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UNIVERSIDAD DE CUENCA

NARCISA ASTUDILLO SEGOVIA NARCISA FERNÁNDEZ FÁREZ DIANA GUNCAY RIOS 1

RESUMEN

Se procedió a analizar muestras de sangre, orina y heces de 250

estudiantes secundarios pertenecientes al Colegio Técnico Nacional

República de Israel, Sección Vespertina , el mismo que forma parte del Área

de Salud No. 2 de la ciudad de Cuenca, los exámenes realizados son

hemograma, glucosa, ASTO, citoquímico y bacteriológico de orina y

coproparasitario.

Los exámenes se realizaron en el Laboratorio Clínico del Hospital Vicente

Corral Moscoso, para el hemograma se utilizó el contador hematológico

SISTEMA CELL-DYN 3700; para determinar la glucosa y el ASTO el equipo

SYNCHRON ® y Sistemas LX®, Sistemas UniCel® DxC 600/800; los

exámenes de orina y heces fueron analizados en las respectivas áreas

destinadas para su procesamiento; los resultados fueron los siguientes:

Recuento de glóbulos blancos 7211,4 ± 106,9 x mm3*; Neutrófilos 53,6 ±

0,6%; Linfocitos 35,8 ± 0,6%; Eosinófilos 2,8 ± 0,2%; Monocitos 6,6 ± 0,1%;

Basófilos 0,8 ± 0%; Recuento de glóbulos rojos 5115,1 ± 20,7 x 103 x mm3;

Hematocrito 44,1± 0,2%; Hemoglobina 14,6 ± 0,1 gr/100 ml.; Plaquetas

309731,2 ± 3985,4 x mm3; Glucosa 84,6 ± 0,8 mg/100 ml.; ASTO 180,9 ±

11,4 UI/ml. En el examen de orina el mayor porcentaje corresponde a

valores normales en todos los parámetros estudiados. En el examen

coproparasitario el 30,4% de las muestras en estudio presentaron

parasitosis, encontrándose el 22,8% de ameba histolítica.

DeCS: TÉCNICAS Y PROCEDIMIENTOS DE LABORATORIO -

ESTADÍSTICA Y DATOS NUMÉRICOS; ESTADO DE SALUD; NIÑO;

ADOLESCENTE; ESTUDIANTES; CUENCA-ECUADOR.



SUMMARY

We proceeded to analyze blood samples, urine and feces of 250 high school

students belonging to the National Technical College Republic of Israel,

Section afternoon, the same part of the Health Area No. 2 in the city of

Cuenca, blood count tests are performed, glucose, ASTO, cytochemical and

bacteriological urine and coproparasitario.

Tests were conducted in the Clinical Laboratory of Hospital Vicente Corral

Moscoso, for the CBC count was used CELL-DYN hematology 3700; to

determine glucose and ASTO team and SYNCHRON ® LX ® Systems,

Systems UniCel ® DxC 600 / 800; the feces and urine tests were analyzed in

the respective areas used for processing the results were as follows:

WBC 7211.4 ± 106.9 x mm3; Neutrophils 53.6 ± 0.6%; lymphocytes 35.8 ±

0.6%; Eosinophils 2.8 ± 0, 2%; monocytes 6.6 ± 0.1%; Basophils 0.8 ± 0%;

red blood cell count 5115,1 ± 20,7 x 103 x mm3; hematocrit 44.1 ± 0.2%;

hemoglobin 14.6 ± 0.1 g/100 ml.; Platelets 309,731.2 ± 3985.4 x mm3;

glucose 84.6 ± 0.8 mg/100 ml.; ASTO 180.9 ± 11,4UI/ml. In the urine test the

highest percentage corresponds to normal values in all parameters studied.

The review coproparasitario 30,4% of the samples in the study had

parasitosis, being 22,8% of amoeba histolytica.

DeCS: TECHNIQUES AND PROCEDURES OF LABORATORY -

STATISTICAL AND NUMERIC DATA; HEALTH STATE; BOY;

ADOLESCENT; STUDENTS; CUENCA-ECUADOR.



ÍNDICE GENERAL

RESUMEN ....................................................................................................... 1

SUMMARY ...................................................................................................... 2

CAPÍTULO I ........................................ ........................................................... 11

1.1 INTRODUCCIÓN. ................................................................................ 11

1.2 PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA. ................................................ 12

1.3 JUSTIFICACIÓN. ................................................................................ 16

CAPÍTULO II ....................................... ........................................................... 17

2. FUNDAMENTO TEÓRICO. .................................................................... 17

2.1 GENERALIDADES. .............................................................................. 17

2.1.1 SANGRE. .......................................................................................... 17

2.2 EL HEMOGRAMA. .............................................................................. 18

2.2.1 FORMACIÓN DE LAS CÉLULAS SANGUÍNEAS. .......................... 19

2.2.2 HEMOGLOBINA. (Hb.) .................................................................... 23

2.2.3 HEMATOCRITO. (HTO.) .................................................................. 24

2.2.4 SERIE BLANCA. ............................................................................... 24

2.2.5 SERIE PLAQUETARIA. .................................................................... 29

2.3 GLUCOSA. .......................................................................................... 30

2.4 ASTO (ASLO). .................................................................................... 33

2.5 UROANÁLISIS. ................................................................................... 34

2.6 COPROPARASITARIO. ...................................................................... 42

CAPÍTULO III ...................................... ........................................................... 45

3. OBJETIVOS. .......................................................................................... 45

3.1 OBJETIVO GENERAL. ........................................................................ 45

3.2 OBJETIVOS ESPECÍFICOS. ............................................................... 45



CAPÍTULO IV ....................................... ......................................................... 46

4. METODOLOGÍA. .................................................................................... 46

4.1 TIPO DE ESTUDIO. ............................................................................ 46

4.2 UNIVERSO. .......................................................................................... 46

4.3 MUESTRA. .......................................................................................... 46

4.4 CRITERIOS DE INCLUSIÓN. ............................................................ 47

4.5 CRITERIOS DE EXCLUSIÓN. .......................................................... 47

4.6 MÉTODOS, TÉCNICAS E INSTRUMENTOS. ................................... 47

4.7 CONTROL DE CALIDAD. .................................................................... 69

4.8 PLAN DE ANÁLISIS DE LA INVESTIGACIÓN. .................................. 74

CAPÍTULO V ........................................ ......................................................... 75

5. RESULTADOS Y ANÁLISIS DE LA INFORMACIÓN. ........................... 75

CAPÍTULO VI ....................................... ....................................................... 172

6.1 DISCUSIÓN. ....................................................................................... 172

6.2 CONCLUSIONES. .............................................................................. 176

6.3 RECOMENDACIONES. ..................................................................... 178

CAPÍTULO VII ...................................... ....................................................... 179

7. BIBLIOGRAFÍA. ................................................................................... 183

ANEXOS ...................................................................................................... 189

ANEXO 1 CONSENTIMIENTO INFORMADO ......................................... 189

ANEXO 2 ASENTIMIENTO INFORMADO ............................................... 190

ANEXO 3 OPERACIONALIZACION DE VARIABLES ............................. 191

ANEXO 4 FORMULARIO ......................................................................... 195

ANEXO 5 HOJA DE REPORTE DE RESULTADOS ............................... 196

ANEXO 6 MAPA ÁREA DE SALUD N° 2 ................... ............................. 197

ANEXO 7 FOTOS..................................................................................... 198



UNIVERSIDAD DE CUENCA FACULTAD DE CIENCIAS MÉDICAS ESCUELA DE TECNOLOGÍA MÉDICA

“PRUEBAS BÁSICAS DE LABORATORIO CLÍNICO EN ESTUDIAN TES

SECUNDARIOS DEL COLEGIO NACIONAL TÉCNICO REPÚBLICA DE

ISRAEL, SECCIÓN VESPERTINA

DEL ÁREA DE INFLUENCIA DEL CENTRO DE SALUD NO. 2

DE LA CIUDAD DE CUENCA 2011”

TESIS PREVIA A LA OBTENCIÓN DEL

TÍTULO DE LICENCIATURA EN

LABORATORIO CLÍNICO.

AUTORAS: NARCISA ASTUDILLO SEGOVIA

NARCISA FERNÁNDEZ FÁREZ

DIANA GUNCAY RIOS

DIRECTORA: DRA. MARTHA TORRES MARTÍNEZ

ASESORES: DR. JOSÉ CABRERA VICUÑA

DR. HUGO CAÑAR LOJANO

CUENCA - ECUADOR

2010 - 2011



DEDICATORIA

A toda mi familia en especial a mamita

Carmen que ha estado junto a mí en mis

alegrías y angustias, a mi prima Mary y a

Cibe.

Narcisa Astudillo.



DEDICATORIA Con todo mi amor y cariño dedico esta tesis

a mis hijas, quienes son la inspiración para

seguir adelante día a día, de igual manera a

mis padres y hermanos que siempre me

brindan su apoyo incondicional,

permitiéndome cumplir las metas

propuestas.

Narcisa Fernández.



DEDICATORIA

Dedico este trabajo a mi esposo, porque

siempre he tenido su apoyo, cariño y

comprensión, a mis hijos porque son el

impulso para seguir superándome, a mi

mamá porque de alguna manera puedo

retribuir el esfuerzo y el trabajo que hizo por

sabernos mujeres de bien, gracias por estar

conmigo en todo momento.

Diana Guncay.



AGRADECIMIENTO

Nuestro sincero agradecimiento a la

Facultad de Medicina, Escuela de

Tecnología Médica por habernos brindado la

oportunidad de volver a sus aulas, a todos

los Maestros por los conocimientos

impartidos y a nuestros compañeros por la

amistad y apoyo brindado.

Un especial agradecimiento a la Dra. Martha

Torres Martínez, Directora de Tesis, al

Doctor José Cabrera Vicuña y Dr. Hugo

Cañar Lojano, Asesores de Tesis.

Las Autoras.



RESPONSABILIDAD

El trabajo de investigación y las opiniones aquí

vertidas son de exclusiva responsabilidad de las

autoras.

……………………………………….. Narcisa Astudillo Segovia.

……………………………………… Narcisa Fernández Fárez.

……………………………………… Diana Guncay Rios.



CAPÍTULO I

1.1 INTRODUCCIÓN.

La salud es un derecho fundamental de todo ser humano sin excepción de

ninguna clase y de situación en la que un individuo se encuentre, la

legislación ecuatoriana prevé este derecho “La salud es un derecho que

garantiza el Estado, cuya realización se vincula al ejercicio de otros

derechos, entre ellos el derecho al agua, la alimentación, la educación, la

cultura física, el trabajo, la seguridad social, los ambientes sanos y otros que

sustentan el buen vivir”. (1)

Por esta razón es importante que el Estado garantice el derecho a la salud

del adolescente mediante políticas económicas, sociales, culturales,

educativas, ambientales; y de esta manera educar al adolescente con

buenos hábitos que incluyen una alimentación nutritiva, actividad física que

le permitirá un desarrollo óptimo; y prevenir enfermedades futuras como: la

diabetes, la hipertensión arterial, algunos cánceres, enfermedades

cardiacas, osteoporosis, y derrames cerebrales.

La finalidad de esta investigación es conocer el estado de salud de nuestros

adolescentes, siendo esta, una etapa del ciclo de crecimiento que marca el

final de la niñez y el comienzo de la adultez, para algunos adolescentes es

un periodo de incertidumbre, es una etapa de inmadurez en busca de la

madurez. Los adolescentes tienen niveles altos de angustia que se

acompañan de sentimientos de soledad, extrañeza, irritabilidad, desánimo,

inseguridad y baja autoestima.

Es un grupo de población con unos indicadores de morbilidad y mortalidad

bajos si se comparan con otros sectores, pero ello no quiere decir que no

corran el riesgo de sufrir enfermedades y trastornos que afectan su

integridad física y mental. El ritmo de crecimiento y desarrollo que tiene lugar



en esta etapa requiere de una buena alimentación, la cual debe ser

adecuada a la edad y a la actividad realizada. También son necesarias

vitaminas y minerales que actúan como reguladoras de las funciones en el

organismo.

El presente trabajo forma parte de la línea de investigación que la Facultad

de Ciencias Médicas de la Universidad de Cuenca desarrolla en el área de

influencia del Centro de Salud No. 2 de nuestra ciudad, el mismo se realizó

en adolescentes comprendidos entre las edades de 12 a 17 años que fueron

considerados en forma aleatoria. El trabajo se centró en la ejecución de

exámenes de sangre (hemograma, glucosa, ASTO), orina (elemental y

microscópico) y de heces (coproparasitario) y fueron valorados su peso y

talla.

La investigación es observacional de tipo descriptivo, siendo el Universo de

estudio estudiantes secundarios del área de influencia No.2 de la ciudad de

Cuenca, que alcanza a 23.706 estudiantes; al ser el presente trabajo parte

de esta línea de investigación, la muestra la conformaron 250 estudiantes

del Colegio Nacional Técnico República de Israel, Sección Vespertina.

1.2 PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA.

La alteración en la salud durante el desarrollo de los adolescentes afecta la

prosperidad económica. Invertir en la salud y el desarrollo de la gente joven

no solo es correcto, sino también una decisión muy inteligente para países

que quieren que sus economías crezcan más rápidamente.

La adolescencia es una etapa crítica por sus implicaciones en la salud de la

persona a largo plazo, en su bienestar y en el de la sociedad en su conjunto,

según la organización mundial de la salud considera tanto los aspectos

físicos, sociales y psicológicos de la salud como su contribución colectiva al

bienestar de los demás.



Hoy en día los adolescentes han superado las infecciones de años

anteriores, gozando la mayoría de buena salud, pero el impacto de distintos

elementos de su entorno y las experiencias de riesgo a que se lanzan

pueden dar manifestaciones clínicas más adelante, los contextos sociales en

los que se mueven los adolescentes actuales cambian muy de prisa : los

cambios macro sociales, mezcla de culturas inmigración, cambios de

sistemas educativos y de salidas profesionales, introducción de nuevas

tecnologías cambios étnicos e ideológicos, sistemas de comunicación más

sofisticados todo esto marca la vida diaria de los adolescentes y tiene

muchas implicaciones en la salud física y psíquica de nuestros adolescentes

en su camino hacia la independencia, ellos toman decisiones y adquieren

hábitos que tendrán consecuencia sobre su salud futura, presentan cada día

problemas de anorexia, obesidad sedentarismo, y en muchos países de

este planeta ha aumentado en pocos años los suicidios , homicidios,

enfermedades de transmisión sexual accidentes de tráfico y de una forma

más general las enfermedades mentales.

La diabetes mellitus tipo I se desarrolla principalmente en los menores de 15

años, enfermedad que produce un gran impacto a nivel individual, familiar y

social. Por ser una enfermedad crónica e incurable, requiere de tratamiento

durante toda la vida, exige atención tanto del niño y adolescente.

En la etapa de la adolescencia hay mucho riesgo de adquirir anemia por

deficiencia de hierro. Durante este período los adolescentes necesitan hierro

para el crecimiento y desarrollo de los tejidos de su cuerpo, en esta etapa

tiene lugar la menstruación en las niñas, y el volumen sanguíneo aumenta

para compensar las pérdidas por la menstruación. La alimentación es un

requisito básico para mantener la salud en el adolescente y evitar las

anemias por deficiencias de hierro.

Las infecciones estreptocócicas son padecimientos inflamatorios que

aparecen frecuentemente en niños y adolescentes, la incidencia de fiebre



reumática especialmente en países subdesarrollados llega a ser un

problema de salud pública, ya que es la causa más común en cardiopatías

en personas entre los 5 y 30 años de edad, siendo una de las principales

causas de muerte según las estadísticas.

Según registros de la Dirección de Salud son frecuentes en este grupo de

personas las enfermedades gastrointestinales y parasitarias y se

encuentran entre las principales causas de morbilidad en diversas regiones,

se presentan frecuentemente con síntomas no específicos y altas tasas de

prevalencia. Las ascaridiosis, tricocefalosis, giardiasis y amebiasis se

encuentran entre las diez infecciones más comunes observadas en el

mundo, “en América latina más del 40% alberga un parásito intestinal o

más,” (2) en general tienen baja mortalidad, pero igualmente ocasionan

importantes problemas sanitarios y sociales debido a su sintomatología y

complicaciones, la parasitosis principalmente produce efectos negativos en

el aprendizaje y en el desarrollo pondoestatural.

El peso y la talla son mediciones fáciles de obtener para evaluar el estado

nutricional de las personas, comparando las variables entre sí se puede

obtener no solo un diagnóstico de la situación actual, sino de la historia de la

nutrición de los adolescentes, es importante estar alerta a la presencia de

hábitos alimentarios anárquicos y a detectar conductas que orienten a

trastornos del apetito.

Es importante consignar antecedentes socioeconómicos y culturales, por su

relación con la disponibilidad de alimentos o con patrones dietéticos

específicos.

En el gobierno actual se promueve la igualdad de los adolescentes teniendo

en cuenta la perspectiva de género y el concepto de equidad, incluyendo en

el concepto de salud los aspectos biológicos, psicológicos y socioculturales,

dentro de un contexto familiar y comunitario, favoreciendo servicios y



prestaciones de salud adecuados a los requerimientos de los adolescentes

desde un abordaje interdisciplinario, a fin de lograr la SALUD INTEGRAL del

adolescente mediante la prevención de riesgos y daños, promoviendo

hábitos saludables y todas las formas de atención.

En la población azuaya hay un gran porcentaje de adolescentes y jóvenes,

por tanto su salud es clave para el progreso social, económico y político de

la Región.

Los esfuerzos que un gobierno realice no son suficientes para cubrir las

necesidades de una población en términos de salud, pese a existir leyes que

aseguran que la población reciba la atención necesaria para vivir de forma

saludable; sin embrago no llega a todos los sectores y grupos sociales,

principalmente a los que viven en extrema pobreza.”La salud es hoy en día

un derecho fundamental, uno de los más claros síntomas de calidad de vida

de la población”. (3)

El presente estudio es importante para la valoración del estado de salud de

los estudiantes secundarios del área de influencia del Centro de Salud No. 2

de la ciudad de Cuenca en base al análisis de pruebas de laboratorio clínico

relacionados con: hemograma, glucosa, ASTO, elemental y microscópico de

orina y coproparasitario, ya que existen enfermedades infectocontagiosas en

nuestro medio que amerita una investigación rigurosa aplicando el método

científico.

Se procedió a investigar a un grupo poblacional de medianos y bajos

recursos económicos, que habitan barrios urbanos y rurales del área de

influencia del Centro de Salud No. 2 de la ciudad de Cuenca, que disponen

de todos los servicios básicos, es decir, de infraestructura sanitaria, energía

eléctrica, agua potable y una adecuada eliminación de desechos orgánicos e

inorgánicos.



El trabajo de investigación contribuirá a disminuir la prevalencia de las

enfermedades especialmente infectocontagiosas en este grupo etario.

1.3 JUSTIFICACIÓN.

El presente trabajo se justifica porque se realizaron de forma preventiva

exámenes de sangre, orina y heces a estudiantes secundarios, resultados

que ayudaron a los médicos de cada institución a diagnosticar de forma

temprana enfermedades presentes en los adolescentes que participaron en

esta investigación.

La población que participó fue beneficiada, porque los estudios realizados no

tuvieron costo alguno y los resultados fueron entregados en forma oportuna

por los investigadores.

Con los resultados obtenidos se pudo valorar el estado de salud de los

estudiantes y determinar las condiciones de vida de los adolescentes de

nuestro medio.

Con esta línea de investigación la Universidad de Cuenca, y particularmente

la Facultad de Ciencias Médicas a través de la Escuela de Tecnología

Médica demostró su compromiso con la sociedad aportando este programa

de prevención.

Contribuyó con la prevención de la salud de los estudiantes secundarios del

área de influencia No.2 de la Ciudad de Cuenca, lo que permitirá mejorar su

calidad de vida.



CAPÍTULO II

2. FUNDAMENTO TEÓRICO.

2.1 GENERALIDADES.

2.1.1 SANGRE.

“La sangre es un tejido líquido que circula permanentemente por el sistema

vascular, formado por vasos sanguíneos de diversos calibres y se encuentra

en contacto con las células del organismo; se compone esencialmente de

plasma, un componente líquido donde se encuentran suspendidas las

células siendo estas de tres tipos muy diferentes desde el punto de vista

funcional, estructural, y morfológico.

Células: constituyen el 50% del volumen sanguíneo y se encuentran en

continuo recambio o renovación, originándose todas en la célula madre

pluripotente presente en la médula ósea, y cuando estas envejecen se

eliminan de la circulación por los macrófagos del sistema mononuclear

fagocítico presente en la médula ósea, también en bazo e hígado.

Plasma: Constituye aproximadamente 50% del volumen de la sangre,

formado por un 90% de agua donde se encuentran disueltas sustancias

nutritivas de recambio metabólico o desecho celular, también contribuye a la

regulación de pH y transporte de gases sanguíneos”.(4)

Su función principal es la logística de distribución e integración sistémica,

cuya contención en los vasos sanguíneos (espacio vascular) admite su

distribución (circulación sanguínea) hacia casi todo el cuerpo.

La sangre representa aproximadamente el 7% del peso de un cuerpo

humano promedio. Así, se considera que un adulto tiene un volumen de



sangre (volemia) de aproximadamente cinco litros, de los cuales 2,7 a 3 litros

son plasma sanguíneo.

La sangre arterial y oxigenada es de un color rojo brillante, mientras que la

sangre venosa y parcialmente desoxigenada toma un color rojo obscuro y

opaco. Sin embargo, debido a un efecto óptico causado por la forma en que

la luz penetra a través de la piel, las venas se ven de un color azul.

2.2 EL HEMOGRAMA.

El hemograma es considerado el examen básico de los componentes

celulares sanguíneos, conocido también como perfil hematológico básico, o

hemograma estándar que informan sobre el estado general de las células de

la sangre, es uno de los exámenes que más solicitan en la actualidad los

médicos, ya que los orientan a cerca de patologías hematológicas o no

hematológicas como las inflamaciones y las infecciones ayuda a diagnosticar

problemas específicos de la sangre como la anemia y las leucemias;

permite monitorizar la pérdida de sangre y la respuesta de un paciente a la

terapia contra el cáncer, como la quimioterapia y la radioterapia, así su

utilidad clínica resulta invaluable.

Actualmente el hemograma o biometría hemática se realiza a través de

equipos automatizados, los cuales en corto tiempo proporcionan al médico

25 o más parámetros, contando con la observación del laboratorista clínico,

quien revisa al microscopio las posibles anormalidades de las diferentes

líneas celulares al enviar el equipo diferentes banderas de alarma.

El hemograma es un análisis de sangre en el que se mide en global y en

porcentajes los tres tipos básicos de células que contiene la sangre, las

denominadas tres series celulares sanguíneas:

� Serie eritrocitaria o serie roja

� Serie leucocitaria o serie blanca

� Serie plaquetaria



Cada una de estas series tiene unas funciones determinadas, y estas

funciones se verán perturbadas si existe alguna alteración en la cantidad o

características de las células que las componen.

2.2.1 FORMACIÓN DE LAS CÉLULAS SANGUÍNEAS.

La hematopoyesis o hemopoyesis es el proceso de formación, desarrollo y

maduración de los elementos formes de la sangre (eritrocitos, leucocitos y

plaquetas) a partir de un precursor celular común e indiferenciado conocido

como célula madre hematopoyética pluripotencial o stem cell. Las células

madre que en el adulto se encuentran en la médula ósea son las

responsables de formar todas las células y derivados celulares que circulan

en la sangre.

Las células sanguíneas son degradadas por el bazo y los macrófagos del

hígado, este último, también elimina las proteínas y otras sustancias del la

sangre.

SERIE ERITROCITARIA O SERIE ROJA.

Los eritrocitos también conocidos como hematíes o glóbulos rojos son

células sanguinas anucleadas responsables del transporte de oxígeno a

todos los tejidos del organismo, su principal componente es la hemoglobina,

tienen forma de disco bicóncavo con un diámetro comprendido entre 6.7 y

7.8 µm. aproximadamente, su membrana es flexible lo que permite a los

glóbulos rojos atravesar los más estrechos capilares; en las extensiones de

sangre aparecen de forma redonda u ovalada.

“Los glóbulos rojos están formados por agua (64%), y sustancias secas (36

%). De esas sustancias el 80 ó 90% es hemoglobina, contiene además

aminoácidos: arginina, usina, metionina, etc. La fracción lipídica incluye

colesterol y sus ésteres, glicéridos y fosfolípidos, entre los glúcidos tenemos



la glucosa, como sustancias inorgánicas cloruros, sulfatos y fosfatos sobre

todo de potasio”. (5)

FORMACIÓN DE GLÓBULOS ROJOS.

La eritropoyesis es el proceso que corresponde a la generación de los

glóbulos rojos (también conocidos como eritrocitos o hematíes). Este

proceso en los seres humanos ocurre en diferentes lugares dependiendo de

la edad de la persona.

Durante las primeras semanas de la vida intrauterina la eritropoyesis se da

en el saco vitelino. Posteriormente, en el segundo trimestre de gestación la

eritropoyesis se traslada al hígado y en la vida extrauterina, este proceso

ocurre en la médula ósea, principalmente de los huesos largos. Hacia los 20

años los huesos largos se llenan de grasa y la eritropoyesis se llevará a

cabo en huesos membranosos como las vértebras, el esternón, las costillas

y los ilíacos.

El proceso se inicia con una célula madre que genera una célula

diferenciada para producir eritrocitos que mediante diferentes mecanismos

enzimáticos llega a la formación de reticulocitos, los cuales tres días

después se transforman en hematíes maduros, la vida media de un eritrocito

es de 120 días.

En condiciones normales la serie eritroblástica importa entre un 30 y 35% de

los elementos nucleados de la médula ósea. La secuencia madurativa de

esta serie se inicia con el proeritroblasto, el cual da origen al eritroblasto

basófilo, éste al eritroblasto policromático y al eritroblasto ortocromático.

Los cambios morfológicos que se experimentan durante su maduración se

caracterizan por una notable disminución del tamaño nuclear de los

eritroblastos, con condensación progresiva de la cromatina y desaparición de



los nucleolos. El citoplasma evoluciona perdiendo la intensa basofilia propia

de los estadios más jóvenes, y adquiere la acidofilia típica que le proporciona

la hemoglobina en los estadios más maduros.

“Con la pérdida del núcleo el eritroblasto ortocromático se transforma en

reticulocito, elemento anucleado que todavía posee cierta capacidad de

síntesis de RNA, proteínas y hemoglobina, gracias a la persistencia de

algunas mitocondrias, ribosomas y restos de reticuloendoplasma. Su tamaño

es algo superior al del hematíe maduro (8-9 µm). A medida que el

reticulocito madura, va perdiendo el retículo granulofilamentoso hasta

transformarse en hematíe maduro, desprovisto del mismo. El reticulocito

permanece algunos días en la médula ósea, pasando luego a sangre

periférica, donde persiste 24 horas y finaliza su maduración; el tiempo que

tarda en madurar el proeritorblasto a reticulocito es de 3-4 días.

El recuento del número de reticulocitos en sangre periférica es un dato muy

útil para establecer el índice de efectividad global de la eritropoyesis y

determinar el origen central o periférico de una anemia, así como para

enjuiciar el carácter regenerativo o arregenerativo de los síndromes

anémicos”. (6)

Los valores normales de los reticulocitos en sangre periférica oscilan entre

35 y 75 x 109/l. Valores inferiores indican una eritropoyesis insuficiente. El

hematíe o eritrocito es el elemento más maduro de la eritropoyesis. Su

misión fundamental es la captación de oxígeno y su transporte a los tejidos,

los eritrocitos son elementos anucleados, de color rosado y de forma

redondeada u oval, con una depresión o zona más clara en el centro.

El hierro, imprescindible para la síntesis hemoglobínica es captado por los

eritroblastos a través de diversos mecanismos. Este metal se acumula en el

interior de los eritroblastos en forma de inclusiones constituidas por varias

moléculas de ferritina rodeadas de una membrana, que reciben el nombre de



siderosomas, localizados en el citoplasma de los eritroblastos y estos a su

vez que contienen moléculas de ferritina se denominan sideroblastos,

ópticamente los sideroblastos corresponden, por regla general, a

eritroblastos en estadios madurativos avanzados (eritroblastos

policromáticos u ortocromáticos); sin embargo, a nivel estructural se ha

comprobado que todos los eritroblastos, incluso los elementos más jóvenes

de la serie, pueden contener moléculas citoplasmáticas de ferritina, cuya

demostración ultraestructural es básica para la filiación eritroide de una

célula determinada.

FACTORES NECESARIOS PARA SU PRODUCCIÓN.

La vitamina B12 es un factor necesario para la síntesis y la multiplicación de

las células. Las células madre de la médula ósea deben multiplicarse muy

rápidamente para producir glóbulos rojos, la falta de vitamina B12 origina

anemia perniciosa. Para su absorción es necesario que se una a un factor

intrínseco, producido en la pared del estómago; una alteración en la pared

gástrica puede producir anemia perniciosa por falta de absorción de la

vitamina B12.

El ácido fólico también es necesario para la síntesis de glóbulos rojos, y su

falta en la dieta también puede producir anemia.

El hierro es necesario para la producción de hemoglobina; en todo el

organismo hay entre 4 y 5 gramos de hierro, la mayor parte se encuentra en

la hemoglobina.

En el hombre las necesidades de hierro son de 0.6 miligramos al día para

compensar la cantidad que se pierde por las heces.

En la mujer las necesidades de hierro son aproximadamente el doble que en

el hombre, debido a las pérdidas en la regla o menstruación.



FUNCIÓN DE LOS GLÓBULOS ROJOS.

El oxígeno que es necesario para producir energía en los diferentes tejidos,

entra en el cuerpo humano a través de los pulmones, atraviesa las

membranas de los alvéolos pulmonares y es captado por los glóbulos rojos

unido a la hemoglobina, luego es transportado por el sistema circulatorio a

los tejidos. El oxígeno se difunde a través de la pared de los capilares para

llegar a las células. Al mismo tiempo, el CO2 que producen las células es

recogido por la hemoglobina de los glóbulos rojos y es transportado a los

pulmones, en donde es expulsado.”El metabolismo del eritrocito está dirigido

a mantener el equilibrio osmótico, por la elevada concentración de proteína

intracelular representada por la Hb. y a mantener el hierro del grupo hemo

en estado reducido (Fe++) porque cuando el grupo hemo se oxida (Fe+++),

la Hb. pierde su capacidad para unir el oxígeno.” (7)

2.2.2 HEMOGLOBINA. (Hb.)

“La hemoglobina es una proteína globular, que está presente en altas

concentraciones en los glóbulos rojos y se encarga del transporte de O2 del

aparato respiratorio hacia los tejidos periféricos; y del transporte de CO2 y

protones (H+) de los tejidos periféricos hasta los pulmones para ser

excretados”.(8)

La hemoglobina es un pigmento de color rojo, que al interaccionar con el

oxígeno toma un color rojo escarlata, que es el color de la sangre arterial y al

perder el oxígeno toma un color rojo oscuro, que es el color característico de

la sangre venosa.

La estructura de la hemoglobina la forman cuatro cadenas polipeptídicas

(globinas) a cada una de las cuales se une un grupo hemo, cuyo átomo de

hierro es capaz de unir de forma reversible una molécula de oxígeno.



FUNCIONES.

Sus funciones más importantes son: Transportar O2 y CO2 eficazmente y

mantener la dinámica circulatoria. Cuando la hemoglobina tiene unido

oxígeno se denomina oxihemoglobina o hemoglobina oxigenada, dando el

aspecto rojo o escarlata intenso característico de la sangre arterial. Cuando

pierde el oxígeno, se denomina hemoglobina reducida, y presenta el color

rojo oscuro de la sangre venosa (se manifiesta clínicamente por cianosis).

También participa en la regulación ácido-básica, eliminando CO2 en los

pulmones y amortiguando los cambios de pH.

Su concentración depende de factores tales como la edad, el género, la

altura sobre el nivel del mar y el grado de hidratación de la persona.

2.2.3 HEMATOCRITO. (HTO.)

El hematocrito es el porcentaje ocupado por glóbulos rojos del volumen total

de la sangre cuya medición depende del número de glóbulos rojos y de su

tamaño.

Tras una centrifugación de la sangre total se pueden apreciar dos niveles,

uno con el depósito de los glóbulos rojos, principalmente, y otro nivel del

plasma total. La relación porcentual entre ambos es lo que describe el

hematocrito y describe el porcentaje de células transportadoras de oxígeno

con respecto al volumen total de sangre.

2.2.4 SERIE BLANCA.

La serie blanca está formada por los leucocitos o glóbulos blancos. Sus

funciones principales son la defensa del organismo ante las infecciones y la

reacción frente a sustancias extrañas.



GLÓBULOS BLANCOS.

Los glóbulos blancos, también llamados leucocitos son un conjunto

heterogéneo de células sanguíneas que son los efectores celulares de la

respuesta inmunitaria, así intervienen en la defensa del organismo contra

sustancias extrañas o agentes infecciosos (antígenos). Se originan en la

médula ósea y en el tejido linfático.

El número de leucocitos o glóbulos blancos es mucho más pequeño que el

de los eritrocitos, en el adulto normal hay sólo entre 4.500 y 10.000

leucocitos por mm3 de sangre. A diferencia de los eritrocitos, los leucocitos

no funcionan dentro de la sangre, sino que la emplean como medio para

viajar desde una región hacia otra. Cuando llegan a su destino dejan la

sangre mediante migración entre las células endoteliales de los vasos

sanguíneos, entran en los espacios de tejido conectivo y efectúan su

función.

Los leucocitos se clasifican en dos grupos: granulocitos, que poseen

gránulos específicos en el citoplasma, y agranulocitos, que carecen de

gránulos específicos. Tanto los granulocitos como los agranulocitos poseen

gránulos inespecíficos (azurofílicos), que según se ha demostrado son

lisosomas. Son tres los tipos de granulocitos: neutrófilos, eosinófilos y

basófilos y los agranulocitos son linfocitos y monocitos.

CARACTERÍSTICAS MORFOLÓGICAS Y COMPOSICIÓN QUÍMICA DE

LOS GLÓBULOS BLANCOS.

NEUTRÓFILOS.

Los leucocitos polimorfonucleares son los más numerosos, y constituyen 60

a 70% de la población total de leucocitos.



En los frotis de sangre los neutrófilos miden 9 a 12 µm. de diámetro y tienen

núcleo multilobulado. Los lóbulos, conectados entre sí por filamentos

delgados de cromatina, aumentan en número según la edad de la célula. En

las mujeres el núcleo manifiesta un apéndice pequeño característico, con

forma de “palillo de tambor”, que contiene al segundo cromosoma x inactivo

condensado. Se puede llamar también cuerpo de Barr o cromosoma sexual,

pero no es evidente en todas las células. Los neutrófilos son los primeros en

aparecer en una infección bacteriana aguda.

FUNCIONES DE LOS NEUTRÓFILOS.

Los neutrófilos entran en interacción con agentes quimiotácticos para

emigrar hacia los sitios invadidos por microorganismos. Una vez allí,

destruyen a los microorganismos por fagocitosis y descargan enzimas

hidrolíticas.

Al elaborar y descargar leucotrienos, los neutrófilos ayudan a iniciar el

proceso inflamatorio. Las bacterias mueren no sólo por la acción de las

enzimas, sino también por la formación de los compuestos reactivos de

oxígeno que están dentro de los fagosomas de los neutrófilos.

LINFOCITOS.

Los linfocitos constituyen el 20 a 25% de la población total, son células

redondas, son un poco más grandes que los eritrocitos, pues miden 8 a 10

µm. de diámetro, y tienen un núcleo redondo ligeramente indentado que

ocupa la mayor parte de la célula.

Se subclasifican en tres categorías funcionales, que son: linfocitos B,

linfocitos T y células nulas. Cerca del 80% de los linfocitos son T, cerca de

15% son células B y las restantes son células nulas, las células T pueden

vivir por años, en tanto que las células B mueren en unos cuantos meses.



Los linfocitos no tienen función alguna mientras se encuentran en el torrente

sanguíneo, pero en el tejido conectivo se encargan del funcionamiento

apropiado del sistema inmunológico. Una vez que se han vuelto

competentes dejan sus sitios respectivos de maduración, entran en el

sistema linfoide y experimentan mitosis, con lo que forman clonas de células

idénticas.

Las células nulas están compuestas por dos poblaciones definidas, las

células madres circulantes, que originan todos los elementos figurados de la

sangre y células NK (células asesinas naturales) pueden matar a ciertas

células extrañas y a otras alteradas por virus sin la influencia del timo o de

las células T.

EOSINÓFILOS.

Los eosinófilos constituyen menos del 4% de la población total de los

leucocitos, tienen 10 a 14 µm. de diámetro y poseen un núcleo bilobulado en

forma de salchicha en el cuál los dos lóbulos están conectados por una

banda delgada de cromatina, y que está encerrado en una envoltura nuclear.

Los eosinófilos presentan gránulos específicos y gránulos azurofílicos. Los

gránulos específicos son oblongos y se tiñen de color rosa intenso con las

tinciones de Giemsa y de Wright. Los gránulos azurofílicos son lisosomas y

contienen enzimas hidrolíticas parecidas a las de los neutrófilos. Estás

funcionan tanto en la destrucción de los gusanos parásitos como en la

hidrólisis de los complejos de antígeno-anticuerpo internalizados por los

eosinófilos.

BASÓFILOS .

Los basófilos constituyen menos del 1% de la población total de leucocitos,

son células redondeadas en suspensión, pero pueden ser pleomórficas



durante su migración. Los basófilos miden 8 a 10 µm de diámetro y poseen

un núcleo con forma de S que a menudo está oculto por los grandes

gránulos específicos que están en el citoplasma. Los basófilos poseen

diversos receptores de superficie sobre su plasmalema, entre ellos

receptores para la inmunoglobulina E.

Los gránulos específicos de los basófilos adoptan un color azul oscuro a

negro con las tinciones de Giemsa y de Wright. Miden aproximadamente 0.5

µm. de diámetro. Los gránulos contienen heparina, histamina, factor

quimiotáctico de los eosinófilos, factor quimiotáctico de los neutrófilos y

peroxidasa. Los gránulos azurofílicos son lisosomas que contienen enzimas

semejantes a la de los neutrófilos. Como reacción a la presencia de ciertos

antígenos en algunos individuos, las células plasmáticas elaboran y

descargan una clase particular de inmunoglobulina, la del tipo E.

MONOCITOS.

Los monocitos son las más grandes células sanguíneas circulantes, miden

12 a15 µm de diámetro en los frotis sanguíneos, y constituyen 3 a 8% de la

población total de leucocitos. Contienen el núcleo en forma de riñón grande y

acéntrico que a menudo tiene un aspecto de burbuja de jabón o de madera

apolillada. La red de cromatina es áspera pero no demasiado densa, y de

manera característica contiene dos nucléolos, aunque no siempre son

evidentes en el frotis. El citoplasma es de color gris azuloso y contiene

numerosos gránulos azurofílicos y espacios vacuoliformes ocasionales.

Los monocitos se quedan en circulación solo unos cuantos días, emigran a

continuación por el endotelio de las vénulas y los capilares hacia el tejido

conectivo, en el que se diferencian en macrófagos. Los macrófagos son

fagocitos ávidos y como miembros del sistema fagocítico mononuclear,

fagocitan y destruyen a las células muertas y moribundas (como lo eritrocitos



envejecidos), lo mismo que los antígenos y las partículas de materia extraña

(como bacterias).

2.2.5 SERIE PLAQUETARIA.

Está constituido por trombocitos o plaquetas, que intervienen en la

hemostasia primaria y en la coagulación.

PLAQUETAS.

“Las plaquetas, o trombocitos son fragmentos citoplasmáticos pequeños,

irregulares y carentes de núcleo, de 2-3 µm de diámetro, la vida media de

una plaqueta oscila entre 8 y 12 días. Las plaquetas juegan un papel

fundamental en la hemostasia y son una fuente natural de factores de

crecimiento. Estas circulan en la sangre de todos los mamíferos y están

involucradas en la hemostasia, iniciando la formación de coágulos o

trombos”. (9)

FORMACIÓN PLAQUETARIA.

“La trombopoyesis es el proceso mediante el cual se generan las plaquetas

que promueven la coagulación para impedir la pérdida de sangre en caso de

una lesión vascular.

Las plaquetas se originan por fragmentación de los megacariocitos de la

médula ósea. El proceso de trombopoyesis dura unos 7 días. Se inicia a

partir de una célula progenitora multipotencial común de las series eritroide,

mieloide y megacariocítica. De esta célula derivan las células progenitoras

comprometidas para megacariocitos. Tras una fase proliferativa, las células

progenitoras sufren una división nuclear sin división celular, dando lugar a un

megacarioblasto que es una célula gigante con un gran núcleo multilobulado

y una carga cromosómica poliploidea. Una vez conformado el proceso



madurativo la célula se transforma en promegacariocito y posteriormente en

megacariocito, que sufrirá un proceso en el cual empezará a duplicar su

ADN sin llegar a fragmentarse y a llenarse de organelas típicas de las

plaquetas. Posteriormente se fragmentará y originará estas plaquetas, que

abandonarán la médula ósea. Cada megacariocito produce entre 2000 y

7000 plaquetas, producción que estará regulada por la trombopoyetina, una

hormona con funciones similares a la eritropoyetina y que estimulará la

trombopoyesis. Hay varias citoquinas involucradas en este proceso, una vez

en sangre periférica un tercio de las plaquetas se acumularán en el bazo,

los dos tercios restantes permanecen en sangre circulante. La destrucción

plaquetaria se realiza fundamentalmente en el hígado y bazo”. (10)

Si el número de plaquetas es demasiado bajo, puede devenir una

hemorragia excesiva. Por otra parte si el número de plaquetas es demasiado

alto, pueden formarse coágulos sanguíneos y ocasionar trombosis, los

cuales pueden obstruir los vasos sanguíneos y ocasionar un accidente

cerebro vascular, infarto agudo de miocardio, embolismo pulmonar y el

bloqueo de vasos sanguíneos en cualquier otra parte del cuerpo, como en

las extremidades superiores e inferiores; cualquier anormalidad o

enfermedad de las plaquetas es denominada trombocitopatía, la cual puede

ser, ya sea un número reducido de plaquetas (trombocitopenia), un déficit en

la función (tromboastenia), o un incremento en el número (trombocitosis).

Hay desórdenes que pueden reducir el número de plaquetas, como la

trombocitopenia inducida por heparina o la púrpura trombocitopénica

idiopática (PTI) que típicamente causan trombosis, o coágulos, en lugar de

hemorragia.

2.3 GLUCOSA.

“La glucosa es una molécula no ionizada de 6 átomos de carbono, por tanto

es una hexosa, su fórmula química es C6H12O6 , es el monosacárido más



abundante en la naturaleza, como en su metabolismo no libera iones de

hidrógeno no provoca acidosis, aun con concentraciones en sangre muy

elevadas”. (11)

Es el principal combustible del cerebro que consume alrededor de 140

gramos de glucosa al día, si este nivel desciende, como ocurre en casos de

ayuno prolongado, utiliza como fuente de energía los cuerpos cetónicos

procedentes de la oxidación de ácidos grasos en el hígado.

“La glucosa es una molécula no ionizada de 6 átomos de carbono es el

componente inicial o el resultado de las principales rutas del metabolismo de

los glúcidos; es también producto de la fotosíntesis que hacen los vegetales

de hoja verde gracias a su clorofila. La glucosa se transforma luego en

almidón en los cereales y hortalizas, o en fructosa en las frutas y la miel,

ambos se vuelven a transformar en glucosa en nuestro organismo y así es

como se absorbe”. (12)

El consumo de alimentos y bebidas que no contengan glucosa o azúcares,

da lugar de manera directa o indirecta a una reducción del azúcar en sangre,

lo que se denomina hipoglucemias. Esto provoca un estado de alarma en el

organismo (sobre todo en el cerebro) ya que por falta de combustible

muchas funciones no se podrían llevar a cabo y comenzarían a morir

neuronas, de la misma forma como si nos faltara oxígeno. Muchas personas

en esta situación sienten mareos e incluso desvanecimientos.

La hiperglucemia consiste en un nivel excesivo de glucosa en la sangre

provocado por la ausencia del equilibrio entre las acciones del glucagón y la

insulina. Una de las causas más comunes es un síndrome conocido como

Diabetes Mellitus que es un trastorno en el metabolismo de carbohidratos

debido a una deficiencia de insulina o una resistencia a la insulina, o ambas

cosas.



Cualquiera que sea la causa de la diabetes, el resultado es hiperglucemia.

HOMEOSTASIS DE LA GLICEMIA.

La glucosa se almacena principalmente en el hígado, el cual tiene un papel

primordial en el mantenimiento de los niveles de glucosa en sangre

(glucemia). Para que esos niveles se mantengan y el almacenamiento en el

hígado sea adecuado, se precisa la ayuda de la insulina, sustancia

producida por el páncreas.

Cuando la insulina es insuficiente, la glucosa se acumula en sangre, y si esta

situación se mantiene, da lugar a una serie de complicaciones en distintos

órganos, como es el caso de la diabetes. Esta es la razón principal por la

que se produce aumento de glucosa en sangre, pero hay otras

enfermedades y alteraciones que también la provocan.

FUNCIONES.

La glucosa que llega a las células es degradada en un proceso denominado

glucólisis, con ayuda del oxígeno cuya principal función es la de

combustionar la glucosa. Como producto de este proceso se reconvierte en

agua (que eliminamos o reutilizamos) y anhídrido carbónico (que exhalamos

por medio de la respiración).

“La Glucólisis consiste en dos vías la anaeróbica y la oxidativa. La vía

glucolítica (anaeróbica) funciona al mínimo, en dónde el NADH sede sus

hidrógenos al piruvato para convertirse en lactato, metabolismo final de la

glucólisis; el rendimiento energético es de 15 Kcal. por mol.de glucosa por

la formación de 2 ATP. Mientras que en presencia del oxígeno el piruvato

queda como tal y la cadena oxidativa funciona llevando los hidrógenos

obtenidos en el paso oxidativo hasta la formación de agua, en esta situación

se obtiene los 3 ATP del paso de hidrógeno por la cadena oxidativa, como



son las triosas metabolizadas (1 mol. de glucosa es convertida en dos

triosas), ésta aumenta el rendimiento de ATP a 6 equivalentes por mol de

glucosa, convertida en piruvato o sea en 45Kcal. más.

Haciendo un balance total de la energética en relación con el metabolismo

de la glucosa se obtiene de la energía total acumulada como energía libre de

hidrólisis del ATP que representa 285 Kcal, o sea cerca del 42% de las 686

Kcal obtenibles de la oxidación total de un mol de glucosa. El resto de

energía se disipa como calor, el cual se utiliza indirectamente en el

sostenimiento de la temperatura corporal, este es el modo principal de

obtener energía para realizar todas las actividades que la requieran, cuando

falta este glúcido, las proteínas esenciales se metabolizan para convertirse

en energía y evitar daños irreparables”. (13)

2.4 ASTO (ASLO).

El título de ASLO es la medición de anticuerpos anti-Estreptococo

betahemolíticos del tipo A. Esta bacteria produce una enzima llamada

estreptolisina O, que puede destruir los hematíes y el cuerpo reacciona

contra ella produciendo anticuerpos específicos Antiestreptolisina O.

CARACTERÌSTICAS GENERALES.

Las toxinas producidas son la base de las propiedades beta-hemolíticas del

organismo. La estreptolisina O causa una respuesta inmune y la detección

de anticuerpos en el suero sanguíneo; la Antiestreptolisina O (ASLO) puede

usarse clínicamente para confirmar una reciente infección.

La estreptolisina S es una hemolisina adherida a la célula y estable frente al

oxígeno, no es inmunogénica, es capaz de lisar eritrocitos, así como

leucocitos y plaquetas tras contacto directo.



El estreptococo es el agente más frecuente del Síndrome de

Faringoamigdalitis Bacteriana. Es importante en infecciones cutáneas, de

tejidos blandos; no presenta resistencia a la penicilina, que sigue como

tratamiento de elección.

“El Streptococcus pyogenes es una bacteria Gram-positiva que crece en

largas cadenas, muestra el antígeno grupo A de la clasificación de

Lancefield en sus paredes celulares y hace hemólisis del tipo beta-hemólisis

cuando se cultiva en agar sangre. El Streptococcus pyogenes típicamente

produce grandes zonas (halo) de beta-hemólisis, con completa rotura de

eritrocitos y la recuperación de hemoglobina. Por todo ello se le conoce

también por estreptococo beta-hemolítico del grupo A o sus siglas en inglés,

(GAS). Puede ser encapsulado por lo que es resistente a la fagocitosis,

posee numerosas exotoxinas, se trata de un microorganismo no

esporulado”. (14)

Produce una exotoxina llamada estreptolisina-O (SLO); esta molécula es

antigénica y se emplea para inmunodiagnóstico para estudiar la respuesta

inmune en pacientes con enfermedad estreptocócica. La SLO es sintetizada

por todas las cepas de estreptococo grupo A y por algunas cepas de los

grupos C y G, en particular aquellas que causan infecciones humanas. Ésta

es una proteína termolábil que puede ser reversiblemente oxidada, siendo la

actividad hemolítica y la toxicidad de la misma asociadas a condiciones de

reducción, tiene por si misma efectos tóxicos, produciendo lesiones

cardíacas .

2.5 UROANÁLISIS.

ORINA.

A través de la orina eliminamos residuos del trabajo celular, sustancias

indeseables y el exceso de agua en la sangre. Es un líquido de color más o



menos amarillento, cuya densidad y cantidad dependen de cada organismo,

su equilibrio, la cantidad de agua ingerida y las actividades realizadas. La

orina puede ayudar al diagnóstico de varias enfermedades mediante el

análisis de orina o el urocultivo.

COMPONENTES DE LA ORINA.

“El estado de nutrición, de los procesos metabólicos y la capacidad del riñón

para manejar selectivamente las sustancias que recibe, son los tres factores

principales en cuanto a la composición de la orina”. (15)

Por lo general, la orina de una persona sana está compuesta en un 95% por

agua. El ser humano elimina aproximadamente 1,5 litros de orina al día.

Cerca de la mitad de los sólidos que contiene son urea, (producto de

degradación del metabolismo de las proteínas), sodio, cloro, amonio,

creatinina, ácido úrico y bicarbonato.

Un litro de orina contiene normalmente agua, 10 mg de cloruro de sodio y

dos productos tóxicos: la urea (25 g) y el ácido úrico (0,5 g) que el cuerpo lo

desecha.

FORMACIÓN Y FUNCIÓN DE LA ORINA.

El mecanismo de formación de la orina consiste en un proceso que se

realiza en dos etapas:

FILTRACIÓN DE PLASMA SANGUÍNEO.

Las paredes de los capilares glomerulares, revestidos por la capa interna de

la cápsula de Bowman, forman una auténtica membrana filtrante a través de

la cual la sangre que circula en el glomérulo, rezuma en la misma cavidad

capsular.



Se trata del fenómeno de “ultrafiltración”, es decir, de una filtración que se

realiza bajo el empuje de la fuerte diferencia de presión existente entre la

presión de la sangre (60 a 70mm de mercurio) y la presión presente en el

interior de la cápsula de Bowman (5mm. de mercurio).

La membrana filtrante del glomérulo es completamente permeable al agua, a

las sales inorgánicas y moléculas pequeñas inorgánicas; retiene las células

(glóbulos rojos, glóbulos blancos) las plaquetas y las grandes moléculas

proteicas (albúmina, globulina y fibrinógeno). El fluido filtrado en la cápsula

de Bowman tiene, por lo tanto, la composición química de la sangre arterial,

privada de la parte celular y de las fracciones proteicas; sin embargo a este

nivel todavía no es orina porque requiere la intervención de complejos

fenómenos de las demás porciones de la nefrona.

REABSORCIÓN TUBULAR SELECTIVA.

Se calcula que los dos riñones producen en 24 h. 180 litros de ultrafiltrado a

nivel glomerular, este enorme volumen de fluido diario se concentra

después, gracias a la reabsorción en los túbulos, reduciéndose la cantidad

de orina a 1.5 litros aproximadamente.

Los túbulos, en efecto, reabsorben el 99% del agua y grandes cantidades

de sales y sustancias esenciales.

UMBRAL RENAL.

“Las sustancias filtrables pueden clasificarse según el grado de reabsorción

tubular, existe para cada sustancia una concentración teórica límite, por

debajo y por encima de la cual, tal sustancia resulta, respectivamente,

ausente o aparece en cierta cantidad en la orina.



Las sustancias que son reabsorbidas por completo no se encuentran

normalmente en la orina. Solo son eliminadas por los riñones cuando

alcanzan en la sangre una concentración particularmente elevada, como

son: el calcio, la glucosa, los aminoácidos, el sodio, el cloro y la vitamina C.

Hay otras sustancias que son en parte reabsorbidas y en parte eliminadas

en la orina como son los fosfatos, los bicarbonatos, el yodo, el potasio y el

ácido úrico, sustancias que se encuentran comúnmente en la orina.

Por último, existen sustancias que no son activamente reabsorbidas por los

túbulos y aparecen en la orina constantemente en gran cantidad, cualquiera

que sea su concentración en la sangre, son éstas las sustancias sin umbral

renal. Se trata en general de productos finales del metabolismo, ya no

utilizables por la célula que deben ser eliminadas diariamente por el cuerpo

humano. Entre ellas están la urea (producto del metabolismo de las

proteínas) y la creatinina (producto del metabolismo del tejido muscular)”.

(16)

Hay que destacar que todos los elementos que son reabsorbidos en las

distintas porciones de la nefrona pasan al torrente sanguíneo, mientras que

el líquido resultante de la filtración llegará hacia la pelvis interior del riñón y,

posteriormente, será conducido hacia las vías urinarias para su evacuación.

CARACTERÍSTICAS DE LA ORINA.

CARACTERÍSTICAS FÍSICAS.

ASPECTO.

Clara y cristalina, la turbidez es secundaria a la presencia de substancias

como proteínas, pus o cristales de fosfatos amorfos; un exceso de espuma



en la parte superior de la orina se debe a una alteración de la tensión

superficial por proteinuria o bilirrubinuria.

COLOR.

El color de la orina varía según su concentración, normal, amarillo o ámbar,

existen muchos factores y constituyentes que pueden alterar su color.

OLOR.

La orina tiene un olor característico al que se le denomina suigéneris, la

muestra mal preservada o infectada tiene mal olor que puede llegar a ser

fétido.

VOLUMEN.

Depende de la cantidad de agua excretada por los riñones, la diuresis

normal de un adulto en promedio es de 1.500ml. en 24 horas.

CARACTERÍSTICAS QUÍMICAS.

Ph.

Una de las funciones de la orina es mantener el equilibrio ácido-base en el

organismo para mantener un pH constante en la sangre, el pH normal de la

orina es de 5 a 7. El pH urinario es útil para identificar la presencia de

cristales en orina y determinar la tendencia a formar un tipo determinado de

cálculos.

PROTEÍNAS.

Normalmente existen pequeñas cantidades de proteínas en la orina que no

dan reacción con el reactivo utilizado.



NITRITOS.

Se producen en infección urinaria producida por bacterias Gram Negativas,

que convierten los nitratos en nitritos.

GLUCOSA.

La concentración de glucosa filtrada por el glomérulo no es detectable por

técnicas convencionales, cuando la glucosa rebasa el umbral renal (160-

180), esta se hace presente en la orina.

CETONAS.

Su presencia se genera como consecuencia en el no uso de los hidratos de

carbono y siendo substituidas por vías metabólicas alternas como

metabolismo de la grasa, normalmente es negativa.

BILIRRUBINAS.

Puede ser el primer indicador de una alteración hepática, la que se detecta

es la bilirrubina conjugada.

UROBILINÓGENO.

Pigmento biliar producto de la degradación de la bilirrubina conjugada en el

intestino, se eleva en enfermedades hepáticas y hemolíticas.

LEUCOCITOS.

Utiliza la acción de las esterazas, detecta de 5 a 15 leucocitos.



SANGRE.

Detecta hemoglobinuria, hematuria y mioglobinuria.

ANÁLISIS MICROSCÓPICO.

CÉLULAS EPITELIALES.

Se presentan en baja cantidad, se encuentran tres tipos de acuerdo a su

lugar de origen.

• Células escamosas, pueden ser del epitelio vaginal o de la uretra

distal.

• Células transicionales, provienen de la pelvis renal, vejiga, uretra

proximal se elevan en la litiasis renal.

• Células tubulares renales, proviene del túbulo renal, su aparición

aumentada orienta a daño tubular.

LEUCOCITOS.

Normalmente se encuentran menos de 5 por campo, la presencia en número

mayor nos indica infección.

ERITROCITOS.

Aparecen normalmente en la orina de 1 a 2 por campo.

BACTERIAS.

No están presentes en forma normal en la orina, su presencia orienta a

contaminación o acompañado de piuria a una infección.



LEVADURAS.

No se encuentran normalmente en la orina, el hongo más frecuente es

Cándida Albicans.

MOCO.

Material proteico producido por el tracto urinario, no tiene importancia

cuando se encuentra asociado a contaminación vaginal.

CILINDROS.

Son estructuras cilíndricas que representan moldes del lúmen tubular renal y

son elementos únicos que provienen del riñón, su ancho está determinado

por el lugar de formación; la apariencia de estos está determinada por las

características del filtrado al momento de su formación y del tiempo que ésta

ha permanecido en el túbulo, los diferentes tipos de cilindros son: hialinos,

hemáticos, eritrocitarios, leucocitarios, mixtos, granulosos, céreos y grasos.

CRISTALES.

“Son generados por precipitación de sales de orina, consecuencia de

cambios del pH, temperatura y concentración que afectan su solubilidad,

pueden adoptar la forma de cristales verdaderos o presentarse como

materiales amorfos. Su presencia pocas veces tiene relevancia clínica, pero

orientan a detectar enfermedades hepáticas, errores congénitos del

metabolismo o daño renal causado por drogas.

Son muy frecuentes en orina refrigerada siendo importante reconocer su

forma, el pH urinario, algunos cristales precipitan solo dentro de ciertos

rangos, los patológicos solo lo hacen en pH neutro o ácido.



Orina ácida: uratos amorfos y oxalato de calcio.

Orina alcalina: fosfatos amorfos, carbonatos de calcio y biurato de amonio.

Cristales anormales: cistina, colesterol, tirosina, bilirrubina y drogas”. (17)

2.6 COPROPARASITARIO.

HECES.

Las heces o materias fecales son el conjunto de los desperdicios

generalmente sólidos o líquidos producto final del proceso de la digestión.

Las heces son los restos de los alimentos no absorbidos por el aparato

digestivo (como fibras y otros componentes que no son útiles para el ser en

cuestión), y también células del epitelio intestinal que se descaman en el

proceso de absorción de nutrientes, microorganismos, y otras sustancias

que no logran atravesar el epitelio intestinal.

COMPOSICIÓN DE LAS HECES.

El 75% del contenido de las heces es agua mientras que el 25% restante es

materia fecal. El 30% de este 25% va a ser de desechos celulares y

bacterianos. Entre un 30 y un 50% dependiendo de la dieta va a ser de

residuos de esta, aproximadamente entre un 10 y 15% va a ser grasa y el

5% restante va a estar formado por sustancias inorgánicas, principalmente

fosfatos y carbonatos.

Es muy importante tomar en cuenta el color, tendencia, textura y tamaño del

excremento, todos ellos dicen algo acerca de la salud, particularmente a

cerca de la dieta, sistema digestivo, hígado y puede alertarnos sobre otras

condiciones como cáncer, fiebre tifoidea, etc.



PARÁSITOS.

“Parásitos son todos los seres que viven asociados a otro causándole

perjuicio o enfermedad, en medicina tradicionalmente se ha reservado este

nombre a los protozoos y helmintos que viven temporal o permanentemente

en el hombre, la mayoría de los cuales le producen enfermedad”.(18)

PROTOZOOS.

“Los protozoos son microorganismos unicelulares eucariotas con un tamaño

que oscila entre 3 y 100um., carecen de pared celular rígida y son móviles,

tienen un metabolismo heterótrofo, obteniendo los nutrientes orgánicos por

absorción o fagocitosis, se reproducen asexualmente, por división simple o

múltiple, o sexualmente, y algunos alternan ambos ciclos reproductivos”. (19)

Los protozoos son muy sensibles a los agentes físicos y químicos, para

pasar de un hospedador a otro adquieren la forma quística; la forma

vegetativa en el hospedador se denomina trofozoito.

Los principales grupos de interés médico incluyen las amebas y los

flagelados como las giardias.

Las amebas generalmente producen enterocolitis, en su forma

características conocida como disentería amebiana, por las ulceraciones de

la mucosa intestinal; puede llegar al hígado a través de la vena porta

formando abscesos.

“La giardia se presenta en forma de quiste (0.3 – 0.5 µm) y trofozoíto de (12

– 15 µm), se encuentra con mayor frecuencia en los niños, produce dolor

abdominal, diarreas y pérdida de peso”. (20)



HELMINTOS.

“Son gusanos parásitos que causan una gran variedad de enfermedades

infecciosas, algunos afectan al sistema músculo-esquelético, éstos se

clasifican en Nematodos o gusanos redondos, Trematodos o gusanos planos

y Cestodos o tenias, la morfología de los huevos y su tamaño son aspectos

fundamentales que hay tomar en cuenta para su identificación; la mayoría de

los huevos poseen cubierta lisa, refringente muy bien marcada, excepto de

los áscaris que es mamelonada y de tamaño relativamente grande (40 – 50

µm.)”. (21)

Los gusanos más comunes encontrados en nuestro medio son: los áscaris,

trichuris-trichura, y las tenias.

“Los áscaris requieren temperaturas favorables para su desarrollo (25º) para

que infecten al hombre deben permanecer de tres a cuatro semanas en

suelo cálido y húmedo; clínicamente las formas larvarias producen síndrome

de loeffer (tos, disnea y fiebre), irritación a nivel de mucosa, síndrome

diarreico y pérdida de peso”. (22)

“El trichuris-trichura o tricocéfalos al ser expulsados de las heces necesitan

un mínimo de 10 días para llegar a la etapa infectante, son de distribución

universal. Los pacientes fuertemente infectados desarrollan enfermedad

clínica caracterizada por diarrea crónica (productora de tenesmo), los niños

afectados pueden desarrollar prolapso rectal”. (23)

Las tenias más comunes que parasitan al hombre son la solium y la

saginata, son de distribución universal, la forma de transmisión es oral y

producen patología intestinal, anemias por pérdida de sangre, no absorción

de vitamina (B12), proteínas y otras hormonas.



CAPÍTULO III

3. OBJETIVOS.

3.1 OBJETIVO GENERAL.

Determinar las pruebas básicas de Laboratorio Clínico en los estudiantes

secundarios del Colegio Nacional Técnico República de Israel, Sección

Vespertina del área de influencia del Centro de Salud No. 2 de la Ciudad de

Cuenca, 2011.

3.2 OBJETIVOS ESPECÍFICOS.

3.2.1 Determinar los valores de: recuento de glóbulos blancos, rojos y

plaquetas, hematocrito, hemoglobina, glucosa, ASTO, orina y heces

en la muestra de estudio.

3.2.2 Correlacionar el valor obtenido con las variables: edad, sexo, talla y

peso.

3.2.3 Identificar a los estudiantes secundarios cuyos valores de las pruebas

se alejen de los rangos considerados normales.



CAPÍTULO IV

4. METODOLOGÍA.

4.1 TIPO DE ESTUDIO.

El presente estudio es observacional de tipo descriptivo, ya que vamos a

determinar los valores hematológicos, químicos y microscópicos en las

muestras obtenidas de los estudiantes secundarios en un lugar y tiempo

determinado.

4.2 UNIVERSO.

Está representado por todos los estudiantes secundarios de los colegios que

pertenecen al área de influencia del Centro de Salud No. 2 de la Ciudad de

Cuenca. Que alcanza a 23.706 estudiantes.

4.3 MUESTRA.

La muestra es no probabilística no aleatoria, cuyas características sean

similares a las de la población objetivo, la muestra de la línea de

investigación estuvo conformada por 3658 estudiantes de ambos sexos

comprendidos entre 12 y 17 años cumplidos de colegios que forman parte

del área de Salud No.2 de la ciudad de Cuenca; en el presente trabajo por

ser parte de esta línea , la muestra fue de 250 estudiantes que pertenecen al

Colegio Nacional Técnico República de Israel, Sección Vespertina que se

encuentra dentro del área en estudio.

Para el cálculo del tamaño de la muestra, se ha tomado en cuenta la

población general, un índice de confianza del 95% y un margen de error del

5%.



4.4 CRITERIOS DE INCLUSIÓN.

- Estudiantes secundarios de 12 a 17 años cumplidos que pertenecen

al Colegio Nacional Técnico República de Israel, Sección Vespertina

que se encuentra dentro del área de influencia del Centro de Salud

No. 2 de la Ciudad de Cuenca, de cualquier sexo o condición social.

- Estudiantes secundarios que decidieron ser beneficiados por este

proceso de investigación, con el consentimiento y asentimiento

firmados por su representante y el estudiante respectivamente.

4.5 CRITERIOS DE EXCLUSIÓN.

- Muestras hemolizadas.

- Muestras lipémicas.

- Orinas con más de 2 horas de recolección.

- Encuestas incompletas.

- Estudiantes que no estuvieron en ayunas.

4.6 MÉTODOS, TÉCNICAS E INSTRUMENTOS.

4.6.1 Para identificar a los estudiantes que conforman la muestra de estudio,

se recurrió al listado que los diferentes colegios tienen para cada curso, se

entregó a cada estudiante el consentimiento y asentimiento informado,

mismos que fueron firmados por el representante y estudiante

respectivamente.

Se coordinaron acciones con el inspector a cargo de cada curso y con el

médico de la institución, de tal manera que el día y la hora señalada para la

toma de la muestra, el estudiante cumplió con los criterios de inclusión. Los

docentes y estudiantes que participaron en la investigación cumplieron el



calendario planificado de tal manera que las 250 muestras fueron

procesadas en el tiempo planificado.

Mediante un tallímetro se procedió a medir la estatura y con una balanza

calibrada en kilos se obtuvo el peso, para ambas mediciones los estudiantes

estuvieron descalzos.

TOMA DE MUESTRA: MÉTODO DE EXTRACCIÓN DE SANGRE.

Aseguramos que los materiales estén listos, que el paciente se sienta

cómodo y seguro. Una vez identificado el brazo con buena condición de

circulación para la extracción de la muestra de sangre, se procedió a colocar

el torniquete 5 cm. más arriba de donde se localizó una vena (cefálica,

basílica, medial), desinfectamos el área con una torunda humedecida en

alcohol, se procedió a realizar la punción en la vena con un ángulo

aproximado de 45 grados, mediante el sistema al vacío ( tubos vacutainer) y

usando agujas estériles descartables número 21 recogimos la sangre en dos

tubos, el uno contenía anticoagulante EDTA y el otro sin anticoagulante,

aproximadamente se extrajo 8 ml. de sangre; retiramos el torniquete y la

aguja; colocamos en el lugar de la punción una torunda con alcohol

ejerciendo presión por un par de minutos, luego verificamos que no haya

sangrado alguno, descartamos la torunda y el aguja en los recipientes

correspondientes y desechamos según las normas de bioseguridad

recomendadas.

Las muestras de orina y de heces fueron receptadas y membretadas como

corresponde.

Las muestras obtenidas fueron trasladadas en recipientes apropiados, al

Laboratorio Clínico del Hospital Vicente Corral Moscoso, en donde se

realizaron los exámenes con la máxima precaución apegados a las normas



de bioética y seguridad, garantizando así la entrega de resultados

confiables. Se procedió a realizar los siguientes exámenes:

Hematológicos: Recuento de glóbulos rojos, recuento de glóbulos blancos,

recuento de plaquetas, hematocrito, hemoglobina y fórmula leucocitaria.

Químicos: Glucosa.

Inmunológicos: ASTO.

Orina: Elemental y microscópico.

Heces: Coproparasitario.

HEMOGRAMA, (BIOMETRÍA HEMÁTICA O CSC).

El hemograma o CSC (conteo sanguíneo completo) o biometría hemática es

uno de los elementos diagnósticos básicos. Es un cuadro o fórmula

sanguínea en el que se expresan el número, proporción y variaciones de los

elementos sanguíneos.

CONTADOR HEMATOLÓGICO .

Con el método de resistencia eléctrica las células en suspensión pasan a

través de una apertura situada entre dos electrodos, entre los que existe una

corriente eléctrica continua de intensidad constante; cada célula produce un

incremento momentáneo de resistencia eléctrica que se traduce en un

impulso eléctrico, el número de pulsos generados es proporcional al de las

células que pasan. La amplitud de cada pulso es proporcional al del volumen

celular.

EQUIPOS.

SISTEMA CELL-DYN 3700.

Es un analizador de hematología automático y multiparamétrico, diseñado

para utilizarse en el diagnóstico in vitro en los laboratorios clínicos. El



sistema CELL-DYN® 3700 efectúa las siguientes mediciones hematológicas

en sangre anticoagulada con EDTA:

• WBC: Recuento de leucocitos

• NEU: Recuento absoluto de neutrófilos

• LYM: Recuento absoluto de linfocitos

• MONO: Recuento absoluto de monocitos

• EOS: Recuento absoluto de eosinófilos

• BASO: Recuento absoluto de basófilos

• %N: Porcentaje de neutrófilos

• %L: Porcentaje de linfocitos

• %M: Porcentaje de monocitos

• %E: Porcentaje de eosinófilos

• %B: Porcentaje de basófilos

• RBC: Recuento de glóbulos rojos o eritrocitos

• HGB: Concentración de hemoglobina

• HCT: Hematocrito

• MCV: Volumen corpuscular medio

• MCH: Hemoglobina corpuscular media

• MCHC: Concentración de hemoglobina corpuscular media

• RDW: Amplitud de la distribución del tamaño de los eritrocitos

• PLT: Recuento de plaquetas o trombocitos

• MPV: Volumen plaquetario medio

• PDW: Amplitud de la distribución del tamaño de las plaquetas

• PCT: Plaquetocrito

SISTEMA DE REACTIVOS.

Diluyente.

El diluyente CELL-DYN ha sido formulado para cumplir los requisitos

siguientes:



• Actúa como diluyente para los leucocitos (únicamente para el

recuento por impedancia), los eritrocitos, las plaquetas y la

hemoglobina, durante el recuento y la fase de clasificación

volumétrica del ciclo de medición.

Reactivo hemolizante HGB/WIC.

El reactivo hemolizante CELL-DYN HGB/WIC ha sido formulado para cumplir

los siguientes requisitos:

• Hemoliza rápidamente los eritrocitos y minimiza el estroma resultante.

• Desprende el citoplasma de los glóbulos blancos, dejando intacta la

membrana nuclear, para poder contar los núcleos leucocitarios.

• Transforma la hemoglobina en una sola sustancia cromógena, que

puede medirse a 540 nm. (El lisado de amonio cuaternario participa

como cromógeno).

Reactivo hemolizante WIC/HGB sin cianuro.

El reactivo hemolizante CELL-DYN WIC/HGB sin cianuro ha sido formulado

para cumplir los siguientes requisitos:

• Hemoliza rápidamente los eritrocitos y minimiza el estroma resultante.

• Desprende el citoplasma de los glóbulos blancos, dejando intacta la

membrana nuclear, para poder contar los núcleos leucocitarios.

• Transforma la hemoglobina en una sola sustancia cromógena, que

puede medirse a 540 nm.

• Proporciona una lectura de fondo igual o inferior a 0,2 g/dl.

Detergente

El detergente CELL-DYN ha sido formulado para cumplir los siguientes

requisitos:



• Proporciona una solución ópticamente clara, necesaria para obtener

el valor cero de referencia durante el ciclo de medición de la

hemoglobina.

• Facilita la formación del menisco apropiado en los tubos volumétricos

WIC y RBC/PLT y lo mantiene durante cada ciclo de procesado.

• Lava la cámara de recuento WIC, el tubo volumétrico WIC, la cámara

de recuento RBC/PLT, el tubo volumétrico RBC/PLT y la celda de flujo

de HGB, con una formación mínima de burbujas.

Reactivo envolvente.

El reactivo envolvente CELL-DYN ha sido formulado para cumplir los

siguientes requisitos:

• Hemoliza los eritrocitos por un mecanismo osmótico.

• Mantiene las propiedades de dispersión de la luz de los leucocitos

durante el periodo de medición.

• Actúa como líquido envolvente, necesario en el proceso de enfoque

hidrodinámico.

• Proporciona una acción humectante adecuada que impide la

acumulación de burbujas de aire en el sistema de flujo WOC

• Proporciona una lectura de fondo WOC igual o inferior a 0,3 x 103/ul

(109/1).

Limpiador enzimático.

El limpiador enzimático CELL-DYN ha sido formulado para eliminar con

eficacia los depósitos de proteínas acumuladas en el analizador.



RECUENTO GLÓBULOS ROJOS (HEMATÍES O ERITROCITOS).

“Es el número total de glóbulos rojos que hay por milímetro cúbico de

sangre.” (24)

VALORES REFERENCIALES.

Los resultados normales varían, pero en general el rango es como sigue:

• Hombres: de 4.7 a 6.1 millones de células por mm3.

• Mujeres: de 4.2 a 5.4 millones de células por mm3.

VALORES DISMINUIDOS.

• Embarazo

• Anemias varias

• Cáncer

• Hemorragias

• Enfermedades sistémicas

• Alteraciones en la dieta

• Fibrosis de médula ósea

VALORES AUMENTADOS.

• Cardiopatías

• Enfermedades pulmonares crónicas

• Poliglobulia de diferentes causas

• Estancia en lugares de gran altitud.

HEMOGLOBINA (HB).

“La concentración de hemoglobina representa la hemoglobina total en

sangre periférica y es reflejo del recuento de glóbulos rojos”. (25)




Varones: 13.5 – 17.0 gr/dl

Mujeres: 12.0 – 15.0 gr/dl


Cuando está por debajo de los niveles normales se está describiendo una

anemia que puede ser de diferentes orígenes:

• Anemias primarias

• Cáncer

• Embarazo

• Enfermedades renales

• Enfermedades autoinmunes

• Hemorragias

• Linfomas

• Problemas de alimentación

• Lupus eritematoso sistémico

• Esplenomegalia

VALORES AUMENTADOS.

Si el nivel de hemoglobina aparece alto puede deberse a:

• Cardiopatías

• Deshidratación


• Estancias en lugares de mucha altitud

• Quemaduras graves

• Policitemia vera

• Hemoconcentración



HEMATOCRITO. (HTO)

“Es un examen que mide el porcentaje de los glóbulos rojos que se

encuentran en toda la sangre, la medición depende del número y tamaño de

los glóbulos rojos”. (26)


Varones: 40 – 52%

Mujeres: 38 – 48%


• Anemia

• Fallos en la médula ósea (Radiaciones, toxinas, fibrosis, tumores,

etc.)

• Embarazo

• Hemorragias

• Hipertiroidismo

• Hemolisis (destrucción de glóbulos rojos) por una transfusión

• Leucemia

• Problemas de alimentación

• Artritis reumatoide

VALORES AUMENTADOS.

• Cardiopatías

• Deshidratación

• Eclampsia (en el embarazo)


• Exceso de formación de hematíes (eritrocitosis)

• Policitemia vera

• Choque (shock)



RECUENTO DE GLÓBULOS BLANCOS (RECUENTO LEUCOCITARIO ).

“El recuento de glóbulos blancos, es un examen de sangre para medir el

número de estos glóbulos, ofrece información sobre la capacidad del

organismo para combatir infecciones”. (27)


4.500 a 10.000 por mm3


Se denomina leucopenia y puede deberse a:

• Insuficiencia de la médula ósea (por ejemplo: debido a infección,

tumor o cicatrización anormal)

• Enfermedades vasculares del colágeno (como el lupus eritematoso

sistémico)

• Enfermedad del hígado o el bazo

• Radioterapia o exposición a la radiación

VALORES AUMENTADOS.

Se denomina leucocitosis y puede deberse a:

• Anemia

• Tumores de la médula ósea

• Enfermedades infecciosas

• Enfermedad inflamatoria (como artritis reumatoidea o alergia)

• Leucemia

• Estrés emocional o físico intensos

• Daño tisular (por ejemplo, quemaduras)

.



FÓRMULA LEUCOCITARIA.

La fórmula leucocitaria mide el porcentaje presente de cada tipo de

leucocitos en el total de glóbulos blancos. Existen dos grupos de glóbulos

blancos los polimorfonucleares (neutrófilos, eosinófilos y basófilos) y los

mononucleares (linfocitos y monocitos).


Neutrófilos 55 – 70%

Linfocitos 20 – 40%

Monocitos 2 – 8%

Eosinófilos 1 – 4%

Basófilos 0 – 1%

VALORES DISMINUÍDOS.

Neutropenia se debe a:

• Anemia aplásica

• Quimioterapia

• Gripe u otra infección viral

• Infección bacteriana generalizada


Linfocitopenia se debe a:

• Quimioterapia

• Infección por VIH

• Leucemia


• Sepsis.



Monocitopenia se debe a:

• Enfermedad aguda causante de estrés

• Tratamiento con glucocorticoides

• Anemia aplásica

• Cierto tipos de leucemia

• Agentes quimioterapéuticos e inmunosupresores.

Eositopenia se debe a:

• Fase de lucha de infecciones como neumonías, fiebre tifoidea, gripe,

etc.

• Situaciones de estrés

• Infarto de miocardio

• Tratamientos con corticoides, adrenalina

Basopenia se encuentra en:

• Reacción alérgica aguda

VALORES AUMENTADOS.

Neutrofilia se debe a:

• Infección aguda

• Estrés agudo

• Eclampsia

• Gota

• Leucemia mielógena

• Artritis reumatoidea

• Fiebre reumática

• Tiroiditis

• Traumatismo



La linfocitosis se debe a:

• Infección bacteriana crónica.

• Hepatitis infecciosa.

• Mononucleosis infecciosa.

• Leucemia linfocítica.

• Mieloma múltiple.

• Infección viral (como mononucleosis infecciosa, paperas, sarampión).

Monocitosis se debe a:

• Enfermedad inflamatoria crónica.

• Infección parasitaria.

• Tuberculosis.

• Infección viral (por ejemplo, mononucleosis infecciosa, paperas,

sarampión).

Eosinofilia se debe a:

• Reacción alérgica.

• Cáncer.

• Enfermedad vascular del colágeno.

• Infección parasitaria.

Basofilia se debe a:

• Algunas infecciones víricas como la varicela o la viruela

• Algunas hemopatías como la Policitemia vera y la leucemia mieloide

crónica.

• Algunas endocrinopatías como el hipotiroidismo o la diabetes

• Tras exposición a radiaciones ionizantes.

• Asma



RECUENTO DE PLAQUETAS.

“El recuento plaquetario es el recuento del número de plaquetas

(trombocitos) por milímetro cúbico de sangre”. (28)


150.000 – 450.000 x mm3.


Trombocitopenia, se presenta en:

• Aplasia medular

• Leucemia aguda

• Coagulación intravascular diseminada

• Anemia hemolítica microangiopática

• Hiperesplenismo

Trombocitosis, se presenta en:

• Anemia.

• Leucemia mielocítica crónica (LMC).

• Policitemia vera.

• Trombocitemia primaria.

• Extirpación reciente del bazo.

PRUEBA BIOQUÍMICA.

GLICEMIA.

Es la medida de concentración de glucosa libre en sangre.



EQUIPO.

SYNCHRON ® y Sistemas LX®, Sistemas UniCel® DxC 600/800.

PRINCIPIO.

El Sistema Sistemas SYNCHRON® determina la concentración de GLUCm

mediante un método cinético que emplea el electrodo para oxígeno de

Beckman Coulter.

Un volumen preciso de muestra (10 microlitros) es inyectado en una cubeta

de reacción que contiene solución de glucosa oxidasa. La proporción es una

parte de muestra a 76 partes de reactivo. La velocidad pico de consumo de

oxígeno es directamente proporcional a la concentración de GLUCm en la

muestra.

REACTIVOS.

• GLUCm

• AQUACAL 1 Y 2

ALMACENAMIENTO Y ESTABILIDAD.

El Reactivo GLUCm, almacenado sin abrir entre +2°C y +8°C, permanece

estable hasta la fecha de caducidad indicada en cada botella. El reactivo

permanece estable en el instrumento 30 días o hasta la fecha de caducidad.

Si el reactivo ha sido congelado para su transporte, deje que alcance la

temperatura ambiente y mézclelo bien, invirtiendo el frasco suavemente por

lo menos 10 veces.



MUESTRA.

Suero o plasma.

ALMACENAMIENTO Y ESTABILIDAD DE LA MUESTRA.

• Los tubos de sangre deben guardarse tapados en todo momento y en

posición vertical. Se recomienda separar el suero o el plasma

físicamente de las células dentro de las dos horas de recogida la

muestra.

• El suero o el plasma separados no deben permanecer a temperatura

ambiente más de 8 horas. Si los análisis no se completan dentro de 8

horas, las muestras se deben almacenar entre +2°C y +8°C. Si los

análisis no se completan en 48 horas, o las muestras separadas se

deben almacenar más de 48 horas, se deben congelar entre -15°C y -

20°C. Las muestras deben descongelarse sólo una vez . Puede haber

deterioro del compuesto en muestras congeladas y descongeladas

repetidamente.


70 - 110 mg/dl.


“Hipoglicemia, se presenta en:

• Enfermedad hepática avanzada

• Enfermedad de Addison

• Sobredosificación de insulina.

• Hipopitituarismo



• Hipotiroidismo

• Inanición

VALORES AUMENTADOS.

Hiperglucemia, se presenta en:

• Diabetes mellitus

• Insuficiencia renal crónica

• Hipertiroidismo

• Pancreatitis aguda

• Síndrome de Cushing

• Tumores de páncreas

• Estrés

• Embarazo

• Tratamiento diurético

• Acromegalia”. (29)

PRUEBA INMUNOLÓGICA.

ASTO O ASLO.

La antiestreptolisina (ASLO) son anticuerpos específicos contra productos

extracelulares de Streptococcus pyogenes (estreptococos del grupo A) entre

los cuales la antiestreptolisina O (ASO) es la más empleada en los análisis

de laboratorio. La cuantificación de los anticuerpos ASO se utiliza para

detectar infección previa por estreptococo.

EQUIPO.

SYNCHRON ® y Sistemas LX®, Sistemas UniCel® DxC 600/800.



PRINCIPIO.

El Reactivo ASO- se usa para medir los anticuerpos humanos contra la

estreptolisina-O mediante un método de turbidimetría cinética. En la

reacción, los anticuerpos contra la estreptolisina-O en la muestra se

combinan con partículas de látex recubiertas con estreptolisina-O

recombinante altamente purificada, lo que produce aglutinación y un cambio

en la absorbancia.

El Sistemas SYNCHRON® dispensa en forma automática los volúmenes

apropiados de muestra y reactivo en una cubeta. La proporción para

Antiestreptolisina-O es una parte de muestra a 50 partes de reactivo. El

sistema controla el cambio de absorbancia a 340 nanómetros. Este cambio

de absorbancia es directamente proporcional a la concentración de

anticuerpos Antiestreptolisina-O humanos en la muestra, y es usado por el

Sistemas SYNCHRON® para calcular y expresar la concentración de

anticuerpos Antiestreptolisina-O humanos basándose en una calibración

lineal de un solo punto usando un calibrador estandarizado según la

Organización Mundial de la Salud.

REACTIVOS.

• Reactivo ASO

• CAL 5 Plus

ALMACENAMIENTO Y ESTABILIDAD.

El Reactivo ASO almacenado sin abrir entre +2°C y + 8°C, permanece

estable hasta la fecha de caducidad indicada en cada botella. El reactivo

permanece estable en el instrumento 30 días o hasta la fecha de caducidad.



Si el reactivo ha sido congelado para su transporte, deje que alcance la

temperatura ambiente y mézclelo bien, invirtiendo el frasco suavemente por

lo menos 10 veces.

MUESTRA.

Suero.

ALMACENAMIENTO Y ESTABILIDAD DE LA MUESTRA.

• Los tubos de sangre deben guardarse tapados en todo momento y en

posición vertical. Se recomienda separar el suero o el plasma

físicamente de las células dentro de las dos horas de recogida la

muestra.

• El suero o el plasma separados no deben permanecer a temperatura

ambiente más de 8 horas. Si los análisis no se completan dentro de 8

horas, las muestras se deben almacenar entre +2°C y +8°C. Si los

análisis no se completan en 48 horas, o las muestras separadas se

deben almacenar más de 48 horas, se deben congelar entre -15°C y -

20°C. Las muestras deben descongelarse sólo una vez . Puede haber

deterioro del compuesto en muestras congeladas y descongeladas

repetidamente.


Inferiores a 200 UI/ml.

“VALORES AUMENTADOS.

• Faringitis estreptocócica

• Endocarditis bacteriana



• Glomerulonefritis

• Fiebre reumática aguda

• Escarlatina

• Pioderma estreptocócico”.(30)

ORINA.

CITOQUÍMICO Y BACTERIOLÓGICO.

El análisis de orina de rutina comprende el examen de las característica

físicas: color, aspecto y densidad; las características químicas, incluyendo el

pH, el contenido de proteínas, glucosa, cetonas, sangre, nitritos, leucocitos,

bilirrubina, urobilinógeno, etc. y las estructuras microscópicas presentes en

el sedimento como: células (leucocitos y eritrocitos), cristales, cilindros,

bacterias, que no están de manera habitual en la orina.

OBTENCIÓN DE LA MUESTRA.

• Proveerse de un frasco "estéril" para recolección de orina.

• Por la mañana debe hacerse un lavado genital con agua abundante,

luego destapar el frasco estéril cuidando de no tocar con los dedos las

partes internas del mismo.

• Comenzar la micción descartando el primer chorro, luego sin cortar el

chorro de orina, colocar el frasco estéril para recolectar esta porción

media de orina. Con 10 o 20 ml, retirar el frasco y descartar el chorro

final. Cerrar cuidadosamente el frasco.

• Identificar la muestra de orina con el nombre escrito con marcador en

el cuerpo del frasco y no en la tapa. Esto evita errores en el

laboratorio cuando se destapan simultáneamente otros frascos.

• Mantener refrigerado en la puerta de la heladera hasta su entrega al

laboratorio.



EQUIPOS Y MATERIALES.

• Tubos de ensayo

• Gradillas

• Centrífuga

• Portaobjetos

• Cubreobjetos

• Tiras reactivas

• Microscopio

TÉCNICA DE EXAMEN DE ORINA.

• Colocamos la muestra en un tubo de ensayo

• Observamos el Aspecto, Color, Olor.

• Introducimos una tira reactiva en la muestra

• Centrifugamos.

• Eliminamos el sobrenadante

• Colocamos el sedimento en un portaobjeto.

• Cubrimos la muestra con una laminilla.

• Observamos al microscopio con el objetivo de x10 para enfocar y con

el lente de 40x para identificar las estructuras presentes en la

muestra.

HECES.

COPROPARASITARIO.

El examen de heces tiene su máxima indicación clínica en las diarreas

crónicas y en general interesa en aquellos procesos que cursan con

insuficiencia digestiva o en los que buscan el gérmen o parásito de la

enfermedad.



Comprende la observación directa, macroscópica y el análisis químico,

bacteriológico y parasitológico de la deposición.

Entre los parásitos más frecuentes encontrados en nuestro medio están

principalmente las amebas, las giardias, los huevos de áscaris y tricocéfalos.

OBTENCIÓN DE LA MUESTRA.

La muestra debe ser recolectada en un recipiente adecuado para el efecto.

MATERIALES Y EQUIPOS.

• Portaobjetos

• Cubreobjetos

• Palillos

• Suero fisiológico

• Microscopio

TÉCNICA.

• Observamos el aspecto y color.

• Colocamos una gota de solución salina en el portaobjetos.

• Tomamos una pequeña porción de heces, mezclamos con solución

salina para obtener una muestra homogénea.

• Colocamos un cubreobjetos sobre la muestra preparada.

• Observamos en el microscopio con el objetivo de x10 para enfocar y

con el lente de 40x para identificar las estructuras presentes en la

muestra.

4.6.2 Para correlacionar los valores obtenidos con las variables, ingresamos

los datos en el programa SPSS, se crearon y codificaron las variables para

el análisis estadístico.



4.6.3 Para identificar a los estudiantes cuyos resultados se salieron de los

rangos normales, se procedió a la entrega de los mismos al médico de la

institución, para su valoración clínica y posterior tratamiento si el caso lo

amerita.

4.7 CONTROL DE CALIDAD.

El Control de Calidad en el Laboratorio Clínico es un sistema diseñado para

incrementar la probabilidad de que cada resultado reportado por el

laboratorio sea válido y pueda ser utilizado con confianza por el médico para

tomar una decisión diagnóstica o terapéutica.

Los procedimientos de Control de Calidad (CC) funcionan detectando los

errores analíticos, cualquier error suficientemente grande para invalidar la

utilidad médica de los resultados de laboratorio debe ser detectado. En la

práctica, muchos procedimientos de CC operan introduciendo controles

(materiales de muestras bien caracterizadas por ensayos previos) al proceso

del laboratorio y comparando los resultados de la prueba con el rango de

valores esperado.

CONTROL DE CALIDAD INTERNO DE UN LABORATORIO CLÍNIC O.

Todos los laboratorios clínicos deben disponer de un sistema para el

aseguramiento de la calidad. La experiencia ha demostrado que los

laboratorios que han aceptado este compromiso han de disponer de un

adecuado procedimiento para el control interno de la calidad entre otros

componentes de dicho sistema.

El Sistema para el control de la calidad interna de los laboratorios clínicos

(QC-LAB), refleja objetivamente las variaciones en los resultados de las

determinaciones, permite conocer realmente como está funcionando el

laboratorio y posibilita tomar decisiones oportunas.



Estos controles permiten identificar los errores aleatorios y sistemáticos,

constituyen una buena herramienta para mantener el desempeño analítico

dentro de límites aceptables estadísticamente.

La aplicación de un buen control de calidad permite obtener resultados

fidedignos y confiables, siendo necesario vigilar los procedimientos durante

las tres fases: pre-analítica, analítica y post-analítica.

En la fase pre-analítica los estudiantes cumplieron todos los criterios de

inclusión, presentándose en ayunas con las respectivas muestras

recolectadas en envases apropiados que se les entregó previamente, las

muestras de sangre fueron tomadas a la 7:30 am, identificadas

correctamente y trasladadas al laboratorio para su análisis.

En la fase analítica, las muestras fueron procesadas de acuerdo a los

requerimientos de los analizadores automáticos utilizados, verificando un

correcto almacenamiento de los reactivos y un adecuado manejo por parte

del profesional a cargo.

CONTROL INTERNO (CELL-DYN – LX20)

El control de calidad se realiza diariamente en todos los equipos, previo al

análisis de las muestras de pacientes.

Se utilizaron controles para ejecutar los chequeos de calidad en el sistema;

estos controles se procesan:

- Después de terminar los procedimientos diarios de puesta en marcha.

- Siempre que se cambia el número de lote del reactivo.

- Después de la calibración.

- Después de una visita del servicio técnico o de sustituir algún

componente.



Los controles son sustancias con concentraciones conocidas de al menos

dos niveles: uno que tenga en cuenta el nivel de decisión clínica, (que

permite diferenciar entre estados de salud y enfermedad) y otro que

monitorea niveles francamente patológicos.

Una vez procesado el control de calidad interno, este es interpretado por el

operador del equipo quien aplica los criterios de aceptación y rechazo que

luego son confirmados por un Supervisor de Procesos.

Solamente cuando los controles de calidad han sido aprobados las muestras

de pacientes podrán ser procesadas, caso contrario se establece un análisis

y la consecuente acción correctiva.

En la fase post-analítica, los resultados fueron validados, reportados

ingresados en el sistema SPS-S para el posterior análisis y discusión,

además los resultados fueron entregados al médico de la institución en

forma oportuna.

CONTROL INTERLABORATORIOS.

Para realizar este control se procedió a tomar por duplicado cada 50

muestras una adicional, tomándose un total de 5 muestras para ser

comparadas, las mismas que fueron enviadas al Laboratorio del Hospital

Militar; a continuación detallamos un cuadro comparativo de los resultados

obtenidos:



MUESTRA No. 50 RESULTADOS

BIOMETRÍA HEMÁTICA H.V.C.M. H.MILITAR UNIDADES

RECUENTO DE GLÓBULOS ROJOS 5`220.000 5'050.000 por mm3

RECUENTO DE GLÓBULOS BLANCOS 5.690 5.200 por mm3

RECUENTO DE PLAQUETAS 256.000 248.000 por mm3

HEMATOCRITO 42,7 42 %

HEMOGLOBINA 13,7 14 g/dl

FÓRMULA LEUCOCITARIA

NEUTRÓFILOS 48,5 52 %

LINFOCITOS 38,8 44 %

EOSINÓFILOS 3,36 2 %

BASÓFILOS 0,96

%

MONOCITOS 8,42 2 %

QUÍMICA SANGUINEA

GLUCOSA 99 94 mg%

ASTO 134 129 UI/ml.



RECUENTO DE GLÓBULOS ROJOS 5.200.000 4.800.000 por mm3




HEMOGLOBINA 14,6 15 g/dl





BASÓFILOS 0,68 0 %

MONOCITOS 6,78 1 %

QUÍMICA SANGUINEA

GLUCOSA 76 80 mg%

ASTO 58,40 49 UI/ml.








HEMATOCRITO 40 38 %

HEMOGLOBINA 12,8 12,6 g/dl





BASÓFILOS 1,02 0 %

MONOCITOS 7,21 1 %

QUÍMICA SANGUINEA

GLUCOSA 69 71 mg%

ASTO 110,00 93 UI/ml.



RECUENTO DE GLÓBULOS ROJOS 5'470.000 5.200.000 por mm3




HEMOGLOBINA 15 15,2 g/dl





BASÓFILOS 1,08 0 %

MONOCITOS 5,28 2 %

QUÍMICA SANGUINEA

GLUCOSA 92 87 mg%

ASTO 365,70 401 UI/ml.








HEMATOCRITO 44 43 %

HEMOGLOBINA 14,6 14,1 g/dl





BASÓFILOS 0,3 0 %

MONOCITOS 2,68 0 %

QUÍMICA SANGUINEA

GLUCOSA 86 80 mg%

ASTO 51,00 42 UI/ml.

4.8 PLAN DE ANÁLISIS DE LA INVESTIGACIÓN.

Para el análisis estadístico utilizamos el sistema informático SPSS versión

18 en español, creando en primer lugar las variables , luego introducimos

los datos registrados en cada formulario para realizar el análisis descriptivo

y las frecuencias de los resultados, empleando los siguientes estadígrafos:

media, mediana, moda, frecuencia, porcentaje, desvío estándar, valor

mínimo, valor máximo, el chi cuadrado.

Para la elaboración de los cuadros y gráficos (histogramas, diagrama de

cajas) utilizamos el Programa Excel.



CAPÍTULO V

5. RESULTADOS Y ANÁLISIS DE LA INFORMACIÓN.

En la presente investigación todos los estudiantes corresponden al sexo

femenino.

CUADRO No. 1

DISTRIBUCIÓN DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNI CO

REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN VESPERTINA. SEGÚN LA E DAD. CUENCA - 2011

EDAD (años) FRECUENCIA PORCENTAJE

12 31 12,4

13 50 20,0

14 61 24,4

15 55 22,0

16 36 14,4

17 17 6,8

TOTAL 250 100

FUENTE: Formularios de recolección de datos.

AUTORES: Los investigadores.

EDAD (años)

Media 14,3

Mediana 14,0

Moda 14,0

Desviación Típica 1,4

Varianza 2,0

Mínimo 12,0

Máximo 17,0

La edad predominante se encuentra entre 13 – 15 años, que representa el

66,4%.



GRÁFICO No. 1

FUENTE: Cuadro No. 1

DIAGRAMA DE CAJAS



CUADRO No. 2

DISTRIBUCIÓN DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉC NICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN VESPERTINA. SEGÚN LA T ALLA.

CUENCA - 2011

FUENTE: Formularios de recolección de datos. AUTORES: Los investigadores.

TALLA (metros)

Media 1,50

Mediana 1,50

Moda 1,60


Varianza 0,004

Mínimo 1,40

Máximo 1,70

La talla predominante se encuentra entre 1,51–1,60 metros que representa

el 59,6%.

TALLA (metros) FRECUENCIA PORCENTAJE

1,31 - 1,40 8 3,2

1,41 - 1,50 65 26

1,51 - 1,60 149 59,6

> 1,60 28 11,2

TOTAL 250 100



GRÁFICO No. 2


CURVA DE NORMALIDAD



DIAGRAMA DE CAJAS



CUADRO No. 3

DISTRIBUCIÓN DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNI CO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN VESPERTINA. SEGÚN EL P ESO.

CUENCA - 2011

PESO (Kg.) FRECUENCIA PORCENTAJE

< 31 6 2,4

31- 40 48 19,2

41 - 50 108 43,2

51 - 60 57 22,8

> 60 31 12,4

TOTAL 250 100


PESO (Kg.)

Media 48,9

Mediana 48,0

Moda 50,0


Varianza 102,0

Mínimo 27

Máximo 80

El peso predominante de los estudiantes se encuentra entre 41 – 60 Kg. que

representa el 66%.



GRÁFICO No. 3


CURVA DE NORMALIDAD



DIAGRAMA DE CAJAS



CUADRO No. 4

DISTRIBUCIÓN DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNI CO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN VESPERTINA. SEGÚN LA

RESIDENCIA. CUENCA - 2011

RESIDENCIA FRECUENCIA PORCENTAJE

URBANO 143 57,2

RURAL 107 42,8

TOTAL 250 100


La residencia predominante de los estudiantes es la urbana con el 57,2%.

GRÁFICO No. 4

Fuente: Cuadro No. 4



CUADRO No. 5

DISTRIBUCIÓN DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNI CO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN VESPERTINA. SEGÚN REC UENTO

DE GLÓBULOS BLANCOS. CUENCA - 2011

G. BLANCOS x mm3 FRECUENCIA PORCENTAJE

< 4000 1 0,4

4000 - 5999 56 22,4

6000 - 7999 136 54,4

8000 - 9999 44 17,6

> 9999 13 5,2

TOTAL 250 100


G. BLANCOS (xmm3)

Media 7211,4

Mediana 6990,0

Moda 5960,0


Varianza 2857344,5

Mínimo 3870,0

Máximo 17300,0

Valor Promedio 7211,4 ±106,9

El 54,4% de los estudiantes tienen valores de Glóbulos. Blancos entre 6000

– 7999 x mm3; el 0,4% tienen valores inferiores a 4000 x mm3. y el 5,2%

tiene valores superiores a 9999 x mm3



GRÁFICO No. 5


CURVA DE NORMALIDAD



DIAGRAMA DE CAJAS



CUADRO No. 6

DISTRIBUCIÓN DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNI CO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN VESPERTINA. SEGÚN

PORCENTAJE DE NEUTRÓFILOS. CUENCA - 2011

NEUTRÓFILOS % FRECUENCIA PORCENTAJE

< 21 5 2

21 - 30 13 5,2

31 - 40 15 6,0

41 - 50 80 32,0

51 - 60 76 30,4

61 - 70 47 18,8

>70 14 5,6

TOTAL 250 100



NEUTRÓFILOS (%)

Media 53,8

Mediana 53,6

Moda 46,1


Varianza 99,8

Mínimo 19,5

Máximo 80,6

Valor Promedio 53,6 ± 0,6

El 32% de los estudiantes tienen valores de Neutrófilos entre 41 – 50%; el

2% tienen valores menores al 21% y el 5,6% tienen valores mayores al

70%.



GRÁFICO No. 6


CURVA DE NORMALIDAD



DIAGRAMA DE CAJAS



CUADRO No. 7


PORCENTAJE DE LINFOCITOS. CUENCA - 2011

LINFOCITOS % FRECUENCIA PORCENTAJE

11 - 20 13 5,2

21 - 30 64 25,6

31 - 40 94 37,6

41 - 50 64 25,6

> 50 15 6

TOTAL 250 100


LINFOCITOS (%)

Media 35,8

Mediana 36,0

Moda 30,4


Varianza 81,6

Mínimo 14,0

Máximo 57,9


El 37,6% de los estudiantes tienen valores de Linfocitos entre 31 – 40%; el

5,2 % tienen entre 11 – 20%. y el 6% valores mayor al 50% de linfocitos.



GRÁFICO No. 7


CURVA DE NORMALIDAD



DIAGRAMA DE CAJAS



CUADRO No. 8


PORCENTAJE DE EOSINÓFILOS. CUENCA - 2011

EOSINÓFILOS % FRECUENCIA PORCENTAJE

0 - 1 % 123 49,2

2 - 3 % 77 30,8

4 - 5 % 18 7,2

> 5 % 32 12,8

TOTAL 250 100


El 80,0% de los estudiantes tienen valores de Eosinófilos entre 0 - 3% y el

12,8% valores mayor al 5% de eosinófilos.

EOSINÓFILOS (%)

Media 2,8

Mediana 2,1

Moda 1,5


Varianza 7,4

Mínimo 0,3

Máximo 24,3




GRÁFICO No. 8


CURVA DE NORMALIDAD



DIAGRAMA DE CAJAS



CUADRO No. 9


PORCENTAJE DE MONOCITOS. CUENCA - 2011

MONOCITOS % FRECUENCIA PORCENTAJE

< 4 10 4

4 - 5 72 28,8

6 - 7 58 23,2

> 7 110 44

TOTAL 250 100


MONOCITOS (%)

Media 6,6

Mediana 6,7

Moda 5,6


Varianza 2,8

Mínimo 0,0

Máximo 11,5


El 56% de los estudiantes tienen valores de monocitos entre 0 – 7% y el

44% valores mayor al 7% de monocitos



GRÁFICO No. 9


CURVA DE NORMALIDAD



DIAGRAMA DE CAJAS



CUADRO No. 10


PORCENTAJE DE BASÓFILOS. CUENCA - 2011

BASÓFILOS % FRECUENCIA PORCENTAJE

< 1 173 69,2

1 - 2 76 30,4

> 2 1 0,4

TOTAL 250 100


BASÓFILOS (%)

Media 0,8

Mediana 0,8

Moda 0,7

Desviación típica 0,4

Varianza 0,1

Mínimo 0,0

Máximo 3,8


El 99,6% de los estudiantes tienen valores de basófilos menor al 2% y el

0,4% valores mayores al 2% de basófilos.



GRÁFICO No. 10


CURVA DE NORMALIDAD



DIAGRAMA DE CAJAS



CUADRO No.11


DE GLÓBULOS ROJOS. CUENCA - 2011

G. ROJOS X 103 x mm3 FRECUENCIA PORCENTAJE

<4000 1 0,4

4000 - 4499 7 2,8

4500 - 4999 74 29,6

5000 - 5499 139 55,6

5500 - 5999 28 11,2

> 5999 1 0,4

TOTAL 250 100


GLÓBULOS ROJOS x103 xmm3

Media 5115,1

Mediana 5105,0

Moda 5080,0


Varianza 107068,6

Mínimo 3999,0

Máximo 6270,0


El 55,6% de los estudiantes tienen valores de Glóbulos Rojos entre 5000 –

5499 x103x mm3; el 0,4% tiene un valor inferior a 4000 x103x mm3 y el 0,4%

tiene valores superiores a 5999 x103 x mm3.



GRÁFICO No.11

FUENTE: Cuadro No.11

CURVA DE NORMALIDAD



DIAGRAMA DE CAJAS



CUADRO No.12


PORCENTAJE DE HEMATOCRITO. CUENCA - 2011

HEMATOCRITO % FRECUENCIA PORCENTAJE

< 35 2 0,8

35 - 39 8 3,2

40 - 44 139 55,6

45 - 49 101 40,4

TOTAL 250 100


HEMATOCRITO (%)

Media 44,1

Mediana 44,3

Moda 43,5


Varianza 5,9

Mínimo 33,2

Máximo 49,3

Valor promedio 44,1 ± 0,2

El 55,6% de los estudiantes tienen valores de Hematocrito entre 40 – 44%,

un 0.8% tienen valores inferiores al 35% de hematocrito.



GRÁFICO No. 12


CURVA DE NORMALIDAD



DIAGRAMA DE CAJAS



CUADRO No. 13

DISTRIBUCIÓN DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNI CO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN VESPERTINA. SEGÚN VAL OR DE

HEMOGLOBINA. CUENCA - 2011

HEMOGLOBINA gr/100ml. FRECUENCIA PORCENTAJE

< 8 2 0,8

8 – 10 43 17,2

11 - 13 202 80,8

14 - 16 3 1,2

TOTAL 250 100,0


HEMOGLOBINA (gr/100ml)

Media 14,6

Mediana 14,6

Moda 14,5


Varianza 0,8

Mínimo 10,0

Máximo 16,1


El 80,8% de los estudiantes tienen valores de Hemoglobina entre 11 - 13

gr/100 ml. y el 18% valores menores a 10 gr/100 ml.



GRÁFICO No. 13


CURVA DE NORMALIDAD



DIAGRAMA DE CAJAS



CUADRO No.14


DE PLAQUETAS. CUENCA - 2011

PLAQUETAS mm3 FRECUENCIA PORCENTAJE

< 150000 1 0,4

150000 - 249999 44 17,6

250000 - 349999 147 58,8

350000 - 449999 53 21,2

> 449999 5 2,0

TOTAL 250 100


PLAQUETAS (mm3)

Media 309731,2

Mediana 308000,0

Moda 307000,0


Varianza 3970929223,5

Mínimo 146000,0

Máximo 550000,0


El 58,8% de los estudiantes tienen valores de plaquetas entre

250000 – 349999 x mm3.; el 0,4% valores menores a 150000 x mm3 y el

2,0% valores mayores a 449999 x mm3.



GRÁFICO No. 14


CURVA DE NORMALIDAD



DIAGRAMA DE CAJAS



CUADRO No.15

DISTRIBUCIÓN DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNI CO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN VESPERTINA. SEGÚN VAL OR DE

GLUCOSA. CUENCA - 2011

GLUCOSA mg/100 ml FRECUENCIA PORCENTAJE

< 71 33 13,2

71 - 80 71 28,4

81 - 90 67 26,8

91 - 100 53 21,2

101 - 110 20 8

> 110 6 2,4

TOTAL 250 100



GLUCOSA (mg/100ml)

Media 84,6

Mediana 83,0

Moda 73,0


Varianza 150,0

Mínimo 58,0

Máximo 124,0


El 84,4% de los estudiantes tienen valores de Glucosa entre 71 – 110

mg/100 ml; el 13,2% tiene valores menores a 71 mg/100 ml. y el 2,4% tienen

valores superiores a 110 mg/100 ml.



GRÁFICO No. 15


CURVA DE NORMALIDAD



DIAGRAMA DE CAJAS



CUADRO No. 16

DISTRIBUCIÓN DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNI CO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN VESPERTINA. SEGÚN VALO R DE

ASTO. CUENCA - 2011

ASTO UI/ml FRECUENCIA PORCENTAJE

< 200 175 70

200 2 0,8

> 200 73 29,2

Total 250 100


ASTO (UI/ml)

Media 180,9

Mediana 116,9

Moda 29,7


Varianza 32326,4

Mínimo 9,2

Máximo 1139,6


El 70% de los estudiantes tienen valores de ASTO inferior a 200 UI/ml; el

29,2% tienen valores superiores a 200 UI/ml.



GRÁFICO No. 16


CURVA DE NORMALIDAD



DIAGRAMA DE CAJAS



CUADRO No. 17

DISTRIBUCIÓN DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNI CO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN VESPERTINA. SEGÚN ASPE CTO DE

LA ORINA. CUENCA - 2011

ASPECTO DE LA ORINA FRECUENCIA PORCENTAJE

TRANSPARENTE 196 78,4

LIG. TURBIO 50 20

TURBIO 4 1,6

TOTAL 250 100



El 78,4% de las muestras de orina son transparentes, el 1,6% son de

aspecto turbio.

GRÁFICO No. 17

Fuente : Cuadro No.17



CUADRO No. 18

DISTRIBUCIÓN DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNI CO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN VESPERTINA. SEGÚN pH E N

ORINA. CUENCA - 2011

pH DE ORINA FRECUENCIA PORCENTAJE

5,0 - 6,0 202 80,8

6,1 - 7,0 43 17,2

7,1 - 8,0 5 2

Total 250 100



GRÁFICO No. 18

El 98% de los estudiantes tienen el pH de la Orina entre 5,0 – 7,0



CUADRO No. 19

DISTRIBUCIÓN DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNI CO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN VESPERTINA. SEGÚN DENS IDAD

DE LA ORINA. CUENCA - 2011

DENSIDAD EN ORINA FRECUENCIA PORCENTAJE

1,001 - 1,010 56 22,4

1,011 - 1,020 143 57,2

1,021 - 1,030 51 20,4

TOTAL 250 100



El 100% de los estudiantes tienen la densidad de la orina entre 1,001 –

1,030.

GRÁFICO No. 19

Fuente: Cuadro No.19



CUADRO No. 20

DISTRIBUCIÓN DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNI CO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN VESPERTINA. SEGÚN PRES ENCIA

DE PROTEÍNAS EN ORINA. CUENCA - 2011

PROTEINAS EN ORINA FRECUENCIA PORCENTAJE

POSITIVO 5 2

NEGATIVO 245 98

TOTAL 250 100


El 98% de las muestras de los estudiantes no tienen presencia de proteínas;

el 2% tienen presencia de proteínas.

GRÁFICO No. 20




CUADRO No. 21


DE BILIRRUBINAS EN ORINA. CUENCA - 2011

BILIRRUBINAS EN ORINA FRECUENCIA PORCENTAJE

POSITIVO 1 0,4

NEGATIVO 249 99,6

TOTAL 250 100


El 99,6% de los estudiantes no tienen presencia de bilirrubinas en orina; el

0,4% tienen presencia de bilirrubinas.

GRÁFICO No. 21




.CUADRO No. 22


DE UROBILINÓGENO EN ORINA. CUENCA - 2011

UROBILINÓGENO EN ORINA FRECUENCIA PORCENTAJE

POSITIVO 1 0,4

NEGATIVO 249 99,6

TOTAL 250 100


El 99,6% de los estudiantes no tienen presencia de urobilinógeno en orina;

el 0,4% tienen presencia de urobilinógeno.

GRÁFICO No. 22

Fuente : Cuadro No. 22



CUADRO No. 23


DE SANGRE EN ORINA. CUENCA - 2011

SANGRE EN ORINA FRECUENCIA PORCENTAJE

POSITIVO 26 10,4

NEGATIVO 224 89,6

TOTAL 250 100



El 89,6% de las muestras no presentan sangre en orina y el 10,4%

presentan sangre.

GRÁFICO No. 23




CUADRO No. 24


DE HEMOGLOBINA EN ORINA. CUENCA - 2011

HEMOGLOBINA EN ORINA FRECUENCIA PORCENTAJE

POSITIVO 2 0,8

NEGATIVO 248 99,2

TOTAL 250 100


El 99,2% de las muestras no presentan hemoglobina en orina y el 0,8% si

presentan.

GRÁFICO No. 24




CUADRO No. 25


DE LEUCOCITOS EN ORINA. CUENCA - 2011

LEUCOCITOS EN ORINA FRECUENCIA PORCENTAJE

POSITIVO 21 8,4

NEGATIVO 229 91,6

TOTAL 250 100


El 91,6% de las muestras no presentan leucocitos en orina y el 8,4% si

presentan.

GRÁFICO No. 25




CUADRO No. 26


DE NITRITOS EN ORINA. CUENCA - 2011

NITRITOS EN ORINA FRECUENCIA PORCENTAJE

POSITIVO 4 1,6

NEGATIVO 246 98,4

TOTAL 250 100


El 98,4% de las muestras no presentan nitritos en orina y el 1,6% presentan

nitritos.

GRÁFICO No. 26




CUADRO No. 27


DE CÉLULAS EPITELIALES EN SEDIMENTO URINARIO. CUENCA - 2011

CÉLULAS EPITELIALES

EN SEDIMENTO URINARIO FRECUENCIA PORCENTAJE

+ 195 78,0

++ 53 21,2

+++ 2 0,8

TOTAL 250 100


El 99,2% de las muestras tienen de + a ++ de células epiteliales en el

sedimento urinario y el 0,8 % presenta tres cruces (+++).

GRÁFICO No. 27




CUADRO No. 28


DE LEUCOCITOS EN SEDIMENTO URINARIO. CUENCA - 2011

LEUCOCITOS


0 – 2 172 68,8

3 – 5 35 14

6 – 8 13 5,2

9 – 11 12 4,8

>11 18 7,2

TOTAL 250 100


El 87% de las muestras presentan de 0 – 8 leucocitos en el sedimento

urinario y el 12% presentan más de 9 leucocitos.

GRÁFICO No. 28




CUADRO No. 29


DE HEMATIES EN SEDIMENTO URINARIO. CUENCA - 2011

HEMATIES EN SEDIMENTO URINARIO FRECUENCIA PORCENTAJE

0 - 2 156 62,4

3 - 5 51 20,4

6 - 8 16 6,4

9 - 11 10 4

>11 17 6,8

TOTAL 250 100


El 82,8% de las muestras presentan de 0 - 5 hematíes por campo en el

sedimento urinario y el 17,2% más de 6 hematíes.

GRÁFICO No. 29




CUADRO No. 30


DE BACTERIAS EN SEDIMENTO URINARIO. CUENCA - 2011

BACTERIAS EN SEDIMENTO URINARIO FRECUENCIA PORCENTAJE

AUSENTES 112 44,8

+ 118 47,2

++ 14 5,6

+++ 6 2,4

TOTAL 250 100


El 90% de las muestras no tienen bacterias y el 10% presentan más de dos

cruces (++).

GRÁFICO No. 30




CUADRO No. 31


DE LEVADURAS EN SEDIMENTO URINARIO. CUENCA - 2011

LEVADURAS

EN SEDIMENTO URINARIO Frecuencia Porcentaje

AUSENTES 239 95,6

+ 9 3,6

++ 2 0,8

Total 250 100


El 95,6% de las muestras no presentan levaduras en el sedimento urinario y

el 4,4% si presentan.

GRÁFICO No. 31




CUADRO No. 32


DE CRISTALES EN SEDIMENTO URINARIO. CUENCA - 2011

CRISTALES


AUSENTES 230 92

OXALATO DE CALCIO 18 7,2

ACIDO URICO 2 0,8

TOTAL 250 100


El 92% de las muestras no presentan cristales en el sedimento urinario, el

7,2% presentan cristales de oxalato de calcio y el 0,8% cristales de ácido

úrico.

GRÁFICO No. 32




. CUADRO No. 33


DE CILINDROS EN SEDIMENTO URINARIO. CUENCA - 2011


El 98% de las muestras no tienen cilindros en el sedimento urinario y el 2%

presentan cilindros hialinos.

GRÁFICO No. 33


CILINDROS


AUSENTES 245 98

HIALINO 5 2

TOTAL 250 100



CUADRO No. 34


DE PARÁSITOS EN MUESTRA DE HECES. CUENCA - 2011

PARASITARIO FRECUENCIA PORCENTAJE

POSITIVO 76 30,4

NEGATIVO 174 69,6

TOTAL 250 100

FUENTE: Formularios de recolección de datos. AUTORES: Los investigadores. El 69,6% de las muestras de heces no presentan parásitos, el 30,4% tienen

parásitos.

GRÁFICO No. 34




CUADRO No. 35


DE QUISTES DE PROTOZOOS EN MUESTRAS DE HECES. CUENCA - 2011

QUISTES FRECUENCIA PORCENTAJE

AUSENTES 174 69,6

AMEBA HISTOLÍTICA 57 22,8

AMEBA COLI 1 0,4

GIARDIA LAMBLIA 3 1,2

ENTEROMONA 15 6

TOTAL 250 100


El 22,8% de las muestras presentan Ameba Histolítica, el 6,0% presentan

Enteromonas, el 1,2% tienen Giardia Lamblia y el 0,4% tienen Ameba Coli.

GRÁFICO No. 35




CUADRO No. 36


DE HUEVOS DE HELMINTOS EN MUESTRAS DE HECES. CUENCA - 2011

HELMINTOS (HUEVOS) FRECUENCIA PORCENTAJE

AUSENTES 249 99,6

ASCARIS LUMBRICOIDES 1 0,4

TOTAL 250 100

FUENTE: Formularios de recolección de datos. AUTORES: Los investigadores. El 0,4% de las muestras presentan Áscaris Lumbricoides.

GRÁFICO No. 36




CUADRO No. 37

RELACIÓN DE LOS VALORES DE GLÓBULOS ROJOS CON LA EDAD EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL TÉ CNICO

REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN VESPERTINA. CUENCA - 2011

G. ROJOS – EDAD

G. ROJOS x 103 mm3

EDAD

(años)

< 4000 4000 - 4499 4500 - 4999 5000 - 5499 5500 - 5999 >5999 Total

# % # % # % # % # % # % # %

12 0 0 0 0,0 6 19,4 19 61,3 5 16,1 1 3,2 31 100

13 0 0 1 2,0 14 28,0 25 50,0 10 20,0 0 0 50 100

14 0 0 3 4,9 18 29,5 34 55,7 6 9,8 0 0 61 100

15 0 0 1 1,8 19 34,5 30 54,5 5 9,1 0 0 55 100

16 1 2,8 2 5,6 11 30,6 21 58,3 1 2,8 0 0 36 100

17 0 0 0 0,0 6 35,3 10 58,8 1 5,9 0 0 17 100

Total 1 0,4 7 2,8 74 29,6 139 55,6 28 11,2 1 0,4 250 100

FUENTE: Formularios de recolección de datos. AUTORES: Los investigadores. El 2,8% de los estudiantes de 16 años tienen valores de glóbulos rojos

menor a 4000 x 103 x mm3, el 3,2% en la edad de 12 años tienen valores

mayores a 5999 x 103 x mm3.

El 61,3% que representa el mayor porcentaje en el rango de 5000 – 5499 x

103 x mm3 de glóbulos rojos corresponde a estudiantes de 12 años.

Chi – cuadrado: 0,401 (No Significativo).



GRÁFICO No. 37




CUADRO No. 38

RELACIÓN DE LOS VALORES DE GLÓBULOS ROJOS CON LA TALLA EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL T ÉCNICO


G. ROJOS – TALLA

G. ROJOS x 103 mm3

TALLA (m)

< 4000 4000 - 4499 4500 – 4999 5000 - 5499 5500 - 5999 > 5999 Total

# % # % # % # % # % # % # %

1,31 - 1,40 0 0 0 0 3 37,5 4 50,0 0 0 1 12,5 8 100

1,41 - 1,50 1 1,5 1 1,5 16 24,6 37 56,9 10 15,4 0 0 65 100

1,51 - 1,60 0 0 5 3,4 41 27,5 86 57,7 17 11,4 0 0 149 100

> 1,60 0 0 1 3,6 14 50,0 12 42,9 1 3,6 0 0 28 100

Total 1 0,4 7 2,8 74 29,6 139 55,6 28 11,2 1 0,4 250 100

FUENTE: Formularios de recolección de datos. AUTORES: Los investigadores. El 1,5% de los estudiantes con talla entre 1,41 – 1,50 metros tienen valores

de glóbulos rojos menor a 4000 x 103 x mm3, el 12,5% con talla entre 1,31 –

1,40 metros tienen valores mayores a 5999 x 103 x mm3.


103 x mm3 de glóbulos rojos corresponde a estudiantes con talla entre 1,51 –

1,60 metros.

Chi – cuadrado: 0 ,342 (No Significativo).



GRÁFICO No. 38




CUADRO No. 39

RELACIÓN DE LOS VALORES DE GLÓBULOS ROJOS CON EL PESO EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL T ÉCNICO


G. ROJOS – PESO

G. ROJOS x 103 mm3

PESO Kg

< 4000 4000 - 4499 4500 - 4999 5000 - 5499 5500 - 5999 > 5999 Total

# % # % # % # % # % # % # %

< 31 0 0 0 0 1 16,7 4 66,7 1 16,7 0 0 6 100

31- 40 0 0 0 0 14 29,2 29 60,4 5 10,4 0 0 48 100

41 - 50 0 0 4 3,7 31 28,7 57 52,8 15 13,9 1 0,9 108 100

51 - 60 1 1,8 2 3,5 17 29,8 34 59,6 3 5,3 0 0 57 100

> 60 0 0 1 3,2 11 35,5 15 48,4 4 12,9 0 0 31 100

Total 1 0,4 7 2,8 74 29,6 139 55,6 28 11,2 1 0,4 250 100


El 1,8% de los estudiantes con peso entre 51 – 60 Kg. tienen valores de

glóbulos rojos menor a 4000 x 103 x mm3, el 0,9% con peso entre 41 – 50

Kg. tienen valores mayores a 5999 x 103 x mm3.


103 x mm3 de glóbulos rojos corresponde a estudiantes con peso menor a 31

Kg.




GRÁFICO No. 39




CUADRO No. 40

RELACIÓN DE LOS VALORES DE GLÓBULOS BLANCOS CON LA EDAD EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL TÉ CNICO


G. BLANCOS - EDAD

G. BLANCOS xmm3

EDAD (años)

< 4000 4000 - 5999 6000 - 7999 8000 - 9999 9999 Total

# % # % # % # % # % # %

12 0 0 7 22,6 16 52 5 16 3 9,7 31 100

13 0 0 13 26 26 52 7 14 4 8 50 100

14 1 1,6 13 21,3 30 49 14 23 3 4,9 61 100

15 0 0 11 20 33 60 9 16 2 3,6 55 100

16 0 0 8 22,2 24 67 3 8,3 1 2,8 36 100

17 0 0 4 23,5 7 41 6 35 0 0 17 100

Total 1 0,4 56 22,4 136 54 44 18 13 5,2 250 100


El 1,6% de los estudiantes de 14 años tienen valores de glóbulos blancos

menor a 4000 x mm3; el 9,7% en la edad de 12 años tienen valores mayores

a 9999 x mm3.

El 67% que representa el mayor porcentaje en el rango de 6000 – 7999 x

mm3. de glóbulos blancos corresponde a estudiantes de 16 años.




GRAFICO No. 40




CUADRO No. 41

RELACIÓN DE LOS VALORES DE GLÓBULOS BLANCOS CON LA TALLA EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL T ÉCNICO

REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN VESPERTINA. CUENCA - 2011.

G. BLANCOS - TALLA

G. BLANCOS xmm3

TALLA (m)

< 4000 4000 - 5999 6000 - 7999 8000 - 9999 > 9999 Total

# % # % # % # % # % # %

1,31 - 1,40 0 0,0 2 25,0 3 37,5 1 12,5 2 25,0 8 100

1,41 - 1,50 0 0,0 13 20,0 39 60,0 11 16,9 2 3,1 65 100

1,51 - 1,60 1 0,7 35 23,5 79 53,0 26 17,4 8 5,4 149 100

> 1,60 0 0,0 6 21,4 15 53,6 6 21,4 1 3,6 28 100

Total 1 0,4 56 22,4 136 54,4 44 17,6 13 5,2 250 100


El 0,7% de los estudiantes con talla entre 1,51 – 1,60 metros tienen valores

de glóbulos blancos menor a 4000 x mm3, el 25% con talla entre 1,31 – 1,40

metros tienen valores mayores a 9999 x mm3.

El 60% que representa el mayor porcentaje en el rango de 6000 – 7999 x

mm3.de glóbulos blancos corresponde a estudiantes con talla entre 1,41 –

1,50 metros.




GRÁFICO No. 41




CUADRO No. 42

RELACIÓN DE LOS VALORES DE GLÓBULOS BLANCOS CON EL PESO EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL TÉ CNICO


G. BLANCOS - PESO

G. BLANCOS xmm3

PESO Kg

< 4000 4000 - 5999 6000 - 7999 8000 - 9999 > 9999 Total

# % # % # % # % # % # %

< 31 0 0 0 0 5 83,3 1 16,7 0 0 6 100

31- 40 0 0 13 27,1 24 50 7 14,6 4 8,3 48 100

41 - 50 1 0,9 30 27,8 58 53,7 17 15,7 2 1,9 108 100

51 - 60 0 0 9 15,8 37 64,9 8 14 3 5,3 57 100

> 60 0 0 4 12,9 12 38,7 11 35,5 4 13 31 100

Total 1 0,4 56 22,4 136 54,4 44 17,6 13 5,2 250 100



glóbulos blancos menor a 4000 x mm3, el 8,3% con peso entre 31 – 40 Kg.

tienen valores mayores a 9999 x mm3 de glóbulos blancos.

El 83.3% que representa el mayor porcentaje en el rango de 6000 – 7999 x

mm3.de glóbulos blancos corresponde a estudiantes con peso menor a 31

Kg.

Chi – cuadrado: 0,086 (No Significativo)



GRÁFICO No. 42




CUADRO No. 43

RELACIÓN DE LOS VALORES DE HEMATOCRITO CON LA EDAD EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL TÉ CNICO


HEMATOCRITO - EDAD

HEMATOCRITO %

EDAD (años)

< 35 35 - 39 40 - 44 45 - 49 Total

# % # % # % # % # %

12 0 0 0 0 12 38,7 19 61,3 31 100

13 0 0 2 4 25 50,0 23 46 50 100

14 0 0 3 4,9 38 62,3 20 32,8 61 100

15 1 1,8 1 1,8 34 61,8 19 34,5 55 100

16 0 0 2 5,6 21 58,3 13 36,1 36 100

17 1 5,9 0 0 9 52,9 7 41,2 17 100

Total 2 0,8 8 3,2 139 55,6 101 40,4 250 100

FUENTE: Formularios de recolección de datos. AUTORES: Los investigadores. El 1,8% de los estudiantes de 15 años tienen valores de hematocrito menor

a 35%

El 62.3% que representa el mayor porcentaje en el rango entre 40 – 44% de

hematocrito corresponde a estudiantes de 14 años.




GRÁFICO No. 43




CUADRO No. 44

RELACION DE LOS VALORES DE HEMATOCRITO CON LA TALLA EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL T ÉCNICO


HEMATOCRITO - TALLA

HEMATOCRITO %

TALLA (m)

< 35 35 - 39 40 - 44 45 - 49 Total

# % # % # % # % # %

1,31 - 1,40 0 0,0 0 0,0 4 50,0 4 50,0 8 100

1,41 - 1,50 1 1,5 1 1,5 32 49,2 31 47,7 65 100

1,51 - 1,60 1 0,7 6 4,0 84 56,4 58 38,9 149 100

> 1,60 0 0,0 1 3,6 19 67,9 8 28,6 28 100

Total 2 0,8 8 3,2 139 55,6 101 40,4 250 100


El 1,5% de los estudiantes de 15 años con talla entre 1,41 – 1,50 metros

tienen valores de hematocrito menor a 35%

El 67,9% que representa el mayor porcentaje en el rango entre 40 – 44% de

hematocrito corresponde a estudiantes con talla mayor a 1,60 metros.




GRÁFICO No. 44




CUADRO No. 45

RELACIÓN DE LOS VALORES DE HEMATOCRITO CON EL PESO EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL TÉ CNICO


HEMATOCRITO - PESO

HEMATOCRITO %

PESO Kg

< 35 35 - 39 40 - 44 45 - 49 Total

# % # % # % # % # %

< 31 0 0 0 0 3 50 3 50 6 100

31- 40 1 2,1 3 6,3 23 47,9 21 43,8 48 100

41 - 50 0 0 2 1,9 62 57,4 44 40,7 108 100

51 - 60 1 1,8 2 3,5 33 57,9 21 36,8 57 100

> 60 0 0 1 3,2 18 58,1 12 38,7 31 100

Total 2 0,8 8 3,2 139 55,6 101 40,4 250 100

Fuente: Formularios de recolección de datos. Autores: Los investigadores.


hematocrito menor a 35%

El 58,1% que representa el mayor porcentaje en el rango entre 40 – 44% de

hematocrito corresponde a estudiantes con peso mayor a 60 Kg.




GRÁFICO No. 45




CUADRO No. 46

RELACIÓN DE LOS VALORES DE HEMOGLOBINA CON LA EDAD EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL TÉ CNICO


HEMOGLOBINA - EDAD

HEMOGLOBINA gr/100 ml

EDAD (años)

< 8 8 - 10 11 - 13 14 - 16 Total

# % # % # % # % # %

12 0 0 4 12,9 26 83,9 1 3,2 31 100

13 0 0 8 16 42 84,0 0 0 50 100

14 0 0 14 23,0 46 75,4 1 1,6 61 100

15 1 1,8 9 16,4 44 80,0 1 1,8 55 100

16 0 0 7 19,4 29 80,6 0 0 36 100

17 1 5,9 1 5,9 15 88,2 0 0 17 100

Total 2 0,8 43 17,2 202 80,8 3 1,2 250 100


El 23% de los estudiantes de 14 años tienen valores de hemoglobina menor

a 11 gr/100ml.

El 88,2% que representa el mayor porcentaje en el rango entre 11 – 13

gr/100ml. de hemoglobina corresponde a estudiantes de 17 años.




GRÁFICO No. 46




CUADRO No. 47

RELACIÓN DE LOS VALORES DE HEMOGLOBINA CON LA TALLA EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL T ÉCNICO


HEMOGLOBINA - TALLA


TALLA (metros)

< 8 8 - 10 11 - 13 14 - 16 Total

# % # % # % # % # %

1,31 - 1,40 0 0,0 1 12,5 7 87,5 0 0,0 8 100

1,41 - 1,50 1 1,5 8 12,3 55 84,6 1 1,5 65 100

1,51 - 1,60 1 0,7 28 18,8 118 79,2 2 1,3 149 100

> 1,60 0 0,0 6 21,4 22 78,6 0 0,0 28 100

Total 2 0,8 43 17,2 202 80,8 3 1,2 250 100


El 21,4% de los estudiantes con talla mayor a 1,60 metros tienen valores de

hemoglobina menor a 11 gr/100ml.


gr/100ml. de hemoglobina corresponde a estudiantes con talla entre 1,31 -

1,40 metros.




GRÁFICO No. 47




CUADRO No. 48

RELACIÓN DE LOS VALORES DE HEMOGLOBINA CON EL PESO EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL TÉ CNICO


HEMOGLOBINA - PESO


PESO Kg

< 8 8 - 10 11 - 13 14 - 16 Total

# % # % # % # % # %

< 31 0 0,0 3 50,0 3 50,0 0 0,0 6 100

31- 40 1 2,1 8 16,7 39 81,3 0 0,0 48 100

41 - 50 0 0,0 17 15,7 90 83,3 1 0,9 108 100

51 - 60 1 1,8 9 15,8 47 82,5 0 0,0 57 100

> 60 0 0,0 6 19,4 23 74,2 2 6,5 31 100

Total 2 0,8 43 17,2 202 80,8 3 1,2 250 100


El 50% de los estudiantes con peso menor a 31 Kg. tienen valores de

hemoglobina menor a 11 gr/100ml.


gr/100ml. de hemoglobina corresponde a estudiantes con peso entre 41 – 50

Kg.




GRÁFICO No. 48




CUADRO No. 49

RELACIÓN DE LOS VALORES DE GLUCOSA CON LA EDAD EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL TÉ CNICO


GLUCOSA – EDAD

GLUCOSA mg /100 ml

EDAD (años)

< 71 71 - 80 81 - 90 91 - 100 101 - 110 > 110 Total

# % # % # % # % # % # % # %

12 6 19,4 8 25,8 7 22,6 7 22,6 2 6,5 1 3,2 31 100

13 10 20,0 14 28,0 11 22,0 9 18,0 6 12,0 0 0,0 50 100

14 8 13,1 14 23,0 19 31,1 15 24,6 4 6,6 1 1,6 61 100

15 7 12,7 13 23,6 15 27,3 12 21,8 5 9,1 3 5,5 55 100

16 1 2,8 16 44,4 10 27,8 6 16,7 3 8,3 0 0,0 36 100

17 1 5,9 6 35,3 5 29,4 4 23,5 0 0,0 1 5,9 17 100

Total 33 13,2 71 28,4 67 26,8 53 21,2 20 8,0 6 2,4 250 100

FUENTE: Formularios de recolección de datos. AUTORES: Los investigadores. El 20% de los estudiantes de 13 años tienen valores de glucosa menor a

71mg/100ml.; el 5,9% de los estudiantes de 17 años tienen valores de

glucosa mayor a 110 mg/100 ml.


mg/100ml. de glucosa corresponde a estudiantes de 16 años.




GRÁFICO No. 49




CUADRO No. 50

RELACIÓN DE LOS VALORES DE GLUCOSA CON LA TALLA EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL T ÉCNICO


GLUCOSA - TALLA

GLUCOSA mg/100 ml

TALLA (m)

< 71 71 - 80 81 – 90 91 - 100 101 - 110 > 110 Total

# % # % # % # % # % # % # %

1,31 - 1,40 2 25,0 2 25,0 2 25,0 1 12,5 1 12,5 0 0,0 8 100

1,41 - 1,50 7 10,8 25 38,5 18 27,7 11 16,9 4 6,2 0 0,0 65 100

1,51 - 1,60 21 14,1 35 23,5 43 28,9 35 23,5 12 8,1 3 2,0 149 100

> 1,60 3 10,7 9 32,1 4 14,3 6 21,4 3 10,7 3 10,7 28 100

Total 33 13,2 71 28,4 67 26,8 53 21,2 20 8,0 6 2,4 250 100

FUENTE: Formularios de recolección de datos. AUTORES: Los investigadores. El 25% de los estudiantes con talla entre 1,31 – 1,40 metros tienen valores

de glucosa menor a 71mg/100ml.; el 10,7% de los estudiantes con talla

mayor a 1,60 metros tienen valores de glucosa mayor a 110 mg/100 ml.


mg/100ml. de glucosa corresponde a estudiantes de con talla entre 1,41 –

1,50 metros.




GRÁFICO No. 50




CUADRO No. 51

RELACIÓN DE LOS VALORES DE GLUCOSA CON EL PESO EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL TÉ CNICO


GLUCOSA -PESO

GLUCOSA mg/100 ml

PESO Kg

< 71 71 - 80 81 – 90 91 - 100 101 - 110 > 110 Total

# % # % # % # % # % # % # %

< 31 1 16,7 3 50,0 2 33,3 0 0,0 0 0,0 0 0,0 6 100

31- 40 13 27,1 11 22,9 10 20,8 8 16,7 5 10,4 1 2,1 48 100

41 - 50 10 9,26 30 27,8 37 34,3 26 24,1 4 3,7 1 0,9 108 100

51 - 60 5 8,77 18 31,6 10 17,5 13 22,8 8 14,0 3 5,3 57 100

> 60 4 12,9 9 29,0 8 25,8 6 19,4 3 9,7 1 3,2 31 100

Total 33 13,2 71 28,4 67 26,8 53 21,2 20 8,0 6 2,4 250 100

FUENTE: Formularios de recolección de datos. AUTORES: Los investigadores. El 27,1% de los estudiantes con peso entre 31 – 40 Kg. tienen valores de

glucosa menor a 71mg/100ml.; el 5,3% de los estudiantes con peso entre 51

– 60 Kg. tienen valores de glucosa mayor a 110 mg/100 ml.

El 50% que representa el mayor porcentaje en el rango entre 71 – 80

mg/100ml. de glucosa corresponde a estudiantes de con peso menor a 31

Kg.




GRÁFICO No. 51




CUADRO No. 52

RELACIÓN DE LA PRESENCIA DE PARÁSITOS CON LA RESIDE NCIA EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL TÉCNICO REPÚBL ICA

DE ISRAEL, SECCIÓN VESPERTINA. CUENCA - 2011

PARASITARIO

POSITIVO NEGATIVO TOTAL

RESIDENCIA # % # % # %

URBANO 37 25,9 106 74,1 143 100

RURAL 39 36,4 68 63,6 107 100

TOTAL 76 30,4 174 69,6 250 100


El 36,4% de los estudiantes que habitan en el área rural, y el 25,9% de los

que habitan en el área urbana presentan parasitosis.

GRÁFICO No. 52




CUADRO No. 53

RELACIÓN DE LOS VALORES DE ASTO CON LA RESIDENCIA ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL TÉCNICO REPÚBLICA DE

ISRAEL, SECCIÓN VESPERTINA. CUENCA 2011

ASTO

< 200 200 > 200 Total

Residencia # % # % # % # %

Urbano 102 71,3 0 0 41 28,7 143 100

Rural 73 68,2 2 1,9 32 29,9 107 100

Total 175 70 2 0,8 73 29,2 250 100


El 28,7% de los que residen en el área urbana y el 29,9% de los que residen

en el área rural presentan valores de ASTO mayor a 200 UI/ml.

GRÁFICO No. 53




CAPÍTULO VI

6.1 DISCUSIÓN.

Según estudios realizados en 960 escolares y adolescentes en Medellín-

Colombia, definen como anemia a concentraciones de hemoglobina

menores a 12 gr/dl., mostrando valores promedio de 14,2 ± 1,3 gr/dl, en

adolescentes entre 13 y 17 años presentaron el 32.7% de anemia.

En Cuba, estudios efectuados en adolescentes de 12 a 18 años registraron

un 43% de anemia, en Argentina el 18% y en Perú el 12,1%.

Un estudio realizado en 74 adolescentes entre 14 y 19 años del sexo

femenino, el 48,65% presentaron anemia. (Datos publicados en la Revista

Chilena de Nutrición.)

En nuestra investigación el 18% presentan valores inferiores a 11 gr/100ml.

con un valor promedio de 14,6 ± 0,1 gr/100ml. con estos datos podemos

evidenciar que hay cierta similitud con estudios efectuados, en los países

latinoamericanos antes mencionados.

En Lima Perú en un estudio realizado a 277 adolescentes entre 12 y 17 años

de edad, en donde se valoró la glicemia en ayunas, se determinó que ningún

adolescente presentó valores ≥ a 110mg/100ml.

En Venezuela en estudios realizados a 418 niños y adolescentes (191

varones y 227 mujeres) entre 7 y 15 años de edad, se determinó que no

existen diferencias significativas entre edades o género en las

concentraciones de glucosa, se registraron valores que van de 73,59 - 83,86

mg/dl.



En Chiapas México en un estudio realizado a 259 adolescentes de 12 a 14

años de edad, no se registraron valores ≥ a 110mg/100ml.

En el presente estudio se determinó un valor promedio de 84,6 ± 0,8

mg/100ml de glucosa, registrándose un 2,4% de casos con valores mayores

a 110mg/100ml.

En un estudio realizado en México en 218 adolescentes entre 12 y 18 años

clínicamente sanos, registraron valores de ASTO entre 20 – 1390 UI/ml.

En México en 87 sueros de donadores clínicamente sanos (69 hombres y 18

mujeres) se determinó la presencia de antiestreptolisina O registrándose un

valor promedio de 88 ± 9,3 UI/ml. un valor mínimo de 25 UI/ml y un máximo

de 675 UI/ml.

En Venezuela un estudio realizado a 177 niños entre 5 y 13 años, el 61%

presentó valores de ASTO entre 0 – 200 UI/ml. y el 39% valores mayor a

200 UI/ml.

En el presente estudio el 70% tienen valores normales de ASTO menor a

200 UI/ml., el 29,2% valores mayor a 200 UI/ml., con un valor promedio de

180,9 ± 11,4 UI/ ml.

En Veracruz – México, para detectar alteraciones en el examen general de

orina se realizó un estudio a 4.016 alumnos en edades comprendidas entre

15 – 19 años, 2.158 (53,7%) mujeres y 1.858 (46,3%) hombres, en donde el

90% de los alumnos obtuvieron un resultado normal en los parámetros que

evalúa el examen general de orina. El 79,3% presentaron un aspecto

transparente, el 20,7% ligeramente turbio, con respecto al pH 87,5%

correspondió a menor o igual a 6. Con lo referente a los resultados

comprendidos en la parte química del análisis de orina, el 99.9% de los

alumnos registraron un glucosa normal, el 92.5% obtuvieron un resultado



negativo para las proteínas; el 78.8% mostró un resultado negativo para las

bilirrubinas, 79.6% presentó un urobilinógeno menor o igual a 0.2; el 97.9%

registró un resultado negativo para nitritos, el 85.5% mostró cifras negativas

para cetonas y, por último, el 67.9% obtuvo un resultado negativo para

hemoglobina y un 23.1% indicó un resultado “alto” para este parámetro.

En este estudio los parámetros evaluados en el examen de orina reflejaron

los siguientes porcentajes: el 78,4% presentó un aspecto transparente, el

60,4% con pH de 5.1 – 7, el 57,2% con densidad entre 1,011 – 1,020; el 98%

no presentó proteínas, el 99,6% no mostró presencia de bilirrubinas, el

99,6% registró un resultado negativo para urobilinógeno, el 89,6% no

presentó sangre, el 99,2% no registró presencia de hemoglobina, el 91,6%

dio negativo para leucocitos, el 98,4% no presentó nitritos, valores que

concuerdan con el estudio anterior.

En Mendoza – Argentina se realizó un estudio a 221 niños y adolescentes

entre 1 – 14 años (91 hombres y 127 mujeres), la prevalencia de parasitosis

fue del 80,5%; de las muestras parasitadas el 54,9% presentó Blastocystis

hominis, el 13,1% Giardia Lamblia, el 18,3% Entoameba coli.

En el Estado Sucre en Venezuela se realizó un estudio con el objetivo de

determinar la prevalencia de parasitosis intestinal en niños (6-14 años). El

78% de los niños presentó infestación parasitaria siendo los de 9-11 años los

más afectados. Se observó predominio de protozoarios sobre helmintos. La

mayor prevalencia fue para las especies de protozoarios Blastocystis

hominis (36%) y Giardia lamblia (18,76%) y de los helmintos Trichuris

trichiura (38,70%) y Ascaris lumbricoides (22%) (Ramos y Salazar, 1997).

En Anzoategui – Venezuela un estudio realizado en 49 muestras de

escolares con edad entre 5 – 15 años, el 63,3% presentaron parásitos, se

observó mayor frecuencia de protozoarios, siendo la más prevalente la



Giardia Lamblia (53,15%). Los helmintos se encontraron en menor

proporción, 4,1% de Ascaris lumbricoides y 6,1% de Trichuris trichura.

En el presente estudio se detectó el 30,4% de muestras parasitadas,

encontrándose el 22% de Ameba histolítica, el 0,4% de Ameba coli, el 1,2%

de Giardia Lamblia, el 6% de Enteromona intestinal, la incidencia de las

clases de parásitos encontrados en este estudio no coinciden con los

encontrados en las investigaciones mencionadas.



6.2 CONCLUSIONES.

1. La muestra de estudio estuvo conformada por 250 estudiantes

pertenecientes al Colegio Nacional Técnico República de Israel, Sección

Vespertina. El 100% fueron de sexo femenino, la edad predominante se

encuentra entre 13 – 15 años constituyendo el 66,4% con un valor promedio

de 14,3 años; la talla predominante fue de 1,51 – 1,60 metros que

representa el 59,6% con un promedio de 1,50 metros, el peso predominante

oscila entre 41 – 60 Kg. que representa el 66%. con un promedio de 48,9 Kg.

2. En cuanto al hemograma: en el recuento de glóbulos blancos el valor

promedio es de 7211,4 ± 106,9 x mm3; el 0,4% tiene valores inferiores a

4000 x mm3 y el 5,2% tienen valores superiores a 9999 x mm3. En el

recuento de glóbulos Rojos el valor promedio es de 5115,1 ± 20,7 x 103 x

mm3; el 0,4% tienen valores inferiores a 4000 x 103 x mm3., el 0,4% de

estudiantes presentan valores superiores a 6000 x 103 x mm3.; el valor

promedio de Hematocrito es de 44,1% ± 0,2; el 0,8% de los estudiantes

presentan valores inferiores al 35%; el valor promedio de Hemoglobina es de

14,6 ± 0,1 gr./100ml.; el 18% de los estudiantes tienen valores menores a 10

gr./100 ml.

3. En la dosificación de glucosa el valor promedio es de 84,6 ± 0,8

mg/100ml.; el 2,4% de los estudiantes tienen valores superiores a 110

mg/100ml. y el 13,2% valores inferiores a 71 mg/100 ml.

4. En el análisis del ASTO el valor promedio es de 180,9 ± 11,4 UI/ml.; el

29,2% de los estudiantes presentan valores superiores a 200 UI/ml.

5. En el análisis de orina el 78,4% de la muestras fueron de aspecto

transparente; el 60,4% con un pH entre 5,1 – 7; el 57,2% de las muestras

con una densidad entre 1,011 – 1,020; el 98% de las muestras no

presentaron proteínas, el 99,6% no presentaron bilirrubinas; el 99,6% no



presentaron urobilinógeno; el 89,6% no presentaron sangre; el 99,2% no

tuvieron la presencia de hemoglobina; el 91,6% no presentaron leucocitos;

en el 98,4% no se evidenció presencia de nitritos.

En el sedimento urinario el 99,2% de las muestras presentaron valores

normales (+/++) de células epiteliales, para leucocitos con valores normales

el 88% (0 – 8 por campo)) y el 12% tienen valores mayor a 9 por campo; el

82,8% tienen valores normales de hematíes (0 – 5 por campo) y el 17,2%

valores mayor a 6 por campo; el 97,6% de las muestras presentaron

bacterias hasta (++) y el 2,4% presentan más de (+++).

6. Coproparasitario en el 69,6% de las muestras no hubo presencia de

parásitos. El 20,4% de los estudiantes tienen parasitosis; de las muestras

parasitadas el 22,8% corresponden a ameba histolítica; el 6% a

enteromonas, el 1,2% a giardia lamblia; el 0,4% a ameba coli y el 0,4% a

áscaris lumbricoides.

7. En cuanto a la correlación de los resultados con las variables edad, talla,

peso no se encontraron relaciones significativas.



6.3 RECOMENDACIONES.

• Continuar con estas Líneas de Investigación, aplicándose en otros

establecimientos educativos de nivel primario, medio y superior.

• Trabajar en coordinación con la Facultad de Medicina formando

verdaderos equipos interdisciplinarios de salud que proporcionen

atención primaria, beneficiando de esta manera a los sectores más

necesitados.

• Que la Escuela de Tecnología Médica amplíe las investigaciones en las

comunidades involucrando a todos los estudiantes de las diferentes

áreas.

• Se recomienda difundir los resultados obtenidos en el presente trabajo

de investigación.



CAPÍTULO VII

7. CITAS BIBLIOGRAFÍCAS.

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30. Op.Cit. PAGANA PAGANA, “Guía de Pruebas Diagnósticas y de

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ANEXOS

ANEXO 1

CONSENTIMIENTO INFORMADO

“VALORACION DEL ESTADO DE SALUD DE ESTUDIANTES

SECUNDARIOS DEL AREA DE INFLUENCIA DEL CENTRO DE SAL UD

No. 2 MEDIANTE PRUEBAS DE LABORATORIO CLINICO CUENCA 2011”

El Área de Laboratorio Clínico de la Facultad de Ciencias Médicas de la Universidad de

Cuenca, con el fin de hacer un aporte a la comunidad tiene programado desarrollar un

trabajo investigativo, mediante pruebas básicas de laboratorio que proporcionará

información sobre el estado funcional del organismo de los estudiantes secundarios de los

colegios pertenecientes al Área de Salud No. 2, por esta razón los estudiantes del Colegio

Nacional Técnico República de Israel serán beneficiados con la realización de exámenes de

sangre, orina y heces sin costo alguno para el estudiante.

Previo a los exámenes se entregará los recipientes respectivos para la recolección de las

muestras de orina y heces, las que deberán ser recolectadas el día que vayan a ser

entregadas. El día señalado tendrán que acudir en ayunas a las 7H30 al establecimiento

educativo, en dónde se procederá a receptar las muestras de sangre y también se recibirá

las muestras de orina y heces y se valorará el peso y talla de cada estudiante.

Los resultados de los exámenes son de carácter confidencial y serán entregados después

de 48 horas posteriores a la realización de los mismos.

Por esta razón solicitamos su consentimiento y colaboración para que su representado sea

beneficiario de éste proyecto de salud.

Datos del Estudiante:

Nombres: ………………………………………………………………………………………

Apellidos: ..…………………………………………………………………………………….

Edad:……………………… Curso: ………………………………………………….

Firma del estudiante: …………………………………………………………………

Yo……………………………………………………………………Autorizo para que mi

representado se realice los exámenes de laboratorio.

Firma del Representante: …………………………………………………………………..

Cuenca, Marzo de 2011.



ANEXO 2

ASENTIMIENTO INFORMADO

“VALORACION DEL ESTADO DE SALUD DE ESTUDIANTES

SECUNDARIOS DEL AREA DE INFLUENCIA DEL CENTRO DE SAL UD

No. 2 MEDIANTE PRUEBAS DE LABORATORIO CLINICO CUENCA 2011”

El Área de Laboratorio Clínico de la Facultad de Ciencias Médicas de la Universidad de

Cuenca, con el fin de hacer un aporte a la comunidad tiene programado desarrollar un

trabajo investigativo, mediante pruebas básicas de laboratorio que proporcionará

información sobre el estado funcional del organismo de los estudiantes secundarios de los

colegios pertenecientes al Área de Salud No. 2, por esta razón los estudiantes del Colegio

Nacional Técnico República de Israel serán beneficiados con la realización de exámenes de

sangre, orina y heces sin costo alguno para el estudiante.

Previo a los exámenes se entregará los recipientes respectivos para la recolección de las

muestras de orina y heces, las que deberán ser recolectadas el día que vayan a ser

entregadas. El día señalado tendrán que acudir en ayunas a las 7H30 al establecimiento

educativo, en dónde se procederá a receptar las muestras de sangre y también se recibirá

las muestras de orina y heces y se valorará el peso y talla de cada estudiante.

Los resultados de los exámenes son de carácter confidencial y serán entregados después

de 48 horas posteriores a la realización de los mismos. Por esta razón solicitamos su

consentimiento y colaboración.

Yo entiendo que mis padres han sido informados previamente sobre mi participación en este

estudio. Además que voy a ser sometido a ciertas pruebas que no tienen riesgo alguno y

también que no tengo que gastar ningún dinero por dichas pruebas.

Yo…..……..………………………………………………………………………………………

libremente y sin ninguna presión acepto participar en este estudio. Estoy de acuerdo con la

información que he recibido.

Firma del estudiante: ……………………………………………………………………

Cuenca, Marzo de 2011.



ANEXO 3

OPERACIONALIZACION DE VARIABLES

VARIABLE CONCEPTO DIMENSION INDICADOR ESCALA

Edad Es el período comprendido desde

el nacimiento de una persona hasta el momento actual

Años cumplidos

Cédula o Carnet

estudiantil

12 -13

14 -15

16 -17

Sexo Condición orgánica y genética de los seres vivos, que distingue un

individuo de otro Género Observación

del fenotipo

Masculino

Femenino

Talla Longitud de una persona tomada

desde la planta de los pies hasta el vértice de la cabeza.

Alto Normal

Bajo

Medición de la talla (m.) Tallímetro

< 1,31

1,31 – 1,40

1,41 – 1,50

1,51 - 1,60

>1,60

Peso Cantidad de masa corporal de una persona expresada en kg.

Obeso Sobrepeso Mediano

Bajo

Medición del peso (Kg.)

balanza

< 31

31 – 40

41 – 50

51 – 60

>60

Residencia Lugar geográfico donde las personas se asientan. Urbano/Rural Información

directa

Urbano

Rural

Hematocrito Representa la proporción de eritrocitos en el total de la sangre.

Alto Normal

Bajo Porcentaje (%)

< 35

35 – 39

40 – 44

45 – 49

50 – 54

>54

Hemoglobina Componente Proteico de los

glóbulos rojos formando anillos tetrapirrólicos.

Alto Normal

Bajo gr/dl.

< 8

8 – 10

11 – 13

14 – 16

17 – 19

>19

Recuento de glóbulos blancos

Es la cantidad de glóbulos blancos existentes en un milímetro cúbico

de sangre

Alto Normal

Bajo

Cantidad x mm3

< 4.000

4.000 – 5.999

6.000 – 7.999

8.000 – 9.999

>10.000



Formula Leucocitaria

Mide el porcentaje presente de cada tipo de leucocitos en el total

de glóbulos blancos.

Alto Normal

Bajo Porcentaje (%)

Neutrófilos

<21

21 – 30

31 – 40

41 – 50

51 – 60

>60

Eosinófilos

0 – 1

2 – 3

4 – 5

>5

Linfocitos

< 11

11 – 20

21 – 30

31 – 40

41 – 50

>50

Monocitos

<4

4 – 5

6 – 7

>7

Basófilos

<1

1 – 2

>2

Recuento de eritrocitos

Es la cantidad de glóbulos rojos existentes en un milímetro cúbico

de sangre

Alto Normal

Bajo

Cantidad x 103 x mm3

< 4.000

4.000 - 4.499

4.500 - 4.999

5.000 - 5.499

5.500 – 5.999

>5.999

Plaquetas

Fragmentos de citoplasma de megacariocitos, que circulan como

pequeños discos en la sangre periférica.

Alto Normal

Bajo

Cantidad x mm3

<150.000

150.000 – 249.999

250.000 – 349.999

350.000 – 449.999

>449.999

Glucosa

Es una hexosa constituida por 6 carbonos, 12 hidrógenos y 6 oxígenos. Es una sustancia

orgánica productora de energía.

Alto Normal

Bajo mg/100ml.

< 71

71 – 80

81 – 90

91 – 100

101 – 110

>110



ASTO

La antiestreptolisina es un antígeno que reacciona en presencia de los

anticuerpos (estreptolisinas) existentes en el suero del paciente.

Alto Normal

Bajo UI/ml.

<200

200

>200

Elemental de orina

Es la evaluación física, química y microscópica de la orina. Dicho

análisis consta de muchos exámenes para detectar y medir diversos compuestos que salen a

través de la orina.

Normal

Aspecto

Transparente

Ligeramente Turbio

Turbio

Densidad

1,001 – 1,010

1,011 – 1,020

1,021 – 1,030

pH

< 5

5,1 – 6,0

6,1 – 7,0

7,1 – 8,0

>8,0

Leucocitos Nitritos

Proteínas Glucosa

C. Cetónicos Urobilinógeno

Bilirrubina Sangre

Hemoglobina

Positivo

Negativo

Células Epiteliales

Ausentes

+

++

+++

Leucocitos Eritrocitos

0-2

3 – 5

6 – 8

9 – 11

>11

Bacterias Filamentos de

mucina Levaduras

Ausentes

+

++

+++

Cristales

Ausentes

Uratos amorfos

Fosfatos amorfos

Oxalato de calcio

Ácido Úrico

Otros

Cilindros

Ausentes

Hialinos

Granulosos

Hemáticos

Leucocitarios

Céreos

Mixtos



Coproparasitario

Es un análisis en el laboratorio clínico de la materia fecal para

verificar la presencia de parásitos o de una infección en el intestino causada por microorganismos.

Normal

Consistencia

Líquida

Semilíquida

Blanda

Dura

Parásitos Presentes

Ausentes

Protozoarios Trofosoitos A.histolytica

Giardia Lamblia

Trichomona intestinal Quistes

A.histolytica A.coli

Giardia lamblia

Enteromona Helmintos Huevos y Larvas: Ascaris

Lumbricoides Tricocéfalo

Tenias Strongyloides

+

++

+++

Leucocitos Eritrocitos

+

++

+++

Levaduras y Monillas

+

++

+++



ANEXO 4

FECHA:

NOMBRES: EDAD:

APELLIDOS: SEXO:

DOMICILIO: TALLA:

TELÉFONO: URBANO: RURAL: PESO:

C.I.:

COLEGIO:

CURSO: VARONES: MUJERES: MIXTO:

DIRECCIÓN DEL COLEGIO: TELÉFONO:

UNIVERSIDAD DE CUENCAFACULTAD DE CIENCIAS MÉDICAS

ESCUELA DE TECNOLOGÍA MÉDICA

Av. 12 de Abril Sector el Paraiso, Telf. 4051155

FORMULARIO No.

FIRMA DE RESPONSABILIDAD

ÁREA DE LABORATORIO CLÍNICO



FECHA:

NOMBRE DEL PACIENTE:

RESULTADOS UNIDADES

por mm3

por mm3

por mm3

%

g/dl

%%%%%

QUÍMICA SANGUINEAmg%

UI/ml

ANÁLISIS DE ORINA RESULTADOS

FIRMA DE RESPONSABILIDAD:

70-110

<200

60-7020-30

1-50-11-8


FACULTAD DE CIENCIAS MÉDICASESCUELA DE TECNOLOGÍA MÉDICA, ÁREA DE LABORATORIO CLÍNICO

VALORES REFERENCIALES

H: 5.000.00-5.500.000

M: 4.500.000-5.000.000

RESULTADOS

LINFOCITOS

Av. 12 de Abril Sector el Paraiso, Telf. 4051155

BIOMETRÍA HEMÁTICA

RECUENTO DE GLÓBULOS ROJOS

RECUENTO DE GLÓBULOS BLANCOS

RECUENTO DE PLAQUETAS

HEMATOCRITO

HEMOGLOBINAFÓRMULA LEUCOCITARIANEUTRÓFILOS

5.000-10.000

150.000-400.000H: 42-48

M: 36-42H: 14-16

M;12-14

EOSINÓFILOSBASÓFILOSMONOCITOS

GLUCOSA

ASTO

pHDENSIDAD

OLORASPECTO

VOLUMENCOLOR

GLUCOSACUERPOS CETÓNICOSPROTEINASBILIRRUBINAS

CONSISTENCIA

UROBILINÓGENOSANGREHEMOGLOBINALEUCOCITOSNITRITOS

COPROPARASITARIO RESULTADOSCOLOROLOR

LEVADURASFLORA BACTERIANA

RESULTADOS

HEMATÍES (POR CAMPO)

SEDIMENTO URINARIO

MOCORESTOS MACROSCÓPICOSPARÁSITOS

CÉLULAS EPITELIALES

CILINDROSCRISTALES

BACTERIASLEUCOCITOS (POR CAMPO)

ANEXO 5



ANEXO 6



ANEXO 7

universidad de cuenca -...

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