobre todo su más grande amor
en todas las situaciones de mi vida, a mis dos hermanos por creer siempre en mí y
permanecer a mi lado.
A toda mi familia y amigos quienes contribuyeron de alguna manera para que yo
pueda culminar con mi profesión.
A mi asesor de tesis Dr. Juan Salguero por su paciencia y por ser mi guía en la
elaboración de este trabajo, a todos los docentes de la carrera de Odontología de
la Universidad Uniandes por haberme inculcado sus conocimientos y por sus
enseñanzas.
Ximena Villegas.
ÍNDICE GENERAL
PORTADA
APROBACIÓN DEL ASESOR DEL TRABAJO DE TITULACIÓN
DECLARACIÓN DE AUTENTICIDAD
DERECHOS DE AUTOR
DEDICATORIA
AGRADECIMIENTO
ÍNDICE GENERAL
ÍNDICE DE TABLAS
ÍNDICE DE GRÁFICOS
Resumen
Abstract
INTRODUCCIÓN. ................................................................................................... 1
CAPITULO I ............................................................................................................ 8
1. MARCO TEORICO. .......................................................................................... 8
1.1 ANTECEDENTES INVESTIGATIVOS. ............................................................. 8
1.2 FUNDAMENTACIÓN CIENTÍFICA. ......................................................... 11
1.2.1 MATERIALES DE IMPRESIÓN DENTAL. ............................................. 11
1.2.1.1 Definición. ........................................................................................ 11
1.2.1.2 Requisitos exigidos. ........................................................................ 11
1.3 CLASIFICACIÓN DE LOS MATERIALES DE IMPRESIÓN. .................... 12
1.3.1 Rígidos. ................................................................................................. 12
1.3.2 Termoplásticos. ..................................................................................... 12
1.3.3 Elásticos. ............................................................................................... 12
1.4 OTRAS FORMAS DE CLASIFICACIÓN DE LOS MATERIALES DE
IMPRESIÓN ....................................................................................................... 12
1.4.1 Clasificación de acuerdo con la viscosidad. .......................................... 12
1.4.2 Clasificación de acuerdo con las propiedades físicas antes y después de
fraguar. ........................................................................................................... 13
1.4.3 Clasificación de los materiales de impresión según la ADA. ................. 14
1.4.4 Categorías basadas en la viscosidad. ................................................... 14
1.5 CARACTERÍSTICAS GENERALES DE LOS MATERIALES PARA
IMPRESIÓN. ...................................................................................................... 14
1.6 ALGINATOS. .............................................................................................. 17
1.6.1 Características Deseables. .................................................................... 17
1.6.2 Usos. ..................................................................................................... 17
1.6.3 Composición. ......................................................................................... 18
1.6.3.1 Función de cada componente. ........................................................ 19
1.6.4 Evolución. .............................................................................................. 19
1.6.5 Reacción Química. ................................................................................ 20
1.6.6 Clasificación. ......................................................................................... 21
1.6.7 Propiedades. ......................................................................................... 21
1.6.8 Ventajas. ................................................................................................ 24
1.6.9 Desventajas. .......................................................................................... 24
1.6.10 Productos Comerciales. ....................................................................... 24
1.7 IMPRESIÓN DENTAL. ................................................................................. 24
1.7.1 Impresiones preliminares, anatómicas o de estudio. ............................. 24
1.7.2 Impresiones definitivas o funcionales. ................................................... 25
1.7.3 Según su extensión o tamaño: .............................................................. 25
1.7.4 Según existan o no dientes en la arcada: .............................................. 25
1.7.5 Según su complejidad: .......................................................................... 25
1.8 CUBETAS DENTALES. ............................................................................... 25
1.8.1 Tipos de cubetas. .................................................................................. 26
1.9 MICROBIOLOGÍA ORAL. ............................................................................ 26
1.9.1 Unidades De Medida De Los Microorganismos. .................................... 26
1.9.2 Morfología de las bacterias. ................................................................... 27
1.10 CLASIFICACIÓN DE LAS BACTERIAS. .................................................. 28
1.11 GÉNEROS BACTERIANOS. ..................................................................... 29
1.11.1 Cocos Gram-positivos. ........................................................................ 29
1.11.2 Cocos Gram-negativos. ....................................................................... 30
1.11.3 Bacilos Gram-positivos Anaerobios Facultativos de interés oral. ........ 30
1.11.4 Bacilos Gram-negativos Anaerobios Facultativos de interés oral. ....... 31
1.11.5 Bacterias Anaerobias Estrictas de interés oral (I) Anaerobios
esporulados. ................................................................................................... 32
1.11.6 Bacterias anaerobias estrictas de interés oral (II) Anaerobios no
esporulados. ................................................................................................... 32
1.11.6.1 Bacilos Gram-negativos. ............................................................... 32
1.11.6.2 Bacilos Gram-positivos. ................................................................. 34
1.11.6.3 Cocos Gram-positivos. .................................................................. 34
1.11.7 Bacterias Ácido Alcohol Resistentes: Micobacterias. .......................... 35
1.11.8 Espiroquetas y otras bacterias de interés oral. .................................... 36
1.11.9 Diversidad Vírica. ................................................................................. 37
1.11.10 Virus de la Hepatitis (I) Hepatitis de transmisión oral. ....................... 40
1.11.11 Hongos de interés oral. ...................................................................... 40
1.11.12 Parásitos de interés oral. ................................................................... 41
1.12 DESINFECCIÓN DE LA IMPRESIÓN DENTAL. ....................................... 41
1.12.1 Niveles. ................................................................................................ 41
1.12.2 Desinfectantes para impresiones dentales. ......................................... 41
1.13 CONTAMINACIÓN CRUZADA. ................................................................. 43
1.13.1 Vías de transmisión: ............................................................................ 44
1.14 CONCLUSIONES PARCIALES DEL CAPÍTULO. ..................................... 45
CAPITULO II. ........................................................................................................ 46
2. MARCO METODOLÓGICO Y PLANTEAMIENTO DE LA PROPUESTA. ....... 46
2.1 CARACTERIZACIÓN DEL SECTOR. .......................................................... 46
2.2 DESCRIPCIÓN DEL PROCEDIMIENTO METODOLÓGICO PARA EL
DESARROLLO DE LA INVESTIGACIÓN. ......................................................... 46
2.2.1 Paradigma o Modalidad Investigativa. ................................................... 46
2.2.2 Tipo de investigación por su diseño. ...................................................... 47
2.2.3 Tipo de investigación por su alcance. .................................................... 47
2.2.4 Métodos técnicas e instrumentos de investigación. ............................... 48
2.2.4.1 Métodos del nivel empírico del conocimiento. ................................. 48
2.2.4.2 Métodos del nivel teórico del conocimiento. .................................... 48
2.2.4.3 Técnicas de investigación. .............................................................. 49
2.2.4.4 Instrumentos de la investigación. .................................................... 49
2.2.5 Población y Muestra. ............................................................................. 50
2.2.5.1 Población. ........................................................................................ 50
2.2.5.2 Muestra: .......................................................................................... 50
2.2.6 Recolección de la información. .............................................................. 53
2.2.7. Análisis de resultados de instrumentos aplicados. ............................... 54
2.2.8 Análisis de la observación. .................................................................... 54
2.2.8.1 Observación Experimental. ............................................................. 54
2.2.8.2 Guía de observación. ...................................................................... 55
2.2.9 Análisis de los resultados. ..................................................................... 59
2.2.9.1 Resultado de la valoración de microorganismos, servicio
Odontológico UAO, 2017, muestras de pacientes parcialmente
desdentados. ............................................................................................... 60
2.2.9.2 Resultado de la valoración de microorganismos, servicio
Odontológico UAO, 2017, muestras de pacientes totalmente desdentados.
.................................................................................................................... 63
2.2.9.3 Evaluación de la desinfección de impresiones dentales con
Digluconato de Clorhexidina al 2%, servicio Odontológico UAO, 2017. ...... 66
2.2.9.4 Evaluación de la desinfección de impresiones dentales con
Hipoclorito de Sodio al 2.5%, servicio Odontológico UAO, 2017. ............... 68
2.2.9.5 Evaluación de la desinfección de impresiones dentales con
Glutaraldehído al 2%, servicio Odontológico UAO, 2017. ........................... 70
2.2.10 Análisis de las encuestas realizadas a los estudiantes de la carrera de
Odontología. ................................................................................................... 72
2.2.11 Análisis de las entrevistas realizadas a Odontólogos de la U.A.O. ..... 80
2.3 PLANTEAMIENTO DE LA PROPUESTA. ................................................... 83
2.3.1 Título: “Guía de Bioseguridad para la manipulación de impresiones
dentales de alginato en la Unidad de Atención Odontológica Uniandes”. ...... 83
2.3.2 Introducción. .......................................................................................... 83
2.3.3 Objetivos. ............................................................................................... 83
2.3.3.1 Objetivo General. ............................................................................ 83
2.3.3.2 Objetivos Específicos. ..................................................................... 83
2.3.4 Justificación. .......................................................................................... 84
2.3.5 Desarrollo de la propuesta. .................................................................... 84
2.3.5.1 Población de estudio. ...................................................................... 84
2.3.5.2 Lugar de desarrollo y aplicación de la propuesta. ........................... 84
2.3.6 Metodología empleada para la propuesta. ............................................ 85
2.3.7 Fases del procedimiento. ....................................................................... 85
2.3.8 Beneficios de la propuesta. ................................................................... 88
2.4 CONCLUSIONES PARCIALES DEL CAPÍTULO. ....................................... 89
CAPÍTULO III. ....................................................................................................... 90
3. VALIDACIÓN Y EVALUACIÓN DE RESULTADOS DE SU APLICACIÓN. .... 90
3.1 ESQUEMA DE LA APLICACIÓN DE LA PROPUESTA. .............................. 90
3.2 ANÁLISIS MICROBIOLÓGICO DE MUESTRAS DESINFECTADAS CON
TRES SOLUCIONES. ........................................................................................ 91
3.2.1 Análisis microbiológico de 15 muestras desinfectadas con Digluconato
de Clorhexidina al 2%. .................................................................................... 91
3.2.2 Análisis Microbiológico de 15 muestras desinfectadas con Hipoclorito de
Sodio al 2.5%. ................................................................................................ 93
3.2.3 Análisis Microbiológico de 15 muestras desinfectadas con
Glutaraldehído al 2%. ..................................................................................... 95
3.2.4 Resumen del Análisis Microbiológico de muestras desinfectadas. ........ 97
3.3 CONCLUSIONES PARCIALES DEL CAPÍTULO. ....................................... 99
CONCLUSIONES GENERALES. ........................................................................ 100
RECOMENDACIONES. ...................................................................................... 101
BIBLIOGRAFÍA
LINKOGRAFÍA
ANEXOS
ÍNDICE DE TABLAS.
Tabla 1. Clasificación de los materiales de impresión (Viscosidad). ........ 12
Tabla 2. Clasificación (antes y después de fraguar). ............................... 13
Tabla 3. Clasificación según la ADA. ....................................................... 14
Tabla 4. Características de los materiales de impresión. ......................... 14
Tabla 5. Composición de los alginatos..................................................... 18
Tabla 6. Estabilidad dimensional de los alginatos. ................................... 23
Tabla 7. Niveles de desinfección. ............................................................ 41
Tabla 8. Productos para desinfección de Impresiones dentales. ............. 42
Tabla 9. Población para la investigación. ................................................. 50
Tabla 10. Universo. .................................................................................. 50
Tabla 11. Número de impresiones realizadas por séptimo semestre. ..... 51
Tabla 12. Muestra para la investigación. .................................................. 53
Tabla13. Guía de Observación. ............................................................... 55
Tabla 14. Análisis Microbiológico de muestras de pacientes parcialmente
desdentados. ........................................................................................... 60
Tabla 15. Tabulación en porcentaje de las muestras de pacientes
parcialmente desdentados. ...................................................................... 62
Tabla 16. Análisis Microbiológico de muestras de pacientes totalmente
desdentados. ........................................................................................... 63
Tabla 17. Tabulación en porcentaje de muestras de pacientes totalmente
desdentados. ........................................................................................... 65
Tabla 18. Contaminación bacteriana de las impresiones de alginato. ..... 72
Tabla 19. Microorganismos presentes en impresiones dentales de
alginato. ................................................................................................... 73
Tabla 20. Importancia de desinfectar impresiones dentales de alginato. . 73
Tabla 21. Desinfección de impresiones dentales de alginato. ................. 74
Tabla 22. Desinfectante utilizado. ............................................................ 75
Tabla 23. Consecuencias por no desinfectar impresiones dentales. ....... 76
Tabla 24. Desinfectante adecuado. ......................................................... 77
Tabla 25. Alteración en el material de impresión. .................................... 78
Tabla 26. Enfermedades de transmisión por impresiones dentales. ........ 79
Tabla 27. Muestras desinfectadas con Digluconato de clorhexidina al 2%.
................................................................................................................. 91
Tabla 28. Porcentaje de muestras desinfectadas con Digluconato de
Clorhexidina al 2%. .................................................................................. 92
Tabla 29. Muestras desinfectadas con Hipoclorito de Sodio al 2.5%. ...... 93
Tabla 30. Porcentaje de muestras desinfectadas con Hipoclorito de Sodio
al 2.5%. .................................................................................................... 94
Tabla 31. Muestras desinfectadas con Glutaraldehído al 2%. ................. 95
Tabla 32. Porcentaje de muestras desinfectadas con Glutaraldehído al
2%. ........................................................................................................... 96
Tabla 33. Cuadro de resumen de muestras desinfectadas con tres
soluciones diferentes. .............................................................................. 97
ÍNDICE DE GRÁFICOS.
Gráfico 1. Cocos. .................................................................................. 27
Gráfico 2. Bacilos. ................................................................................. 28
Gráfico 3. Formas Incurvadas. .............................................................. 28
Gráfico 4. Análisis Microbiológico de muestras de pacientes
parcialmente desdentados. ................................................................... 62
Gráfico 5. Análisis Microbiológico de muestras de pacientes totalmente
desdentados. ........................................................................................ 66
Gráfico 6. Contaminación bacteriana de las impresiones de alginato. . 72
Gráfico 7. Microorganismos presentes en impresiones dentales de
alginato. ................................................................................................ 73
Gráfico 8. Importancia de desinfectar impresiones dentales de alginato.
.............................................................................................................. 74
Gráfico 9. Desinfección de impresiones dentales de alginato. .............. 75
Gráfico 10. Desinfectante utilizado. ...................................................... 76
Gráfico 11. Consecuencias por no desinfectar impresiones dentales. . 77
Gráfico 12. Desinfectante adecuado. .................................................... 78
Gráfico 13. Alteración en el material de impresión. .............................. 79
Gráfico 14. Enfermedades de transmisión por impresiones dentales. .. 80
Gráfico 15. Muestras desinfectadas con Digluconato de Clorhexidina al
2%. ....................................................................................................... 92
Gráfico 16. Muestras desinfectadas con Hipoclorito de Sodio al 2.5% . 94
Gráfico 17. Muestras desinfectadas con Glutaraldehído al 2%. ........... 96
Gráfico 18. Resumen del Análisis microbiológico de la desinfección de
muestras con tres soluciones diferentes. .............................................. 98
RESÚMEN.
Tema: Identificación de microorganismos presentes en impresiones dentales de
alginato de pacientes que asisten a la Unidad de Atención Odontológica Uniandes.
Objetivo: Identificar microorganismos presentes en impresiones dentales de
alginato de pacientes que asisten a la Unidad de Atención Odontológica Uniandes.
Variables:
Variable dependiente: la contaminación bacteriana e infección cruzada entre
pacientes, profesional Odontólogo y laboratorista dental.
Variable Independiente: Análisis de microorganismos presentes a través de
cultivo en las superficies del material de impresión.
Método y material: Se ejecutaron cinco procesos de observación aplicados a 45
muestras de impresiones dentales de alginato de pacientes de la Unidad de
Atención Odontológica Uniandes, 21 muestras de impresiones dentales de
pacientes parcialmente desdentados y 24 muestras de impresiones de pacientes
totalmente desdentados. Las mismas se desinfectaron con tres soluciones
diferentes y se realizó el análisis microbiológico correspondiente.
Resultados: Se realizó el análisis microbiológico encontrándose en las 45
muestras Cocos Gram (+) aislados y en pares y cadenas, Cocos Gram (-),
Diplococos Gram (-), Levaduras y Bacilos Gram (-). Así mismo 15 se desinfectaron
con Digluconato de Clorhexidina al 2% la cual no eliminó Cocos Gram (-) y Bacilos
Gram (-), 15 con Hipoclorito de Sodio al 2.5% el cual no eliminó Levaduras y Cocos
Gram (+) de una sola muestra, y 15 con Glutaraldehído al 2% el cual eliminó todos
los microorganismos presentes.
Conclusiones: en la mayoría de impresiones dentales se encontró contaminación
microbiana, por lo tanto, es necesario tomar medidas de bioseguridad para su
manipulación y llevar a cabo un proceso de desinfección de las mismas para evitar
la diseminación de microorganismos y por ende contaminaciones cruzadas.
Recomendaciones: Se recomienda utilizar desinfectantes de Alto Nivel puesto que
en muchas ocasiones las impresiones dentales se contaminan además de saliva
con sangre y no sabemos a qué tipo de microorganismos nos exponemos al
manipular este tipo de material en nuestra consulta, para así poder eliminarlos en
su totalidad.
ABSTRACT.
Subject: Identification of micoorganisms in dental impressions of alginate in
patients attending the Unidad de Atencion Odontologica Uniandes.
Objective: to identify microorganisms in dental impressions of alginate in patients
attending the Unidad de Atencion Odontologica Uniandes.
Variables:
Dependent Variable: the bacterial contamination and cross-indeccion among
patients, dentist and dental technician.
Independent Variable: analysis of microorganisms through cultivation on the
surfaces of the print material.
Material and Method: Five observation processes were implemented to 45
samples of dental impressions of alginate of partially edentulous patients and 24
samples of prints of patients fully edentulous patients. These impressions were
disinfected with three different solutions. Also, a microbiological analysis was
performed.
Results: A microbiological analysis was done and some results were found such
as; coccus gram (+) isolated and in pairs and chains. Coccus Gram (-) Diplococci
Gram (-), yeast and gram (-) in 45 samples. 15 samples were disinfected with
chlorhexidine digluconate to 2%. This solution did not eliminate coccus gram (-) and
bacilllus gram (-). 15 with sodium hypochlorite to 2.5%. This solution did not
eliminate yeast and coccus gram (+) from a single simple. 15 and 2% glutaraldehyde
which eliminated all the microorganisms.
Conclusions: In the majority of dental impressions, microbial contamination was
found. Therefore, it is necessary to take biosecurity measures for its handling to
undertake a process of disinfection to prevent the spread of micro-organisms and
cross-contamination.
Recommendations: It is recommended to use high-level disinfectants because
dental impressions are contaminated with saliva, and blood, so it is not known what
type of micoorganisms people are exposed when handling this type of material in
many cases. The aim is to be able to eliminate the micoorganisms completely.
1
INTRODUCCIÓN.
Antecedentes de la Investigación.
El término microbiología (de micro= pequeño, bios= vida, y logos= estudio) fue
acuñado por el sabio francés Louis Pasteur, para incluir el estudio de los
organismos que solo eran visibles con el auxilio del microscopio y que se
designaron como microorganismos, microbios o gérmenes. (NEGRONI, 2010)
La microbiología es la rama de la biología que estudia los microorganismos, bajo
esta denominación se incluyen seres de tamaño microscópico, de estructura
subcelular, unicelular o pluricelular. La microbiología oral estudia de forma especial
las bacterias, los hongos y los virus de la cavidad bucal, la respuesta
de sus tejidos frente a los microorganismos, las relaciones que éstos
establecen entre sí y con dicha cavidad, y las enfermedades infecciosas
propias del ámbito odontológico. (UREÑA, 2002)
La boca es una de las claves que relaciona el cuerpo y el ambiente exterior, y puede
actuar como sitio de entrada para algunos patógenos microbianos, especialmente
del aire o mediante la ingesta por la dieta. La enfermedad que está localizada en
otra parte del cuerpo puede ser reflejada en la boca y, como resultado, la saliva
está siendo cada vez más reconocida como un líquido de diagnóstico clave, por
ejemplo la candidiasis oral en adultos jóvenes previamente sanos puede ser el
primer signo de la infección por VIH (MARSH, 2011)
La actividad odontológica se desarrolla en un ámbito de contaminación; ya que en
la cavidad oral abundan alrededor de 700 especies de microorganismos, de los
cuales algunos forman flora normal y otros pueden ser patógenos. Dentro de los
microorganismos más comunes encontramos Estreptococos, Staphylococcus,
Veillonella, Granulicatella, Neisseria, Haemophilus, Corynebacterium, Rothya,
Actinomices, Prevotella, Capnocytophaga, Porphyromonas, Fusobacterium,
Treponema, Tannerella, Parvimonas, Dialister, Eubacterium, entre otras más, las
cuales si emigran o varían su concentración pueden llegar a ser patógenas.
Las normas de seguridad se basan en aplicar las máximas medidas de
desinfección, asepsia, esterilización, y protección del profesional y personal
auxiliar, para evitar las enfermedades de riesgo profesional (Sida, Hepatitis Entre
Otras) y la infección cruzada (Tuberculosis, Hepatitis Y Otras), respecto a nuestra
2
familia, personal auxiliar, pacientes y personal del laboratorio, etc, como también
protegernos evitando la atención de quienes muestren lesiones contagiantes no
graves como ser el Herpes Labial recidivante o recurrente u otras lesiones, o a los
pacientes que se encuentren resfriados, etc. Para no convertirnos en involuntarios
diseminadores de infecciones. (OTERO, 2002)
La desinfección de las impresiones dentales es un procedimiento clave para el
control de la contaminación cruzada y la transmisión de microorganismos.
Comúnmente son utilizados desinfectantes químicos como: alcoholes, aldehídos,
compuestos de cloro, compuestos fenólicos, compuestos de yodo y compuestos
cuaternarios de amonio. Además, se ha demostrado que el enjuagar con agua
corriente puede reducir la carga microbiana pero no desinfecta la impresión
eficientemente, por lo cual deben ser utilizados métodos adicionales. (REVISTA
ADM, 2015)
Debido al aumento de enfermedades infectocontagiosas y la posibilidad de ser
transmitidas en la práctica odontológica se ha producido un gran impacto en las
acciones relativas al control de infecciones cruzadas, tanto en los consultorios
particulares, como en los laboratorios de prótesis.
La desinfección de las cubetas, materiales de impresión dental y modelos se puede
definir como la etapa clínica que busca eliminar gran parte de los microorganismos
patógenos de las superficies. (KIRU, 2014)
Planteamiento del Problema.
Los profesionales de la salud en todas las áreas están expuestos a “riesgos” que
pueden ser la transmisión de un sin número de enfermedades con instrumental
contaminado, contacto con sangre y saliva a la mucosa conjuntival, teniendo en
cuenta la importancia de las barreras de Bioseguridad es necesario enfatizar que
el conocimiento de las mismas sea completo y la aplicación de dichas barreras sea
de la forma adecuada para así minimizar el impacto de un sin número de patologías
entre pacientes y personal de la clínica Odontológica.
Todos los procedimientos para el control de infección por medio de las impresiones
dentales y cubetas contaminadas, son conocimientos adquiridos durante la
formación preprofesional, la buena información sobre procedimientos de control de
3
infecciones es importante ya que una de las vías de transmisión a las que más
expuestos están tanto el operador y su auxiliar es la vía aérea, debido a la acción
contaminante de las impresiones dentales las cuales son utilizadas en toda
actividad Odontológica.
Formulación del Problema:
Para la realización de este estudio se plantea la siguiente interrogante:
¿Cuáles son los microorganismos presentes en las impresiones dentales de
alginato de los pacientes de la Unidad de Atención Odontológica Uniandes?
Delimitación del problema.
Objeto de estudio y campo de acción.
Objeto de estudio: determinación de microorganismos presentes en impresiones
dentales de alginato
Campo de acción: Bioseguridad Odontológica, Agentes Biológicos.
Lugar: Unidad de Atención Odontológica Uniandes
Tiempo: Abril – Septiembre 2017
Identificación de la línea de investigación.
Odontología preventiva y comunitaria: estudio de variables de riesgo Odontológico
en la población.
Objetivos.
Objetivo General.
Identificar los microorganismos presentes en impresiones dentales de alginato en
pacientes que asisten a la Unidad de Atención Odontológica Uniandes.
Objetivos Específicos.
Fundamentar teórica y científicamente sobre los microorganismos presentes en
las superficies de alginato en impresiones dentales.
4
Evaluar el uso de normas de bioseguridad por parte de los estudiantes que
utilizan impresiones dentales de alginato provenientes de la cavidad bucal de
los pacientes que asisten a la Unidad de Atención Odontológica para fines
protésicos.
Elaborar una guía práctica de desinfección de las impresiones dentales de
alginato que prevenga la contaminación cruzada.
Idea a defender.
La principal idea a defender en esta investigación es que mediante el conocimiento
de los microorganismos presentes en una impresión dental y la aplicación de
normas de bioseguridad para la limpieza y desinfección de las mismas por parte de
los estudiantes de Odontología, se contribuye a evitar considerablemente la
contaminación bacteriana e infección cruzada entre pacientes, personal de salud y
laboratorista, manteniendo a su vez las condiciones ideales de dicha impresión en
cuanto a la estabilidad dimensional y buena reproducción de detalles.
Variables de Investigación.
Variable Independiente.
Análisis de microorganismos presentes a través de cultivo en las superficies del
material de impresión.
Variable Dependiente.
La contaminación bacteriana e infección cruzada entre pacientes, profesional
Odontólogo y laboratorista dental.
Justificación del tema.
Una impresión dental de alginato que no sea tomada previo al uso de barreras de
bioseguridad y una posterior manipulación adecuada puede dar inicio una
contaminación cruzada entre el profesional el laboratorista y los pacientes, debido
a esto realizo este estudio para dar a conocer las consecuencias que pueden
producirse al no realizar correctamente estos procedimientos, además es necesario
5
e importante fomentar la limpieza desinfección y esterilización en toda acción que
se realice en el ámbito Odontológico.
Metodología a emplear.
Cuantitativo: se puede identificar la cantidad de colonias de microorganismos
existentes en las superficies de alginato.
Cualitativo: se puede evaluar el tipo de microorganismos presentes en las
impresiones dentales.
Tipo de Investigación por su diseño.
Experimental: porque se pretende determinar los microorganismos presentes en
el material de impresión expuesto a la cavidad bucal y la aplicación de medidas
frente a la exposición a las mismas.
Comparativo: ya que se asocia el conocimiento de los microorganismos presentes
y el uso de desinfectantes adecuados para la eliminación de los mismos
manteniendo las condiciones ideales del material de impresión.
Transversal: debido a que va a recolectar datos, describir variables y analizar el
beneficio que brinda la aplicación de normas de bioseguridad y medidas
preventivas para infecciones cruzadas.
Tipo de Investigación por su alcance.
Descriptiva: se analiza los microorganismos presentes, las normas de
bioseguridad y su aplicación en impresiones dentales de alginato, y los beneficios
de las mismas para reducir infecciones cruzadas.
6
Explicativa: se puede analizar y explicar la presencia de infecciones cruzadas al
no realizar una adecuada limpieza y desinfección de impresiones dentales de
alginato.
Descripción de la estructura.
La tesis se encuentra conformada por Introducción en ña que se presentará el
problema, su situación, el planteamiento y delimitación del problema, la idea a
defender, así como una breve explicación de la metodología investigativa y los
elementos de novedad, aporte teórico y significación práctica.
El trabajo investigativo contendrá tres capítulos.
En el primer capítulo, se presenta el marco teórico de la investigación donde se
detallará todo acerca de los microorganismos presentes en impresiones dentales y
las enfermedades que pueden causar, así como normas de bioseguridad para
evitar contaminaciones cruzadas.
En el segundo capítulo se describe toda la metodología empleada como
investigación cualitativa – cuantitativa, también se expondrán los resultados de los
instrumentos aplicados.
En el tercer capítulo se presenta la propuesta que consiste en la aplicación de
normas de bioseguridad adecuadas para evitar la contaminación cruzada entre
pacientes, profesional de salud y laboratorista dental así como el mantenimiento de
las condiciones ideales de dicho material.
Así también las conclusiones y recomendaciones que recopilarán la síntesis del
trabajo.
Aporte teórico, significación práctica y novedad científica.
Aporte Teórico
El aporte teórico es de suma importancia, ya que mediante esta investigación se
brindará un aporte a los profesionales y sobre todo a los estudiantes de Odontología
acerca del conocimiento de los microorganismos frecuentes en las impresiones
dentales de alginato y la aplicación de normas de bioseguridad y de medidas
7
preventivas sobre las mismas, en la Unidad de Atención Odontológica para evitar
contaminaciones cruzadas.
Significación práctica
Esta investigación va encaminada a evaluar las medidas preventivas tomadas por
los estudiantes en la Unidad de Atención Odontológica con las respectivas
impresiones dentales y a la selección de desinfectantes adecuados que mantengan
las propiedades físicas de dichos materiales, previo al envío de las mismas al
laboratorio, esto va a permitir evaluar el beneficio y la eficacia en cuanto a la
disminución a la exposición bacteriana.
Novedad científica
Esta investigación es de mucho interés ya que aportará con información importante
acerca de las especies bacterianas que se transmiten por medio de los materiales
de impresión expuestos a fluidos corporales como sangre y saliva, así como las
enfermedades que ellos pueden causar, además promoverá el conocimiento de
este tema por parte de los estudiantes y profesionales Odontólogos para que así
consideren la importancia de realizar una adecuada limpieza y desinfección de las
impresiones como un importante procedimiento en la prevención de infecciones
cruzadas.
8
CAPITULO I
1. MARCO TEORICO.
1.1 ANTECEDENTES INVESTIGATIVOS.
El presente trabajo de investigación fue realizado en la Unidad de atención
Odontológica “UNIANDES”, con la finalidad de determinar las diferentes especies
bacterianas procedentes de la cavidad bucal en impresiones dentales de alginato
para realizar la correcta desinfección de las mismas y así evitar la contaminación
cruzada entre pacientes, profesional Odontólogo y laboratorista dental.
Para el desarrollo de esta investigación fue indispensable la revisión bibliográfica
de algunos estudios realizados con anterioridad, los mismos que proporcionan
valiosas pautas a seguir, en otros países se han llevado a cabo investigaciones
similares, que pueden constituirse en antecedentes de esta investigación; entre las
que destacan:
Tema: Prevalencia de microorganismos en impresiones dentales después del
uso de soluciones desinfectantes.
Autores: Mercedes Briceño, Ana Castillo, María Nachón, Sergio Gonzales, Diana
Carmona, Claudia Ortega, Pamela Escobar, Jacinto Izquierdo.
Año: 2014
Lugar: Universidad Veracruzana – México.
Conclusiones:
Se ha usado con éxito el hipoclorito de sodio al 0.5% o glutaraldehído
(dilución 1:10, durante 15 minutos para alginatos) y yodopovidona al 10%
durante 15 minutos para aparatos de prótesis y ortodoncia.33 Para otros
tipos de impresiones (siliconas y elastómeros) aún no hay datos suficientes;
los materiales de impresión que no requieren humedad y que no se alteran
con el tiempo, pueden colocarse en cajas con pastillas de formalina durante
12 horas.
Una solución acuosa al 37% de formalina o al 8% de formaldehido en un
70% de alcohol isopropílico destruye los microorganismos.
9
Los desinfectantes presentan ventajas y desventajas; por ejemplo, el
glutaraldehído y el formaldehído parecen sellar o fijar las membranas
celulares de las bacterias, en consecuencia, bloquean la entrada de
componentes celulares y eliminan así al microorganismo. Se les utiliza como
desinfectantes por inmersión, se consideran de alto nivel si se les deja actuar
durante 10 horas y un antiséptico de alto nivel al cabo de 25 a 30 minutos,
aunque las variedades de larga duración necesitan 90 minutos para alcanzar
el mismo nivel de desinfección.
68 individuos del total de los participantes presentaron enfermedad
periodontal. El 33.1% (56 casos) padecían de gingivitis, de los cuales el
42.9% (24 casos) a mujeres y el 57.1 (32 casos) correspondió al sexo
masculino. El 17.7% (12 casos) mostró periodontitis, de los cuales el 75% (9
casos) concierne a mujeres y el 25% (3 casos) a hombres
Se evaluó la efectividad de ocho bactericidas: hipoclorito, antibenzil,
glutaldehido, krit, yodopovidona, solo, zeta 7, zit y muestra testigo. Se
identificó crecimiento de bacterias en aerobiosis en una muestra con
hipoclorito y en la muestra testigo (0.6%). En anaerobiosis se desarrollaron
bacterias en 6 muestras (3.7%), dos en hipocrolito y una para las siguientes:
yodopovidona, antibenzil, zeta 7 y muestra testigo.
La asepsia de materiales e instrumental que no puedan ser esterilizados por
medios físicos y que son utilizados en la práctica diaria en los diferentes
procedimientos odontológicos deben ser desinfectados en forma rutinaria,
para lo cual existen diversas soluciones en el mercado, de los cuales el
glutaraldehído, krit, solo y zit resultaron ser eficaces, dándonos con ello la
seguridad en su uso. Por otro lado, no hay suficiente evidencia, con el
escaso desarrollo bacteriano, para asegurar que las otras soluciones
desinfectantes no sean eficaces.
Tema: Importancia y consecuencias de la desinfección de los materiales de
impresión.
Autor: Matia Sagasti.
Año: 2009
10
Lugar: Universidad de Sevilla - España
Conclusiones:
Ante la imposibilidad de determinar todos los posibles pacientes infecciosos en
la consulta dental y la rápida evolución del SIDA y la Hepatitis B, se recomienda
la desinfección sistemática de las impresiones dentales.
Debido a la naturaleza de los materiales de impresión, sólo es posible su
desinfección mediante sustancias químicas adecuadas a tal efecto (aldehídos,
halógenos, etc.).
La exposición de los materiales de impresión en soluciones desinfectantes en
condiciones adecuadas no supone alteración clínicamente significativa de los
mismos, aunque con materiales hidrofílicos como los hidrocoloides, la mayor
precisión se consigue utilizando sprays desinfectantes, que pueden combinarse
con antisépticos introducidos en la composición del hidrocoloide para conseguir
la máxima eficacia.
Tema: Estudio de dos técnicas de desinfección en un material de impresión
Autores: Fredy Contreras, Violeta Tinoco, Roberto Mendez, Mario Todd, Francisco
Llamas.
Año: 2014
Lugar: Tamaulipas México
Conclusiones:
Se utilizó glutaraldehído al 2% sumergiendo las impresiones dentales
tomadas con silicona por adición, durante 10 minutos y otras fueron
esterilizadas en autoclave durante 15 minutos.
El crecimiento bacteriano por grupo se describe exponencialmente, siendo
notoria la falta de crecimiento de colonias en las muestras del grupo B
(autoclave) dando una eficacia del 100%, mientras que el grupo control fue
marcadamente mayor que el grupo A del glutaraldehído.
Los clínicos dentales, asistentes dentales, técnicos de laboratorio y cualquier
otro empleado en el campo de la salud dental, debe protegerse así mismo
11
contra las posibilidades de la transmisión de enfermedades, implementando
barreras de protección.
El lavado de la impresión reduce la carga microbiana pero no la elimina por
completo.
El glutaraldehído al 2% es eficaz en la eliminación de microorganismos no
esporulados provenientes de la cavidad oral presentes en las impresiones
con material elastomérico.
La eliminación completa de microorganismos puede ser lograda mediante
la esterilización de las impresiones con material elastomérico.
1.2 FUNDAMENTACIÓN CIENTÍFICA.
1.2.1 MATERIALES DE IMPRESIÓN DENTAL.
1.2.1.1 Definición.
Los materiales para impresión son productos que se utilizan para copiar o
reproducir en negativo los tejidos duros y blandos de la cavidad bucal.
Reproducción que posteriormente servirá para el vaciado del material para elaborar
el modelo respectivo.
1.2.1.2 Requisitos exigidos.
Características de fraguado que cumplan con los requerimientos clínicos.
Compatibilidad con los materiales para modelos y troqueles.
Consistencia y textura satisfactoria.
Estabilidad dimensional sobre rangos de temperatura y humedad normalmente
encontrados en los procedimientos clínicos y de laboratorio por largos períodos,
suficientes como para permitir la reproducción de un modelo o troquel.
Facilidad de uso con un mínimo de equipo.
Libre de constituyentes tóxicos o irritantes.
Olor agradable, sabor y color estético.
Económicos.
Resistencia adecuada de manera tal que no se rompa al moverse de la boca.
Seguridad en el uso clínico.
Vida útil adecuada para las condiciones de almacenamiento y distribución.
12
1.3 CLASIFICACIÓN DE LOS MATERIALES DE IMPRESIÓN.
Los materiales dentales para impresión se pueden clasificar de acuerdo con sus
propiedades físicas en:
Rígidos: Yesos para impresiones, Compuestos cinquenólicos (óxidos metálicos)
Termoplásticos: Ceras para impresiones (desuso), Compuestos de modelar
Elásticos: Hidrocoloides: reversibles (agar agar), irreversibles (alginato),
Polisulfuros, Siliconas, Poliéteres, Híbridos (Polieter + Silicona)
1.3.1 Rígidos.
Son materiales que al endurecer tienen una consistencia rígida o dura.
1.3.2 Termoplásticos.
Son materiales rígidos a temperatura ambiente, adquieren consistencia plástica a
altas temperaturas, y recuperan la rigidez cuando la temperatura baja nuevamente
dentro de la cavidad bucal.
1.3.3 Elásticos.
Son aquellos que permanecen en estado elástico y flexible después de haber
permanecido en la boca.
1.4 OTRAS FORMAS DE CLASIFICACIÓN DE LOS MATERIALES DE
IMPRESIÓN
Otra manera de clasificarlos es de acuerdo con la forma como se endurecen en la
boca. Unos endurecen a la temperatura bucal, luego de haberse calentado para
darles plasticidad, por ejemplo: ceras y compuestos para modelar; otros endurecen
en la boca por reacciones químicas de fraguado, como los yesos, los hidrocoloides
por gelificación y las siliconas, polisulfuros y poliéteres por polimerización.
1.4.1 Clasificación de acuerdo con la viscosidad.
Tabla 1. Clasificación de los materiales de impresión (Viscosidad).
NO VISCOELÁSTICOS VISCOELÁSTICOS
Yeso para impresión HIDROCOLOIDES
Compuesto de modelar Reversibles (agar – agar)
Compuestos cinquenólicos Irreversibles (alginato)
13
Ceras para impresión Elastómeros
Polisulfuros
Siliconas
Poliéteres
1.4.2 Clasificación de acuerdo con las propiedades físicas antes y después
de fraguar.
Tabla 2. Clasificación (antes y después de fraguar).
VISCOSIDAD (antes de fraguar) RIGIDEZ (después de fraguar)
Fluidos: mucoestáticos Rídigos
Viscosos: mucocompresivos Yeso
Óxido de cinc - eugenol
Cera de impresión
Modelina
Flexibles
Hidrocoloides:
Reversible: Agar
Irreversible: Alginato
Elastómeros sintéticos:
Siliconas
Polisulfuros
Poliéteres
14
1.4.3 Clasificación de los materiales de impresión según la ADA.
Tabla 3. Clasificación según la ADA.
No Elásticos Elastómeros acuosos Elastómeros no acuosos
Compuestos para
impresiones
Hidrocoloides
reversibles (agar)
Polisulfuro
Yeso para impresiones Hidrocoloides
Irreversibles (alginato)
Siliconas por
condensación
Ceras Siliconas por adición
Óxido de cinc eugenol Poliéteres
1.4.4 Categorías basadas en la viscosidad.
Tipo 0: muy alta viscosidad (Ej., masilla)
Tipo 1: alta viscosidad (Ej., cuerpo pesado)
Tipo 2: viscosidad media (Ej., cuerpo regular)
Tipo 3: baja viscosidad (Ej., cuerpo liviano)
1.5 CARACTERÍSTICAS GENERALES DE LOS MATERIALES PARA
IMPRESIÓN.
Tabla 4. Características de los materiales de impresión.
Agar Alginato Yeso Pasta
Cinquenólica
No irritante + + + 0
Estética y
agradable de
usar
+ + - 0
15
Estable en
almacenamiento
- - + 0
Elasticidad 0 0 - -
Rigidez 0 0 + +
Consistencia
adecuada para
la técnica
+ 0 + +
Económico + + + +
Conveniente
para usarlo
+ + 0 0
Capacidad para
soportar
desgarre y
distorsión
0 0 - -
Estabilidad
dimensional de
la impresión
0 0 + -
Exactitud de la
impresión
+ 0 + +
Tiempo de
trabajo y de
fraguado
+ + + +
Troqueles
metálicos o
electrodepósito
- - - -
Uso de equipo
mínimo
- + 0 0
Permite que el
modelo fragüe
verticalmente,
no invertido
+ + + 0
Modelina Polisulfuro Silicona Poliéter
16
No irritante + 0 0 -
Estética y
agradable de
usar
0 - 0 -
Estable en
almacenamiento
0 + + +
Elasticidad - + + +
Rigidez + + + +
Consistencia
adecuada para
la técnica
0 + 0 0
Económico + 0 0 0
Conveniente
para usarlo
0 0 0 0
Capacidad para
soportar
desgarre y
distorsión
- + + -
Estabilidad
dimensional de
la impresión
0 + + -
Exactitud de la
impresión
- + + -
Tiempo de
trabajo y de
fraguado
+ + + 0
Troqueles
metálicos o
electrodepósito
+ + + -
Uso de equipo
mínimo
0 0 0 0
Permite que el
modelo fragüe
0 + + +
17
verticalmente,
no invertido
Clave:
+ = Relativamente superior - = Relativamente inferior 0 = Promedio
1.6 ALGINATOS.
Los alginatos o hidrocoloides Irreversibles son materiales elásticos para
impresiones, basados en sales solubles del ácido algínico, obtenido de las algas
marinas llamadas “Alginas”. El nombre de Alginatos, proviene del nombre de estas
algas.
1.6.1 Características Deseables.
Polvo no grumoso para evitar la necesidad de agitar el contenedor antes de
dispensar.
Liso, característica de mezcla uniforme, reduce la incidencia de grumos,
burbujas y porosidades.
Características de fluidez para permitir que el material se mantenga en la
cubeta y fluya durante la presión de inserción en boca.
Tiempo de gelificación de varios minutos (1 a 2 minutos para el Tipo rápido
y 2 a 4.5 minutos para el de tipo regular).
Buena recuperación elástica después de removerse.
Suficiente flexibilidad después de gelificado (8 a 16%) para permitir la
facilidad de remoción.
Aceptación del paciente de la textura, sabor y olor.
1.6.2 Usos.
Los hidrocoloides irreversibles se utilizan en la toma de impresiones parciales o
totales de los maxilares dentados, especialmente para la construcción de prótesis
parciales removibles, fundamentalmente porque son capaces de reproducir
ángulos muertos debido a sus propiedades elásticas.
También se usan en impresiones para modelos de estudio y modelos de ortodoncia
e impresiones primarias de pacientes edéntulos para la confección de prótesis
totales.
18
Por la falta de reproducción de detalles superficiales finos, estos materiales no
deben utilizarse en la toma de impresiones destinadas a la fabricación de coronas,
puentes fijos o incrustaciones.
1.6.3 Composición.
Tabla 5. Composición de los alginatos.
SUSTANCIAS PORCENTAJE
Alginato de Sodio o Potasio 12
Sulfato de Calcio 08 – 12
Fosfato de Sodio 02
Tierra de Diatomeas 70
Aditivos (algunos de los siguientes)
Fluoruro de alquil cinc
05
Silicofluoruros
Silicato de plomo
Fosfato tripotásico
Carbonatos
Oxalatos
Trietanolamina
Glicol
Antisépticos: clorhexidina
Colorantes
Saporíferos
Indicadores de pH (algunos)
19
1.6.3.1 Función de cada componente.
Alginato: la base fundamental es una sal soluble del ácido algínico, extraíada
de algas marinas llamadas alginas. Entre las sales se encuentran las de
sodio, potasio y amonio, siendo las de sodio las más utilizadas. Estas
constituyen el elemento principal de la reacción y forman un sol viscoso
cuando se mezcla con el agua. Mientras mayor es la concentración del
alginato en solución, mayor será la viscosidad del sol formado.
Sulfato de Calcio: Es el elemento que reacciona con el alginato soluble y lo
cambia a un alginato insoluble, es decir lo transforma de sol a gel. Si en
cambio, se le agrega anhidrita insoluble, esta actúa como un retardador
debido a su insolubilidad.
Fosfato trisódico o pirofosfato tetrasódico a 2%: se agrega al alginato como
retardadores que inhiben la formación de iones de Calcio libres. También se
ha utilizado para el mismo fin trifosfato de potasio, carbonatos y oxalatos.
Tierra de diatomeas: Se agrega como material de relleno para darle cuerpo
y textura al alginato, reducir la adhesividad y aumentar la resistencia.
Aditivos: Son sustancias que se agregan para mejorar la reproducción de
detalles, disminuir la distorsión, eliminar el polvo atmosférico, aumentar
hasta en 50% la resistencia, humedecerlos y facilitar el mezclado del
alginato.
Indicadores: Debido a que en la mezcla de alginatos existen cambios en el
pH, algunos fabricantes han agregado indicadores como la fenolftaleína y
timolftaleína a sus productos para indicar el grado de reacción alcanzado al
comienzo y final de la gelificación. De esta forma el Odontólogo puede
observar, por el cambio de color, el tiempo para mezclar el material, cargar
la cubeta y retirarlo de la boca.
1.6.4 Evolución.
Desde el punto de vista de su evolución, los alginatos pueden tener las siguientes
características.
20
Alginatos convencionales: fueron los primeros en fabricarse y a los cuales
se les hicieron algunas modificaciones en su composición.
Alginatos con aditivos: empleados con el objeto de mejorar la superficie del
yeso usado para elaborar el modelo.
Alginatos cromáticos: con indicadores de pH para facilitarle al odontólogo la
toma de la impresión.
Alginatos libres de polvo: son alginatos basados en trietanolamina y glicol.
Alginatos con antimicrobianos: (amonio cuaternario, gluconato de
clorhexidina) para evitar las contaminaciones cruzadas.
Alginatos hipoalergicos: no contiene saborizantes ni pigmentos para reducir
la oportunidad de reacciones alérgicas.
Algunos alginatos poseen varias de las características antes mencionadas.
Existe otro tipo de alginato que viene en dos componentes en forma de
pasta, una contiene el sol de alginato más siliconas y la otra el activador de
calcio.
Algunos productos traen el activador en frasco separado para controlar el
tiempo de gelificación de acuerdo con la cantidad añadida. Se usa en áreas
no aceptables para el sistema agua/polvo, impresiones finales en prótesis
parciales, modelos de ortodoncia y modelos con buenos detalles en prótesis
fija.
1.6.5 Reacción Química.
La reacción química de los componentes de los alginatos es una gelificación, que
se da de la siguiente forma:
1. Alginato soluble de Na, K ó NH4 + H2O Sol suave y soluble
2. Sol soluble + sulfato de calcio Gel insoluble
2Nan Alg + nCaSO4nNa2SO4 + CanAlg2
Como la reacción es muy violenta, para tener el tiempo suficiente de tomar la
impresión, la ionización del CaSO4 se retarda con la adición de fosfato de sodio
(Na3PO4) y así mientras todo el fosfato trisódico no haya reaccionado con el sulfato
de calcio, la reacción N.- 2 no se realiza.
21
La reacción retardadora es:
3. 2Na3PO4 + 3CaSO4 Ca3(PO4)2 +3Na2SO4
La estructura química del producto obtenido está conformada por partículas
reaccionantes de alginato soluble, recubiertas por una capa de alginato de calcio
insoluble.
1.6.6 Clasificación.
De acuerdo con la Especificación N.- 18 de la ANSI/ADA, los hidrocoloides
irreversibles se clasifican, de acuerdo con el tiempo de gelificación y de trabajo.
Tipo I: El tiempo de gelificación es de 60 a 120 segundos y el tiempo de trabajo
debe ser menor que 1 minuto y 15 segundos. Se denomina Tipo Rápido.
Tipo II: El tiempo de gelificación va de 2 a 4,5 minutos, y el tiempo de trabajo no
debe ser menor de 2 minutos. Se denomina Tipo Regular.
1.6.7 Propiedades.
Tiempo de trabajo: Es el tiempo que transcurre desde que se inicia la mezcla de
agua – polvo hasta que se carga en la cubeta.
La mezcla del alginato se puede realizar manualmente utilizando taza de goma y
espátula para alginatos o utilizando espatuladores mecánicos.
Tiempo de gelificación: El tiempo que transcurre desde que se mezcla el polvo
con el agua hasta que el material endurece en la boca. Puede ser controlado por el
fabricante o por el odontólogo. El control de la gelificación por el fabricante depende
de la cantidad de retardador agregado.
El odontólogo puede controlar el tiempo de gelificación por los siguientes métodos:
a) Por la temperatura del agua: bajando la temperatura, el tiempo de gelificación
se alarga, es el mejor método.
b) Alterando las proporciones de agua – polvo: esta alteración puede producir una
mezcla pobre y afectar las propiedades del gel.
c) Alterando el tiempo de mezcla: con ello se puede afectar adversamente la
estructura del gel y, por lo tanto, tampoco es aconsejable. El tiempo de
espatulación debe ser de 45 segundos, aproximadamente.
22
Viscosidad: Los alginatos se presentan comercialmente en dos tipos de viscosidad
de acuerdo con a ANSI/ADA N.- 18.
Tipo 1: Alta viscosidad
Tipo 2: Baja viscosidad
Cada tipo se utilizará selectivamente de acuerdo con el tipo de impresión y
resilencia de la mucosa gingival en el momento de tomar la impresión. A mayor
resilencia (elasticidad) de la mucosa, se requerirá alginato más viscoso o viceversa.
Un alginato de gelificación rápida se fabrica en dos consistencias: Regular y Cuerpo
Pesado (Key – To Alginate, Teledyne Water Pik, Jeltrate L.D. Caulk).
Tixotropía: Algunos alginatos no se vierten, se hacen fluidos cuando se les aplica
presión durante la toma de impresión en boca. Este efecto es muy importante desde
el punto de vista clínico, por cuanto el material no fluye con facilidad hacia la parte
posterior del paladar lo que produce menos desagrado al paciente.
Estabilidad Dimensional: Por ser coloides, están expuestos a cambios
dimensionales debido a fenómenos de imbibición y sinéresis. Si se deja sumergido
en agua después de tomada la impresión, la expansión continúa por absorción de
agua. En caso contrario, si la impresión se deja sobre la mesa de trabajo, parte del
agua utilizada para mezclar se evapora por sinéresis, produciéndose una
contracción. En consecuencia, el vaciado debe hacerse inmediatamente después
de retirada la impresión de la boca del paciente. Así mismo, estos materiales
pueden sufrir distorsión por diversas causas:
Toma de la impresión con un material insuficientemente espatulado.
Por presión ejercida durante la toma de la impresión al querer comprimir los
tejidos.
Por no sostener la cubeta en la boca del paciente durante la toma de la
impresión.
En las áreas de ángulos muertos se requiere bastante material entre las
estructuras dentarias y la cubeta para evitar distorsiones al retirar la impresión.
Al secar los dientes antes de la toma de la impresión, porque el material se
puede adherir a ellos.
23
Al usar cubetas sin suficiente retención, el material se puede desprender de las
áreas lisas de la cubeta, no apreciándose a simple vista el sitio donde se produjo
dicho desprendimiento. Para evitar este inconveniente se recomienda usar
cubetas retentivas que pueden tener retención en forma de huecos.
El movimiento de la cubeta en la boca del paciente induce tensiones durante la
gelificación, especialmente en coloides parcialmente gelificado, debido a que la
capa de material que está en contacto con la mucosa, dado el calor de esta,
endurece primero que el material que está en contacto con la cubeta.
La remoción muy lenta de la boca del paciente.
La remoción de la impresión en forma temprana, antes de que el material se
haya gelificado completamente.
En la actualidad, algunos productos tienen un tiempo largo de almacenamiento,
es decir se pueden mantener hasta 120 horas después del fraguado inicial para
hacer el vaciado de la impresión. Es posible entonces enviarlos al laboratorio
dental para que ellos hagan el vaciado sin que se produzca ningún cambio
dimensional. Ejemplo de ellos son:
Tabla 6. Estabilidad dimensional de los alginatos.
48 horas Hydrogum Soft
72 horas TriPhasix, Xantalgin Crono
100 a 120 horas Alginmax, Hidrogum5, imprESIX Color
Change, Kromopan 100
Recuperación elástica: En comparación con el agar – agar, la recuperación
elástica de los alginatos es ligeramente inferior, lo que nos indica que los primeros
tienen una elasticidad algo superior a los segundos.
Flexibilidad: La flexibilidad de los alginatos, en comparación con el agar – agar, es
ligeramente superior. Esta flexibilidad de gel se debe a que solo la capa superficial
de cada partícula de polvo cambia a alginato de sodio o alginato de calcio y el centro
permanece blando, confiriéndole propiedades elásticas al material.
Reproducción de detalles: Comparativamente con los hidrocoloides a base de
agar – agar y de los otros materiales para impresión, la reproducción de detalles
24
finos es aproximadamente 25% menor, motivo por el cual estos materiales no se
utilizan en impresiones donde sea necesaria la fidelidad de los detalles.
Toxicidad: A pesar de que algunos materiales pueden contener plomo en su
composición, se considera que estos productos no son tóxicos.
Efectos del gel sobre modelos de yeso
Las superficies de los modelos de yeso vaciados sobre hidrocoloides puede ser
blanda y arenosa debido a la exudación de los retardadores del yeso contenidos en
el gel, o a la absorción del agua del yeso por imbibición.
1.6.8 Ventajas.
Bajo costo.
Facilidad de manipulación.
Propiedades hidrófilas.
1.6.9 Desventajas.
Poca estabilidad dimensional.
Poca recuperación elástica.
Poca reproducción de detalles.
1.6.10 Productos Comerciales.
Alginate – American Dental Cooperative, Alginate – Henry Scheim, Alginate – Super
Dent, Alginoplast – Heraeus Kulzer, Alginot – Keer, Aroma Fine – GC, CA37 Fast
Set – Cavex, Chromaclone – Ultradent, Coe Hydrophilic Gel – GC America, D-P
Elastic – Teledyne Getz, Dust Free Alginate – Henry Scheim, Emulate Alginate –
Dent Mat, Hydro Jel Professional Product.
1.7 IMPRESIÓN DENTAL.
Es un conjunto de actos clínicos que procuran obtener una reproducción fiel de
todos los accidentes anatómicos que presenta el área protésica, por medio de
materiales apropiados y cubetas adecuadas.
1.7.1 Impresiones preliminares, anatómicas o de estudio.
Esta impresión tiene por finalidad obtener una configuración general del área
protésica y también el aspecto de la fibromucosa que circunscribe puede modificar
25
bajo el efecto de movimientos fisiológicos, con esta impresión no copiamos bien
todo lo que se necesita.
1.7.2 Impresiones definitivas o funcionales.
Es una impresión dinámica que registra todos los detalles anatómicos del área
protésica y también de las inserciones musculares que por sus movimientos
interesan a una prótesis. Se necesita copiar toda el área protésica, inserciones y
frenillos.
1.7.3 Según su extensión o tamaño:
Totales: Cuando reproducen la totalidad del maxilar.
Parciales: Cuando reproducen la mitad o una parte del maxilar.
1.7.4 Según existan o no dientes en la arcada:
Impresiones a pacientes dentados.
Impresiones a pacientes edéntulos.
Impresiones mixtas.
1.7.5 Según su complejidad:
Simples: son aquellas impresiones que se toman generalmente con cubetas
“Stock”, con un solo material de impresión y en un solo tiempo.
Complejas: son aquellas impresiones que se toman con más de un material de
impresión y en dos o más tiempos.
1.8 CUBETAS DENTALES.
Es un dispositivo para conducir el material de impresión a la boca a fin de ponerlo
en contacto íntimo con la parte a modelar y poder remover sin que haya
distorsiones. Constan de las siguientes partes:
Bordes: tienen que ser redondeados
Surcos: Donde van los dientes
Recortes: corresponden a los frenillos
Mango: que debe ser firme.
26
1.8.1 Tipos de cubetas.
Estándar: son cubetas prefabricadas de distinto tamaño y de diferentes
materiales (metal, plástico o teflón). Los requisitos de estas cubetas son: fácil
limpieza, esterilización y adaptación.
La diferencia es que las cubetas de desdentado tienen la gotera curva y las
cubetas para dentados son planas.
Individualizadas: son cubetas adaptadas a una necesidad específica, como las
cubetas de aluminio que son maleables y se pueden cortar y modificar su forma.
Individuales: son aquellas que se elaboran en un laboratorio dental, se realizan
específicamente para la boca de un paciente ajustándose a la anatomía de la
misma, pueden ser de trubase, acrílico, acetato.
1.9 MICROBIOLOGÍA ORAL.
El término microbiología (de micro=pequeño, bíos=vida y logos=estudio o tratado)
fue acuñado por el sabio francés Louis Pasteur (1822-1895), para incluir el estudio
de los organismos que solo eran visibles con el auxilio del microscopio.
1.9.1 Unidades De Medida De Los Microorganismos.
Debido al pequeño tamaño de las bacterias no se les pueden aplicar las unidades
utilizadas normalmente. Por ello se emplean una serie de divisiones del milímetro;
entre las que se usan comúnmente se encuentra el micrómetro o micra (μm
milésima parte de un milímetro); también puede utilizarse para medir los
orgánulos, el nanómetro (nm millonésima parte de un milímetro) o el
angstrom (Å). Aunque el tamaño de las bacter ias va r ía enormemente de
unas a o t ras se puede establecer el patrón entre 0,5 y 1 μm de ancho y 1-10
μm de largo.
Dado su pequeño tamaño, las bacterias tienen que observarse a través de
dispositivos de aumento como los microscopios ópticos compues tos . Además,
en muchos casos se debe recur r i r a mé todos t in to r ia les o inc luso ,
en algunas ocasiones a tinciones especiales que incrementan sus
dimensiones, como en las que se emplean sales de plata. Otros
microorganismos de menor tamaño como los virus no pueden observarse con el
microscopio óptico y debe recurrirse a los electrónicos. Incluso existen bacterias de
reducido tamaño (en épocas pretéritas se consideraron virus) que no pueden
27
visualizarse mediante técnicas convencionales de microscopia óptica (p. ej.
rickettsias, clamidias o micoplasmas). En el otro extremo se sitúan bacterias
de gran tamaño que pueden llegar a alcanzar el de una célula eucariota,
si bien no tienen interés en patología humana.
1.9.2 Morfología de las bacterias.
Depende de la pared celular, que les proporciona elasticidad y al mismo tiempo
rigidez. Estos microorganismos se presentan habitualmente como elementos
esféricos, conocidos como cocos, alargados denominados bacilos, e incurvados.
Esta forma puede variar debido a la antigüedad del cultivo, factores nutricionales,
tratamiento con antibióticos, entre otros. En un caso u otro a las bacterias que
modifican de forma se les denomina pleomorfas y al fenómeno pleomorfismo.
Cocos: su forma habitual es redondeada; sin embargo, a veces hay
excepciones y aparecen ligeramente ovoides, con un lado aplanado (con
aspecto de riñón) o con un extremo afilado (lanceolados).En cuanto a las
agrupaciones, pueden ser de dos en dos (diplococos), de cuatro en cuatro
(tétradas), en cadenas (estreptococos), en racimos (estafilococos) o en forma
de cubos (sarcinas).
Gráfico 1. Cocos.
Bacilos: Son alargados, aunque en algunas ocasiones son más cortos, y se les
denomina cocobacilos. Sus extremos pueden ser variables, lo que contribuye
también a su identificación. Así, existen bacilos con terminaciones en ángulo
recto, redondeadas, afiladas, engrosadas, en forma de maza, entre otros; ello
puede deberse a la propia forma de la bacteria o a la presencia de inclusiones
o esporos. Al contrario que los cocos, es raro que se agrupen, aunque pueden
aparecer como diplobacilos, estreptobacilos o en grupos irregulares.
28
Gráfico 2. Bacilos.
Formas Incurvadas: Son elementos generalmente aislados con una o varias
curvaturas. Si presentan una sola, pueden adoptar aspecto de coma (vibrios); a
veces son varias en un solo plano, rígidas, y se desplazan por flagelos
(espirilos); en ocasiones se sitúan en planos distintos, son flexibles y se mueven
por filamentos axiales (espiroquetas).
Gráfico 3. Formas Incurvadas.
1.10 CLASIFICACIÓN DE LAS BACTERIAS.
Bacterias Grampositivas: son aquellas que retienen el colorante cristal violeta y
la tinción azul oscura o púrpura durante el proceso de tinción de Gram, carecen de
una membrana externa.
Bacteria Gramnegativas: son aquellas que poseen una membrana externa,
durante el proceso de tinción Gram se decoloran y se tiñen de rojo.
Bacterias Aerobias: son aquellas que requieren oxígeno para crecer y se
encuentran en dos variables: grampositivas y gramnegativas.
Bacterias Anaerobias: son aquellas bacterias capaces de crecer en ausencia de
oxígeno. Los anaerobios facultativos pueden crecer en presencia de oxígeno, pero
29
no lo requieren, mientras que los anaerobios obligados mueren en presencia de
oxígeno y dependen de otros gases como el metano.
1.11 GÉNEROS BACTERIANOS.
1.11.1 Cocos Gram-positivos.
Corresponden los siguientes géneros:
Género Estafilococos: agrupadas en racimos, aerobios y anaerobios
facultativos.
S. Aureus y S. Epidermidis, ninguna de las dos especies se considera microbiota
residente de la boca sino simples transeúntes debido a que son habituales en
labios, comisuras labiales y nasofaringe. Aparecen en caries radiculares, glositis e
infecciones pulpares y periapicales, gingivitis, periodontitis, se han relacionado con
parotiditis, osteomielitis maxilar, osteítis periimplantarias, estomatitis.
Además, pueden presentarse otros géneros relacionados con el género
estafilococos como Micrococcus, Kocuria, Stomatococcus.
Gènero Estreptococcus Y Bacterias Relacionadas: se asocian en parejas y
cadenas cortas o largas, son aerobios, pero pueden desarrollarse en
condiciones anaerobias.
Estreptococos viridans: son las bacterias más importantes en la cavidad oral,
colonizan tanto superficies duras como blandas.
Interviene en la formación de placas y la producción de caries, también se relaciona
con gingivitis, abscesos periapicales, pulpitis, celulitis entre otras, están vinculados
con la endocarditis subaguda.
También pueden existir: Estreptococcus mutans, es la especie más frecuente, se
considera el microorganismo cariógeno por excelencia.
Streptococcus sobrinus y cricetus
Streptococcus Oralis (S. Sanguis, S. Parasanguis, S. Gordonii, S. Crista, S.
Oralis, S. Mitis)
Streptococcus Salivarius: comprende:
S. Salivarius: su hábitat primario es el dorso de la lengua. No es cariógeno y a rara
vez se asocia a endocarditis subaguda u otros procesos infecciosos.
S. Vestibularis: se localiza en la mucosa vestibular de la cavidad oral.
30
Bacterias relacionadas con el género Streptococcus: Género Abiotrophia (A.
Defectiva y A. Adiacens), Género Enterococcus (E. Faecalis, E. Faecium).
1.11.2 Cocos Gram-negativos.
Género Veillonella: Es el único género que tiene interés en la cavidad oral,
constituye junto con el aparato respiratorio superior y el intestino su hábitat natural
como microbiota normal.
Se reconocen tres especies: V. Parvula, V. Atypica, V. Dispar, en la cavidad oral se
detectan en la mayoría de las superficies mucosas, la saliva y las placas dentales
tanto subgingival como supragingivales como microbiota normal.
Moraxella Catharralis: diplococo (cocos de forma esférica) causantes de
infecciones del tracto respiratorio, otitis bronquitis, sinusitis y laringitis.
1.11.3 Bacilos Gram-positivos Anaerobios Facultativos de interés oral.
Corynebacterium Matruchotii: es una especie propia de la cavidad oral, su
importancia oral radica en la capacidad de formar cristales intracelulares de
hidroxiapatita lo cual explica su participación como núcleo de mineralización en la
formación de cálculo dental.
Género Rothia: R. Dentocariosa pese a su nombre no se la considera una
bacteria cariógena, aunque algunas veces se aísla en lesiones de caries.
Género Actinomyces: Origina diversos procesos infecciosos, de las especies que
tienen origen humano se han aislado 7 en la cavidad oral que, junto con el aparato
genital femenino y las criptas amigdalares se consideran sus localizaciones
naturales: A. Giorgiae, A. Gerencseriae, A. Israelii, A. Meyeri, A. Odontolyticus, A.
Naeslundii genoespecie 1, A. Naeslundii genoespecie 2
Aparte de otros procesos en los que estos microorganismos pueden verse
implicados, el cuadro clínico más importante que originan es la actinomicosis
(infección bacteriana prolongada que comúnmente afecta la cara y el cuello,
causada por la bacteria actinomices israelii).
Género Lactobacillus: en la cavidad oral se aíslan en la saliva, el dorso de la
lengua y las placas supragingivales y radiculares; su concentración variará según
el estado de salud oral, incrementándose con la caries.
31
Género Propionibacterium: las especies que con mayor frecuencia se aíslan en
la cavidad oral son: P. Acnes, P. Avidum, P. Propionicus, P. Granulosum.
La especie P. Propionicus probablemente es la más abundante en la boca, forman
parte de cálculos, se han aislado en la placa subgingival, asociada a enfermedad
periodontal, caries de dentina y tejidos pulpares necróticos.
Género Bacillus: algunas especies de este género se aíslan esporádicamente en
la cavidad oral. Incluso una especie que sí es patógena B. Cereus se ha detectado
en algunos tipos de placas.
1.11.4 Bacilos Gram-negativos Anaerobios Facultativos de interés oral.
Género Eikenella: consta de una sola especie E. Corrodens, su hábitat natural es
el tubo digestivo, aparato respiratorio superior y la cavidad oral (como microbiota
normal en las placas especialmente subgingival).
Género Capnocytophaga: las especies más aisladas en la cavidad bucal son: C.
Gingivalis, C. Sputigena y C. Ochracea, su hábitat natural parece ser la cavidad
oral especialmente el surco gingival, en el que se les considera como bacterias
periodontopatógenas, además de relacionarse con la génesis de algunos tipos de
periodontitis, gingivitis e infecciones pulpares.
Género Cardiobacterium: posee una sola especie C. Hominis, se encuentra
excepcionalmente en la mucosa oral.
Género Haemophilus: La especies tipo H. Influenzae es habitual como microbiota
normal de la rinofaringe y excepcional en la cavidad oral.
Género Campylobacter: comprende las siguientes especies de mayor
significación Odontológica: C. Concisus, C. Curvus, C. Gracilis, C. Rectus, C.
Showae, C. Sputorum. En la cavidad oral su hábitat natural suele ser el surco
gingival y forman parte de la placa de esta localización.
Género Actinobacillus: Actinobacillus Actinomycetemcomitans: A.
Actinomycetemcomitans es una de las bacterias más importantes en la cavidad
oral, su hábitat primario es desconocido y como ocurre con P. Gingivalis, su
presencia en la cavidad oral especialmente en el surco gingival se asocia a
32
enfermedad periodontal. Se trata de una bacteria especialmente
periodontopatógena.
1.11.5 Bacterias Anaerobias Estrictas de interés oral (I) Anaerobios
esporulados.
Los lugares del organismo en los que existen más bacterias anaerobias estrictas
como microbiota normal son el intestino, especialmente el colon y la cavidad oral,
sobre todo en las zonas profundas de las placas, áreas interproximales de los
dientes, fosas y fisuras, surco gingival y criptas linguales.
Género Clostridium: relacionados con la cavidad oral: los más frecuentes son: C.
Ramnosum, C. Sporogenes y C. Malenominatum, excepcionalmente se aíslan en
placas y pulpitis, en ocasiones se asocian a periodontitis especialmente agresivas
en sujetos inmunodeprimidos.
1.11.6 Bacterias anaerobias estrictas de interés oral (II) Anaerobios no
esporulados.
1.11.6.1 Bacilos Gram-negativos.
Inmóviles
Género Porphyromonas: las especies cuyo hábitat natural es la cavidad oral son:
P. Gingivalis: se aísla preferentemente en el surco gingival de forma especial
cuando hay lesiones periodontales avanzadas, gingivitis, pulpitis, abscesos
periodontales y periapicales, pero su asociación más importante es con la
destrucción y progresión de algunos tipos de periodontitis, P. Endodontalis:
también puede aislarse en el surco gingival pero su capacidad periodontopatógena
es casi nula.
Género Prevotella: las especies de interés odontológico se clasifican en dos
grupos:
o Especies pigmentadas: las de mayor poder fermentador son P. Denticola, P.
Loescheii y P. Melaninogenica, para ellas la cavidad oral es el hábitat primario
y de forma especial el surco gingival. Se les relaciona con infecciones pulpares,
abscesos periapicales, alveolitis.
Con respecto a las enfermedades periodontales, las más implicadas son P.
Intermedia, P. Nigrescens.
33
o Especies no pigmentadas: P. Buccae, P. Buccalis, P. Oris, P. Oulorum, P.
Veroralis, P. Zoogleoformans, P. Dentalis, P. Tannerae, P. Enoeca. La mayoría
de ellas tienen como hábitat primario el surco gingival; abundante en las
enfermedades periodontales, abscesos.
Género Bacteroides: En la cavidad oral solo tienen interés: B. Capillosus, B.
Forsythus, las dos tienen su hábitat primario en el surco gingival, aunque su
significación patógena es dudosa.
Género Fusobacterium: F. Alocis y F. Sulci se aíslan frecuentemente en el surco
gingival sano y F. Periodonticum en zonas del surco con enfermedades
periodontales.
Género Leptotrichia: en la cavidad oral la única especie de interés es L. Buccalis
que forma parte de las placas dentales supragingivales, en periodontitis crónica
avanzada.
Género Bilophila: la única especie reconocida es B. Wadsworthia,
excepcionalmente de la cavidad oral.
Otros géneros: de los que pueden aislarse en la cavidad oral casi todos se
detectan a partir del surco gingival y se relacionan con gingivitis, periodontitis, y
otros procesos infecciosos.
Móviles
Género Selenomonas: tienen su hábitat primario en el surco gingival. Las especies
reconocidas son: S. Artemidis, S. Dianae, S. Flueggei, S. Infelix, S. Noxia, S.
Sputigena
Género Centipeda: la única especie del género es C. Periodontii, relacionada con
periodontitis.
Género Desulfomonas y Desulfovibrio: se consideran dos especies:
Desulfomonas pigra, Desulfovibrio desulfuricnas. Pueden aislarse
excepcionalmente en las placas dentales, contribuyen a la halitosis.
34
1.11.6.2 Bacilos Gram-positivos.
Género Atopobium: comprende tres especies: A. Minutum, A. Parvulum, A.
Rimae. Pueden aislarse como microbiota normal.
Género Eubacterium: en la cavidad oral las especies que se han identificado se
dividen en dos grupos:
a) Asacarolíticas: E. Brachy, E. Nodatum, E. Sapnenum
b) Sacarolíticas: E. Saburreum, E. Yuri.
Las especies asacarolíticas se asocian con más frecuencia a lesiones periodontales
avanzadas, mientras que las sacarolíticas forman parte de la placa subgingival
tanto en estado sano como de enfermedad.
Género Pseudoramibacter: consta de una especie P. Alactolyticus, en la cavidad
oral tiene la misma significación que las especies de Eubacterium que se aíslan de
ella.
Género Bifidobacterium: en la cavidad oral las especies más frecuentes son: B.
Dentium, B. Inopinatum, B. Denticolens. Aunque se detectan en placas dentales y
lesiones de caries. Se desconoce su significación ecológica y patógena.
1.11.6.3 Cocos Gram-positivos.
Género Peptococcus: consta de una sola especie P. Niger, se aísla raramente en
la cavidad oral.
Género Peptostreptococcus: las especies de este género forman parte de la
microbiota normal de las cavidades naturales (boca, nasofaringe, intestino, aparato
respiratorio superior, vagina). Se detectan en caries de dentina, formas avanzadas
de periodontitis, abscesos de origen dental, conductos radiculares infectados.
En la cavidad oral se han identificado: P. Anaerobius (produce una betalactamasa),
P. Magnus, P. Micros, P. Indolicus, P. Prevotii.
El profesional de la Odontología debe conocer la posible complicación de una colitis
pseudomembranosa ante un tratamiento antibiótico, para las bacterias anaerobias
no esporuladas, la amoxicilina + ácido clavulánico, clindamicina, metronidazol,
metronidazol + espiramicina y azitromicina suelen ser los antibióticos más eficaces.
35
1.11.7 Bacterias Ácido Alcohol Resistentes: Micobacterias.
Poseen una pared celular resistente a la coloración por el alcohol clorhídrico usado
en la tinción de Ziehl – Neelsen, de ahí la denominación de estos microorganismos.
Casi todos sus géneros carecen de interés en la cavidad oral.
Género Mycobacterium: no tiene una gran significación en el campo
Odontológico, sin embargo, producen cuadros infecciosos en el hombre, y de forma
especial la posibilidad de contagio de Odontólogos y Estomatólogos por algunas
especies como Bacilo de Koch y M. Tuberculosis.
Patógenas primarias: se incluyen las especies productoras de la tuberculosis
humana, contituído por: M. Tuberculosis, M. Africanum, M. Bovis, M Leprae, M.
Lepraemurium
Micobacterias oportunistas o atípicas: especies distribuídas por la naturaleza
como saprófita (agua, suelo o ecosistemas marinos) y en reservorios animales.
Corresponden las siguientes especies:
Mycobacterium Tuberculosis: principal agente que produce la tuberculosis
humana, la localización primaria más frecuente de la tuberculosis es la pulmonar;
le sigue en frecuencia pero ya a gran distancia la digestiva, cutánea y bucofaríngea.
Para la transmisión de la enfermedad es necesario un foco de contagio y un
hospedador predispuesto, esto constituye el enfermo tuberculoso y en proporción
directa, la cantidad de bacilos expulsados (intensidad de la tos, habla, risa,
espiración o canto).
Micobacterias atípicas: estas especies que no se incluyen en el complejo
tuberculosis ni en el de la lepra, comprenden un amplio número de
microorganismos ambientales que ocasionan unos procesos clínicos conocidos
como micobacteriosis que son enfermedades oportunistas.
Mycobacterium Leprae: bacteria también conocida como bacilo de Hansen (en
honor a su descubridor). Es el agente causal de la lepra, enfermedad que se
transmite de persona a persona por secresiones nasales y a apartir de pequeñas
excoriaciones de la piel.
36
En la región intraoral se pueden presentar nódulos y úlceras los cuales pueden
adoptar una distribución irregular por la lengua, encías y paladar.
1.11.8 Espiroquetas y otras bacterias de interés oral.
Los Treponemas orales son frecuentes en la cavidad bucal generalmente como
comensales.
Género Treponema: forman parte de la microbiota comensal del intestino,
órganos genitales del hombre y animales y especialmente de la boca, por ellos
son conocidas en general como treponemas orales.
Treponemas Orales: conjunto de treponemas anaerobios estrictos, las especies
son: T. Denticola, T. Skoliodontum, T. Socranskii, T. Pectinovorum, T. Vicentii.
Se localizan en las zonas más profundas de las placas supragingivales o en el surco
gingival, se relacionan con enfermedades periodontales, aumentan en la placa
subgingival ante determinados tipos de periodontitis.
Parecen tener más importancia en la génesis de la denominada infección de
Vincent ó boca de trinchera que es un proceso ulcero necrosante agudo en el que
intervienen T. Vincentii, fusobacterias y otros microorganismos (afecta las encías,
otras zonas de la cavidad oral y faringe).
Tienen un carácter oportunista en el que influye la malnutrición, leucemia, SIDA,
tabaquismo entre otros.
Treponema Pallidum: es la responsable de la sífilis (enfermedad de transmisión
sexual).
La sífilis oral no es un proceso frecuente, pero puede presentarse en forma de
chancro (por ejemplo, en labios, lengua o encías) y linfoadenopatía, placas
membranosas a menudo ulceradas (por ejemplo en amígdalas, lengua y paladar) y
lesiones en la lengua ulceronecróticas o gomas en el paladar,
Género Leptospira: comprende dos grupos L. Biflexa, L. Interrogans.
Los reservorios son bóvidos y ratas, que las eliminan por la orina al ambiente.
37
Otras bacterias de interés oral.
Género Neisseria: su hábitat natural es la nasofaringe: N. Cinerea, N. Elongata, N.
Flavescens, N. Lactamica, N. Mucosa, N. Paraelongata, N. Polysaccharea, N.
Sicca, N. Subflava.
La especie patógena N. Gonorrenoeae se aísla en los raros casos a partir de las
lesiones del paladar, lengua, encia o mucosa yugal.
Género Mycoplasma: Diversas especies se han aislado en la saliva: M. Salivarium,
M. Pneumoniae, P. Hominis
En la mucosa oral y placas supragingivales y subgingivales en zonas anaerobias:
M. Pneumoniae, M. Buccale, M. Orale.
Género Helicobacter: existen datos contradictorios sobre si la cavidad oral es el
reservorio natural de H. Pylori, algunos autores informan de su detección en boca,
otros aportan resultados negativos y consideran esta bacteria como simple
microbiota transitoria por reflujo gástrico.
1.11.9 Diversidad Vírica.
Virus ADN de interés Oral
Los virus ADN de interés oral pertenecen fundamentalmente a dos familias:
Familia Herpesviridae: conocidos comúnmente como herpes virus.
Virus del herpes simple tipo 1 y 2: la penetración del VHS se realiza a través de
la piel o la mucosa oral (VHS-1) o genital (VHS-2) a partir de especialmente la saliva
y secreciones genitales respectivamente.
La manifestación clínica más frecuente es la gingivoestomatitis, caracterizada por
vesículas con tendencia a romperse dejando erosiones que se localizan en encías,
labios, lengua, mucosas yugales, suelo de la boca y de forma especial alrededor
de los dientes que están erupcionando (pericoronaritis).
Tras la primoinfección los virus permanecen latentes y producen recurrencias que
se traducen en la aparición de herpes recidivantes.
Virus de la varicela – zóster: aparición sucesiva de máculas, pápulas y lesiones
desecadas por toda la piel y mucosa, es extremadamente contagiosa.
38
Rara vez se presenta en la cavidad oral, sin embargo, es frecuente que tras un
período de incubación de 1 a 3 semanas comienza un proceso extremadamente
doloroso que sigue el trayecto de una rama del trigémino con vesículas en mucosa,
paladar, lengua y piel de la zona.
Como formas especiales en el campo Odontológico están la afectación de la
segunda y tercera rama nerviosa.
Virus de Epstein - Barr: es la causa más frecuente de mononucleosis infecciosa,
cursa con fiebre, faringoamigdalitis, hemorrágica o no y adenopatías firmes y
dolorosas. También produce leucoplasia vellosa.
Citomegalovirus: producen un cuadro similar a la mononucleosis infecciosa, pero
sin manifestaciones orales.
Virus del Herpes humano tipos 6, 7, 8: El VHH8 relacionado con los enfermos
con SIDA en la cavidad oral se localiza en el paladar y en las encías en forma de
una lesión maculosa y azul – rojiza que aumenta de relieve y se hace proliferativa,
hemorrágica y múltiple. Es causante del sarcoma de Kaposi.
Familia Papovaviridae: comprende un género de importancia clínica oral
Género Papillomavirus: es el virus del papiloma humano o VPH.
Producen tumores epiteliales en la piel y las mucosas de los sujetos infectados. La
transmisión es por contacto directo, sexual y por contaminación del niño en el
momento del parto.
En la cavidad oral se asocian a diversas lesiones epiteliales: condilomas
acuminados (enfermedad de transmisión sexual al mantener relaciones vía oral,
genital o anal), verruga vulgar.
Virus ARN de interés oral
Cuando afectan a la cavidad oral suelen ser causa de infecciones no odontógenas.
Los dos grupos de virus ARN que producen infecciones en esta zona son las
familias:
o Familia Picornaviridae: la familia comprende cinco géneros: Enterovirus,
Hepatovirus, Rhinovirus, Aphtovirus, Cardiovirus.
39
Los géneros Hepatovirus y Rhinovirus se relacionan con la hepatitis A y el catarro
común.
Género Enterovirus: posee diversas especies, todas ellas salvo una producen
procesos patológicos relacionados con el campo odontológico. La principal puerta
de entrada es la orofaríngea, se transmiten a través de aguas contaminadas y por
un mecanismo fecooral.
Consta de las especies: Poliovirus, Virus Coxsackie A y B, Virus Echo.
Existen casos descritos de infecciones en determinadas profesiones como
Odontólogos, originadas a partir de pacientes que transmitieron el virus coxsackie
al personal clínico dental.
También producen herpangina (aparición de lesiones vesiculosas y ulceradas en
la zona de la úvula y el paladar blando, fiebre, malestar, dolor de garganta y
vómitos)
Enfermedad de manos – pies – boca producida por el virus coxsackie con vesículas
que se reparten por toda la mucosa oral, paladar, encías y lengua, estas lesiones
se pueden extender a las palmas de las manos, así como a las plantas de los pies.
Cuadros de faringitis comunes y raramente de faringitis linfonodular.
También pueden estar implicados en procesos de sialoadenitis,
o Familia Paramyxoviridae: constituída por tres géneros Paramyxovirus (virus de
la influenza y la parotiditis), Morbillivirus (virus del sarampión), Pneumovirus
(virus respiratorio)
El virus del sarampión puede dar manifestaciones orales, y el virus de la parotiditis
es el que tiene mayor relación con el área odontológica.
En cuanto al virus del sarampión, surge en la mucosa bucal generalmente en lo
premolares, lesiones de color gris azulado sobre una base roja, denominadas
manchas de koplik.
El virus de la parotiditis, afecta especialmente a la glándula parótida provocando un
edema intersticial difuso periconductal. Estos virus se eliminan por la saliva.
40
1.11.10 Virus de la Hepatitis (I) Hepatitis de transmisión oral.
Enfermedad que afecta al hígado produciendo diferentes grados de necrosis e
inflamación.
Comprende los virus: Virus de la hepatitis A (VHA), Virus de la hepatitis B (VHB),
Virus de la hepatitis delta (VHD), Virus de la hepatitis C (VHC), Virus de la hepatitis
E (VHE)
Los que se transmiten por vía oral son VHA y VHE alcanzando la mucosa intestinal
donde se replican, los demás se transmiten por vía parenteral.
1.11.11 Hongos de interés oral.
La gran mayoría de las micosis orales están producidas por levaduras del género
Cándida, principalmente por la especie C. Albicans implicado en la candidiasis
oral. También se han aislado otras levaduras como Rhodotorula spp y
Saccharomyces cerevisiae.
La cavidad oral de la cuarta parte de las personas sanas está colonizada por
levaduras, aumenta con la presencia de prótesis o alteraciones orales como
xerostomía, leucoplasia o liquen.
Son frecuentes en ancianos, lactantes y personas con factores predisponentes
generales o locales. La lengua, el paladar y el resto de la mucosa bucal son los
lugares de mayor colonización.
La infección por el virus VIH es uno de estos factores y en personas con SIDA se
observan cuadros diferentes de candidiasis mucocutáneas.
Provocan: Candidiasis atrófica aguda, Candidiasis hiperplásica, Queilitis angular,
Glositis rómbica, Estomatitis protésica.
Otros Hongos de Interés Oral.
Hongos dimorfos – endémicos: abarca las siguientes especies Histoplasma
capsulatum, Coccidioides immitis, Blastomyces dermatitidis, Paracoccidioides
brasiliensis,
Las manifestaciones orales más frecuentes en la histoplasmosis son macroglosia,
macroqueilitis (principalmente en el labio inferior), zonas erosivas y hemorrágicas
gingivales, lesiones necrobióticas y vegetativas principalmente en el paladar y la
41
lengua. También pueden aparecer lesiones blanquecinas semejantes a las de las
candidiasis y lesiones ulcerativas linguales.
1.11.12 Parásitos de interés oral.
Entamoeba Gingivalis: parásito asociado al sarro dental.
Se ha detectado en enfermos con periodontitis, en pacientes con infección por el
virus VIH, en afectados de gingivitis ulcerativa necrosante aguda, en márgenes
gingivales, placas dentales y en el surco gingival.
Trichomonas Tenax: se aísla en la cavidad oral de pacientes con mala higiene
oral. gingivitis y periodontitis.
1.12 DESINFECCIÓN DE LA IMPRESIÓN DENTAL.
La desinfección consiste en la destrucción de microorganismos patógenos y otro
tipo de microorganismos por medios térmicos o químicos, este proceso es menos
efectivo que la esterilización puesto que destruye la mayoría de microorganismos
patógenos reconocidos, pero no todas las formas de vida microbiana como las
endosporas bacterianas.
1.12.1 Niveles.
Tabla 7. Niveles de desinfección.
Desinfección de Bajo
Nivel
Desinfección de Nivel
Intermedio
Desinfección de Alto
Nivel
Elimina bacterias,
algunos virus y algunos
hongos.
No elimina esporas
bacterianas ni al
Mycobacterium
tuberculosis
Elimina formas
vegetativas de
bacterias al
Mycobacterium pero
no las esporas
bacterianas
Elimina todos los
microorganismos,
excepto
Mycobacterium
tuberculosis, virus
lipofílicos, hidrofílicos
1.12.2 Desinfectantes para impresiones dentales.
Las impresiones tomadas de las arcadas dentarias tienen un nivel de
contaminación intermedio (en contacto con saliva) por lo tanto requieren una
desinfección de nivel medio. Los métodos de desinfección utilizados no deben
42
alterar la calidad del material ni su fidelidad de reproducción de detalles. La
desinfección puede ser realizada por inmersión, por atomización mediante
aerosoles o por adición de suplementos desinfectantes.
Tabla 8. Productos para desinfección de Impresiones dentales.
Formulaciones de
glutaraldehído
Derivados del cloro Yodoformos
Es un desinfectante de
nivel alto. Para alginato
se sugiere sumergir las
impresiones en
glutaraldehído al 2%
durante 10 minutos, si
se utiliza
glutaraldehído alcalino
se sumerge la
impresión durante 20
minutos.
Son desinfectantes de
nivel intermedio. Para
alginato es
recomendable
hipoclorito de sodio al
0.5% durante 10
minutos. También se lo
puede hacer rociando
el hipoclorito al 0.5%
sobre la impresión
dental y dejar actuar
por 10 minutos.
Se desactivan en
presencia de materia
orgánica y tienen un
efecto corrosivo sobre
las cubetas metálicas
para impresión.
También se puede
emplear la solución al
5.25% durante 10
minutos.
Son desinfectantes de
nivel intermedio.
Se desactivan en
presencia de materia
orgánica. Para alginato
se recomienda
sumergir las
impresiones en una
solución acuosa de
yodo al 10% durante 10
minutos.
El virus de la inmunodeficiencia humana (VIH) se inactiva mediante una breve
exposición al glutaraldehído, al hipoclorito de sodio o la clorhexidina. Mientras que
el virus de la hepatitis B, que es más resistente, necesita desinfectantes de grado
intermedio a alto y no es destruido por la clorhexidina. Algunos autores concluyen
que los materiales de impresión utilizados en odontología no sufren alteración
dimensional significativa cuando son expuestos a soluciones desinfectantes,
siempre y cuando se siga el protocolo recomendado para cada tipo de material.
43
1.13 CONTAMINACIÓN CRUZADA.
La infección cruzada es un riesgo en el laboratorio dental para todo el personal.
Aunque el responsable es el odontólogo, asegurarse de que todos los elementos
que se envían al laboratorio dental son desinfectados, se recomienda tratar todo
con cautela y saber que debemos tomar precauciones para reducir la infección
cruzada.
El mayor riesgo para todos los miembros del equipo dental es el paciente y las
impresiones que contienen saliva, moco o sangre lo cual puede transmitir la
enfermedad fácilmente.
El estar retirado de la cara del paciente puede darnos una sensación de no estar
involucrados con los aspectos clínicos de la odontología, pero las impresiones que
reciben son un vínculo directo con el paciente y la clínica, y por lo tanto deben ser
tratadas con un proceso de desinfección de las mismas.
Generalmente el Odontólogo no sabrá si un paciente tiene una enfermedad
contagiosa. Además, el paciente puede no saber si tiene una enfermedad como el
virus de la inmunodeficiencia humana (VIH) o hepatitis, por lo que se debe estar
seguro de que se ha puesto en marcha un procedimiento de control de la infección
cruzada. No sólo nosotros estamos en riesgo, sino que el paciente también se
puede poner en riesgo a partir de los procedimientos que se realizan en el
laboratorio.
Las infecciones más frecuentes son: abscesos, infección secundaria a cirugías y
extracciones; citomegalovirus (HCMV), virus de la hepatitis B (HBV) y C (HCV),
virus del herpes simple (HSV-1 y HSV-2), virus de la inmunodeficiencia humana
(HIV), mycobacterium tuberculosis y otros virus, bacterias y hongos. El contagio
más probable es el del virus de la hepatitis B.
Los microorganismos pueden ingresar al cuerpo por las siguientes vías:
Cortes o erosiones en la piel
Instrumentos que ingresen a la cavidad bucal, cortantes.
Membranas de las mucosas de la boca, nariz, ojos
Inhalación
Ingestión
44
1.13.1 Vías de transmisión:
Contacto directo: a través de fluidos orgánicos infectados como saliva, sangre
o por la vía respiratoria por aerosoles generados en ciertas maniobras
operatorias.
Contacto indirecto: cuando los microorganismos son transmitidos por un
intermediario como el contacto con objetos y superficies, instrumentos cortantes
y punzantes.
Transmisión aérea: a través de aerosoles que se generan durante el trabajo
operatorio.
La infección por medio de estos microorganismos, independientemente de la ruta
de transmisión requieren de la presencia de una serie de condiciones conocidas
como “cadena de infección”, para lo cual debe existir un huésped susceptible que
es el que va a ser infectado, el microorganismo patógeno y una puerta de entrada.
Las vías de contaminación cruzada son aquellas que se producen cuando se
transmiten los microorganismos de un paciente a otro, a través de las manos del
personal o por instrumentos utilizados, por esto son necesarias las medidas del
control de infecciones para evitar propagarlas a través de los distintos pacientes.
45
1.14 CONCLUSIONES PARCIALES DEL CAPÍTULO.
Una vez revisada la bibliografía para realizar este trabajo se puede concluir que
el estudio de los microorganismos presentes en la cavidad bucal y que por ende
pueden estar en impresiones dentales, es muy importante para tomar
precauciones en la manipulación de las mismas mediante el uso de normas de
bioseguridad.
Existen diferentes soluciones desinfectantes a ser utilizadas para eliminar
microorganismos presentes en impresiones dentales.
Se debería utilizar desinfectantes de nivel Alto para eliminar todos los
microorganismos presentes puesto que no se conoce a qué tipo de
microorganismos estamos expuestos.
Se deben establecer estrategias que contribuyan a evitar la diseminación de
microorganismos provenientes de la cavidad bucal garantizando el bienestar y
la salud bucal y general a pacientes, Odontólogo, auxiliares y técnicos dentales.
46
CAPITULO II.
2. MARCO METODOLÓGICO Y PLANTEAMIENTO DE LA PROPUESTA.
2.1 CARACTERIZACIÓN DEL SECTOR.
La Unidad de Atención Odontológica Uniandes de la Carrera de Odontología se
encuentra ubicada en la ciudad de Ambato km 5 ½ vía a Baños la cual proporciona
atención Odontológica por parte de los estudiantes de séptimo a décimo semestre
que realizan sus prácticas preprofesionales tratando de ofrecer soluciones a los
problemas que se presentan a nivel bucal y garantizando dichos procedimientos
mediante la utilización de normas de bioseguridad que eviten la propagación de
microorganismos entre pacientes, profesionales Odontólogos y laboratoristas
dentales, mejorando y rehabilitando la cavidad bucal de los pacientes.
2.2 DESCRIPCIÓN DEL PROCEDIMIENTO METODOLÓGICO PARA EL
DESARROLLO DE LA INVESTIGACIÓN.
La presente investigación se basa en la recopilación de información bibliográfica y
de artículos relacionados con el tema, que servirán de apoyo para el desarrollo del
mismo, para conocer la presencia de microorganismos presentes en impresiones
dentales tomadas de la cavidad bucal de los pacientes y que pueden causar
enfermedades infectocontagiosas, al no ser eliminados dichos microorganismos
por un procedimiento eficiente de desinfección.
2.2.1 Paradigma o Modalidad Investigativa.
Este proyecto de investigación se define según su metodología como una
investigación “Cuali-Cuantitativa” las mismas que se detallan a continuación:
Cualitativa: Esta investigación es cualitativa ya que comprende el estudio de varias
muestras para determinar la presencia de microorganismos presentes en las
superficies de impresiones de alginato y además poder observar, describir,
comparar y así comprender cuál es la importancia de la aplicación de una correcta
desinfección de las impresiones dentales de alginato que se realizan habitualmente
en la práctica clínica.
47
Cuantitativa: Esta investigación es cuantitativa pues permite obtener datos
numéricos y analizarlos estadísticamente, de manera que se pueda valorar la
contaminación de las impresiones dentales de alginato, datos que se obtuvieron del
análisis de laboratorio y análisis estadístico de datos obtenidos en las encuestas
realizadas.
2.2.2 Tipo de investigación por su diseño.
Diseño experimental: Verifica la existencia de microorganismos en las superficies
de impresiones dentales de alginato utilizadas para fines protésicos, para obtener
control y validez, obteniendo resultados a ser analizados y cuáles son los efectos
de la misma.
Investigación – acción: El principal propósito de esta investigación es resolver el
problema, que consiste en la contaminación de las superficies de las impresiones
dentales de alginato que son utilizadas en la práctica clínica.
Investigación de Campo: El análisis microbiológico se realiza en un laboratorio de
análisis bacteriológico, donde se utilizan las muestras, que son las impresiones
dentales de alginato tomadas a los pacientes que asisten a la Unidad de Atención
Odontológica Uniandes, donde existe la aplicación de los métodos de observación
y recolección de información, con sus técnicas e instrumentos correspondientes
para obtener resultados del tipo de microorganismos presentes en dichas muestras.
2.2.3 Tipo de investigación por su alcance.
Exploratoria: El objeto esencial de esta investigación es conocer los fenómenos y
conceptos estudiados en cuanto a la verificación de la contaminación de las
impresiones dentales de alginato.
Descriptiva: Describir acerca de la contaminación bacteriana que presentan las
impresiones dentales de alginato realizadas habitualmente en la práctica clínica,
realizando un seguimiento sobre el procedimiento que realicen los estudiantes con
las mismas después de ser extraídas de la cavidad oral de los pacientes, en los
turnos de la clínica integral de Rehabilitación Oral en la Unidad de Atención
Odontológica.
48
Explicativo: Está dirigido a determinar los microrganismos presentes en las
superficies de las impresiones dentales de alginato y la desinfección adecuada para
la eliminación de dichos microorganismos.
Investigación Aplicada: Mediante los conocimientos y la investigación sobre la
importancia de la desinfección de las impresiones dentales de alginato que son
utilizadas en la práctica para la rehabilitación oral, se va a valorar la eficacia de la
técnica, y con ello brindar beneficios tanto a los pacientes tratados como a los
estudiantes y laboratoristas dentales.
Investigación – fundamental: Se investiga acerca de los métodos de desinfección
de las impresiones dentales de alginato que son utilizadas para fines protésicos, al
momento de ser extraídas de la cavidad oral de los pacientes, por parte de los
estudiantes en la Unidad de Atención Odontológica Uniandes, de esta forma se
llega a la conclusión de la investigación la cual va a ayudar a mejorar el tratamiento
realizado, aumentando la información teórica para aplicar en la práctica
odontológica.
2.2.4 Métodos técnicas e instrumentos de investigación.
2.2.4.1 Métodos del nivel empírico del conocimiento.
Análisis – documental: reunir, interpretar y reportar los datos de laboratorio de
una forma clara y concisa.
Observación científica: observar directamente en la UAO sobre la aplicación
de normas de bioseguridad en cuanto al manejo de impresiones dentales de
alginato.
2.2.4.2 Métodos del nivel teórico del conocimiento.
Histórico – lógico: se estudiará el desarrollo histórico y lógico de las principales
opiniones sobre el tema.
Analítico - sintético: El método analítico comprende el análisis de un objeto,
es decir comprender sus características a través de las partes que la integran,
sus componentes y observar periódicamente cada uno de ellos, en la toma de
impresiones de alginato se implementa la desinfección de las mismas para
reducir la carga microbiana y; el método sintético reunirá los elementos del
análisis de laboratorio que nos permitirá dar origen a las características
49
generales de las normativa que se va a diseñar para la realización de las
impresiones dentales libres de contaminación bacteriana.
Inductivo – deductivo: Se realizó un estudio detallado de los microorganismos
encontrados en impresiones dentales de alginato; después de la observación
de los resultados de cada una de las muestras se obtuvo que la mayoría están
contaminados, por lo tanto, es obligatoria la desinfección de las mismas.
2.2.4.3 Técnicas de investigación.
Encuesta: está dirigida a los estudiantes que realizan prácticas
preprofesionales en la Unidad De Atención Odontológica Uniandes para obtener
datos de los distintos aspectos de la investigación.
Entrevistas: dirigidas a los profesionales Odontólogos, tutores en la Unidad de
atención Odontológica Uniandes, tomando en cuenta su criterio y la necesidad
de conocer la calidad de servicio que se está brindando.
2.2.4.4 Instrumentos de la investigación.
Cuestionario: el mismo contiene preguntas respecto a una o más variables, lo
cual permite evaluar el grado de conocimiento y opinión sobre este tema a los
estudiantes encuestados.
Historia clínica: es un documento médico legal el cuál recoge información
completa acerca del estado de salud general del paciente y posibles
enfermedades transmisibles que padezca el mismo.
Guía de entrevista: contará de preguntas, orientadas a obtener datos que
serán de interés los cuáles servirán como guía para la investigación.
Guía de observación: a través de la observación directa de los cultivos
realizados se obtendrá información acerca de las colonias bacterianas
presentes en impresiones dentales de alginato y el resultado luego de la
desinfección de las mismas.
Exámenes de laboratorio: para determinar los distintos tipos de
microorganismos presentes en el material de impresión y seleccionar un
adecuado desinfectante para las mismas.
50
2.2.5 Población y Muestra.
2.2.5.1 Población.
La población se refiere a las personas encuestadas y entrevistadas.
Tabla 9. Población para la investigación.
Población para ser encuestada 71 estudiantes de la Unidad de
Atención Odontológica Uniandes
Población para ser entrevistada 12 profesionales Odontólogos
Total 83 personas
Esta población brindó la accesibilidad para el estudio, lo que permitió ejecutar el
trabajo de campo con facilidad para el investigador.
2.2.5.2 Muestra:
Tabla 10. Universo.
Prótesis Parcial
Removible
(Pacientes
parcialmente
desdentados)
Prótesis Total
(Pacientes
totalmente
desdentados)
Acrílicas Cromo
Cobalto
Superior Inferior
7mo 22 7 23 4
8vo 12 7 11 9
9no 35 9 27 18
10mo 42 12 73 33
Total 111 35 134 64
51
Universo: 341 Pacientes para prótesis dentales totales y parciales (impresiones de
alginato) atendidos en la U.A.O durante el período académico Abril-Septiembre.
Muestra: Se seleccionó una muestra debido al tamaño del universo.
Con fines de reducir esta población, las muestras a ser tomadas son las de
impresiones dentales realizadas por estudiantes de séptimo semestre, para lo cual
se aplicó el Método de Muestreo proporcional para poblaciones finitas (menos de
10000 individuos), que determinó una muestra de 45 impresiones dentales de
alginato (21 muestras de pacientes parcialmente desdentados, 25 muestras de
pacientes totalmente desdentados).
Dicha muestra se determinó con la siguiente fórmula:
Prótesis Parcial
Removible
Prótesis Total
Acrílicas Cromo
Cobalto
Superior Inferior
Total 111 35 134 64 341
Tabla 11. Número de impresiones realizadas por séptimo semestre.
7mo 22 7 23 4
19% 20% 17% 6%
𝑛= 𝑁 ∗ 𝑍2 ∗ 𝑝 ∗ 𝑞
𝐸2 ∗ (𝑁 − 1) + 𝑍2 ∗ 𝑝 ∗ 𝑞
Donde: n= tamaño de la muestra N: tamaño del universo (población) E= error muestral (0,03) p= probabilidad de ocurrencia (0,5)
52
q= probabilidad de no ocurrencia (0,5) Z= valor de confianza (1,96)
𝑛= 111 ∗ 1.962 ∗ 0.5 ∗ 0.5
0.032 ∗ (111 − 1) + 1.962 ∗ 0.5 ∗ 0.5
𝑛= 106.6
0.09 + 0.96
𝑛= 106.6
1.05
n= 101
101 →100%
𝟏𝟕 𝑷𝑹𝑶𝑻𝑬𝑺𝑰𝑺 𝑷𝑨𝑹𝑪𝑰𝑨𝑳𝑬𝑺 𝑹𝑬𝑴𝑶𝑽𝑰𝑩𝑳𝑬𝑺 𝑨𝑪𝑹Í𝑳𝑰𝑪𝑨𝑺 = ←19%
𝑛= 35 ∗ 1.962 ∗ 0.5 ∗ 0.5
0.032 ∗ (35 − 1) + 1.962 ∗ 0.5 ∗ 0.5
𝑛= 33.25
0.03 + 0.96
𝑛= 33.25
0.99
n= 33
33 → 100%
𝟒 𝑷𝑹𝑶𝑻𝑬𝑺𝑰𝑺 𝑷𝑨𝑹𝑪𝑰𝑨𝑳𝑬𝑺 𝑹𝑬𝑴𝑶𝑽𝑰𝑩𝑳𝑬𝑺 𝑫𝑬 𝑪𝑹𝑶𝑴𝑶 𝑪𝑶𝑩𝑨𝑳𝑻𝑶 = ← 20%
𝑛= 134 ∗ 1.962 ∗ 0.5 ∗ 0.5
0.032 ∗ (134 − 1) + 1.962 ∗ 0.5 ∗ 0.5
𝑛= 127.3
0.11 + 0.96
𝑛= 127.3
1.07
53
n= 118
118 → 100%
𝟐𝟎 𝑷𝑹𝑶𝑻𝑬𝑺𝑰𝑺 𝑻𝑶𝑻𝑨𝑳𝑬𝑺 𝑺𝑼𝑷𝑬𝑹𝑰𝑶𝑹𝑬𝑺 = ← 17%
64 ∗ 1.962 ∗ 0.5 ∗ 0.5
0.032 ∗ (64 − 1) + 1.962 ∗ 0.5 ∗ 0.5
𝑛= 60.8
0.05 + 0.96
𝑛= 60.8
1.01
n= 60
60 → 100%
𝟒 𝑷𝑹𝑶𝑻𝑬𝑺𝑰𝑺 𝑻𝑶𝑻𝑨𝑳𝑬𝑺 𝑰𝑵𝑭𝑬𝑹𝑰𝑶𝑹𝑬𝑺 = ← 6%
Tabla 12. Muestra para la investigación.
IMPRESIONES DENTALES DE ALGINATO PARA PRÓTESIS
Parcial Removible Totales
Acrílicas Cromo
Cobalto
Superiores Inferiores Total
17 4 20 4 45
21 24
2.2.6 Recolección de la información.
Para poder obtener la información necesaria y verídica para esta investigación se
recolectó los datos basándose en los siguientes parámetros:
Aplicación de los instrumentos.
Codificación de datos.
54
Tabulación de la información mediante el programa Excel.
Uso de una técnica estadística para cuantificar los datos obtenidos en la
encuesta.
Cuantificación de datos mediante diagramas.
2.2.7. Análisis de resultados de instrumentos aplicados.
Esta investigación obtuvo información y sus resultados mediante el empleo de
instrumentos como:
Observación Experimental
Guía de Observación
Análisis microbiológicos
Encuestas
Entrevistas
Fotografías
Ejecución de la propuesta
Todos estos instrumentos fueron sometidos a un proceso de:
Recolección de datos
Tabulación de datos
Representación de resultados en gráficos
Análisis e interpretación
2.2.8 Análisis de la observación.
2.2.8.1 Observación Experimental.
Los criterios de diagnóstico fueron muestras de impresiones dentales de alginato
de pacientes parcial y totalmente desdentados, y desinfectadas con diferentes
soluciones.
Se recolectó las muestras con hisopos estériles en medios de transporte Stuart en
un medio de enriquecimiento Tioglicolato.
Posteriormente se llevaron las muestras al laboratorio y se realizó la siembra de las
muestras en tubos de ensayo en un medio de enriquecimiento de Tioglicolato, se
colocó cada tubo en la estufa de crecimiento.
A las 24 horas se realizó una resiembra de las muestras en medios de cultivo que
son agares generales (Agar sangre) y diferenciales (Cled).
55
Agar sangre: crecen bacterias Gram Positivas, Gram Negativas y levaduras.
Cled: crecen bacterias Gram Negativas.
Esta resiembra se realizó recogiendo una pequeña muestra de los tubos de ensayo
con un hisopo estéril para luego esparcirlo de forma suave en una caja Petri que
contiene los agares, luego se esparce el contenido con la ayuda de un asa caliente,
para después observar el crecimiento de colonias bacterianas.
Se introdujo cada caja Petri en una estufa de crecimiento por 24 horas, transcurrido
este tiempo se observó el crecimiento de las diferentes colonias bacterianas.
Se observó el crecimiento y se procedió a identificar las bacterias mediante pruebas
bioquímicas (para bacterias Gram (-)).
2.2.8.2 Guía de observación.
Se realizó una guía de observación aplicada a las muestras de las impresiones
dentales de alginato para obtener los datos importantes en este análisis se tomó en
cuenta los siguientes parámetros:
Nombre del paciente
Paciente desdentado parcial o total
Tipo de desinfectante utilizado
Tiempo de exposición del desinfectante en el material de impresión.
Tabla13. Guía de Observación.
Nombre Desdentado
total/
parcial
Tipo de
desinfectante
utilizado
Tiempo de
exposición
del
desinfectante
1. Sra. Margarita Castillo
Parcial Digluconato de
clorhexidina
2%
15 minutos
2. Sr. Luis Gamboa
Total Digluconato de
clorhexidina
2%
15 minutos
56
3. Sr. Luis Sánchez
Total Digluconato de
clorhexidina
2%
15 minutos
4. Sra. Piedad Remache
Total Digluconato de
clorhexidina
2%
15 minutos
5. Sra. Poaquiza Poaquiza María
Parcial Digluconato de
clorhexidina
2%
15 minutos
6. Sr. Oscar Guerra
Total Digluconato de
clorhexidina
2%
15 minutos
7. Sra. Verónica Enríquez
Parcial Digluconato de
clorhexidina
2%
15 minutos
8. Sra. Melchora Adame
Total Digluconato de
clorhexidina
2%
15 minutos
9. Sra. María Chango
Parcial Digluconato de
clorhexidina
2%
15 minutos
10. Sr. José Caiza
Parcial Digluconato de
clorhexidina
2%
15 minutos
11. Sr. Hernán Arcos
Parcial Digluconato de
clorhexidina
2%
15 minutos
12. Sra. Martha Moreta
Total Digluconato de
clorhexidina
2%
15 minutos
13. Sra. María Poaquiza
Total Digluconato de
clorhexidina
2%
15 minutos
57
14. Sra. Martha Granados
Total Digluconato de
clorhexidina
2%
15 minutos
15. Sra. María Cando
Total Digluconato de
clorhexidina
2%
15 minutos
16. Sr. Milton Solís
Parcial Hipoclorito de
sodio 2.5%
15 minutos
17. Sra. Alicia Álvarez
Total Hipoclorito de
sodio 2.5%
15 minutos
18. Sr. Luis Moya
Parcial Hipoclorito de
sodio 2.5%
15 minutos
19. Sra. María Garzón
Parcial Hipoclorito de
sodio 2.5%
15 minutos
20. Sra. María Guato
Total Hipoclorito de
sodio 2.5%
15 minutos
21. Sra. Lina Bejarano
Parcial Hipoclorito de
sodio 2.5%
15 minutos
22. Sra. Vilma Buenaño
Total Hipoclorito de
sodio 2.5%
15 minutos
23. Sra. María Guevara
Parcial Hipoclorito de
sodio 2.5%
15 minutos
24. Sra. Ligia Chiliquinga
Parcial Hipoclorito de
sodio 2.5%
15 minutos
25. Sra. Fanny Sivisapa
Parcial Hipoclorito de
sodio 2.5%
15 minutos
26. Sr. José Antonio Vimos
Total Hipoclorito de
sodio 2.5%
15 minutos
27. Sra. Hortencia Muyulema
Parcial Hipoclorito de
sodio 2.5%
15 minutos
28. Sra. María Arellano
Parcial Hipoclorito de
sodio 2.5%
15 minutos
58
29. Sra. Martha Santos
Total Hipoclorito de
sodio 2.5%
15 minutos
30. Sr. Ángel Vargas
Total Hipoclorito de
sodio 2.5%
15 minutos
31. Sr. David Ayoví
Parcial Glutaraldehído
2%
15 minutos
32. Sr. Diego Moreno
Total Glutaraldehído
2%
15 minutos
33. Sra. Maricela Cóndor
Total Glutaraldehído
2%
15 minutos
34. Sra. Silvia Miniguano
Total Glutaraldehído
2%
15 minutos
35. Sra. Sofía Proaño
Parcial Glutaraldehído
2%
15 minutos
36. Sra. Beatríz Buenaño
Parcial Glutaraldehído
2%
15 minutos
37. Sra. Lizeth Pucha
Parcial Glutaraldehído
2%
15 minutos
38. Sr. Ángel Urquizo
Parcial Glutaraldehído
2%
15 minutos
39. Sra. Anabel Narváez
Parcial Glutaraldehído
2%
15 minutos
40. Sra. Gloria Claudio
Total Glutaraldehído
2%
15 minutos
41. Sr. Wilson Pallo
Total Glutaraldehído
2%
15 minutos
42. Sra. María Naveda
Parcial Glutaraldehído
2%
15 minutos
43. Sr. José Carrillo
Total Glutaraldehído
2%
15 minutos
44. Sr. Luis Aguirre
Total Glutaraldehído
2%
15 minutos
59
45. Sra. María Grijalva
Total Glutaraldehído
2%
15 minutos
Fuente: U.A.O Elaborado por: Ximena Villegas
2.2.9 Análisis de los resultados.
Se realizó cinco procesos de observación en esta investigación, aplicados a las 45
muestras de impresiones dentales tomadas pos estudiantes de séptimo semestre
en la Unidad de Atención Odontológica Uniandes.
El primero fue 21 muestras de impresiones dentales a pacientes parcialmente
desdentados.
El segundo proceso de evaluación fue la recolección de 24 muestras de pacientes
totalmente desdentados.
Este grupo de muestras fueron tomadas por estudiantes de séptimo semestre de
Odontología quienes fueron escogidos por iniciar sus prácticas en la Unidad de
Atención Odontológica Uniandes.
Estas 45 muestras de impresiones dentales fueron desinfectadas con la utilización
de tres soluciones diferentes.
El tercer proceso de observación fue evaluar la desinfección de 15 muestras de
impresiones dentales con la utilización de Digluconato de clorhexidina al 2%,
mediante el rociado de la solución en el material de impresión y la cubeta dental,
dejando actuar durante 15 minutos.
El cuarto proceso fue evaluar la desinfección de 15 muestras de impresiones
desinfectadas con hipoclorito de Sodio al 2.5% mediante un rociado en la impresión
y la cubeta dental, y dejando actuar 15 minutos
60
El quinto proceso fue evaluar la desinfección de 15 muestras de impresiones con
la utilización de glutaraldehído al 2% sumergiendo cada impresión dental en dicha
solución durante 15 minutos.
2.2.9.1 Resultado de la valoración de microorganismos, servicio
Odontológico UAO, 2017, muestras de pacientes parcialmente desdentados.
Tabla 14. Análisis Microbiológico de muestras de pacientes parcialmente
desdentados.
Nombre Examen
Solicitado
Muestra Contaje de Colonias
Gram Germen
Identificado
1. Sra. Margarita Castillo
Cultivo y
Antibiograma
Hisopado
bucal
Cocos Gram-
Positivos
Estafilococos
sp.
2. Sra. Poaquiza Poaquiza María
Cultivo y
Antibiograma
Hisopado
bucal
Cocos Gram-
Negativos
Veillonella sp
3. Sra. Verónica Enríquez
Cultivo y
Antibiograma
Hisopado
bucal
Levaduras Cándida Sp.
4. Sra. María Chango
Cultivo y
Antibiograma
Hisopado
bucal
Cocos Gram-
Negativos
Veillonella sp
5. Sr. José Caiza Cultivo y
Antibiograma
Hisopado
bucal
Cocos Gram-
Positivos
Estreptococo
Viridans
6. Sr. Hernán Arcos
Cultivo y
Antibiograma
Hisopado
bucal
Cocos Gram-
Positivos en
pares y
cadenas
Estreptococos
sp.
7. Sr. Milton Solís
Cultivo y
Antibiograma
Hisopado
bucal
Cocos Gram-
Negativos
Veillonella sp
8. Sr. Luis Moya Cultivo y
Antibiograma
Hisopado
bucal
Cocos Gram-
Positivos en
pares y
cadenas
Estreptococos
sp.
61
9. Sra. María Garzón
Cultivo y
Antibiograma
Hisopado
bucal
1.- Cocos
Gram-
Positivos
2.- Levaduras
Estafilococos
Cándida sp
10. Sra. Lina Bejarano
Cultivo y
Antibiograma
Hisopado
bucal
Cocos Gram-
Positivos
Estafilococos
epidermis.
11. Sra. María Guevara
Cultivo y
Antibiograma
Hisopado
bucal
Cocos Gram-
Positivos
Estafilococos
sp.
12. Sra. Ligia Chiliquinga
Cultivo y
Antibiograma
Hisopado
bucal
Levaduras Cándida
13. Sra. Fanny Sivisapa
Cultivo y
Antibiograma
Hisopado
bucal
1.Cocos
Gram-
Negativos
2.Levaduras
Veillonella sp
Cándida
14. Sra. María Arellano
Cultivo y
Antibiograma
Hisopado
bucal
Cocos Gram-
Negativos
Veillonella sp.
15. Sr. David Ayoví
Cultivo y
Antibiograma
Hisopado
bucal
Cocos Gram-
Positivos en
parejas y
cadenas
Estreptococos
viridans
16. Sra. Sofía Proaño
Cultivo y
Antibiograma
Hisopado
bucal
Diplococos
Gram
Negativos
Moraxella
catharralis
17. Sra. Beatríz Buenaño
Cultivo y
Antibiograma
Hisopado
bucal
Bacilos Gram-
Negativos
Prevotella sp
18. Sra. Lizeth Pucha
Cultivo y
Antibiograma
Hisopado
bucal
Levaduras Cándida sp
19. Sr. Ángel Urquizo
Cultivo y
Antibiograma
Hisopado
bucal
Cocos Gram-
Positivos
Estafilococos
sp.
62
20. Sra. Anabel Narváez
Cultivo y
Antibiograma
Hisopado
bucal
Cocos Gram-
Positivos en
pares y
cadenas
Estreptococos
sp.
21. Sra. María Naveda
Cultivo y
Antibiograma
Hisopado
bucal
Cocos Gram-
Negativos
Diplococos
Gram-
Negativos
Veillonella sp
Moraxella
Catharralis
Fuente: Reporte del Laboratorio Elaborado por: Ximena Villegas
Tabla 15. Tabulación en porcentaje de las muestras de pacientes parcialmente
desdentados.
Gérmen Identificado Porcentaje de muestras
Veillonella sp 22 %
Cándida 22 %
Estafilococos sp 17%
Estreptococos sp 13%
Estreptococos viridans 9%
Moraxella catharralis 9%
Estafilococos epidermis 4%
Prevotella sp 4%
TOTAL 100%
Fuente: Reporte del laboratorio Elaborado por: Ximena Villegas
Gráfico 4. Análisis Microbiológico de muestras de pacientes
parcialmente desdentados.
22%
22%
17%
13%
9%
9%
4% 4%
Análisis Microbiológico
Veillonella sp
Cándida
Estafilococos sp
Estreptococos sp
Estreptococos viridans
Moraxella catharralis
Estafilococos epidermis
Prevotella sp
63
Análisis de interpretación de datos.
Se examinaron 21 muestras de impresiones dentales de alginato de pacientes
parcialmente desdentados, encontrando que todas las muestras presentaron
gérmenes en el estudio microscópico, los cuales corresponden a:
Cocos Gram positivos aislados como son: estafilococos sp, estafilococos
epidermis, estreptococos viridans y en pares y cadenas como estreptococos sp.
Cocos Gram negativos: veillonella sp.
Levaduras: cándida albicans.
Diplococos Gram negativos: moraxella catharralis
Bacilos Gram negativos: Prevotella sp.
2.2.9.2 Resultado de la valoración de microorganismos, servicio
Odontológico UAO, 2017, muestras de pacientes totalmente desdentados.
Tabla 16. Análisis Microbiológico de muestras de pacientes totalmente
desdentados.
Nombre Examen
Solicitado
Muestra Contaje de Colonias
Gram Germen
Identificado
1. Sr. Luis Gamboa
Cultivo y
Antibiograma
Hisopado
bucal
Levaduras Cándida sp.
2. Sr. Luis Sánchez
Cultivo y
Antibiograma
Hisopado
bucal
Diplococos
Gram
Negativos
Moraxella
catharralis
3. Sra. Piedad Remache
Cultivo y
Antibiograma
Hisopado
bucal
Sin desarrollo microbiano en 48
horas
4. Sr. Oscar Guerra
Cultivo y
Antibiograma
Hisopado
bucal
Cocos Gram-
Negativos
Veillonella sp.
5. Sra. Melchora Adame
Cultivo y
Antibiograma
Hisopado
bucal
Cocos Gram-
Positivos
Estreptococo
Viridans
64
6. Sra. Martha Moreta
Cultivo y
Antibiograma
Hisopado
bucal
Cocos Gram-
Positivos
Estafilococo
epidermidis
7. Sra. María Poaquiza
Cultivo y
Antibiograma
Hisopado
bucal
Cocos Gram-
Positivos en
pares y
cadenas
Estreptococos
sp.
8. Sra. Martha Granados
Cultivo y
Antibiograma
Hisopado
bucal
Bacilos Gram-
Negativos
Prevotella sp.
9. Sra. María Cando
Cultivo y
Antibiograma
Hisopado
bucal
1.- Cocos
Gram-
Negativos
2.- Levaduras
Veillonella sp
Cándida sp
10. Sra. Alicia Álvarez
Cultivo y
Antibiograma
Hisopado
bucal
Bacilos Gram-
Negativos
Prevotella sp.
11. Sra. María Guato
Cultivo y
Antibiograma
Hisopado
bucal
Cocos Gram-
Positivos
Estafilococos
epidermis
12. Sra. Vilma Buenaño
Cultivo y
Antibiograma
Hisopado
bucal
Cocos gram-
positivos en
pares y
cadenas
Estreptococos
sp.
13. Sr. José Antonio Vimos
Cultivo y
Antibiograma
Hisopado
bucal
Diplococo
Gram-
Negativo
Moraxella
catharralis
14. Sra. Hortencia Muyulema
Cultivo y
Antibiograma
Hisopado
bucal
Levaduras Cándida
15. Sra. Martha Santos
Cultivo y
Antibiograma
Hisopado
bucal
Cocos Gram-
Positivos
Estafilococos sp
16. Sr. Ángel Vargas
Cultivo y
Antibiograma
Hisopado
bucal
Cocos Gram-
Positivos
Estafilococos
sp.
65
17. Sr. Diego Moreno
Cultivo y
Antibiograma
Hisopado
bucal
Bacilos Gram-
Negativos
Prevotella sp
18. Sra. Maricela Cóndor
Cultivo y
Antibiograma
Hisopado
bucal
Cocos Gram-
Positivos en
pares y
cadenas
Estreptococos
sp.
19. Sra. Silvia Miniguano
Cultivo y
Antibiograma
Hisopado
bucal
Levaduras Cándida sp
20. Sra. Gloria Claudio
Cultivo y
Antibiograma
Hisopado
bucal
Cocos Gram-
Positivos
Estafilococos
sp.
21. Sr. Wilson Pallo
Cultivo y
Antibiograma
Hisopado
bucal
Cocos Gram-
Negativos
Veillonella sp
22. Sr. José Carrillo
Cultivo y
Antibiograma
Hisopado
bucal
Cocos Gram-
Positivos
Estreptococos
Viridans
23. Sr. Luis Aguirre
Cultivo y
Antibiograma
Hisopado
bucal
Levaduras Cándida sp
24. Sra. María Grijalva
Cultivo y
Antibiograma
Hisopado
bucal
Levaduras Cándida sp
Fuente: Reporte de Laboratorio Elaborado por: Ximena Villegas
Tabla 17. Tabulación en porcentaje de muestras de pacientes totalmente
desdentados.
Germen Identificado Porcentaje de muestras
Cándida 24%
Estafilococos sp 12%
Estreptococos sp 12%
Prevotella sp 12%
Veillonella sp 12%
Moraxella catharralis 8%
Estreptococos viridans 8%
Estafilococos epidermis 8%
Sin desarrollo microbiano 4%
TOTAL 100%
Fuente: Reporte de Laboratorio Elaborador por: Ximena Villegas
66
Gráfico 5. Análisis Microbiológico de muestras de pacientes totalmente
desdentados.
Análisis de interpretación de datos.
El estudio microbiológico de las 24 muestras de impresiones de desdentados
totales reportó que, a excepción de una, todas están contaminadas, identificándose:
Cocos Gram positivos aislados como Estafilococos sp, Estreptococos viridans,
Estafilococos epidermis, en pares y cadenas como Estreptococos sp.
Diplococos Gram negativos: Moraxella catharralis
Bacilos Gram negativos: Prevotella sp.
Levaduras: Cándida sp.
2.2.9.3 Evaluación de la desinfección de impresiones dentales con
Digluconato de Clorhexidina al 2%, servicio Odontológico UAO, 2017.
Nombre Contaje de Colonias
Gram Germen identificado
1. Sra. Margarita Castillo
Sin desarrollo microbiano en 48 horas.
2. Sr. Luis Gamboa
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
3. Sr. Luis Sánchez
Diplococos Gram-
Negativos
Moraxella catharralis
4. Sra. Piedad Remache
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
24%
12%
12%12%
12%
8%
8%
8%4%
Análisis Microbiológico
Cándida
Estafilococos sp
Estreptococos sp
Prevotella sp
Veillonella sp
Moraxella catharralis
Estreptococos viridans
Estafilococos epidermis
67
5. Sra. Poaquiza Poaquiza María
Cocos Gram-
Negativos
Veillonella sp
6. Sr. Oscar Guerra
Cocos Gram –
Negativos
Veillonella sp
7. Sra. Verónica Enríquez
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
8. Sra. Melchora Adame
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
9. Sra. María Chango
Cocos Gram-
Negativos
Veillonella sp
10. Sr. José Caiza
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
11. Sr. Hernán Arcos
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
12. Sra. Martha Moreta
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
13. Sra. María Poaquiza
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
14. Sra. Martha Granados
Bacilos Gram-
Negativos
Prevotella sp
15. Sra. María Cando
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
Fuente: Reporte de Laboratorio Elaborado por: Ximena Villegas
Desinfección Porcentaje
Sin desarrollo microbiano 66%
Veillonella sp 20%
Moraxella catharralis 7%
Prevotella sp 7%
TOTAL 100%
Fuente: Reporte de Laboratorio Elaborado por: Ximena Villegas
68
Análisis de interpretación de datos.
Los resultados obtenidos en este análisis fueron que el Digluconato de clorhexidina
al 2% solamente eliminó cocos Gram positivos y levaduras, y no eliminó los
siguientes microorganismos:
Diplococos Gram negativos: Moraxella catharralis.
Cocos Gram negativos: Veillonella sp.
2.2.9.4 Evaluación de la desinfección de impresiones dentales con Hipoclorito
de Sodio al 2.5%, servicio Odontológico UAO, 2017.
Nombre Contaje de Colonias
Gram Germen identificado
1. Sr. Milton Solís
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
2. Sra. Alicia Álvarez
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
3. Sr. Luis Moya Sin desarrollo microbiano en 48 horas
4. Sra. María Garzón
Levaduras Cándida sp.
5. Sra. María Guato
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
6. Sra. Lina Bejarano
Cocos Gram-Positivos Estafilococos
epidermis.
66%
20%
7%7%
Análisis Microbiológico
Sin desarrollo microbiano
Veillonella sp
Moraxella catharralis
Prevotella sp
69
7. Sra. Vilma Buenaño
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
8. Sra. María Guevara
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
9. Sra. Ligia Chiliquinga
Levadura Cándida sp.
10. Sra. Fanny Sivisapa
Levadura Cándida sp.
11. Sr. José Antonio Vimos
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
12. Sra. Hortencia Muyulema
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
13. Sra. María Arellano
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
14. Sra. Martha Santos
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
15. Sr. Ángel Vargas
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
Fuente: Reporte de Laboratorio Elaborado por: Ximena Villegas
Desinfección Porcentaje
Sin desarrollo microbiano 73%
Cándida 20%
Estafilococos epidermis 7%
TOTAL 100%
Fuente: Reporte de Laboratorio Elaborado por: Ximena Villegas
73%
20%
7%
Análisis Microbiológico
Sin desarrollo microbiano
Cándida
Estafilococos epidermis
70
Análisis de interpretación de datos.
De acuerdo a los resultados de este análisis microbiológico el hipoclorito de Sodio
eliminó la mayoría de microorganismo como cocos Gram positivos, cocos Gram
negativos, bacilos Gram negativos, únicamente en una muestra no se eliminaron
Estafilococos epidermis correspondientes a cocos Gram positivos, y tampoco
eliminó levaduras de ninguna muestra en la q se encontraron dichos
microorganismos.
2.2.9.5 Evaluación de la desinfección de impresiones dentales con
Glutaraldehído al 2%, servicio Odontológico UAO, 2017.
Nombre Contaje de Colonias
Gram Germen identificado
1. Sr. David Ayoví
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
2. Sr. Diego Moreno
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
3. Sra. Maricela Cóndor
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
4. Sra. Silvia Miniguano
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
5. Sra. Sofía Proaño
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
6. Sra. Beatríz Buenaño
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
7. Sra. Lizeth Pucha
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
8. Sr. Ángel Urquizo
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
9. Sra. Anabel Narváez
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
10. Sra. Gloria Claudio
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
11. Sr. Wilson Pallo
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
12. Sra. María Naveda
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
13. Sr. José Carrillo
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
71
14. Sr. Luis Aguirre
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
15. Sra. María Grijalva
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
Fuente: Reporte del Laboratorio Elaborado por: Ximena Villegas
Desinfección Porcentaje
Sin desarrollo microbiano 100%
Fuente: Reporte de Laboratorio Elaborado por: Ximena Villegas
Análisis de interpretación de datos.
El análisis de estas 15 muestras desinfectadas indica que el glutaraldehído al 2%
eliminó todas las bacterias presentes en las muestras, como son cocos Gram
positivos aislados, en pares y cadenas, cocos Gram negativos, diplococos Gram
negativos, bacilos Gram negativos y esporas.
100%
Análisis Microbiológico
1
72
2.2.10 Análisis de las encuestas realizadas a los estudiantes de la carrera de
Odontología.
La encuesta es aplicada a 71 estudiantes de la Unidad de Atención Odontológica
Uniandes, con la finalidad de identificar los conocimientos sobre requerimientos que
se exponen en las páginas siguientes.
1. ¿Usted cree que en las impresiones dentales de alginato existe contaminación
bacteriana?
Tabla 18. Contaminación bacteriana de las impresiones de alginato.
ALTERNATIVA FRECUENCIA PORCENTAJE
SI 66 92%
NO 5 8%
TOTAL 71 100%
Fuente: U.A.O Elaborado por: Ximena Villegas
Gráfico 6. Contaminación bacteriana de las impresiones de alginato.
Fuente: U.A.O Elaborado por: Ximena Villegas
Interpretación: en la encuesta realizada el 92% de los estudiantes que asisten a
la Unidad de Atención Odontológica manifestaron que, si existe presencia de
microorganismos en las impresiones dentales de alginato, mientras que el 8% cree
que no existen.
92%
8%
¿Usted cree que en las impresiones dentales de alginato existe contaminación
bacteriana?
SI
NO
73
2. ¿Conoce usted cuales son los microorganismos presentes en las impresiones
dentales de alginato?
Tabla 19. Microorganismos presentes en impresiones dentales de alginato.
ALTERNATIVA FRECUENCIA PORCENTAJE
SI 18 25%
NO 53 75%
TOTAL 71 100%
Fuente: U.A.O Elaborado por: Ximena Villegas
Gráfico 7. Microorganismos presentes en impresiones dentales de alginato.
Fuente: U.A.O Elaborado por: Ximena Villegas Interpretación: una vez revisadas las encuestas se observa que el 25% de
estudiantes conocen los microorganismos presentes en las impresiones dentales
de alginato, mientras que el 75% no conocen.
3. ¿Cree usted que se deberían desinfectar las impresiones dentales de alginato
en la Unidad de Atención Odontológica Uniandes?
Tabla 20. Importancia de desinfectar impresiones dentales de alginato.
ALTERNATIVA FRECUENCIA PORCENTAJE
SI 71 100%
25%
75%
¿Conoce usted cuales son los microorganismos presentes en las impresiones dentales de alginato?
SI
NO
74
NO 00 0%
TOTAL 71 100%
Fuente: U.A.O Elaborado por: Ximena Villegas
Gráfico 8. Importancia de desinfectar impresiones dentales de alginato.
Fuente: U.A.O Elaborado por: Ximena Villegas
Interpretación: El 100% de los estudiantes encuestados creen que es necesaria
la desinfección de las impresiones dentales de alginato.
4. ¿Realiza usted la desinfección de las impresiones dentales de alginato en su
práctica clínica?
Tabla 21. Desinfección de impresiones dentales de alginato.
ALTERNATIVA FRECUENCIA PORCENTAJE
SI 9 13%
NO 62 87%
TOTAL 71 100%
Fuente: U.A.O Elaborado por: Ximena Villegas
100%
0%
¿Cree usted que se deberían desinfectar las impresiones dentales de alginato en la Unidad
de Atención Odontológica Uniandes?
SI
NO
75
Gráfico 9. Desinfección de impresiones dentales de alginato.
Fuente: U.A.O Elaborado por: Ximena Villegas
Interpretación: el 42% de los estudiantes encuestados conocen la importancia de
la desinfección de impresiones dentales de alginato, mientras que el 58% no la
conocen.
5. ¿Qué desinfectante utiliza usted para realizar el proceso de desinfección de
impresiones dentales de alginato?
Tabla 22. Desinfectante utilizado.
ALTERNATIVA N. DE ESTUDIANTES PORCENTAJE
HIPOCLORITO DE
SODIO
3 4%
CLORHEXIDINA 6 8%
NINGUNO 62 88%
TOTAL 71 100%
Fuente: U.A.O Elaborado por: Ximena Villegas
13%
87%
¿Realiza usted la desinfección de las impresiones dentales de alginato en su
práctica clínica?
SI
NO
76
Gráfico 10. Desinfectante utilizado.
Fuente: U.A.O Elaborado por: Ximena Villegas
Interpretación: de acuerdo a esta pregunta solamente el 4% de estudiantes
realizan la desinfección de las impresiones dentales de alginato con hipoclorito de
sodio, el 9% lo realiza con clorhexidina y el 87% no utiliza ninguna solución
desinfectante para este proceso.
6. ¿Conoce usted sobre las consecuencias al no desinfectar las impresiones
dentales de alginato?
Tabla 23. Consecuencias por no desinfectar impresiones dentales.
ALTERNATIVA FRECUENCIA PORCENTAJE
SI 26 37%
NO 45 63%
TOTAL 71 100%
Fuente: U.A.O Elaborado por: Ximena Villegas
4% 9%
87%
¿Qué desinfectante utiliza usted para realizar el proceso de desinfección de impresiones
dentales de alginato?
HIPOCLORITO DE SODIO
CLORHEXIDINA
NINGUNO
77
Gráfico 11. Consecuencias por no desinfectar impresiones dentales.
Fuente: U.A.O Elaborado por: Ximena Villegas
Interpretación: el 37% de los estudiantes encuestados conocen las consecuencias
al no desinfectar impresiones dentales de alginato mientras que el 63% no las
conocen.
7. ¿Conoce usted algún desinfectante adecuado para realizar dicho procedimiento
de desinfección?
Tabla 24. Desinfectante adecuado.
ALTERNATIVA FRECUENCIA PORCENTAJE
SI 18 25%
NO 53 75%
TOTAL 71 100%
Fuente: U.A.O Elaborado por: Ximena Villegas
37%
63%
¿Conoce usted sobre las consecuencias al no desinfectar las impresiones dentales de
alginato?
SI
NO
78
Gráfico 12. Desinfectante adecuado.
Fuente: U.A.O Elaborado por: Ximena Villegas
Interpretación: el 35% de estudiantes encuestados conocen un desinfectante ideal
para este proceso mientras el 65% no lo conoce.
8. ¿Usted conoce sobre alguna alteración que se puede producir en el material de
impresión debido al uso del desinfectante?
Tabla 25. Alteración en el material de impresión.
ALTERNATIVA FRECUENCIA PORCENTAJE
SI 15 21%
NO 56 79%
TOTAL 71 100%
Fuente: U.A.O Elaborado por: Ximena Villegas
25%
75%
¿Conoce usted algún desinfectante adecuado para realizar dicho procedimiento
de desinfección?
SI
NO
79
Gráfico 13. Alteración en el material de impresión.
Fuente: U.A.O Elaborado por: Ximena Villegas
Interpretación: El 21% de estudiantes encuestados conocen las alteraciones que
pueden darse en el material de impresión tras la desinfección del mismo, el 79% no
conocen sobre sus alteraciones.
9. ¿Usted sabe qué tipo de enfermedades se pueden transmitir por una impresión
dental no desinfectada?
Tabla 26. Enfermedades de transmisión por impresiones dentales.
ALTERNATIVA FRECUENCIA PORCENTAJE
SI 20 28%
NO 51 72%
TOTAL 71 100%
Fuente: U.A.O Elaborado por: Ximena Villegas
21%
79%
¿Usted conoce sobre alguna alteración que se puede producir en el material de impresión
debido al uso del desinfectante?
SI
NO
80
Gráfico 14. Enfermedades de transmisión por impresiones dentales.
Fuente: U.A.O Elaborado por: Ximena Villegas
Interpretación: El 28% de los estudiantes encuestados conocen acerca de las
enfermedades que se pueden transmitir por medio de una impresión dental de
alginato no desinfectada mientras que el 72% no las conocen.
2.2.11 Análisis de las entrevistas realizadas a Odontólogos de la U.A.O.
Las encuestas se realizaron a doce odontólogos generales y especialistas en la
ciudad de Ambato en la Unidad de Atención Odontológica Uniandes, los cuales
aportaron valiosos datos para esta investigación.
1. ¿Cree usted que es importante la desinfección de las impresiones dentales
de alginato?
Once profesionales encuestados respondieron que, si es importante la desinfección
de impresiones dentales de alginato, un profesional respondió que no es importante
este proceso.
2. ¿Conoce usted algún método de desinfección de impresiones dentales de
alginato?
Cuatro profesionales no conocen ningún método de desinfección para impresiones
dentales de alginato; los que respondieron que sí; dicen conocer los métodos de
inmersión, atomización, mediante el suplemento de desinfectantes como el
28%
72%
¿Usted sabe qué tipo de enfermedades se pueden transmitir por una impresión dental
no desinfectada?
SI
NO
81
glutaraldehído al 2%, yodoformos, derivados de cloro como el hipoclorito de sodio
al 2%, alcohol antiséptico, lavado a chorro con agua, alcohol al 10%, clorhexidina
al 0.12% y fenoles.
3. ¿Usted realiza la desinfección de impresiones dentales de alginato en su
consultorio dental?
Cinco profesionales encuestados respondieron que, si realizan la desinfección de
impresiones dentales en su consultorio dental, siete profesionales respondieron no
realizar dicho procedimiento de desinfección en su práctica.
4. ¿Ha realizado usted este proceso de desinfección dentro de su formación
profesional?
Los doctores/as, que no han realizado la desinfección de impresiones dentales en
su formación profesional son siete.
Los doctores/as que afirman que si han realizado la desinfección de impresiones
dentales en su formación profesional son cinco.
5. En su práctica clínica ¿Usted ha tenido alguna mala experiencia debido a
la falta de desinfección de impresiones dentales de alginato?
Once doctores/as dicen que en su práctica clínica no han tenido malas experiencias
debido a la falta de desinfección de impresiones dentales, y solo un profesional
afirma que sí la tuvo, una contaminación de hepatitis.
6. ¿Usted cree que es de gran utilidad la realización de esta investigación?
Diez profesionales encuestados creen que, si es de gran utilidad la realización de
esta investigación, mientras que dos creen que no lo es.
7. ¿Cuál cree que es la causa principal para que se produzcan
contaminaciones cruzadas por impresiones dentales?
Respecto a esta interrogante el primer profesional responde que se debe a la mala
manipulación de la impresión dental.
82
El segundo profesional dice que puede producirse por enfermedades sistémicas
del paciente, presencia de cálculos dentales y al tomar impresiones dentales en
candidiasis bucales no tratadas.
El tercer profesional respondió que por medio de la saliva y la sangre se producen
contaminaciones cruzadas.
El cuarto profesional manifiesta que la causa principal es el mal manejo de las
impresiones dentales y la falta de desinfección.
El quinto profesional respondió que definitivamente es un vector en la cadena
epidemiológica cuando se inmiscuye a muchos actores, el paciente, otros
pacientes, el profesional el asistente, el laboratorista y sus asistentes.
El sexto profesional dice que la causa principal es la no desinfección de la
impresión, la segunda los virus, bacterias, hongos, protozoos, ricketsias y las
esporas.
El séptimo profesional manifestó que se debe a que en las impresiones se quedan
líquidos biológicos como sangre y saliva y esto va a provocar contaminaciones
cruzadas.
El octavo profesional dice que la causa principal es por no tomar las medidas
adecuadas de desinfección de las impresiones dentales.
Cuatro profesionales respondieron que debido a la falta de desinfección de las
impresiones o desinfección inadecuada de las mismas.
8. ¿Usted sabe qué tipo de enfermedades se pueden transmitir por una
impresión dental no desinfectada?
Respecto a esta pregunta tres profesionales respondieron no conocer ningún tipo
de enfermedad transmisible por este medio, mientras que los que respondieron
que, si mencionaron enfermedades como hepatitis C, VIH, tuberculosis, varicela,
herpes simple tipo I, algunas enfermedades de transmisión sexual como sífilis y
blenorragia, clamidia enfermedades en las que el agente causal tiene resistencia
en un medio húmedo y aún seco, candidiasis.
83
2.3 PLANTEAMIENTO DE LA PROPUESTA.
2.3.1 Título: “Guía de Bioseguridad para la manipulación de impresiones dentales
de alginato en la Unidad de Atención Odontológica Uniandes”.
2.3.2 Introducción.
Es muy importante aplicar una solución desinfectante después de tomar una
impresión dental, para evitar la contaminación cruzada entre todo el equipo dental,
paciente, odontólogo, asistente dental, técnicos dentales, entre otros.
La propagación de agentes infecciosos entre pacientes y personal de la salud por
medio de instrumentos y materiales contaminados nos obliga a esterilizarlos
después del uso, pero existen materiales los cuales no son posible esterilizar, como
los usados para obtener las impresiones dentales; en este caso se utiliza una gran
cantidad de soluciones desinfectantes, sin embargo, se requiere identificar la
prevalencia de microrganismos.
Es importante saber que algunos desinfectantes son eficaces para destruir un
número limitado de microorganismos, otros lo son para destruir todos los
microorganismos, incluso las esporas bacterianas. Algunos son muy corrosivos,
mientras otros son relativamente inocuos para los materiales comunes.
La mayoría de estudiantes que realizan sus prácticas en la UAO no conocen acerca
de un proceso y un desinfectante adecuado para realizar este importante
procedimiento de desinfección, así como tampoco lo practican.
Por lo cual es importante que se conozca sobre este tema.
2.3.3 Objetivos.
2.3.3.1 Objetivo General.
Elaborar una guía de bioseguridad para la manipulación de las impresiones
dentales de alginato tomadas por los estudiantes en la Unidad de Atención
Odontológica Uniandes.
2.3.3.2 Objetivos Específicos.
Promover el uso de desinfectantes adecuados en materiales para impresiones
dentales.
84
Facilitar la información adecuada a los estudiantes de la carrera de Odontología
de la Universidad Uniandes sobre la importancia de la desinfección de
impresiones dentales de alginato.
Realizar un estudio diferencial acerca de la acción del digluconato de
clorhexidina al 2%, hipoclorito de Sodio al 2.5% y glutaraldehído al 2%,
utilizados para desinfectar impresiones dentales de alginato.
2.3.4 Justificación.
La desinfección de las impresiones dentales de alginato realizadas con fines
protésicos, es una medida importante para eliminar la mayor parte de
microorganismos que se encuentren presentes en la superficie de todo el material
de impresión, ya que sometido a este proceso logramos la destrucción de virus,
bacterias, esporas y hongos.
Por eso se realizó este estudio, para dar a conocer que en las impresiones dentales
existe contaminación, con la finalidad de realizar la desinfección de las mismas con
una solución adecuada que no altere las propiedades del material de impresión y
sobre todo evitar la propagación de microorganismos.
2.3.5 Desarrollo de la propuesta.
2.3.5.1 Población de estudio.
Este trabajo de investigación fue realizado tomando muestras de 45 impresiones
dentales de alginato con la respectiva desinfección de cada una de ellas, tomadas
por estudiantes de séptimo semestre que realizan sus prácticas en la Unidad de
Atención Odontológica Uniandes.
2.3.5.2 Lugar de desarrollo y aplicación de la propuesta.
Esta propuesta se desarrolló en la Unidad de Atención Odontológica Uniandes de
la Universidad Regional Autónoma de los Andes de la ciudad de Ambato, se hizo
la entrega de trípticos a los estudiantes y se colocó una gigantografía con la
información correspondiente en la Unidad de Atención Odontológica para que
pueda ser observada por todos quienes asisten.
85
2.3.6 Metodología empleada para la propuesta.
Inductivo – Deductivo: en este estudio, una vez realizado el análisis
microbiológico en el laboratorio, los resultados indican que, a excepción de una,
en todas las muestras de impresiones dentales existe contaminación bacteriana
y fúngica, por lo tanto esto nos indica que debemos realizar la desinfección de
las impresiones dentales de alginato de cada uno de los pacientes.
Analítico – Sintético: Se realizó la recolección de muestras de impresiones
dentales de alginato de pacientes parcial y totalmente desdentados, y muestras
de las mismas impresiones desinfectadas con tres soluciones diferentes, se los
analizó en la laboratorio, el estudio fue sintetizado en un informe de análisis de
investigación microbiológica, esto crea la necesidad de elaborar una Guía de
bioseguridad para la correcta manipulación de impresiones dentales de alginato
tomadas con fines protésicos.
2.3.7 Fases del procedimiento.
Con este trabajo de investigación se pudo determinar que la desinfección de
impresiones dentales de alginato es muy importante y necesaria para eliminar todo
tipo de microorganismos presentes en ellas, esto es muy importante dentro de la
catedra de Bioseguridad en Odontología, por esto sugiero la aplicación de dicho
protocolo.
Primera fase.
Uso de barreras físicas (guantes, mascarilla, gafas protectoras, uniforme de
prácticas clínicas, zapatos)
Segunda fase.
Desinfección de la Unidad dental (utilización de Lysol)
Tercera fase.
Lavarse las manos con povidin jabonoso y secarse con toallas desechables)
Cuarta fase.
Preparación de la mesa de trabajo (colocación de campos estériles)
Quinta fase.
Ubicación del paciente en el sillón dental
86
Sexta fase.
Colocación del material a utilizar para la toma de la impresión (cubetas
desinfectadas y esterilizadas, espátulas y tazas de caucho desinfectadas y
esterilizadas, recipiente para el agua)
Séptima fase.
Adquisición del material de impresión (alginato y agua)
Octava fase.
Prueba de cubetas en la boca del paciente.
Novena fase.
Mezcla del material de impresión de acuerdo a las indicaciones del fabricante.
Décima fase.
Toma de la impresión dental y posterior lavado de la misma para eliminar residuos
de saliva y sangre que puedan interferir con la acción de la solución utilizada para
la desinfección y disminuir la carga microbiana.
Décima primera fase.
Secado de la impresión dental con ayuda de la jeringa triple y desinfección de la
misma.
La desinfección se indica con el rociado de la impresión dental conjuntamente con
la cubeta, con hipoclorito de sodio al 2.5% dejando actuar dicha solución por 15
minutos, tomar en cuenta que esta solución no elimina hongos ni esporas.
Para lograr la eliminación de todo microorganismo presente se desinfecta las
impresiones dentales con una solución de glutaraldehído al 2%, sumergiendo las
impresiones durante 15 minutos en la misma.
Por último, se concluye lavando con abundante agua las impresiones para eliminar
el desinfectante presente en ellas.
Contenido de los trípticos
En la flora normal de la cavidad bucal existen alrededor de 700 especies de
bacterias, algunas son patógenas oportunistas como en la gingivitis o la
periodontitis, pueden presenciar además virus y hongos.
87
El odontólogo tiene riesgo de provocar contaminación cruzada por medio de la
toma de impresiones dentales, las cuales deben ser desinfectadas para su
manejo seguro; para lo cual existe una diversidad de soluciones desinfectantes.
Dentro de los microorganismos más comunes en cavidad oral podemos
encontrar a los Estreptococos, Staphylococcus, Veillonella, Prevotella, Cándida,
Estreptococos viridans, Estafilococos epidermis, Corynebacterium,
Actinomices, Fusobacterium, Treponema, en ciertos casos pueden existir virus
como VIH, VHS, virus de la hepatitis, virus causante de sífilis entre otras más,
los cuales deben ser eliminados.
La desinfección se considera como la inactivación de bacterias, hongos y virus,
así como la disminución del número de esporas bacterianas, para así evitar que
se propaguen los microorganismos.
En el consultorio dental, el personal que trabaja está expuesto a estos agentes
infecciosos, por lo tanto, es muy importante la utilización de soluciones
desinfectantes teniendo en cuenta que no se debe alterar las propiedades del
material de impresión.
Guía de Bioseguridad para la manipulación de impresiones dentales de alginato
Uso de barreras físicas (guantes, mascarillas, gafas protectoras, uniforme,
zapatos)
Desinfección de la Unidad dental (utilización de lysol).
Ubicación del paciente en el sillón dental.
Lavado de manos con povidin jabonoso y secado con toallas desechables.
Preparación de la mesa de trabajo (colocación de campos estériles)
Colocación del material a utilizar para la toma de la impresión (cubetas
desinfectadas y esterilizadas, espátulas y tazas de caucho desinfectadas y
esterilizadas, recipiente para el agua).
Adquisición del material de impresión (alginato y agua)
Prueba de cubetas en la boca del paciente.
Mezcla del material de impresión de acuerdo a las indicaciones del fabricante.
Toma de la impresión dental.
Lavado de la impresión dental. (Para eliminar saliva y sangre y disminuir la carga
bacteriana).
88
Secado de la impresión con ayuda de la jeringa triple.
Desinfección.
Este procedimiento puede realizarse con la utilización de hipoclorito de Sodio al
2.5%, (desinfectante de nivel medio) rociando la solución en la superficie de la
impresión dental y la cubeta y dejando actuar en la misma durante 15 minutos,
posteriormente se lava la impresión dental para eliminar los residuos de la solución.
Puede emplearse también un desinfectante de nivel Alto, como lo es el
glutaraldehído al 2%, se sumerge la impresión dental en la solución dejando actuar
por 15 minutos, posteriormente se retira la impresión y se lava, el mismo elimina
todo tipo de microorganismos.
2.3.8 Beneficios de la propuesta.
Los beneficios que ofrece esta propuesta son que con el uso correcto de las
normas de bioseguridad se reducirá el riesgo de producir contaminaciones
cruzadas.
Conocer que el glutaraldehído al 2% es la solución de elección para este
proceso de desinfección.
La desinfección de impresiones dentales de alginato, nos permite garantizar la
salud de los pacientes, del Odontólogo y el laboratorista dental.
La desinfección de impresiones dentales de alginato, es un procedimiento fácil
y rápido de ser realizado por los estudiantes de odontología.
Se puede mejorar el aprendizaje fortaleciendo los conocimientos en el manejo
de los materiales utilizados en la toma de impresiones dentales.
89
2.4 CONCLUSIONES PARCIALES DEL CAPÍTULO.
Después de haber realizado el análisis microbiológico de muestras de impresiones
de alginato tomadas en la U.A.O se concluye que:
Existe contaminación microbiana en las impresiones dentales y una mala
manipulación de las mismas.
Los estudiantes en su mayoría no realizan la desinfección de impresiones
dentales ni de cubetas dentales y en muchos casos utilizan las mismas con otros
pacientes.
Con la guía de bioseguridad para el manejo de las impresiones dentales de
alginato hubo un interés por parte de los estudiantes y algunos profesionales
Odontólogos de la carrea de Odontología sobre la importancia de realizar este
proceso de desinfección.
El digluconato de clorhexidina no eliminó cocos gramnegativos.
El hipoclorito de Sodio no eliminó levaduras presentes en las impresiones
dentales de alginato.
El glutaraledhído es un desinfectante ideal para realizar este proceso de
desinfección ya que eliminó todos los microorganismos encontrados en las
muestras.
Ninguna de las soluciones utilizadas produjo alteraciones en el material de
impresión ni en la cubeta dental.
90
CAPÍTULO III.
3. VALIDACIÓN Y EVALUACIÓN DE RESULTADOS DE SU APLICACIÓN.
3.1 ESQUEMA DE LA APLICACIÓN DE LA PROPUESTA.
Esta propuesta se procede a validar mediante la desinfección de impresiones
dentales de alginato con la utilización de tres soluciones diferentes y el análisis
microbiológico de muestras tomadas de las mismas, dando a conocer a los
estudiantes que asisten a la Unidad de Atención Odontológica Uniandes la Guía de
Medidas de Bioseguridad para el manejo de
impresiones dentales de aginato
Protocolo de Desinfección
Conocer el manejo deimpresiones dentales dealginato en la U.A.O
Evitar la diseminaciónmicroorganismospresentes en impresionesdentales y porconsiguiente evitarcontaminacionescruzadas
Medidas de Bioseguridad
Utilización de barreras físicas
Desinfección de la unidad dental
Lavado de manos
Desinfección del material de impresión
Esterilización del instrumental
Material Didáctico
Uso de desinfectantesadecuados y técnica dedesinfección paraimpresiones dentales dealginato
Guía de Bioseguridad
Importancia de la desinfeccion de
impresiones dentales de alginato
91
bioseguridad para la manipulación de impresiones dentales de alginato con el uso
de un desinfectante ideal para realizar dicho proceso de desinfección.
3.2 ANÁLISIS MICROBIOLÓGICO DE MUESTRAS DESINFECTADAS CON
TRES SOLUCIONES.
3.2.1 Análisis microbiológico de 15 muestras desinfectadas con Digluconato
de Clorhexidina al 2%.
Tabla 27. Muestras desinfectadas con Digluconato de clorhexidina al 2%.
Nombre Contaje de Colonias
Gram Germen identificado
Sra. 1. Margarita
Castillo
Sin desarrollo microbiano en 48 horas.
2. Sr. Luis
Gamboa
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
3. Sr. Luis Sánchez
Diplococos Gram-
Negativos
Moraxella catharralis
4. Sra. Piedad Remache
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
5. Sra. Poaquiza Poaquiza María
Cocos Gram-
Negativos
Veillonella sp
6. Sr. Oscar Guerra
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
7. Sra. Verónica Enríquez
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
8. Sra. Melchora Adame
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
9. Sra. María Chango
Cocos Gram-
Negativos
Veillonella sp
10. Sr. José Caiza
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
11. Sr. Hernán Arcos
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
92
12. Sra. Martha Moreta
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
13. Sra. María Poaquiza
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
14. Sra. Martha Granados
Bacilos Gram-
Negativos
Prevotella sp
15. Sra. María Cando
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
Fuente: Reporte de Laboratorio Elaborado por: Ximena Villegas
Tabla 28. Porcentaje de muestras desinfectadas con Digluconato de Clorhexidina
al 2%.
Desinfección Porcentaje
Sin desarrollo microbiano 66%
Veillonella sp 20%
Moraxella catharralis 7%
Prevotella sp 7%
TOTAL 100%
Fuente: Reporte de Laboratorio Elaborado por: Ximena Villegas
Gráfico 15. Muestras desinfectadas con Digluconato de Clorhexidina al 2%.
Fuente: Reporte del Laboratorio Elaborado por: Ximena Villegas
0%
10%
20%
30%
40%
50%
60%
70%
Sin desarrollomicrobiano
Veillonella sp Moraxella catharralis Prevotella sp
Análisis Microbiológico
93
Análisis de interpretación de datos.
Del total de muestras el 66% obtuvieron una completa desinfección mientras que
en el 34% hubo un desarrollo de microorganismo
Así solamente se eliminaron cocos Gram positivos y levaduras, y no fueron
eliminados Diplococos Gram negativos (Moraxella catharralis), Cocos Gram
negativos (Veillonella sp.)
No se observaron alteraciones en el material de impresión debido a la exposición a
esta solución.
3.2.2 Análisis Microbiológico de 15 muestras desinfectadas con Hipoclorito
de Sodio al 2.5%.
Tabla 29. Muestras desinfectadas con Hipoclorito de Sodio al 2.5%.
Nombre Contaje de Colonias
Gram Germen identificado
1. Sr. Milton Solís
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
2. Sra. Alicia Álvarez
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
3. Sr. Luis Moya Sin desarrollo microbiano en 48 horas
4. Sra. María Garzón
Levaduras Cándida sp.
5. Sra. María Guato
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
6. Sra. Lina Bejarano
Cocos Gram-Positivos Estafilococos
epidermis.
7. Sra. Vilma Buenaño
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
8. Sra. María Guevara
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
9. Sra. Ligia Chiliquinga
Levadura Cándida sp.
10. Sra. Fanny Sivisapa
Levadura Cándida sp.
94
11. Sr. José Antonio Vimos
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
12. Sra. Hortencia Muyulema
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
13. Sra. María Arellano
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
14. Sra. Martha Santos
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
15. Sr. Ángel Vargas
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
Fuente: Reporte de Laboratorio Elaborado por: Ximena Villegas
Tabla 30. Porcentaje de muestras desinfectadas con Hipoclorito de Sodio al 2.5%.
Desinfección Porcentaje
Sin desarrollo microbiano 73%
Cándida 20%
Estafilococos epidermis 7%
TOTAL 100%
Fuente: Reporte de Laboratorio Elaborado por: Ximena Villegas
Gráfico 16. Muestras desinfectadas con Hipoclorito de Sodio al 2.5%
Fuente: Reporte del Laboratorio Elaborado por: Ximena Villegas
0%
10%
20%
30%
40%
50%
60%
70%
80%
Sin desarrollo microbiano Cándida Estafilococos epidermis
Análisis Microbiológico
95
Análisis de interpretación de datos. El 73% de muestras fueron desinfectadas completamente, mientras que en el 27%
hubo un desarrollo de microorganismos después de la desinfección con hipoclorito
de Sodio al 2.5%.
Se eliminó la mayoría de microorganismo como cocos Gram positivos, cocos Gram
negativos, bacilos Gram negativos, únicamente en una muestra no se eliminaron
Estafilococos epidermis correspondiente a cocos Gram positivos, y tampoco
eliminó levaduras de ninguna muestra.
No se observaron alteraciones en el material de impresión ni en las cubetas
(metálicas) debido a la exposición a esta solución.
3.2.3 Análisis Microbiológico de 15 muestras desinfectadas con
Glutaraldehído al 2%.
Tabla 31. Muestras desinfectadas con Glutaraldehído al 2%.
Nombre Contaje de Colonias
Gram Germen identificado
1. Sr. David Ayoví
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
2. Sr. Diego Moreno
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
3. Sra. Maricela Cóndor
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
4. Sra. Silvia Miniguano
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
5. Sra. Sofía Proaño
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
6. Sra. Beatríz Buenaño
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
7. Sra. Lizeth Pucha
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
8. Sr. Ángel Urquizo
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
9. Sra. Anabel Narváez
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
96
10. Sra. Gloria Claudio
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
11. Sr. Wilson Pallo
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
12. Sra. María Naveda
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
13. Sr. José Carrillo
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
14. Sr. Luis Aguirre
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
15. Sra. María Grijalva
Sin desarrollo microbiano en 48 horas
Fuente: Reporte del Laboratorio Elaborado por: Ximena Villegas
Tabla 32. Porcentaje de muestras desinfectadas con Glutaraldehído al 2%.
Desinfección Porcentaje
Sin desarrollo microbiano 100%
Fuente: Reporte de Laboratorio Elaborado por: Ximena Villegas
Gráfico 17. Muestras desinfectadas con Glutaraldehído al 2%.
Fuente: Reporte del Laboratorio Elaborado por: Ximena Villegas
0%
20%
40%
60%
80%
100%
120%
1
Análisis Microbiológico
97
Análisis de interpretación de datos.
El análisis de estas 15 muestras desinfectadas indica que el glutaraldehído al 2%
eliminó todas las bacterias presentes en las muestras, como son cocos Gram
positivos aislados, en pares y cadenas, cocos Gram negativos, diplococos Gram
negativos, bacilos Gram negativos y esporas.
Tampoco se observaron alteraciones en el material de impresión después de la
desinfección con esta solución.
3.2.4 Resumen del Análisis Microbiológico de muestras desinfectadas.
Tabla 33. Cuadro de resumen de muestras desinfectadas con tres soluciones
diferentes.
Fuente: Reporte del Laboratorio Elaborado por: Ximena Villegas
Sin desarrollo microbiano
Estafilococos sp
Estreptococo viridans
Estafilococo epidermis
Digluconato de Clorhexidina 2%
66% 0% 0% 0%
Hipoclorito de Sodio 2.5%
73% 0% 0% 7%
Glutaraldehído 2%
100% 0% 0% 0%
Estreptococo sp
Cándida sp
Moraxella Catharralis
Veillonella sp
Prevotella sp
Digluconato de Clorhexidina 2%
0% 0% 7% 20% 7%
Hipoclorito de Sodio 2.5%
0% 20% 0% 0% 0%
Glutaraldehído 2%
0% 0% 0% 0% 0%
98
Gráfico 18. Resumen del Análisis microbiológico de la desinfección de muestras
con tres soluciones diferentes.
Fuente: Reporte del Laboratorio Elaborado por: Ximena Villegas
0%
10%
20%
30%
40%
50%
60%
70%
80%
90%
100%
Sindesarrollo
microbiano
Estafilococos sp
Estreptoco
covirida
ns
Estafilococ
oepidermis
Estreptococo sp
Cándida sp
Moraxella
Catharralis
Veillonella
sp
Prevotellasp
Digluconato de Clorhexidina 2% 66% 0% 0% 0% 0% 0% 7% 20% 7%
Hipoclorito de Sodio 2% 73% 0% 0% 7% 0% 20% 0% 0% 0%
Glutaraldehído 2% 100% 0% 0% 0% 0% 0% 0% 0% 0%
PO
RC
ENTA
JE (
%)
ELIMINACIÓN DE MICROORGANISMOS
Desinfección de 45 muestras con tres soluciones diferentes
Digluconato de Clorhexidina 2% Hipoclorito de Sodio 2% Glutaraldehído 2%
99
3.3 CONCLUSIONES PARCIALES DEL CAPÍTULO.
De acuerdo a los procedimientos de desinfección realizados en esta investigación
se concluye que:
Después de haber analizado las muestras desinfectadas se concluye con que
no todas las soluciones eliminaron completamente los microorganismos
encontrados en las impresiones dentales.
Ninguno de los desinfectantes utilizados provocó alteraciones en el material de
impresión después de la exposición a los mismos.
Se comprobó que el glutaraldehído es una solución que eliminó completamente
bacterias y hongos encontrados.
100
CONCLUSIONES GENERALES.
De acuerdo a los estudios y la literatura revisada durante esta investigación la
desinfección de impresiones dentales de alginato es muy importante durante la
práctica diaria de los profesionales de la salud bucal puesto que así se evitarán
propagaciones de microorganismos entre pacientes, Odontólogo y asistentes,
laboratorista dental.
No existe un conocimiento y por ende una aplicación correcta de medidas de
bioseguridad en cuanto al manejo de impresiones dentales de alginato en la
Unidad de Atención Odontológica Uniandes, por lo cual tampoco se realiza una
desinfección de las mismas.
Se ha demostrado que la desinfección con el glutaraldehído al 2% de
impresiones de alginato, en el tiempo indicado no altera las propiedades del
material de impresión y elimina todos los microorganismos encontrados en ellas.
Se debe desinfectar siempre estos materiales para fines protésicos, ya que se
demostró que todos tienen cargas microbianas.
Al momento de realizar el proceso de desinfección se debe tomar en cuenta de
que tanto el material de impresión como el instrumental en este caso la cubeta
dental queden cubiertas por la solución desinfectante.
Posterior a la desinfección de la impresión dental, realizar el siguiente
procedimiento con la misma, para evitar que se vuelva a contaminar, desechar
el material de impresión y colocar la cubeta dental en una funda para la posterior
esterilización.
101
RECOMENDACIONES.
Se recomienda una mejor educación tanto de estudiantes como de docentes en
cuanto a bioseguridad, asepsia y antisepsia.
Aplicar todos los procedimientos de bioseguridad como son el uso de barreras
físicas, lavado de manos, uso de soluciones desinfectantes al realizar toda
actividad odontológica.
Trabajar de mejor manera en todos los procedimientos practicando los
protocolos correspondientes para que se dé un menor contacto con
microorganismos.
Realizar la esterilización de todo el instrumental y la desinfección adecuada de
todo aquello que no pueda ser esterilizado.
Realizar la desinfección de cada una de las impresiones dentales tanto del
material de impresión como de la cubeta dental.
102
BIBLIOGRAFÍA
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Conocimientos básicos Aplicados, Editorial Trillas, 3era Edición, México.
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enfermedades infecciosas de la boca, Editorial Limusa, Primera edición, México.
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Edición, Colombia.
5. FAVI, M; JIMÉNEZ, M; MARTÍNEZ, C; OLIVARES, B; RAMÍREZ, V; &
SCAPPATICCIO, A. (2013). Guía de Bioseguridad para Laboratorios Clínicos,
Editorial Amolca, 2da Edición, Colombia.
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Normativo de Aplicación, Grupo Editorial Gráficas Amaranta, Ecuador, (páginas
29-40/111-119).
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Ediciones, 4ta Edición, Colombia.
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Aplicación. Cuenca, Ecuador.
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consulta y el laboratorio de prótesis, Revista Cubana de Tecnología de ña salud,
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Salud Bucal, Edición: Dirección Nacional de Normalización MSP.
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103
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https://es.wikipedia.org/wiki/Alginato
https://prezi.com/-htaurwa5od9/desinfeccion-de-impresiones-dentales/
https://www.uv.mx/rm/num_anteriores/revmedica_vol14_num1/articulos/prev
alencia.pdf
http://www.protesisdentaljc.com/IMPRESIONES.php
http://www.actaodontologica.com/ediciones/2003/3/control_infecciones_labo
ratorio_odontologico.asp
http://www.actaodontologica.com/ediciones/2007/1/agentes_quimicos_desin
feccion.asp
http://www.odontologia-online.com/publicaciones/medicina-
estomatologica/78-analisis-de-las-incidencias-biologicas-en-las-
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http://www.cdc.gov/tb/esp/publications/pamphlets/TB-HIVSpan.PDF
http://www.academia.edu/7047669/6_8_CIENCIA
http://www.actaodontologica.com/ediciones/2003/3/control_infecciones_labo
ratorio_odontologico.asp
http://es.sildeshare.net/evaluacion26/gua-de-observacin-13905932
http://metodologia02.blogspot.com/p/metodos-de-la-investigacion.html
http://www.dentsply.es/Noticias/clinica3007.htm
105
ANEXOS
106
Anexo 1
PERFÍL DE PROYECTO DE TESIS
UNIVERSIDAD REGIONAL AUTÓNOMA DE LOS ANDES
“UNIANDES”
FACULTAD DE CIENCIAS MÉDICAS
CARRERA DE ODONTOLOGÍA
PERFÍL DE PROYECTO DE INVESTIGACIÓN PREVIO A LA OBTENCIÓN DEL
TÍTULO DE ODONTÓLOGA.
TEMA:
IDENTIFICACIÓN DE MICROORGANISMOS PRESENTES EN IMPRESIONES
DENTALES DE ALGINATO EN PACIENTES QUE ASISTEN A LA UNIDAD DE
ATENCIÓN ODONTOLÓGICA UNIANDES.
AUTORA: VILLEGAS AMÁN XIMENA ALEXANDRA
TUTORA: DRA. VILLACRESES MEDINA MARY ELENA
AMBATO – ECUADOR
2017
107
PERFÍL DE PROYECTO DE INVESTIGACIÓN.
I. TEMA
Identificación de microorganismos presentes en impresiones dentales de
alginato en pacientes que asisten a la Unidad de Atención Odontológica
Uniandes.
II. PROBLEMA
2.1 Antecedentes
En los inicios de la medicina, se desconocía por completo la causa de las
enfermedades y la existencia de microorganismos, por lo que las enfermedades
más simples se convertían en verdaderas epidemias, propagándose entre las
poblaciones, dejando a su paso la muerte masiva y el desconcierto entre las
personas, más tarde descubrieron la presencia de microorganismos y los
identificaron como agentes causales de infección, surgiendo con esto la
necesidad de mejorar las medidas de prevención y control de las enfermedades.
(Cusco, 2010)
A finales del siglo XIX se establecieron los principios de Semmelweis, Pasteur,
Lister, Nightingale, Neuber, entre otros, para controlar y evitar los medios de
contaminación durante los procesos quirúrgicos. En los últimos años se ha
insistido en el perfeccionamiento de los sistemas de esterilización y el control
estricto de las variables que intervienen en el proceso: temperatura, tiempo,
desarrollo de métodos para evaluar la eficacia de la esterilización con controles
físicos, biológicos y químicos.
La actividad Odontológica se desarrolla en un ámbito de contaminación; y la
cavidad oral no es la excepción, pues en esta abundan alrededor de 700
especies de microorganismos, de los cuales algunos forman la flora normal y
otros pueden ser patógenos. (Rosales, 2012)
Las impresiones dentales en la práctica habitual se contaminan fácilmente con
saliva o sangre del paciente y estos fluidos pueden contener agentes patógenos
infecciosos como el VIH, hepatitis, herpes o el virus de la tuberculosis. Una parte
de los materiales de impresión son de naturaleza orgánica, y precisan agua para
108
vehiculizar sus agentes de reticulación, otros, a su vez, son hidrofílicos captando
agua en mayor o menor medida y, por tanto, son especialmente sensibles al
crecimiento bacteriano, dicha situación puede transmitir microorganismos a los
modelos y de esta manera se podría construir un medio de contaminación
cruzada entre pacientes, Odontólogos y el equipo, incluyendo el técnico del
laboratorio. (Herrera, 2012)
Un procedimiento que podría reducir el riesgo de contaminación cruzada sería
la desinfección de las impresiones dentales antes de su envío al laboratorio
dental.
La ADA alerta sobre la rápida evolución el SIDA y la Hepatitis B y establece
líneas de actuación para el control del riesgo de infección en la clínica y el
laboratorio dental, entre las que hace referencia a la desinfección de cubetas y
materiales de impresión mediante agentes químicos como soluciones de
glutaraldehído o hipoclorito sódico.
La eficacia de un desinfectante va a depender de su concentración, tiempo de
exposición, del tipo y concentración de gérmenes y de la cantidad de residuos
presentes.
Igualmente, es muy importante minimizar el número de gérmenes presentes en
las impresiones dentales, con objeto de reducir las oportunidades de
transferencia microbiana.
El empleo de sustancias químicas desinfectantes es el método de elección para
tratar los materiales de impresión. Es ventajoso emplear los mismos
desinfectantes que habitualmente se utilizan en la práctica dental, pero
adaptando factores tales como su concentración o tiempo de exposición con
objeto de minimizar sus efectos cobre los materiales de impresión. (Jaen, 2014)
Es muy importante aplicar una solución desinfectante después de tomar una
impresión dental, para evitar la contaminación cruzada entre todo el equipo de
salud Odontológico: paciente, Odontólogo, asistente dental, técnicos dentales,
entre otros. Se ha usado con éxito el hipoclorito de sodio al 0.5% oglutaraldehído
(dilución 1:10, durante 15 minutos para alginatos) y yodopovidona al 10%
durante 15 minutos para aparatos de prótesis y ortodoncia.
109
2.2 Situación Problémica
Los profesionales de salud en todas las áreas están expuestos a “riesgos” que
pueden ser la transmisión de un sin número de enfermedades con material
contaminado, contacto son sangre y saliva a la mucosa conjuntival, teniendo en
cuenta la importancia de las barreras de bioseguridad es necesario enfatizar
que el conocimiento de las mismas sea completo y la aplicación de dichas
barreras sea de la forma adecuada para así minimizar el impacto de un sin
número de patologías entre pacientes y personal de la clínica Odontológica.
Todos los procedimientos para el control de infección de las impresiones
dentales y cubetas contaminadas, son conocimientos adquiridos durante la
formación preprofesional, la buena información sobre procedimientos de control
de infecciones es importante ya que una de las vías de transmisión a la que más
expuestos están tanto el operador y su auxiliar es la vía aérea, debido a la acción
contaminante de las impresiones dentales las cuales son utilizadas en toda
actividad Odontológica.
2.3 Formulación del problema
¿Cuáles son los microorganismos presentes en las impresiones dentales de
alginato de los pacientes de la Unidad de Atención Odontológica Uniandes?
2.4 Delimitación del problema
2.4.1 Objeto de estudio y campo de acción
Objeto de estudio: determinación de microorganismos presentes en
impresiones dentales de alginato.
Campo de acción: Bioseguridad Odontológica, Agentes Biológicos.
2.4.2 Lugar: Unidad de Atención Odontológica Uniandes
2.4.3 Tiempo: Período académico Abril – Septiembre 2017
III. LÍNEA DE INVESTIGACIÓN
Odontología preventiva y comunitaria: estudio de variables de riesgo
odontológico en la población.
110
IV. OBJETIVOS
4.1 Objetivo General
Identificar los microorganismos presentes en impresiones dentales de alginato
en pacientes que asisten a la Unidad de Atención Odontológica Uniandes.
4.2 Objetivos Específicos
Fundamentar teórica y científicamente sobre los microorganismos presentes
en las superficies de alginato en impresiones dentales.
Evaluar el uso de normas de bioseguridad por parte de los estudiantes que
utilizan impresiones dentales de alginato provenientes de la cavidad bucal
de los pacientes que asisten a la Unidad de Atención Odontológica para fines
protésicos.
Elaborar una guía práctica de desinfección de las impresiones dentales de
alginato que prevenga la contaminación cruzada.
V. IDEA A DEFENDER
Mediante el conocimiento de los microorganismos presentes en una impresión
dental y la aplicación de normas de bioseguridad para la limpieza y desinfección
de las mimas por parte de los estudiantes de Odontología, se contribuye a evitar
considerablemente la contaminación bacteriana e infección cruzada entre
pacientes, personal de salud y laboratorista, manteniendo a su vez las
condiciones ideales de dicha impresión en cuanto a la estabilidad dimensional
y buena reproducción de detalles,
VI. VARIABLES DE INVESTIGACIÓN
6.1 Variable dependiente: la contaminación bacteriana e infección cruzada
entre pacientes, profesional Odontólogo y laboratorista dental.
6.2 Variable Independiente: Análisis de microorganismos presentes a través
de cultivo en las superficies del material de impresión.
VII. METODOLOGÍA A EMPLEAR
7.1 Paradigma o modalidad investigativa
Este tema de investigación según su modalidad investigativa es “cuali –
cuantitativa.”
111
Cualitativa: se puede evaluar el tipo de microorganismos presentes en
las impresiones dentales de alginato.
Cuantitativa: se puede identificar las colonias de microorganismos
existentes en las superficies de alginato.
7.2 Tipo del diseño de Investigación
Experimental: porque se pretende determinar los microorganismos
presentes en el material de impresión expuesto a la cavidad bucal y la
aplicación de medidas frente a la exposición a las mismas.
Comparativo: ya que se asocia el conocimiento de los microorganismos
presentes y el uso de desinfectantes adecuados para la eliminación de
los mismos manteniendo las condiciones ideales del material de
impresión.
Transversal: debido a que va a recolectar datos, describir variables y
analizar el beneficio que brinda la aplicación de normas de bioseguridad
y medidas preventivas para infecciones cruzadas.
7.3 Tipo de Investigación por su alcance
Descriptiva: se analiza los microorganismos presentes, las normas de
bioseguridad y su aplicación en impresiones dentales de alginato y los
beneficios de las mismas para reducir infecciones cruzadas.
Explicativa: se puede analizar y explicar la presencia de infecciones
cruzadas al no realizar una adecuada limpieza y desinfección de
impresiones dentales con alginato.
7.4 Métodos, técnicas e Instrumentos de Investigación
7.4.1 Métodos del Nivel Teórico del Conocimiento
Histórico – Lógico: es aquel que permitirá conocer el objeto desde su
proceso de desarrollo, es decir desde su aparición, entender las causas
de las enfermedades infecciosas frecuentes en la práctica odontológica
transmitidas por las impresiones dentales.
Analítico – Sintético: porque realiza una investigación a fondo sobre la
eficacia de la limpieza y desinfección de impresiones dentales con fines
protésicos, para la eliminación de una variedad de microorganismos
presentes en dicho material de impresión, causantes de enfermedades
infecciosas importantes.
112
Inductivo – Deductivo: permite establecer las posiciones de carácter
general sobre los beneficios de realizar la limpieza y desinfección de las
impresiones dentales para disminuir el riesgo de contaminación cruzada
entre pacientes y personal de salud.
7.4.2 Métodos del Nivel Empírico del Conocimiento
Análisis – Documental: se puede reunir, interpretar y reportar los datos
de laboratorio de una forma clara y concisa.
Observación Científica: por medio de una guía de observación se
recopilará información sobre la eficacia de la aplicación de las normas
de bioseguridad en cuanto a la desinfección de impresiones dentales.
7.4.3 Técnicas
Encuesta: dirigida a los estudiantes que realizan prácticas en la Unidad
de Atención Odontológica Uniandes para obtener datos de los distintos
aspectos de la investigación.
Entrevistas: dirigidas a los tutores que atienden en la Unidad de
Atención Odontológica Uniandes.
7.4.4 Instrumentos de Investigación
Cuestionario: debe contener preguntas respecto a una o más variables,
lo mismo que va a permitir evaluar el grado de conocimiento y opinión
sobre este tema a los estudiantes encuestados.
Historia Clínica: es un documento médico legal el cual recoge
información completa acerca del estado de salud general del paciente y
posibles infecciones transmisibles que padezca el paciente.
Guía de entrevista: contará de preguntas orientadas a obtener datos
que serán de interés, los cuales servirán como guía para la investigación.
Guía de observación: a través de la observación directa de los cultivos
realizados se obtendrá información acerca de las colonias bacterianas
presentes en impresiones de alginato y el resultado luego de la
desinfección de las mismas.
Exámenes de Laboratorio: para determinar los distintos tipos de
microorganismos presentes en el material de impresión y seleccionar un
adecuado desinfectante para las mismas.
113
VIII. DESCRIPCIÓN DE LA ESTRUCTURA
La tesis se encuentra conformada por introducción en la que se presentará el
problema, su situación, el planteamiento y delimitación del problema, la idea a
defender, así como una breve explicación de la metodología investigativa y los
elementos de novedad, aporte teórico y significación práctica.
El trabajo investigativo contendrá tres capítulos.
En el primer capítulo, se presenta el marco teórico de la investigación donde se
detallará todo acerca de los microorganismos presentes en impresiones
dentales y las enfermedades que pueden causar así como normas de
bioseguridad para evitar contaminaciones cruzadas.
En el segundo capítulo se describe toda la metodología empleada como
investigación cualitativa – cuantitativa, también se expondrán los resultados de
los instrumentos aplicados.
En el tercer capítulo se presenta la propuesta que consiste en la aplicación de
normas de bioseguridad adecuadas para evitar la contaminación cruzada entre
pacientes, profesional de salud y laboratorista dental así como el mantenimiento
de las condiciones ideales de dicho material.
Así también las conclusiones y recomendaciones que recopilarán la síntesis del
trabajo.
IX. APORTE TEÓRICO, SIGNIFICACIÓN PRÁCTICA Y NOVEDAD
CIENTÍFICA
Aporte Teórico
El aporte teórico es de suma importancia, ya que mediante esta investigación
se brindará un aporte a los profesionales y sobre todo a los estudiantes de
Odontología acerca del conocimiento de los microorganismos frecuentes en las
impresiones dentales de alginato y la aplicación de normas de bioseguridad y
de medidas preventivas sobre las mismas en la Unidad de Atención
Odontológica para evitar contaminaciones cruzadas.
114
Significación práctica
Esta investigación va encaminada a evaluar las medidas preventivas tomadas
por los estudiantes en la Unidad de Atención Odontológica con las respectivas
impresiones dentales y a la selección de desinfectantes adecuados que
mantengan las propiedades físicas de dichos materiales, previo al envío de las
mismas al laboratorio, esto va a permitir evaluar el beneficio y la eficacia en
cuanto a la disminución a la exposición bacteriana.
Novedad Científica
Esta investigación es de mucho interés ya que aportará con información
importante acerca de las especies bacterianas que se transmiten por medio de
los materiales de impresión expuestos a fluidos corporales como sangre y
saliva, así como las enfermedades que ellos pueden causar, además promoverá
el conocimiento de este tema por parte de los estudiantes y profesionales
Odontólogos para que así consideren la importancia de realizar una adecuada
limpieza y desinfección de las impresiones como un importante procedimiento
en la prevención de infecciones cruzadas.
115
X. BIBLIOGRAFÍA
1. BARCELO, Federico; PALMA, Jorge Mario. (2008), Materiales Dentales:
Conocimientos básicos Aplicados, Editorial Trillas, 3era Edición, México.
2. BURNETT, G; SCHERP, H; SCHSTER, G. (2005), Manual de microbiología
y enfermedades infecciosas de la boca, Editorial Limusa, Primera edición,
México.
3. CANUT, Juan. Higiene en el ejercicio Odontológico. Revista de actualidad
Estomatológica Española, Año 2011, Nov, N.- 148 pág 33-36.
4. COVA, José Luis. (2004), Biomateriales Dentales, Editorial Amolca, 1era
Edición, Colombia.
5. FAVI, M; JIMÉNEZ, M; MARTÍNEZ, C; OLIVARES, B; RAMÍREZ, V; &
SCAPPATICCIO, A. (2013). Guía de Bioseguridad para Laboratorios
Clínicos, Editorial Amolca, 2da Edición, Colombia.
6. GONZÁLEZ, Marco Antonio. (2008), Código Ecuatoriano de Bioseguridad y
Normativo de Aplicación, Grupo Editorial Gráficas Amaranta, Ecuador,
(páginas 29-40/111-119).
7. GUZMÁN, Humberto. (2006), Biomateriales Odontológicos de uso clínico,
Ecoe Ediciones, 4ta Edición, Colombia.
8. GUZMAN, Humberto. (2013), Biomateriales Odontológicos de uso clínico,
Ecoe Ediciones, 5ta Edición, Bogotá.
9. GONZÁLEZ, M. (2008). Código Ecuatoriano de Bioseguridad y Normativo de
Aplicación. Cuenca, Ecuador.
10. HERNÁNDEZ, L; PÉREZ, G; MESA, D. (2014). Normas de Bioseguridad en
la consulta y el laboratorio de prótesis, Revista Cubana de Tecnología de ña
salud, 1-10.
11. IBSEN, Olga; PHELAN, Joan. (2014), Patología Oral para el Higienista
Dental, Editorial Elsevier, 6ta Edición, España.
12. MARSH, Philip; MARTIN, Michael. (2011), Microbiología Oral, Editorial
Amolca, 5ta Edición, Gran Bretaña.
13. Ministerio de Salud Pública del Ecuador. (2014), Protocolos Odontológicos:
Salud Bucal, Edición: Dirección Nacional de Normalización MSP.
116
14. NEGRONI, Marta. (2009), Microbiología Estomatológica: fundamentos y
guía práctica, Editorial Médica Panamericana, 2da Edición, Panamá,
(páginas 507 – 512).
15. UNIANDES. (2012), Manual de Investigación, Calero.
117
XI. LINKOGRAFÍA
http://es.slideshare.net/MiltonGordon/perfil-detesis-de-grado
http://www.actaodontologica.com/ediciones/2012/1/art5.asp
https://es.wikipedia.org/wiki/Alginato
https://prezi.com/-htaurwa5od9/desinfeccion-de-impresiones-dentales/
https://www.uv.mx/rm/num_anteriores/revmedica_vol14_num1/articulos/p
revalencia.pdf
http://www.protesisdentaljc.com/IMPRESIONES.php
http://www.actaodontologica.com/ediciones/2003/3/control_infecciones_l
aboratorio_odontologico.asp
http://www.actaodontologica.com/ediciones/2007/1/agentes_quimicos_de
sinfeccion.asp
http://www.odontologia-online.com/publicaciones/medicina-
estomatologica/78-analisis-de-las-incidencias-biologicas-en-las-
instalaciones-estomatologicas-revision-bibliografica.html
http://www.cdc.gov/tb/esp/publications/pamphlets/TB-HIVSpan.PDF
http://www.academia.edu/7047669/6_8_CIENCIA
http://www.actaodontologica.com/ediciones/2003/3/control_infecciones_l
aboratorio_odontologico.asp
http://es.sildeshare.net/evaluacion26/gua-de-observacin-13905932
http://metodologia02.blogspot.com/p/metodos-de-la-investigacion.html
http://www.dentsply.es/Noticias/clinica3007.htm
118
Anexo 2
CARTA DE APROBACIÓN DEL TEMA DE TESIS
119
Anexo 3
SOLICITUD DE INFORME DE ACTIVIDADES DE LA UNIDAD DE ATENCIÓN
ODONTOLÓGICA UNIANDES
120
Anexo 4
SOLICITUD DE INGRESO A LA UNIDAD DE ATENCIÓN ODONTOLÓGICA
UNIANDES
121
Anexo 5
SOLICITUD DE INGRESO A LA UNIDAD DE ATENCIÓN ODONTOLÓGICA
UNIANDES
122
Anexo 6
SOLICITUD DE REVISIÓN DE PROYECTO DE INVESTIGACIÓN
123
Anexo 7
ENCUESTA PARA ESTUDIANTES
UNIVERSIDAD REGIONAL AUTÓNOMA DE LOS ANDES “UNIANDES”
FACULTAD DE CIENCIAS MÉDICAS.
CARRERA DE ODONTOLOGÍA.
La presente encuesta realizada a los estudiantes de la Carrera de Odontología
de la Universidad Regional Autónoma de los Andes” UNIANDES” tiene como
objetivo investigar si los encuestados conocen acerca de la
“IDENTIFICACIÓN DE MICROORGANISMOS PRESENTES EN IMPRESIONES
DE ALGINATO EN PACIENTES QUE ASISTEN A LA UNIDAD DE ATENCIÓN
ODONTOLÓGICA UNIANDES.”
INSTRUCCIONES: marca con una X la respuesta que crea conveniente, la
veracidad de las respuestas validará este trabajo investigativo.
1. ¿Usted cree que en las impresiones dentales de alginato existe
contaminación bacteriana?
Si………. No……….
2. ¿Conoce usted cuales son los microorganismos presentes en las
impresiones dentales de alginato?
Si………. No……….
3. ¿Cree usted que se deberían desinfectar las impresiones dentales de
alginato en la Unidad de Atención Odontológica Uniandes?
Si………. No……….
4. ¿Realiza usted la desinfección de impresiones dentales de alginato en su
práctica clínica?
Si………. No……….
5. ¿Qué desinfectante utiliza usted para realizar este proceso de
desinfección de impresiones dentales de alginato?
……………………………………………………………………………………………
……………………………………………………………………………………………
124
……………………………………………………………………………………………
……………………………………………………………………………………………
……………………………………………………………………………………………
………………………………………………………………………………………
6. ¿Conoce usted sobre las consecuencias al no desinfectar las impresiones
dentales de alginato?
Si………. No……….
7. ¿Conoce usted algún desinfectante adecuado para realizar dicho
procedimiento de desinfección?
Si………. No……….
8. ¿Usted conoce sobre alguna alteración que se puede producir en el
material de impresión debido al uso del desinfectante?
Si………. No……….
9. ¿Usted sabe qué tipo de enfermedades se pueden transmitir por una
impresión dental no desinfectada?
Si………. No……….
¿Cuáles?………………………………………………………………………………
………………………………………..…………………………………………………
……………………………………………………………………………………………
……………………………………………………………………………………………
……………………………………………………………………………………………
………………………………………………………………………………………
125
Anexo 8
ENTREVISTA PARA DOCENTES
UNIVERSIDAD REGIONAL AUTÓNOMA DE LOS ANDES. “UNIANDES”
FACULTAD DE CIENCIAS MÉDICAS.
CARRERA DE ODONTOLOGÍA.
Entrevista dirigida a Odontólogos Generales y Especialistas.
Estimado/a Doctor/a: La Universidad Regional Autónoma de los Andes
“UNIANDES”, está llevando a cabo un trabajo de investigación basada en la
“IDENTIFICACIÓN DE MICROORGANISMOS PRESENTES EN IMPRESIONES
DENTALES DE ALGINATO EN PACIENTES QUE ASISTEN A LA UNIDAD DE
ATENCIÓN ODONTOLÓGICA UNIANDES”, para el progreso de la investigación
se requiere de su contribución por ende le pedimos responda con la mayor
honestidad a las preguntas que se formulan a continuación.
1. ¿Cree usted que es importante la desinfección de las impresiones
dentales de alginato?
Si………. No……….
2. ¿Conoce usted algún método de desinfección de impresiones dentales de
alginato?
Si………. No……….
¿Cuál?………………………………………………………………………………………
………………………………………………………………………………………………
………………………………………………………………………………………………
…..……………………………………………………………………………………………
………………………………………………………………………………………………
………………………………………………………………………………………..
3. ¿Usted realiza la desinfección de impresiones dentales de alginato en su
Consultorio Dental?
Si………. No……….
4. ¿Ha realizado usted este proceso de desinfección dentro de su formación
profesional?
Si………. No……….
5. En su práctica clínica ¿Usted ha tenido alguna mala experiencia debido a
la falta de desinfección de impresiones dentales de alginato?
126
Si.......... No……….
¿Cuál?.......................................................................................................................
...................................................................................................................................
...................................................................................................................................
...................................................................................................................................
......................................................
6. ¿Usted cree que es de gran utilidad la realización de esta investigación?
Si………. No……….
7. ¿Cuál cree que es la causa principal para que se produzcan
contaminaciones cruzadas por impresiones dentales?
………………………………………………………………………………………………
………………………………………………………………………………………………
………………………………………………………………………………………………
………………………………………………………………………………………………
……............................................................................................................................
...............................................................
8. ¿Usted sabe qué tipo de enfermedades se pueden transmitir por una
impresión dental no desinfectada?
Si………. No……….
¿Cuáles?...................................................................................................................
...................................................................................................................................
...................................................................................................................................
...................................................................................................................................
.......................................................
127
Anexo 9
FOTOGRAFÍAS
Desinfección de la Unidad Dental
Colocación de campos esteriles
128
Colocación de los materiales en la mesa de trabajo
Prueba de cubetas en la boca del paciente
129
Toma de Impresiones Dentales
130
Obtención y lavado de impresiones dentales
131
132
Toma de muestras en medios de Transporte Stuart
133
134
Desinfección de impresiones dentales con Digluconato de Clorhexidina al
2%.
Desinfección de impresiones dentales con Hipoclorito de Sodio al 2.5%+
135
Desinfección de impresiones dentales con Glutaraldehído al 2%
136
Posteriormente se procedió a lavar cada una de las impresiones y a tomar
muestras de las impresiones desinfetadas como se lo hizo anteriormente, en
medios de transporte Stuart.
137
Se llevaron las muestras al laboratorio y se realizó la siembra de las muestras
en tubos de ensayo en un medio de enriquecimiento de Tioglicolato, se
colocó cada tubo en la estufa de crecimiento.
138
139
Se colocaron los tubos de ensayo en una estufa de crecimiento durante 24
horas
A las 24 horas se realizó una resiembra de las muestras en medios de cultivo
de tipo Agar Sangre y Cled
140
Se colocaron los tubos de ensayo en una estufa de crecimiento durante 24
horas
A las 24 horas se realizó una resiembra de las muestras en medios de cultivo
de tipo Agar Sangre y Cled
141
142
Se colocó en una estufa de crecimiento durante 24 horas
143
Transcurrido ese tipo se procedió a observar e identificar las colonias
bacterianas que han proliferado tanto en muestras infectadas como en
muestras desinfectadas.
Análisis de muestras desinfectadas
144
145
Análisis de muestras con contaminación
146
147
148
Encuestas a los estudiantes
Entrevistas a los profesionales
149
Difusión de trípticos
150
Colocación de una pancarta con información de la Guía de Bioseguridad en
la U.A.O.
151
Anexo 10
RESULTADOS DE LOS ANÁLISIS MICROBIOLÓGICOS
152
153
154
155
156
Anexo 11
TRÍPTICO
157
158
Anexo 12
SOLICITUD PARA COLOCACION DE PANCARTA CON LA GUIA DE
BIOSEGURIDAD EN LA U.A.O.