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RESUMEN

Durante la realización de esta tesis se investigaron los valores

hematológicos, bioquímicos, elemental microscópico de orina y

coproparasitario, en estudiantes de 12 a 17 años de la ciudad de Cuenca

– Ecuador 2010 – 2011; estos valores serán referentes para el personal

de salud, para mejorar el diagnóstico y tratamiento de las diferentes

enfermedades.

Se trabajó con una muestra de 250 adolescentes del colegio Nacional

República de Israel sección nocturna de esta ciudad.

El procesamiento de las muestras se realizó en el Laboratorio Clínico del

Hospital Regional Vicente Corral Moscoso, se utilizó para química

sanguínea el equipo CelDin Química SanguineSynchron, un contador

hematológico CELL–DYN 3700 SYSTEM versión 1,3 del software, en la

lectura de los hemogramas, y el Microscopio OLYMPUS para el análisis

de orina y en la revisión de heces.

El valor promedio de glóbulos rojos obtenidos en nuestra investigación

varía de 4.500.000 a 5.4999.000xmm3, el valor de glóbulos blancos

obtenidos va de 6.000 a 7.999xmm3, el valor de plaquetas de 250.000 a

349.999 x mm3, el valor de hemoglobina de 14 a 16 gr%, el valor de

hematocrito de 40 a 44%, los Neutrófilos de 51 a 60%, Linfocitos 31 a

40%, Monocitos mayor a 4%, Basófilos 1 a 2%, Eosinófilos mayor a 2%,

el valor de glucosa obtenido es de 71 a 100 mg/dl, y de ASTO menor a

200 UI/l.

Todos estos valores obtenidos se encuentran en relación a la edad, sexo

y talla de los adolescentes estudiados.

Palabras clave: hemoglobina, hematocrito, glóbulos rojos, glóbulos

blancos, glucosa, ASTO.

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DeCS: Técnicas y Procedimientos de Laboratorio - Estadística y datos

numéricos; Estado de Salud; niño; adolescente; estudiantes; Cuenca-

Ecuador.

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INDICE

CONTENIDO Pág.

DEDICATORIA i

AGRADECIMIENTO ii

RESUMEN iii

ÍNDICE iv

CAPÍTULO I

1.1 INTRODUCCIÓN 1

1.2 PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA 3

1.3 JUSTIFICACION 5

CAPITULO II

2. FUNDAMENTO TEORICO

6

2.1. Generalidades. 6

2.2. Hemograma. 6

2.2.1. Formación de células sanguínea. 7

2.2.2. Glóbulos rojos. 8

2.2.3. Hemoglobina. 9

2.2.4. Hematocrito. 10

2.2.5. Glóbulos blancos. 11

2.2.6. Plaquetas. 15

2.3. Componentes químicos séricos. 16

2.3.1. Glucosa. 16

2.3.2. ASTO. 17

2.4. Análisis de orina . 18

2.4.1. Examen físico. 19

2.4.2. Examen Químico. 21

2.4.3. Examen del sedimento urinario. 27

2.5. Coproparasitario. 35

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2.5.1. Caracteres Macroscópicos.

36

2.5.2. Examen microscópico. 38

2.6. Personas en estudio. 38

2.7. Medio geográfico donde se realizó la investigación Cuenca – Ecuador.

43

CAPITULO III

3. OBJETIVOS. 45

3.1. Objetivo general. 45

3.2. Objetivos específicos. 45

CAPITULO IV

4. METODOLOGIA. 46

4.1. Tipo de estudio. 46

4.2. Universo. 46

4.3. Muestra. 46

4.4. Criterios de inclusión. 47

4.5. Criterios de exclusión. 47

4.6. Métodos, técnicas, y procedimientos. 47

4.6.1. Cumplimiento objetivo 1. 47

4.6.2. Cumplimiento objetivo 2. 47

4.7. Técnicas y Equipos. 48

4.7.1. Técnicas hematológicas. 48

4.7.2. Pruebas Químicas. 53

4.7.2.1. Glucemia. 53

4.7.2.2. ASTO. 54

4.8. Uroanálisis. 56

4.9. Coproanálisis. 56

4.10. Equipos de laboratorio clínico utilizados en la investigación. 57

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4.11. Control de calidad de los resultados. 58

4.12. Control de calidad inter-laboratorio. 58

4.13. Resultados comparativos obtenidos en el control de calidad. 58

4.14. Controles de calidad del equipo hematológico. 62

4.15. Controles de calidad de temperaturas. 62

CAPITULO V

5. ANÁLISIS DE RESULTADOS. 63

CAPITULO VI

6.1. DISCUSIONES. 126

6.2. CONCLUSIONES. 128

6.3. RECOMENDACIONES. 129

CAPITULO VII

7. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS.

130

CAPITULO VIII

8. ANEXOS. 135

8.1. Consentimiento informado. 135

8.2. Asentimiento firmado. 137

8.3. Ficha del estudiante. 139

8.4. Hoja de reporte de resultados. 140

8.5. Recursos. 141

8.6. Financiamiento. 141

8.7. Mapa.

142

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FACULTAD DE CIENCIAS MÉDICAS

ESCUELA DE TECNOLOGÍA MÉDICA

“PRUEBAS BÁSICAS DE LABORATORIO CLÍNICO EN ESTUDIANTES

SECUNDARIOS DEL COLEGIO NACIONAL REPUBLICA DE ISRAEL,

SECCIÓN NOCTURNA, DEL ÁREA DE INFLUENCIA DEL CENTRO

DE SALUD №2 DE LA CIUDAD DE CUENCA, 2011.

TESIS PREVIA A LA OBTENCIÓN DEL

TÍTULO DE LICENCIATURA EN

LABORATORIO CLINICO

AUTORES:

ELSA MOLINA

SANDRA MORA

ALEXANDRA ORTEGA

DIRECTOR:

Lcdo. Mauricio Baculima

ASESOR METODOLÓGICO:

Dr. José Cabrera V.

Dr. Hugo Cañar

CUENCA – ECUADOR

2010 – 2011

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RESPONSABLES

Licenciado Mauricio Baculima Profesor de la Escuela de Tecnología

Médica de la Facultad de Ciencias Médicas de la Universidad de Cuenca,

Director de Tesis, certifica que el presente trabajo cumple con los

requisitos para obtener el grado en Licenciatura de Laboratorio Cínico.

Lcdo. Mauricio Baculima.

ELSA FRANCISCA MOLINA LIMA SANDRA MARISOL

MORA MOLINA

ROSA ALEXANDRA ORTEGA SANCHEZ

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AGRADECIMIENTO

Al finalizar este trabajo que para muchos de nosotros ha sido más que un

reencuentro de compañeros y amigos, volver a compartir tantas tristezas

y alegrías, agradecemos a Dios que nos puso nuevamente en este

camino, a toda nuestra familia a nuestras hijas que nos han servido de

fuerza y razón para terminar esta nueva etapa de nuestra vida

profesional.

A los directores de este trabajo investigativo: Dr. José Cabrera, Dr. Hugo

Cañar, por el apoyo incondicional brindado para llevar a cabo esta

investigación.

A los maestros que a lo largo de este año nos supieron guiar con

conocimientos, experiencias, y paciencia para poder alcanzar la meta

propuesta.

Un agradecimiento a toda nuestra familia, quienes han sido un gran apoyo

e incentivo para llegar a esta realidad.

De manera especial un sincero agradecimiento a todas las personas que

de una u otra forma colaboraron para la realización de nuestra tesis. A

todos ellos.

¡Gracias por habernos permitido llevar a cabo este Proyecto!

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DEDICATORIA

Este trabajo está dedicado para el amor de mi vida, mi hija Andreina que

con paciencia y comprensión supo esperar mi ausencia, a mi familia que

me apoyo y en especial a Jenny, Carlos y Farida que me ayudaron en

todo este proceso.

Gracias.

Elsa Molina Lima.

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DEDICATORIA

Este proyecto es dedicado especialmente a mis hijas Micaela y Camila

por su paciencia y comprensión que me han tenido día a día y a toda mi

familia que de una u otra manera me han apoyado para cumplir esta

nueva meta.

Gracias.

Sandra Mora Molina.

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DEDICATORIA

Este trabajo está dedicado de manera especial a mis hijas Ana

Karina y Maricela Fernanda, mi razón de vivir y respirar, a mi esposo

Marco Núñez, que con su amor y paciencia nunca dejo que me rindiera, a

mis padres y hermanas quienes desde el primer momento me apoyaron a

seguir adelante, a toda mi familia que siempre han sido un refugio ante

cada dificultad.

Gracias.

Alexandra Ortega Sánchez.

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SUMARY

During the realization of this thesis investigated the hematological values

chemical, elemental and urine microscopic coproparasitario in students of

12 and 17 years in the city of Cuenca - Ecuador from 2010 to 2011, these

values will be related to health personnel to improve diagnosis and

treatment of various diseases.

We worked with a sample of 250 adolescents in the Republic of Israel

National Association, section of the city night.

The processing of the draw, was performed in the Clinical Laboratory

Vicente Corral Moscoso Hospital, was used for blood chemistry chemical

equipment Sanguine Synchron Cell Dyn, a hematological counter CELL’

DYN 3700 System version 1,3 of the software, the reading of blood counts

and the Olympus microscope for analysis of urine an feces in the review.

The average value obtainer in our red cell research varies 5.4999.000 x

mm3 of 4.500.000 x mm3, to the value of white blood cells obtained ranges

from 6.000 to 7.999 x mm3, the value of 250.000 to 349.999 x mm3

platelets, hemoglobin level of 14 to 16gr/dl, the hematocrit value from to

40 to 44%, greather than 45 monocytes, basophiles 1 to 2%, the glucose

value obtained is 71 to 100 mg/dl, and the ASTO least 200 UI/l.

All these values were found in relationship at the age, sex, and height of

adolescents studied.

Keywords: hemoglobin, hematocrit, red cells, white blood cells, glucose,

ASTO.

DeCS: Laboratory Techniques and Procedures-statistics & numerical

data; Health Status; child; adolescent; students; Cuenca-Ecuador.

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CAPITULO I

1.2. INTRODUCCIÓN

La salud es hoy en día un derecho fundamental, uno de los más claros

síntomas de calidad de vida de la población. (1)

La salud y desarrollo de los adolescentes (10 a 19 años) y de los

jóvenes (15 a 24 años) es un elemento clave para el progreso social,

económico y político de todos los países.

La adolescencia es un periodo formativo crucial que moldea la manera

como los niños y las niñas vivirán sus años adultos, no solo en relación

con su salud sexual y reproductiva, sino también en su vida productiva,

social y económica.

Es importante atender los aspectos relacionados con las sociedades de

hoy y del futuro y acompañar las tendencias demográficas y sanitarias

actuales. (2)

Según estimaciones del Fondo de Población de Naciones Unidas

(UNFPA, 2009) la población mundial de adolescentes entre 10 y 19 años

se encuentra próxima a los 1.200 millones de personas, lo que representa

un 19% del total de la población mundial. (3)

Es por esta razón que se ha escogido al grupo de adolescentes

comprendidos en las edades de 12 a 17 años como universo y muestra

para la determinación de valores referenciales de pruebas bioquímicas,

hematológicas, elemental microscópico de orina y examen

coproparasitario en nuestro medio.

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La definición de salud según la OMS (Organización Mundial de la Salud)

se define como el completo bienestar físico, mental y social; y no

solamente la ausencia de enfermedad, las pruebas bioquímicas y

hematológicas sirven para determinar el estado de salud de las personas;

un examen de laboratorio clínico se considera normal cuando los valores

se encuentran dentro de un rango referencial. (4)

En nuestro medio se utilizan rangos obtenidos de investigaciones

realizadas en otros países, mas no a nuestra realidad geográfica, étnica,

social y económica, situaciones que podrían modificar el diagnóstico

establecido por el médico ante un valor dado. (5)

Nuestro estudio está basado en los siguientes exámenes:

Hemograma: Es uno de los exámenes de laboratorio que más se solicitan,

comprende: determinación de recuento de glóbulos rojos, recuento

glóbulos blancos, hematocrito, hemoglobina, recuento de plaquetas,

neutrófilos, linfocitos, monocitos, eosinófilos y basófilos, parámetros que

proporcionan individualmente o en conjunto un enorme valor

diagnóstico. (6)

Glucosa: Que constituye la principal fuente de energía para el

metabolismo celular. (7)

Antiestreptolisina-O ó ASTO: Es una exoenzima inmunogénica tóxica

producida por el estreptococo β-hemolítico de los grupos A, C y G. Tiene

la propiedad de producir hemólisis cuando se pone en contacto con

glóbulos rojos. (8).

Elemental microscópico de orina: Ya que es parte fundamental del

organismo, ha sido considerada desde el siglo V antes de Cristo como

elemento diagnóstico de múltiples enfermedades. (9)

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El examen coproparasitario: Es un conjunto de técnicas diagnósticas que

constituyen un método eficaz para la identificación de la mayoría de las

enteroparasitosis motivadas por protozoarios o helmintos. (10)

1.3. PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA

Las pruebas de laboratorio clínico, son de gran importancia para la

prevención, diagnóstico, tratamiento y seguimiento de las enfermedades

que afectan al ser humano.

Los valores de estas pruebas permiten determinar el estado de salud de

una persona, la normalidad o anormalidad de la misma, se establece en

base a rangos referenciales que se manejan tanto en los laboratorios

clínicos como en los consultorios médicos; estos rangos referenciales

utilizados en nuestro medio son obtenidos de investigaciones realizados

en otros países, hasta la actualidad no existe un criterio unánime a la

hora de aplicar los mismos. (11)

El propósito de esta investigación es poder aportar un referente para la

elaboración de valores referenciales aplicables a nuestro medio.

En Estados Unidos el valor referencial de hemoglobina en hombres de 12

a 17 años es de 13,0 – 18,0 g/dl, mientras que en mujeres va de 12,0 –

16,0 g/dl. En Brasil se encontraron valores en mujeres 14,2 – 18,0 g/dl, y

en varones de 16,0 – 20,0 g/dl, En Argentina de 13,6 – 17,2 g/dl. (12)

En el Perú se obtuvo los siguientes valores para hematocrito: hombres de

43 - 53%. En Medellín - Colombia el valor referencial de hematocrito es 43

- 49%. En la mayoría de los casos los valores dependen de la edad y del

sexo, así como de la altitud geográfica. (13)

En estudio realizados en Perú se determinó los valores referenciales de

glóbulos rojos en hombres: 4.5 - 5.8 millones x mm3; en Perú se registran

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valores de 3,9 - 6,0 millones x mm3, en mujeres de 3,3 - 4,7 millones x

mm3; en Venezuela hombres de 4,3 - 5,6 millones x mm3, mujeres de 3,9 -

5,2 millones x mm3.

En Argentina recuento eritrocitario, 4,2 - 5,9 millones x mm3. (14).

EL recuento de glóbulos blancos en Venezuela va de 3.800 a 10.100 x

mm3, en México de 3.500 a 7.500 x mm3, en Chile 4.000 a 9.000 x mm3

en Argentina de 5.000 a 8.000 x mm3, en Perú de 5.000 a 10.000 x mm3,

en Brasil de 3.500 a 9.000 x mm3, en Bolivia de 4.800 a 10.800 x mm3, en

Colombia de 3.500 a 11.000 x mm3, en España de 4.500 a 7.500 x mm3 y

en Nueva York - Estados Unidos de 3.480 a 10.500 x mm3.(15)

Con respecto a la fórmula leucocitaria en Argentina los valores

referenciales son: Linfocitos 25 – 35%; Monocitos 4 – 8%; Neutrófilos 55 –

65%; Eosinófilos 0,5 – 4,0% y Basófilos 0,2%, en Perú Linfocitos 25 –

33%; Monocitos 3 – 7%; Neutrófilos 45 – 62%; Eosinófilos 1 – 2% y

Basófilos 0 – 1%; en Chile Linfocitos 30 – 45%; Monocitos 5 – 7%;

Neutrófilos 50 – 65 %; Eosinófilos 1 – 5% y Basófilos 0 – 1% ; en España

Linfocitos 20 – 40%; Monocitos 2 – 8%; Neutrófilos 55 – 70%; Eosinófilos

1 – 4,0% y Basófilos 0,5 – 1% ; en Nueva York – Estados Unidos

Linfocitos 22 – 44%; Monocitos 0 – 7%; Neutrófilos 40 – 60 %; Eosinófilos

0 – 4,0% y Basófilos 0–1%.(16)

En cuanto a la glucosa en Estados Unidos el valor referencial varia de 70

a 110 mg/dl, mientras que en Perú los valores van de 75 a 110 mg/dl, en

general en la mayoría de países se maneja un rango promedio, la

variación va de 70 a 115 mg/dl. (17)

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1.4. JUSTIFICACIÓN

La investigación se realizó en una muestra representativa seleccionada

de manera aleatoria en estudiantes de 12 a 17 años, aparentemente

sanos, para el análisis de las muestras se contó con personal calificado,

un laboratorio con tecnología de punta, certificado y la utilización de

reactivos de calidad.

Esta investigación servirá de base para futuras investigaciones

vinculadas al área de Laboratorio Clínico, servirá de enorme beneficio

para el paciente, quien recibirá mayores beneficios cuando los médicos y

el personal de salud comparen los resultados de sus análisis

hematológicos y bioquímicos, orina y heces con los valores de referencia

encontrados en esta investigación.

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CAPITULO II

2. FUNDAMENTO TEÓRICO.

2.1 SANGRE.

La sangre es un tejido fluido que circula por capilares, venas y arterias, su

color es rojo característico debido a la presencia del pigmento

hemoglobínico contenido en los eritrocitos.

Es un tipo de tejido conjuntivo especializado, con una matriz coloidal

líquida y una constitución compleja. Tiene una fase sólida (elementos

formes, que incluye a los glóbulos blancos, los glóbulos rojos y las

plaquetas) y una fase líquida, representada por el plasma sanguíneo.

Su función principal es la logística de distribución e integración sistémica,

cuya contención en los vasos sanguíneos (espacio vascular) admite su

distribución (circulación sanguínea) hacia casi todo el cuerpo.

Representa aproximadamente el 7% del peso de un cuerpo humano

promedio.

Así, se considera que un adulto tiene un volumen de sangre (volemia) de

aproximadamente seis litros, de los cuales 2,7 litros son plasma

sanguíneo. (18)

En la sangre se analizó los siguientes parámetros:

2.2 HEMOGRAMA.

Es uno de los análisis de laboratorio más frecuentemente solicitado por

los médicos para el diagnóstico, evaluación y seguimiento de muchos

padecimientos, especialmente en los casos de enfermedades

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Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 19

hematológicas. Además de servir para monitorear los valores de los

diferentes elementos de la sangre cuando así se requiera.

Actualmente el hemograma o biometría hemática se realiza a través de

equipos automatizados, como los utilizados en los diferentes laboratorios,

los cuales en corto tiempo proporcionan al médico 25 o más parámetros,

contando con la observación del laboratorista clínico, quien revisa al

microscopio las posibles anormalidades de las diferentes líneas celulares

al enviar el equipo diferentes banderas de alarma.

Los parámetros de los que consta en el hemograma automatizado son los

siguientes: WBC (contaje de glóbulos blancos), DLC (contaje diferencial

de blancos tanto absoluto como relativo), RBC (recuento de glóbulos

rojos), HGB (hemoglobina), HCT (hematocrito), VCM (volumen

corpuscular medio), MCH (hemoglobina corpuscular media), HCMC

(concentración media de hemoglobina corpuscular), RDW (ancho de

distribución de glóbulos rojos), PLT (plaquetas), MVP (volumen

plaquetario medio), PDW (ancho de distribución plaquetario), RC (contaje

de reticulocitos),(19)

Es importante tener en cuenta que los elementos celulares que se

encuentran en la sangre no siempre reflejan la verdadera situación de los

órganos productores de las células sanguíneas, por lo que, en muchas

ocasiones, el médico solicita otros estudios para llevar a cabo un

diagnóstico.

El hemograma completo (por su sigla en inglés es CBC) es una prueba de

laboratorio en la que se van a cuantificar y evaluar diferentes grupos

celulares, las glóbulos rojos (eritrocitos), los glóbulos blancos (leucocitos),

las plaquetas, el contenido de hemoglobina, y otros parámetros

relacionados con su cantidad, forma y contenido.

Utilidad Clínica.

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Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 20

Ayuda a diagnosticar problemas específicos de la sangre, la anemia y

otros trastornos como determinados cánceres y leucemias; permite

monitorizar la pérdida de sangre y la respuesta de un paciente a la

quimioterapia y la radioterapia; permite a demás sospechar de cuadros

agudos infecciosos y/o inflamatorios, y así, su utilidad clínica resulta

invaluable. (20)

2.2.1. FORMACIÓN DE LAS CÉLULAS SANGUÍNEAS

Las células sanguíneas se encuentran suspendidas por todo el cuerpo,

las encontramos en la sangre, recorriendo los tejidos, desde los más

pequeños, hasta los más grandes y complejos, por una especie de

tubería denominada venas y arterias, son muy importantes, puesto que

cada grupo de ellas se encarga de realizar un trabajo diferente en el

organismo.

Los progenitores de las plaquetas, hematíes, granulocitos y monocitos

realizan todo su proceso de crecimiento y diferenciación en la médula

ósea, englobando por ello todos estos procesos dentro del nombre de

mielopoyesis. A diferencia de lo que ocurre con los demás tipos celulares

de la sangre, los linfocitos también se multiplican y diferencian fuera de la

médula ósea y a este proceso se le llama linfopoyesis. (21).

2.2.2. GLÓBULOS ROJOS.

Los eritrocitos, (también llamados glóbulos rojos o hematíes), son los

elementos formes cuantitativamente más numerosos de la sangre. La

hemoglobina es uno de sus principales componentes, y su objetivo es

transportar el oxígeno hacia los diferentes tejidos del cuerpo.

Valores referenciales:

Hombre 4,5 a 5 millones x mm3.

Mujer 4,2 a 5,2 millones x mm3 .(22)

Morfología.

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El eritrocito es un disco bicóncavo de más o menos 7 a 7,5 μm de

diámetro y de 80 a 100 fL de volumen, usualmente viven algo más de 120

días antes de que sea sistemáticamente reemplazado por nuevos

eritrocitos creados en el proceso de eritropoyesis.

Hematopoyesis.

Los eritrocitos derivan de las células madre comprometidas denominadas

hemocitoblasto. La eritropoyetina, una hormona de crecimiento producida

en los tejidos renales, estimula a la eritropoyesis.

Las etapas de desarrollo morfológico de la célula eritroide incluyen (en

orden de madurez creciente) las siguientes etapas:

Proeritroblasto.

Eritroblasto basófilo.

Eritroblasto policromatófilo.

Eritroblasto ortocromático.

Reticulocito.

Hematíe, (carece de núcleo y mitocondrias).

Metabolismo.

A medida que la célula madura, la producción de hemoglobina aumenta,

lo que genera un cambio en el color del citoplasma en las muestras de

sangre teñidas con la tinción de Wright, de azul oscuro a gris rojo y

rosáceo. El núcleo paulatinamente se vuelve picnótico, y es expulsado

fuera de la célula en la etapa ortocromática.

La membrana del eritrocito en un complejo bilipídico–proteínico, el cual es

importante para mantener la deformabilidad celular y la permeabilidad

selectiva.

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La hemólisis es la destrucción de los eritrocitos envejecidos y sucede en

los macrófagos del bazo e hígado. Los elementos esenciales, globina y

hierro, se conservan y vuelven a usarse. La fracción hemo de la molécula

se cataboliza a bilirrubina y a biliverdina, y finalmente se excreta a través

del tracto intestinal.

La rotura del eritrocito a nivel intravascular libera hemoglobina

directamente a la sangre, donde la molécula se disocia en dímeros α y β,

los cuales se unen a la proteína de transporte, haptoglobina. Ésta

transporta los dímeros al hígado, donde posteriormente son catabolizados

a bilirrubina y se excretan. (23)

2.2.3. HEMOGLOBINA (Hb).

La hemoglobina (a menudo abreviada como Hb) es una heteroproteína de

la sangre, de masa molecular 64.000 (64 kDa), de color rojo

característico, que transporta el oxígeno desde los órganos respiratorios

hasta los tejidos, en vertebrados y algunos invertebrados, es un pigmento

de color rojo, que al interaccionar con el oxígeno toma un color rojo

escarlata, que es el color de la sangre arterial y al perder el oxígeno toma

un color rojo oscuro, que es el color característico de la sangre

venosa.(24)

Valores referenciales

En la sierra:

Hombre: de 14.0 a 17.2 g/dl

Mujer: de 13.0 a 16.0 g/dl

En la costa: baja de 1,0 a 2,0 g. En relación a los anteriores ya que

depende de la presión de oxígeno. (25)

Estructura Química.

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La forman cuatro cadenas polipeptídicas (globinas) a cada una de las

cuales se une un grupo hemo, cuyo átomo de hierro es capaz de unir de

forma reversible una molécula de oxígeno.

El grupo hemo está formado por:

• Unión del succinil-CoA (formado en ciclo de Krebs o ciclo del ácido

cítrico) al aminoácido glicina formando un grupo pirrol.

• Cuatro grupos pirrol se unen formando la protoporfirina IX.

• La protoporfirina IX se une a un ión ferroso (Fe2+) formando el

grupo hemo.

Cuando la hemoglobina tiene unido oxígeno se denomina oxihemoglobina

o hemoglobina oxigenada, cuando pierde el oxígeno, se denomina

hemoglobina reducida o desoxihemoglobina y presenta el color rojo

oscuro de la sangre venosa (se manifiesta clínicamente por cianosis).

Funciones.

Transporte del oxígeno de los pulmones a los tejidos y el bióxido de

carbono de los tejidos a los pulmones.

Participación en la regulación ácido - básica eliminando CO2 en los

pulmones y amortiguando los cambios de pH por acción de los grupos

histidinaimidazol de la hemoglobina. (26)

Utilidad clínica.

El cuadro más comúnmente relacionado con la disminución de la

hemoglobina es la anemia. Esta patología significa la reducción del

número de glóbulos rojos, en la cantidad de hemoglobina y el volumen

globular.

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Existen situaciones que por lo contrario la concentración de hemoglobina

se encuentra anormalmente elevada, debido a una superior producción de

glóbulos rojos. Estos trastornos pueden ser primarios como en el caso de

la policitemia vera o secundarios a cierto tumores renales, ováricos,

hematomas e hidronefrosis. (27)

2.2.4. HEMATOCRITO (Hto).

El hematocrito es el porcentaje que ocupan los glóbulos rojos en un

volumen determinado de sangre centrifugada.

Describe el porcentaje de células transportadoras de oxígeno con

respecto al volumen total de sangre. (28)

Su determinación se considera fundamental en las pruebas diagnósticas

para anemia como la medida del tamaño y número de células presentes

en la sangre de una persona.

Valores referenciales:

Hombres: de 40.7 a 50.3%

Mujeres: de 36.1 a 44.3%.

Utilidad Clínica.

No siempre el hematocrito refleja el número de glóbulos rojos por que

este depende de su tamaño.

Índice bajo de hematocrito puede deberse a:

• Anemia.

• Hemorragias.

Índice alto de hematocrito puede deberse a:

• Cardiopatías.

• Poliglobulia genuina.

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• Deshidratación, etc. (29)

2.2.5. GLÓBULOS BLANCOS.

Los glóbulos blancos o leucocitos forman parte de los elementos celulares

del sistema inmunitario, y son células con capacidad migratoria que

utilizan la sangre como vehículo para tener acceso a diferentes partes de

la anatomía.

Los leucocitos son los encargados de destruir los agentes infecciosos y

las células infectadas, y también segregan sustancias protectoras como

los anticuerpos, que combaten a las infecciones.

Valores referenciales.

Hombre: 4,5 a 10 mil x mm3

Mujer: 4,5 a 10 mil x mm3 (30)

Utilidad clínica:

Leucocitosis puede ser:

• Fisiológica: ejercicio, stress, embarazo, recién nacido.

• Patológica: infecciones bacterianas ( neutrófilos), parásitos (

eosinófilos),

Viral ( linfocitos).

Leucopenia. Siempre es patológica y se puede dar por:

• Aplasia medular: radiaciones, fármacos (cloranfenicol,

antineoplásicos).

• Virus de Inmunodeficiencia Humana (HIV).

El recuento porcentual de los diferentes tipos de leucocitos se conoce

como fórmula leucocitaria.

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Según las características microscópicas de su citoplasma (tintoriales) y su

núcleo (morfología), se dividen en:

• Los granulocitos o células polimorfonucleares: son los neutrófilos,

basófilos y eosinófilos; poseen un núcleo polimorfo y numerosos

gránulos en su citoplasma, con tinción diferencial según los tipos

celulares.

• Los agranulocitos o células monomorfonucleares: son los linfocitos

y los monocitos; carecen de gránulos en el citoplasma y tienen un

núcleo redondeado.

Granulocitos o células polimorfonucleares.

a) Neutrófilos: Denominados también macrófagos o

polimorfonucleares (PMN), son glóbulos blancos de tipo

granulocito. Miden de 12 a 18 μm y es el tipo de leucocito más

abundante de la sangre en el ser humano. Se presenta del 60 al

75%. Su periodo de vida media es corto, durando horas o algunos

días. Su función principal es la fagocitosis de bacterias y hongos.

Un aumento del porcentaje de neutrófilos puede deberse a:

• Infección aguda.

• Estrés agudo.

• Eclampsia.

• Gota.

• Leucemia mielógena.

• Artritis reumatoide.

• Fiebre reumática.

• Tiroiditis.

• Traumatismo.

Una disminución en el porcentaje de neutrófilos puede deberse a:

• Anemia aplásica.

• Quimioterapia.

• Gripe u otra infección viral.

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• Infección bacteriana generalizada.

• Radioterapia o exposición a la radiación.

b) Basófilos: Corresponde al 0,2 - 1,2% de los glóbulos blancos.

Presentan una tinción basófila, lo que los define. Segregan

sustancias como la heparina, de propiedades anticoagulantes, y la

histamina que contribuyen con el proceso de la inflamación.

Poseen un núcleo a menudo cubierto por los gránulos de

secreción.

Una disminución en el porcentaje de basófilos puede deberse a:

• Reacción alérgica aguda.

c) Eosinófilos: Corresponden del 1,0 – 4,0% de los leucocitos,

aumentan en enfermedades producidas por parásitos, en las

alergias y en el asma. Su núcleo, característico, posee dos lóbulos

unidos por una fina hebra de cromatina, y por ello también se las

llama "células en forma de antifaz". (31)

Un aumento en el porcentaje de eosinófilos puede deberse a:

• Reacción alérgica.

• Cáncer.

• Infección parasitaria.

Agranulocitos o células monomorfonucleares.

d) Monocitos: Conteo normal entre el 2% a 8% del total de glóbulos

blancos. Esta cifra se eleva casi siempre por infecciones originadas

por virus o parásitos. También en algunos tumores o leucemias.

Son células con núcleo definido y con forma de riñón. En los tejidos

se diferencian hacia macrófagos o histiocitos.

Un aumento del porcentaje de monocitos puede deberse a:

• Enfermedad inflamatoria crónica.

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• Infección parasitaria.

• Tuberculosis.

• Infección viral.

e) Linfocitos: Con un valor normal entre 24% a 32% del total de

glóbulos blancos. Su número aumenta sobre todo en infecciones

virales, aunque también en enfermedades neoplásicas (cáncer) y

pueden disminuir en inmunodeficiencias.

Los linfocitos son los efectores específicos del sistema inmunitario,

ejerciendo la inmunidad adquirida celular y humoral. Hay dos tipos de

linfocitos, los linfocitos B y los linfocitos T.

Los linfocitos B están encargados de la inmunidad humoral, esto es, la

secreción de anticuerpos (sustancias que reconocen las bacterias y se

unen a ellas y permiten su fagocitosis y destrucción). Los granulocitos y

los monocitos pueden reconocer mejor y destruir a las bacterias cuando

los anticuerpos están unidos a éstas (opsonización). Son también las

células responsables de la producción de unos componentes del suero de

la sangre, denominados inmunoglobulinas.

Los linfocitos T reconocen a las células infectadas por los virus y las

destruyen con ayuda de los macrófagos. Estos linfocitos amplifican o

suprimen la respuesta inmunológica global, regulando a los otros

componentes del sistema inmunitario, y segregan gran variedad de

citoquinas. Constituyen el 70% de todos los linfocitos.

Tanto los linfocitos T como los B tienen la capacidad de "recordar" una

exposición previa a un antígeno específico, así cuando haya una nueva

exposición a él, la acción del sistema inmunitario será más eficaz.

Un aumento en el porcentaje de linfocitos puede deberse a:

• Infección bacteriana crónica.

• Hepatitis infecciosa.

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• Mononucleosis infecciosa.

• Leucemia linfocítica.

• Mieloma múltiple.

• Infección viral

Una disminución en el porcentaje de linfocitos puede deberse a:

• Quimioterapia.

• Infección por Virus de inmunodeficiencia humana (VIH).

• Leucemia.

• Radioterapia o exposición a la radiación.

• Sepsis.

Es importante saber que el aumento anormal de un tipo de leucocito

puede causar una disminución en los porcentajes de otros tipos de

glóbulos blancos. (32)

2.2.6. PLAQUETAS.

Las plaquetas (trombocitos) se producen en la médula ósea a partir de la

fragmentación del citoplasma de los megacariocitos quedando libres en la

circulación sanguínea.

Morfología.

Son fragmentos celulares pequeños (2-3 μm de diámetro), ovales y sin

núcleo.

Valor referencial:

Varían entre 150.000 y 450.000 x mm³

Utilidad Clínica.

En el proceso de coagulación (hemostasia), las plaquetas contribuyen a la

formación de los coágulos (trombos), siendo así las responsables del

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cierre de las heridas vasculares, Una gota de sangre contiene alrededor

de 250.000 plaquetas.

• Trombocitopenia.

• Fibrosis y tumores de la médula ósea.

• Destrucción acelerada por anticuerpos.

• Infecciones, fármacos, perdida por hemorragias, etc. (33)

2.3. COMPONENTES QUÍMICOS SÉRICOS.

2.3.1. GLUCOSA.

Es una hexosa, su fórmula química es C6H12O6 y su peso molecular es

180,16 g, es el carbohidrato más importante en los mamíferos por ser su

principal fuente de energía.

La glicemia se define como el valor de los niveles de azúcar presentes en

un litro de sangre. La azúcar que se mide proviene de los alimentos que

son ingeridos por el propio organismo, particularmente los carbohidratos.

Este nivel de azúcar es nivelada por varias hormonas, pero sin duda la

principal es la insulina secretada por el páncreas. El azúcar es

trascendental para el desarrollo de las funciones del organismo, pues es

una de las fuentes energéticas más importantes. El cerebro y los glóbulos

rojos, por ejemplo, dependen totalmente de la glicemia para poder cumplir

efectivamente sus roles en el cuerpo. (34)

Valores referenciales:

Valores de 70 a 110 mg/dl. (35)

Por lo general este estudio se realiza para detectar pacientes con

diabetes mellitus, para evaluar el metabolismo de glucosa en el

organismo y la función de los órganos involucrados en este proceso:

como el páncreas y el hígado.

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En una persona sana la glucosa es controlada por la insulina, hormona

producida por el páncreas. Después de la ingestión de carbohidratos se

produce la liberación de insulina que facilita la captación de glucosa por

parte de los tejidos para producir energía. (36)

Homeostasis de la Glicemia.

Consiste en el mantenimiento de los niveles de glucosa en sangre en un

nivel adecuado para mantener el equilibrio del cuerpo.

Para hacer esto, cuando la glucosa en sangre es muy alta, el páncreas

detecta esto y libera insulina.

La insulina es una hormona que hace que las células del cuerpo tomen la

glucosa y la metabolicen para obtener energía o la conviertan en grasa o

glucógeno para su almacenamiento.

A su vez, cuando el nivel de glucosa en la sangre es bajo el páncreas

libera Glucagón, otra hormona que funciona de manera antagónica a la

insulina y que activa una enzima que transforma el glucógeno en glucosa

nuevamente, subiendo los niveles de esta en sangre.

Cuando hay defectos o problemas con la insulina da como resultado la

diabetes, enfermedad en la cual las concentraciones de glucosa en la

sangre son elevadas y aumentan mucho con la ingesta de azúcar.

Cuando la homeostasis de la glucosa se rompe por disfunción de

cualquier elemento que la mantiene, sobrevienen los síndromes hiper o

hipoglucémicos que, como sus nombres indican, conllevan el

aumento >120 mg/dl en ayunas o la disminución <50 mg/dl de la glucemia

respectivamente.

Funciones.

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Constituyente vital de la sangre humana, desde donde se metaboliza en

forma directa para suplir las necesidades energéticas inmediatas.

Es la fuente primaria de síntesis de energía de las células, mediante su

oxidación catabólica.

Componente principal de polímeros de importancia estructural como la

celulosa y de polímeros de almacenamiento energético como el almidón y

el glucógeno que se moviliza y se convierte en glucosa por la

glucogenólisis cuando la concentración de glucosa en sangre es baja.

(37)

2.3.2 ASTO.

La estreptolisina O es una hemolisina extracelular liberada a los tejidos

durante la infección por estreptococo B-hemolítico grupo A, provoca la

formación de anticuerpos capaces de bloquear su efecto hemolítico, el

90% de faringitis estreptocóccicas presentan títulos elevados de ASTO.

El aumento de título se produce a la semana de iniciada la infección;

alcanzan el máximo a las 3-4 semanas, recuperándose los valores

basales a los 6 meses a 1 año, en ausencia de complicaciones o

reinfección. Un título aumentado de un 30%, como mínimo, en intervalo

de una o dos semanas, tiene valor clínico.

Valor de referencia.

Hasta 200 UI/l.

La utilidad clínica es útil en el diagnóstico de la fiebre reumática aguda y

glomerulonefritis aguda.

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Los títulos muy altos están asociados al estado de portador crónico

faríngeo, en el cólera, tuberculosis, septicemias y hepatitis viral.

Se encuentra disminuido en Artritis reumatoidea, artritis reumatoidea

juvenil y fiebre reumática. (38)

2.4. ANÁLISIS DE ORINA.

Formación de la orina.

La formación de la orina se da mediante un largo recorrido que

comprende la cápsula de Bowman, el túbulo contorneado proximal, el asa

de Henle, túbulo contorneado distal y el túbulo colector.

Hay tres mecanismos para su formación:

Filtración: Se lleva a cabo en los glomérulos, la presión arterial glomerular

permite la filtración por medio de la membrana glomerular.

Reabsorción: Es el paso de las sustancias de los túbulos renales al

torrente sanguíneo, allí se reabsorbe glucosa, agua y sodio.

Secreción: Es el paso de sustancias a la orina desde la sangre a los

túbulos colectores y distales.

Dependiendo de la efectividad en la realización de estos mecanismo se

obtiene la formación de orina.

Concepto.

El análisis de orina comprende una serie de exámenes constituyendo uno

de los métodos más comunes de diagnóstico médico. El análisis químico

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se efectúa mediante tiras reactivas cuyos resultados se leen de acuerdo a

los cambios de color.

Condiciones del paciente.

Será necesario que el paciente se lave cuidadosamente el meato urinario

y los genitales con agua, previa recolección.

Recolección de la muestra.

Las muestras de orina se toman siguiendo instrucciones estrictas. Los

recipientes además de estar muy limpios, deben cumplir con las

siguientes condiciones:

• Ser de plástico translúcido y desechable.

• La tapa debe cerrar herméticamente de tal manera que el

contenido no se derrame, independientemente de la posición del

recipiente.

Comenzar la micción descartando el primer chorro de orina, luego sin

cortar colocar el frasco estéril para recolectar esta porción media de orina,

descartando el último chorro. (39)

2.4.1. Examen físico.

Volumen.

La eliminación normal en el adulto varía de 1000 a 2000 ml en 24 horas,

siendo afectada por varias condiciones fisiológicas. El aumento o

disminución del volumen urinario se puede observar en varias

enfermedades.

• Poliuria: Es el aumento del volumen sobre 2000 ml en 24 horas.

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• Oliguria: Es la disminución de la diuresis por debajo de 500 ml en

24 horas.

• Anuria: Es la producción de orina por debajo de 50 ml en 24 horas.

• Poliquiuria: Se refiere a las micciones frecuentes.

• Disuria: A micciones dolorosas y molestas.

Aspecto.

La orina normal reciente suele ser clara y transparente.

En relación a la transparencia se puede utilizar la siguiente terminología:

clara, ligeramente turbia y turbia.

Alteración del aspecto se puede dar por;

• Presencia de fosfatos.

• Presencia de pus o bacterias.

• En uretritis por sustancias mucopurulentas.

• Presencia de moco, leucocitos y células epiteliales.

Toda orina al enfriarse y en reposo se vuelven turbias por precipitación de

distintas sustancias o por contaminación bacteriana.

Color.

Normalmente amarillo pajizo con tonalidad más o menos intensa por la

presencia de urobilinógeno (pigmento urinario) puede cambiar en algunas

condiciones patológicas, volviéndose, por ejemplo: más rosado (color

“agua de lavar carne”), como en los casos de hemoglobinuria o de

hematuria (presencia de hemoglobina o sangre en la orina

respectivamente), o más oscuro (color vino), como en los casos más

graves de ictericia.

Olor.

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El olor de la orina normal reciente es aromático característico por la

presencia de ácidos volátiles y una sustancia llamada urinoid. Es más

intenso en las orinas concentradas. Los medicamentos como la

trementina, mentol o ciertos alimentos como espárragos, comunican a la

orina estos olores.

Entre los olores anormales tenemos:

• Amoniacal: por descomposición de la urea.

• Cetónico: por eliminación de acetona.

• Pútrido: por descomposición de proteínas.

• Fecal: por contaminación con heces o colibacilos. (40)

2.4.2. Examen Químico.

Tira reactiva.

Las tiras reactivas constan de almohadillas impregnadas en sustancias

químicas adheridas a una tira plástica. Se produce una reacción química

cuando la almohadilla absorbente toma contacto con la orina. Las

reacciones se interpretan mediante la reacción de color producido sobre

la almohadilla con una escala cromática provista por el fabricante. Sobre

la escala aparecen los diversos colores o las intensidades del color para

cada sustancia a evaluar. Mediante la comparación meticulosa de los

colores en la escala cromática y en la tira se puede informar un valor

semicuantitativo expresado como trazas, 1+, 2+, 3+ o 4+.

Densidad.

La densidad constituye un índice de la concentración del material disuelto

en la orina.

La reacción de la tira se basa en el cambio del pKa (constante de

disociación) de un polielectrolito en medio alcalino, que se ioniza y libera

iones hidrógeno en proporción al número de iones en la solución.

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El intervalo normal para una muestra tomada al azar es de 1,005-1,030,

aunque en casos de hidratación excesiva puede llegar a 1.001. El valor

varía enormemente según el estado de hidratación y el volumen urinario.

Por lo general la densidad se eleva cuando la ingesta de líquidos es baja,

desciende si la ingesta es alta.

La densidad puede ser útil para establecer la diferencia entre una

diabetes insípida y una diabetes mellitus. Ambas enfermedades producen

un volumen urinario alto, pero en la primera la densidad es muy baja

porque en este caso existe una deficiencia de ADH, mientras que en la

segunda existe un déficit de insulina y por lo tanto un exceso de glucosa

que supera el umbral renal y es excretada en la orina.

pH.

En las tiras reactivas se utiliza un sistema indicador doble de rojo de

metilo y azul de bromo timol. El rojo de metilo produce un cambio de color

del rojo al amarillo en el rango de pH de 4 a 6, y el azul de bromo timol

vira del amarillo al azul en el rango de 6 a 9.

Normalmente, la reacción de la orina oscila hacia el lado ácido o el

alcalino, según la descomposición de la dieta, alcanzándose en

circunstancias extremas cifras de pH que van desde 5 a 8. La dieta

cárnica es acidificante, mientras que la vegetariana es alcalinizante de la

orina. Una discreta alcalinidad es fisiológica.

Orinas ácidas:

• Acidosis metabólicas (diabética).

• Diarreas graves.

• Hipoalimentación.

• Insuficiencia respiratoria.

Orinas alcalinas:

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• Alcalosis respiratoria.

• Vómito.

• Acidosis tubular renal.

• En ciertas infecciones urinarias (Proteus y Pseudomona).

Leucocitos.

La reacción con tira reactiva usa la acción de la esterasa leucocitaria para

catalizar la hidrólisis de un éster ácido impregnado en la almohadilla de la

tira reactiva para producir un compuesto aromático y ácido. El compuesto

aromático se combina con una sal de diazonio presente en la almohadilla

para producir un color azoico violeta.

El umbral de detección es entre 5 a 15 leucocitos por campo de mayor

aumento (CMA).

Causas de leucocitaria.

• Prostatitis.

• Uretritis.

• Glomérulo nefritis.

• Tumores.

• Nefritis.

• Inflamaciones (apendicitis).

Nitritos.

La base química de la prueba de nitritos es la capacidad de ciertas

bacterias de reducir el nitrato un constituyente normal de la orina a nitrito,

que normalmente no aparece en la orina.

La prueba para detección de nitrito es un método rápido e indirecto, para

el diagnóstico temprano de bacteriuria significativa y asintomática. Los

organismos comunes que causan infección del tracto urinario, como la E.

Coli, Enterobacter, Citrobacter, Klebsiella y las especies de Proteus,

contienen enzimas que reducen el nitrato de la orina a nitrito. Para que

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esto ocurra, debe dejarse incubar la orina en la vejiga durante un mínimo

de cuatro horas. Por lo tanto, la primera orina de la mañana es la muestra

de elección.

Glucosa.

La tira reactivas emplean el método de la glucosa oxidasa mediante la

impregnación en el área de prueba de una mezcla de glucosa oxidasa,

peroxidasa, cromógeno y solución amortiguadora para producir una

reacción enzimática secuencial doble.

El primer paso, la glucosa oxidasa cataliza una reacción entre la glucosa y

el aire ambiental para producir ácido glucónico y peróxido.

En el segundo paso, la peroxidasa cataliza la reacción entre peróxido y

cromógeno para formar un compuesto oxidado coloreado que representa

la presencia de glucosa.

Normalmente el túbulo contorneado proximal reabsorbe toda la glucosa

filtrada, si ésta se encuentra en concentración por debajo de 180 mg/dl,

no se encontrara en la orina.

Esta se detecta según el método especifico de glucosa-oxidasa-

peroxidasa. El test reacciona independientemente del valor del pH y de la

densidad de la orina y no es perturbado por cuerpos cetónicos.

La glucosuria puede ocurrir como un hecho aislado (secundaria a

hiperglucemia) o como manifestación de daño renal (glucosuria renal),

donde es comúnmente asociada a otras manifestaciones en el caso de

disfunción tubular proximal, como hiperfosfatemia, hipouricemia,

aminoaciduria, acidosis tubular aguda, etc.

Proteínas.

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El test se basa en el principio de error proteico de indicadores de pH,

reacciona de manera especialmente sensible a la albumina ya que

normalmente se elimina una cantidad insignificante.

Normalmente la excreción de proteínas es menor de 150 mg al día, que

corresponde a la mucoproteína de Tamm-Horsfall segregada por los

túbulos distales.

En caso de haber proteinuria la principal proteína urinaria en pacientes

con enfermedades renales es la albúmina. Niveles elevados de

proteinuria, que persisten en varias mediciones, deben ser tomados en

consideración ya que implican anormalidades en la permeabilidad

glomerular. Las globulinas predominan en alteraciones tubulares y en

proliferación de las células plasmáticas. La cantidad de proteinuria indica

la gravedad de la enfermedad, y en un mismo enfermo el aumento o

disminución sirve para evaluar la progresión.

Cuerpos cetónicos.

La prueba en la tira reactiva utiliza la reacción del nitroprusiato de sodio

(nitroferrocianuro) para medir cetonas. En esta reacción el ácido

acetoacético en medio alcalino reacciona con el nitroprusiato de sodio

para producir un color violeta.

Los trastornos que se caracterizan por una alteración en el metabolismo

de los hidratos de carbono pueden dar lugar a una degradación excesiva

de grasa para obtener energía.

Esto, a su vez determina un aumento en el nivel de cuerpos cetónicos

presentes en la sangre (cetonemia) y niveles aumentados de cetonas en

orina (cetonuria). El término cetosis implica el aumento de los cuerpos

cetónicos tanto en sangre como en orina.

Cuando la capacidad de los tejidos para utilizar los cuerpos cetónicos es

superada, el exceso se excreta en la orina. Cuando es superada la

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capacidad de los riñones para excretar cetonas, éstas se acumulan en la

sangre. En consecuencia existirá cetonuria antes de que se produzca un

aumento significativo de cetonas en sangre.

Puede encontrarse cetosis en situaciones asociadas con:

• Inanición.

• Diabetes mellitus.

• Eclampsia.

• Vómitos de larga duración y diarrea.

• Ejercicio intenso y prolongado.

• Estados febriles.

• Daño hepático debido a procesos patológicos o intoxicaciones.

Los cuerpos cetónicos son levemente tóxicos, tienden a interferir en la

excreción de ácido úrico.

Urobilinógeno.

La tira reactiva utiliza la reacción de aldehído de Ehrlich, en la que el

urobilinógeno reacciona con el p-dimetilaminobenzaldehido para producir

colores que varían del rosa claro al rosa obscuro.

Cuando la bilirrubina conjugada se excreta a través del conducto biliar al

intestino, las bacterias intestinales convierten la bilirrubina en una

combinación de urobilinógeno y estercobilinógeno.

Parte del urobilinógeno se reabsorbe desde el intestino hacia la sangre,

circula al hígado y se excreta nuevamente al intestino a través del

conducto biliar.

El estercobilinógeno no puede reabsorberse y permanece en el intestino,

donde se oxida a urobilina y se excreta por las heces.

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El urobilinógeno aparece en la orina porque a medida que circula por al

sangre en su camino hacia el hígado, pasa a través de los riñones y es

filtrado por el glomérulo.

Urobilinuria alta:

• Ictericia hemolítica familiar.

• Ictericia hemolítica adquirida (infecciosas, toxicas, transfusionales).

• Eritroblastosis fetal.

• Anemia perniciosa descompensada.

• Policitemia.

• Paludismo.

Bilirrubinas.

La tira reactiva utiliza la reacción diazo. La bilirrubina se combina con la

sal de diazonio 2,4-dicloroanilina o 2,6-diclorobenceno-diazonio-

tetrafluoroborato en medio ácido para producir un colorante azoico con

colores que varían del rosa al violeta.

La presencia de bilirrubina en la orina confiere una coloración amarilla

intensa en los casos insipientes y como cerveza oscura si la

concentración es pronunciada.

La bilirrubinuria aparece en todas las ictericias obstructivas o

parenquimatosas y está ausente en las hemolíticas o prehepáticas.

La bilirrubinuria es proporcional al grado de bilirrubinemia, es decir, a la

intensidad de la ictericia.

Aparece antes que la ictericia (piel y mucosa) y desaparece también

antes que ella.

Sangre.

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La prueba química para la sangre usa la actividad de pseudoperoxidasa

de la hemoglobina para catalizar una reacción entre peróxido de

hidrógeno y el cromógeno tetrametilbenzidina para producir un

cromógeno oxidado, que tiene color verde- azul.

Puede haber sangre en la orina, ya sea en forma de eritrocitos intactos

(hematuria) o como producto de la destrucción de eritrocitos

(hemoglobinuria).

Hematuria: Es la presencia de hematíes en la orina, a diferencia de la

hemoglobinuria, en la que existe pigmento hemático, pero no células.

Orinas muy alcalinas o de muy baja densidad pueden provocar la lisis de

los eritrocitos, liberando su contenido de hemoglobina en la orina. La

presencia de este tipo de hemoglobina se considera también hematuria

cuando se conoce su origen, pero es muy difícil de distinguir de la

hemoglobina verdadera. Cuando existe lisis el examen microscópico

puede mostrar la presencia de membranas correspondientes a hematíes

vacíos.

Presencia de hematíes en orina se encuentra en:

• Cálculos renales.

• Glomérulo nefritis.

• Pielonefritis.

• Tumores.

• Traumatismos.

• Anticoagulantes.

• Actividad física extenuante.

Hemoglobina.

La hemoglobinuria puede producirse como consecuencia de la lisis de

eritrocitos en las vías urinarias.

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Es la presencia de hemoglobina en la orina que da un color rojizo rosado,

pero transparente a diferencia de la hematuria (eritrocituria).

Respectivamente la mioglobina, cataliza la oxidación del indicador por el

hidroperóxido orgánico contenido en el papel reactivo.

Para los eritrocitos y hemoglobina se indican en la etiqueta del tubo

escalas cromáticas diferentes. Puntos verdes aislados acumulados en la

zona reactiva amarilla indican la presencia de eritrocitos intactos. La

hemoglobina así como los eritrocitos hemolizados o la mioglobina son

indicados por una coloración verde homogénea.

Se presenta en:

• Reacciones transfusionales.

• Quemaduras graves.

• Infecciones (paludismo).

• Anemias hemolíticas mecánicas.

2.4.3. Examen del sedimento urinario.

El examen del sedimento urinario constituye uno de los datos más útiles

para el diagnóstico y pronóstico de las nefropatías.

El valor del examen microscópico depende los dos factores

fundamentales:

• De una muestra bien tomada.

• El conocimiento de la persona que realiza el estudio.

En los sujetos normales el sedimento es escaso y está formado por sales

(uratos, fosfatos y carbonatos), con algunas células epiteliales de la

vesícula y la uretra. En la mujer puede presentarse además algunas

células vaginales.

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La presencia de cantidades anormales de sales o la presencia de otros

elementos en el sedimento representan situaciones patológicas.

La observación del sedimento al microscopio permite identificar toda una

serie de elementos que revelan la presencia de procesos inflamatorios,

infecciosos u otras enfermedades más o menos graves que pueden

manifestarse en los riñones y/o en las vías urinarias.

Células Epiteliales.

No es raro encontrar células epiteliales en la orina, ya que provienen de

los revestimientos del aparato genitourinario, a menos que estén

presentes en cantidades grandes o con formas anormales, representan el

desprendimiento normal de las células viejas, escamosas, de transición y

túbulos renales.

Las células escamosas son células grandes, con citoplasma abundante e

irregular de núcleo central y pequeño, puede provenir del epitelio vaginal

o de la porción distal de la uretra.

Un aumento puede deberse a contaminación proveniente de la vagina o

uretra.

Las células de transición son más pequeñas que las escamosas de

contorno redondeado y núcleo central, provienen del epitelio que cubre la

pelvis renal, vejiga y uretra proximal.

Se encuentra aumentado en pacientes con litiasis renal.

Las células tubulares son redondas y algo más grandes que los

leucocitos, con un núcleo redondo central, en cantidades abundantes se

asocian a condiciones que causan daño tubular como: necrosis tubular

aguda, pielonefritis, reacciones toxicas.

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Eritrocitos.

Normalmente no existen hematíes en la orina, o pueden presentarse en

escasa cantidad de 1 a 2 por campo.

Los eritrocitos presentes en la orina pueden provenir de cualquier punto

del tracto urinario desde el glomérulo hasta el meato urinario y en la mujer

constituyen a veces contaminación menstrual, pueden aparecer en

diversas formas. Cuando la muestra de orina es fresca los hematíes

presentan aspecto normal de color pálido o amarillento, son discos

uniformes bicóncavos de aproximadamente 7 u de diámetro y 2 u de

grosor, carecen de núcleo.

En orinas diluidas o hipotónicas los hematíes se hinchan y pueden lisarse,

liberando de este modo su contenido de hemoglobina en la orina.

Leucocitos.

Leucocitos.

Pueden estar en cualquier punto del tracto urinario desde el glomérulo

hasta la uretra. En promedio, la orina normal puede contener hasta 2

glóbulos blancos por campo. Los leucocitos tienen un diámetro

aproximado de 10-12 u, por lo general forma esférica y color gris oscuro

o amarillo verdosos. Pueden aparecer en forma aislada o acúmulos. La

mayoría de los leucocitos en la orina son neutrófilos y habitualmente se

los identifica por sus gránulos característicos o por las lobulaciones del

núcleo.

Los Piocitos son leucocitos cuya membrana esta degenerada.

El aumento de leucocitos en la orina (piuria) está asociado con:

• Procesos inflamatorios en el tracto urinario o en sus adyacentes.

• A veces en enfermedades como apendicitis y pancreatitis.

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• Glomerulonefritis aguda.

• Nefritis lúpica.

• Deshidratación.

• Fiebre.

• Stress.

• Irritación no infecciosa del uréter, vejiga o uretra.

• Pielonefritis.

• Cistitis uretritis.

Los cilindros leucocitarios constituyen evidencia de que los leucocitos

provienen del riñón.

Cilindros.

Los cilindros son aglomeraciones de proteínas que se forman en los

túbulos renales y es por eso que tienen forma cilíndrica con márgenes

regulares, tienen una matriz orgánica compuesta principalmente de la

mucoproteínas de Tamm-Horsfall. Hay muchos tipos distintos, algunos de

ellos pueden verse en individuos sanos, mientras que otros pueden ser

diagnóstico para una enfermedad renal.

Cilindros hialinos.

Son incoloros, homogéneos, transparentes y por lo general tienen

extremos redondeados. Como están formados solo por proteínas tienen

un índice de refracción muy bajo y deben ser buscados con luz de baja

intensidad.

No son indicadores de enfermedad y se observan en personas post

ejercicio, fiebre, deshidratación, uso de diuréticos y métodos de contraste.

Cilindros hemáticos.

Están formados por eritrocitos o restos de ellos.

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La presencia de cilindros eritrocitarios significa hematuria de origen renal,

siempre patológicos. Son por lo general diagnósticos de enfermedad

glomerular.

Se encuentra en:

• Glomérulo nefritis aguda.

• Nefritis lúpica.

Cilindros leucocitarios.

Se forman por leucocitos principalmente, se originan en enfermedades

túbulo-intersticiales o pielonefritis aguda. Pueden verse en alteraciones

glomerulares.

Cilindros de células epiteliales.

Se asocian a necrosis tubular aguda en los cuales se descaman las

células epiteliales de los túbulos renales.

Cilindros grasos.

Generalmente son cilindros de células epiteliales que en su citoplasma

poseen gotas de colesterol o colesterol ester y se pueden ver libres en la

orina.

Se observan en varias glomerulopatías especialmente en Síndrome

Nefrótico.

Cilindros granulosos.

Son siempre patológicos se forman de proteínas agregadas o de células

antiguas que se han desintegrado, se ven principalmente en necrosis

tubular aguda.

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Cilindros céreos.

Son la última etapa de degeneración de los cilindros granulosos y se

observa en nefrones con flujo muy disminuido, se asocian a insuficiencia

renal avanzada.

Cristales.

La formación de cristales en la orina depende de muchos factores como el

grado de sobresaturación de sus constituyentes, pH o la presencia de

inhibidores de cristalización. Hay muchos tipos de cristales que pueden

ser observados en pacientes con distinta alteración.

Cristales de ácido úrico.

Pueden aparecer con muy diversas formas, las más características de las

cuales son el diamante, prisma rómbico y la roseta constituida por

muchos cristales arracimados. Los cristales de ácido úrico con frecuencia

están teñidos por los pigmentos urinarios y en consecuencia tienen color

amarillo o rojo-castaño.

La presencia en orina de éstos cristales no necesariamente indica un

estado patológico ni tampoco significa que el contenido de ácido úrico en

la orina se encuentre definitivamente aumentado.

Los estados patológicos en los cuales se observa este tipo de cristales en

la orina son:

• Gota.

• Metabolismo de las purinas aumentado.

• Enfermedades febriles agudas.

• Nefritis crónica.

Cristales de oxalato de calcio.

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Éstos son incoloros de forma octaédrica o de “sobre”, parecen cuadrados

pequeños cruzados por líneas diagonales que se interceptan.

Rara vez se presentan como esferas ovales o discos bicóncavos, que

tienen forma de pesas de gimnasia, pueden variar en tamaño.

Los cristales de oxalato de calcio pueden existir normalmente en la orina,

en especial después de ingerir diferentes alimentos ricos en oxalatos

como: tomate, ajo, naranjas, espárragos, cantidades elevadas de oxalato

de calcio en especial si están presentes en orina recién emitida sugieren

la posibilidad de cálculos de oxalato.

Estados patológicos en los que se pueden encontrar:

• Intoxicación con etilenglicol.

• Diabetes mellitus.

• Enfermedad hepática.

• Enfermedad renal crónica grave.

Urato amorfo.

Con frecuencia hay en la orinas sales de urato (de sodio, potasio,

magnesio y calcio), en una forma no cristalina o amorfa. Estos uratos

amorfos tienen aspecto granular y color amarillo-rojo, son solubles en

álcalis y a 60° C de temperatura. Carecen de significación clínica.

Fosfato triple.

Pueden existir en orinas neutras o alcalinas, son prismas incoloros de tres

a seis caras con frecuencia tienen extremos oblicuos. El fosfato amónico-

magnésico a veces puede precipitar formando cristales de fosfato triple,

son solubles en ácido acético.

A menudo se encuentran en orinas normales, pero pueden también

formar cálculos urinarios.

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Pueden aparecer en los siguientes procesos:

• Pielitis crónica.

• Cistitis crónica.

• Hipertrofia de próstata.

Fosfato amorfo.

La sales de fosfato con frecuencia están presentes en la orina en forma

no cristalina, es decir como sustancias amorfas. Estas partículas

granulares carecen de una forma definida y por lo general a simple vista

son indistinguibles de los uratos amorfos.

El pH de la orina, así como sus propiedades de solubilidad ayudan a

distinguir entre estos depósitos amorfos. Los fosfatos amorfos son

solubles en ácido acético carecen de significación clínica.

Cristales de leucina.

Se los encuentra en orinas ácidas en forma de esferas con estriaciones

concéntricas, son altamente refringentes como cuerpos amarillentos u

amarronados, aparecen en la orina en asociación con los cristales de

tirosina.

Significado clínico: Responden a las mismas condiciones que los de

tirosina.

Cristales de cistina.

Se encuentran en orinas con pH ácido y se observan como láminas

delgadas, incoloras y hexagonales.

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Significado clínico: La mayoría de las veces se los observa en orinas de

pacientes que padecen distintos tipos de desórdenes metabólicos

hereditarios.

Cristales de tirosina.

Son muy poco frecuentes y sólo se observan en orinas ácidas. Su color

varía desde incoloros a amarillo pardo. Su forma es la de agujas muy

finas y refringentes, apareciendo en grupos o acúmulos.

Frecuentemente se los encuentra junto con cristales de leucina. Son

producto del metabolismo proteico.

Significado clínico: Se presentan en orina de pacientes con necrosis o

degeneramiento tisular como por ejemplo: enfermedad hepática aguda,

hepatitis, cirrosis, leucemia y fiebre tifoidea.

Cristales de colesterol.

Se encuentran en orinas ácidas o neutras, aparecen como láminas planas

y transparentes con ángulos mellados. Muchas veces se observa

formando una película en la superficie de la orina en lugar de encontrarse

en el sedimento.

Significado clínico: No son comunes en la orina y siempre que están se

los relaciona con alguna patología.

Se los encuentra en enfermedades renales como en el síndrome

nefrótico, predominan en la quiluria, que se produce como consecuencia

de la obstrucción del flujo linfático del abdomen.

Bacterias.

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No existen bacterias a nivel renal ni vesical. A pesar de que la orina está

libre de ellas ésta puede contaminarse con bacterias presentes en la

uretra o en la vagina.

Significado clínico: Cuando una muestra de orina es recolectada en forma

estéril y contiene gran número de bacterias a demás acompañada por

muchos leucocitos es muy factible encontrar una infección del tracto

urinario.

Hongos.

Son estructuras incoloras de forma ovalada, a veces se los puede

confundir con eritrocitos pero son algo más pequeños que éstos, además

con frecuencia presentan evaginaciones tubulares o filamentosas (hifas).

Significado clínico: Es común encontrarlos en pacientes con

enfermedades metabólicas (diabetes mellitus).

Se les reconoce valor patológico en pacientes con bajas defensas, en

estos casos es Cándida albicans la que desempeña un papel

fundamental.

Mucina.

Se trata de filamentos irregulares de forma acintada, largos, delgados y

ondulantes de longitud variable.

A estos filamentos mucosos muchas veces se adhieren células epiteliales,

leucocitos, eritrocitos e incluso cristales.

Significado clínico: Existen normalmente en la orina en pequeñas

cantidades pero pueden ser muy abundantes en caso de inflamación o

irritación del tracto urinario. (41)

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2.5. EXAMEN COPROPARASITARIO.

El examen de heces tiene su máxima indicación clínica en las diarreas

crónicas y en general interesa en aquellos procesos que cursan con

insuficiencia digestiva en los que se busca el germen o parásito de la

enfermedad.

Comprende la observación macroscópica, examen bacteriológico y

parasitológico de la deposición, ya sea espontánea o mejor después de

una comida de prueba.

Por lo menos 48 horas antes del examen el paciente no debe ingerir

grasas en exceso o legumbres de hojas.

Las grasas interfieren en la preparación húmeda para la observación al

microscopio y las legumbres pueden tener parásitos de vida libre, que al

ser liberados en el intestino y eliminados con las heces pueden ser

considerados como parásitos del paciente.

Pasos para la recolección:

• Realizar la deposición en un recipiente limpio y seco.

• Destape el envase, y deje la tapa boca arriba para que no se

contamine.

• Recoger con baja lengua (o similar) una cantidad representativa de

la muestra, preferible de varios lugares sobre todo de aquellos que

tienen aspecto raro.

• Tape el envase y rotulé con su nombre completo de ser posible la

hora de recolección.

• Lleve la muestra al laboratorio lo más pronto posible para permitir

la observación de formas vivas.

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El examen coproparasitario es un conjunto de técnicas diagnósticas que

constituyen la indicación metodológica para la identificación de la mayoría

de las entero parasitosis motivadas por protozoarios o helmintos.

Su eficacia y sensibilidad para establecer un diagnóstico correcto

dependen de la adecuada indicación y preparación de la muestra. (42)

2.5.1. Caracteres Macroscópicos.

Cantidad.

Depende fundamentalmente de los residuos alimenticios procedentes de

la dieta según su contenido en verduras y frutas, celulosa y de la

existencia de estreñimiento o diarrea en el enfermo.

Por término medio, y con una alimentación corriente, se eliminan

normalmente entre 150 y 250 g. por día de heces, con un régimen

vegetariano se llega a 370 g., mientras que con un régimen cárneo se

excretan sólo unos 60 g. diarios.

En estado patológico pueden alcanzar las deposiciones un peso superior

al kilogramo diario y si se trata de diarreas agudas graves pueden

eliminarse varios litros diarios.

Consistencia.

Normalmente la deposición debe ser sólida y "formada", es decir cilíndrica

y consistente para mantener esta su forma después de excretada.

Los estreñidos eliminan deposiciones pequeñas, duras y a menudo "en

bolas" o "caprinas". Las falsas diarreas de los constipados se

caracterizan por la deposición mixta, compacta la primera parte y pastosa

al final.

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En las diarreas las heces son fluidas o líquidas. En el cólera se han

comparado con la "sopa de arroz", y en la tifoidea con el "puré de

guisantes", pero esta última es inconstante en su presentación. Parece

una "papilla" la deposición de los enfermos con insuficiencia gástrica

descompensada. Es cremosa y pegajosa, como "mantequilla", en las

esteatorreas de origen biliar, pancreático o entérico. Pegajosa y oscuras,

como alquitrán, son generalmente las heces de las melenas. Pastosa,

esponjada y espumosa, es la deposición en la llamada dispepsia de

fermentación.

Color.

Las heces normales del adulto son de color pardo de diferente intensidad,

debido a la estercobililina. Las heces de los niños tienen color amarillo

claro por su régimen lácteo y la presencia de bilirrubina.

Ciertos alimentos comunican su color a las heces, la remolacha,

chocolate, etc. Igualmente los medicamentos como el carbón y el bismuto

dan color negruzco.

La aquilia pancreática, la ictericia obstructiva y la peritonitis tuberculosa

producen heces acólicas como masilla de vidrio.

Con dieta cárnea se hace marrón oscuro, una alimentación rica en

verduras (espinacas especialmente) tiñe las heces de un color verdoso,

mientras que si preponderan las patatas y el pan las heces se aclaran

hacia un marrón amarillento.

Las hemorragias si son altas producen heces de color obscuro pudiendo

en los casos intensos asemejarse a la brea, si las hemorragias son bajas

del recto, hemorroides o con transito intestinal muy acelerado, pueden

asomarse heces rojas.

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Olor.

Se debe a la presencia especialmente de indol y escatol que proceden de

la diseminación y descarboxilación del triptófano por las bacterias de la

putrefacción.

El olor fecal característico se hace fétido en todos los procesos que

cursan con putrefacción de las proteínas ingeridas o endógenas (lo cual

puede ocurrir aunque no obligadamente en pacientes con insuficiencia

gástrica, biliar o pancreática, colitis, cáncer, etc.), sobre todo en las

melenas, en el cáncer de colon y en el absceso abierto en el intestino

grueso. En la acolia es desagradable pero no hediondo.

Moco.

Su aparición en las deposiciones suele ser reconocible ya

macroscópicamente, por lo menos en la emulsión de heces observada

sobre fondo oscuro. Si está finamente dividido y mezclado en las heces

dándoles un aspecto brillante procede del intestino delgado, a diferencia

del moco en copos visibles que tienen un origen más bajo y sobre todo en

tiras o gleras cuyo punto de partida está en el colon distal. Su significación

clínica es muy distinta si se presenta aisladamente como moco perlado,

transparente o si es opaco mezclado con células epiteliales, sangre o pus

en el primer caso se trata de un catarro alérgico puramente funcional o

mixoneurosis ("colon irritable") y excepcionalmente si es muy abundante

de un tumor velloso; mientras que en el segundo caso señala la existencia

de un proceso inflamatorio más o menos profundo (enteritis y colitis

genuinas). (43)

2.5.2. Examen microscópico.

Entre las enteroparasitosis motivadas por protozoarios o helmintos

destacan por su relativa frecuencia de observación en heces humanas las

amebas, los flagelados del tipo de las lamblias, Trichomonas, Chilomastix

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y los ciliados, como el Balantidium coli, Helmintos como las tenias,

oxiuros, áscaris, estrongiloides.

Pueden aparecer las formas activas o sus quistes que no deben

confundirse con las levaduras existentes normalmente en toda

deposición. Es discutible la capacidad patógena de cualquiera de los

protozoos señalados y antes de admitir la importancia etiológica de tal

hallazgo en las heces deben excluirse otras causas del cuadro y sólo

serán inculpados aquellos si además su presencia es abundante. (44)

2.6. PERSONAS EN ESTUDIO.

La Salud puede definirse como “el nivel de eficacia funcional o

metabólica de un organismo tanto a nivel micro (celular) como el macro

(social) que permite la adaptación del hombre a su ambiente.” (45)

En la forma física es la capacidad que tiene el cuerpo para realizar

cualquier tipo de ejercicio donde muestra que tiene resistencia, fuerza,

agilidad, coordinación y flexibilidad.

Existe también la salud mental, el cual se caracteriza por el buen estado

psíquico de una persona y su auto aceptación; en palabras clínicas es la

ausencia de cualquier tipo de enfermedad mental es decir que el individuo

sea capaz de adaptarse adecuadamente a los numerosos cambios y el

bienestar social, es la buena relación que se debe tener con los que nos

rodean. (46)

Características de los adolescentes de 12 a 17 años.

Se denomina enfermedad al proceso y al status causado por una afección

en un ser vivo, que puede ser provocado por distintos factores, ya sean

intrínsecos o extrínsecos al organismo enfermo, es decir se considera a la

salud como el estado de bienestar físico, mental y social. (47)

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Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 59

Factores determinantes de salud.

Son un conjunto de condicionantes de la salud y de la enfermedad en

individuos, grupos y colectividades. En éste se considera que el nivel de

salud de una comunidad viene determinado por variables como:

Biología humana.

Medio ambiente (contaminación biológica: virus, bacterias,

parásitos, hongos), contaminación atmosférica (ruido, radiaciones,

vibraciones), contaminación química (plaguicidas, fertilizantes,

metales pesados), contaminación psico-social y socio-cultural

(estrés).

Estilo de vida: ciertas conductas insanas como: sedentarismo,

consumo excesivo de alimentos ricos en grasas y en hidratos de

carbono, mala utilización de los servicios de asistencia sanitaria.

Sistema de asistencia sanitaria: calidad, cobertura, gratuidad.

Los adolescentes y jóvenes constituyen el periodo de la vida en que, de

acuerdo a los indicadores clásicos de salud y enfermedad, se es más

saludable, ya que presentan las tasas de mortalidad más bajas y la

menor frecuencia de episodios de enfermedad percibidos en un año. Es

por lo tanto una etapa en que las demandas por servicios curativos son

relativamente inferiores a otros periodos de la vida lo que, debería facilitar

la reorientación de los servicios hacia el énfasis promocional y de

prevención.

La situación de salud básica del adolescente que ya había sobrevivido a

los altos riesgos de la niñez, muestra baja susceptibilidad a las

enfermedades y bajo riesgo de mortalidad. A pesar de lo anterior, los

adolescentes presentan una gran cantidad de necesidades que, aunque

algunas de ellas no amenacen su vida inmediata, sí amenazan su calidad

de vida presente y futura cuando no son satisfechas.

Características generales del proceso del crecimiento y desarrollo.

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Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 60

La adolescencia se caracteriza por el crecimiento físico y desarrollo

psicológico y es la fase del desarrollo humano situada entre la infancia y

la edad adulta. Esta transición es tanto física como psicológica por lo que

debe considerarse un fenómeno biológico, cultural y social.

Desde el punto de vista práctico, los cambios habituales del crecimiento

tienen tres grandes características:

Se realizan en forma secuencial, es decir unas características

aparecen antes de que aparezcan otras, como es el caso del

crecimiento de los senos antes de la aparición de la menstruación,

el vello púbico antes que el axilar, los miembros inferiores crecen

primero que el tronco, los testículos se incrementan antes que el

pene, etc.

El tiempo de comienzo, la magnitud y la velocidad de cada evento

es considerablemente variable entre las edades y los sexos.

Cada evento del crecimiento sigue la ley de la variabilidad

individual del desarrollo. Cada individuo tiene una propia manera

de ser y la conserva a través de los años de la adolescencia y en el

que influyen diversos factores, como su origen étnico, su

constitución genética o familiar, nutrición, funcionamiento endocrino

y ambiente sociocultural. Basado en ello, la evaluación de la

maduración sexual suele ser más valiosa desde el punto de vista

clínico que la edad cronológica, que es la correlación que por lo

general preocupa a los padres y al mismo adolescente.

Características del crecimiento físico.

El crecimiento físico durante la infancia y la adolescencia parece mostrar

3 ciclos claros:

Desde un mes después de la fertilización, hasta 2 años después

del nacimiento.

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De los 2 a los 7 años.

Empieza gradualmente a los 7 u 8 años de edad. Entre los 9 y los

15 todo muchacho crece rápidamente en casi todas las

dimensiones corporales, lo que constituye el llamado estirón.

Se pueden advertir los períodos de crecimiento lento y rápido graficando

los incrementos anuales en estatura y peso por edad. En las desviaciones

respecto a la estatura, si no se crece en estatura puede ser indicación que

el individuo está fuera de su trayectoria y quizá indica falta de

suplementos hormonales o que se requiere alguna forma de intervención

terapéutica. La desviación en el peso suele indicar que existe necesidad

de mejorar la nutrición y el ejercicio.

Proporciones Somáticas.

El crecimiento relativamente temprano de manos y pies hace que los

adultos vean a los adolescentes más jóvenes “todo manos y piernas”.

Un aspecto fascinante del crecimiento de los adolescentes es que a

través de los años, todo el proceso de crecimiento parece haber ido

ocurriendo cada vez más temprano, es decir, los adolescentes de ahora

tienden a crecer y a llegar a una estatura de adultos más rápidamente de

lo que ocurría en adolescentes de hace 100 o inclusive de hace 50 años.

Ésta tendencia hacia una maduración cada vez más temprana se ha

llamado “tendencia secular” o tendencia a un cambio de cada siglo. Son

muchos los factores que explican esta aceleración en el desarrollo como

los son la dieta, el clima y el vigor híbrido.

Factores que influyen en el crecimiento físico.

Nutrición y obesidad.

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La sobrenutrición, al estimular el anabolismo proteínico, acelera el

crecimiento en talla, peso y del esqueleto. Los muchachos bien

alimentados tienden a ser más altos que el promedio. Las muchachas que

son más pesadas que el promedio, tienden a entrar en la menarquía con

anterioridad a las demás.

La desnutrición puede retardar el estirón. Parece que cuando se suple

alguna dieta deficiente antes o durante el estirón de la adolescencia, la

estatura, el peso y el desarrollo esquelético se aceleran hasta que el

individuo alcanza su modelo de crecimiento determinado genéticamente.

El sobrepeso y la obesidad se deben probablemente tanto a la herencia

como al desequilibrio regulatorio.

Es más probable que un joven adolescente se vuelva obeso si lo son uno

o ambos progenitores. Si bien esto puede ser índice de influjo de la

herencia, es más probable que el hábito de comer demasiado sea patrón

familiar.

Factores biológicos.

Las causas capaces de originar una enfermedad son muy numerosas y

complejas.

Existen causas exógenas como las infecciones, las enfermedades

parasitarias y endógenas que pueden aparecer por disfunción de un

órgano (páncreas en la diabetes mellitus), por una reacción anormal

(cirrosis hepática) o por un trastorno metabólico y funcional de las células.

Estilo de vida.

Los hábitos de vida condicionan no sólo la salud, sino la situación

sanitaria de las poblaciones y los recursos a ellas destinados. La

conducta personal en determinados aspectos influye enormemente en el

binomio salud-enfermedad.

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Esta conducta se forma por decisiones personales, por influencias de

nuestro entorno, grupo social y puede modificarse con la adecuada

educación.

Factores ambientales.

Características sociales de los adolescentes.

La sociabilidad es la capacidad, la aptitud que permite al individuo vivir

con los otros en grupo, es fruto de comprensión hacia el otro, de

posibilidad de simpatía y empatía, básicamente se relaciona con varios

aspectos.

Emocional.

Necesidad de una comprensión clara de las transformaciones de la

adolescencia.

Nuevas necesidades emocionales y físicas. El desarrollo de la seguridad,

emociones, motivación y autoestima.

Físico.

Hace referencia al cuerpo, crecimiento, salud y movimiento.

Intelectual.

Desarrollo intelectual en la adolescencia, los maestros desempeñan un

papel decisivo en la madurez intelectual de nuestros adolescentes.

La adolescencia se caracteriza por cambios físicos enormes que

trasladan a la persona desde la niñez hasta la madurez física.

Necesidades nutricionales del adolescente.

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Una adecuada ingesta de energía y nutrientes asegura un buen

crecimiento y desarrollo en el adolescente, por esta razón las

necesidades de nutrientes durante la infancia y adolescencia están

condicionadas por el crecimiento físico, el desarrollo psicosocial, factores

socioeconómicos etc. (48)

2.7. MEDIO GEOGRAFICO DONDE SE REALIZO LA INVESTIGACION

CUENCA – ECUADOR.

La ciudad de Cuenca, en donde se realizó el estudio está localizada al sur

del Ecuador, en la cordillera de los Andes a su vez localizada en la

Región Interandina o Sierra, en su parte Austral, conformada por 15

cantones, con un clima primaveral todo el año, con 417.632 habitantes, de

los cuales 195.683 son hombres y 221.949 mujeres, con una tasa de

crecimiento anual del 2 %, distribuida en un 66.4 % en el área urbana y el

33.6 % en el área rural, según el censo del año 2001. (49)

Los últimos datos obtenidos en el censo 2010 se ha registrado una

población de 712.127 habitantes en la provincia del Azuay, con un

crecimiento de 1.93%. En la ciudad de cuenca un crecimiento de 2.01%

con 331,888 Habitantes. (50)

Cuenca está constituida por una zona central urbana y 21 parroquias

rurales, entre ellas están: Molleturo, Chaucha, Baños, Victoria del Portete,

Cumbe, Quingeo, Tarqui, Santa Ana, Turi, El Valle, San Joaquín, Paccha,

Ricaurte, Sinincay, Llacao, Nulti, Sidcay, Octavio Cordero Palacios,

Chiquintad, Checa y Sayausi.

Se le considera una zona de alta emigración, sobre todo a Estados

Unidos, España e Italia, actualmente existe un gran número de

extranjeros jubilados procedentes de varios países de Europa, Australia y

de Estados Unidos, que han llegado a esta ciudad para quedarse y

disfrutar de la tranquilidad que caracteriza a esta urbe.

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Es la tercera ciudad de mayor importancia en el país y fue declarada

Patrimonio Cultural de la Humanidad por la UNESCO, el primero de

diciembre de 1999. (51)

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CAPITULO III

3.- OBJETIVOS.

3.1. OBJETIVO GENERAL:

Determinar pruebas básicas de Laboratorio Clínico en estudiantes

secundarios del Colegio Nacional República de Israel, sección nocturna,

del Área de influencia del Centro de Salud №2 de la ciudad de Cuenca.

3.2. OBJETIVOS ESPECIFICOS:

3.2.1. Determinar los valores de: Hematocrito hemoglobina, recuento de

glóbulos blancos, rojos, plaquetas, glucosa, ASTO, orina y heces en la

muestra de estudio.

3.2.2. Correlacionar el valor obtenido con las variables: Edad, sexo, talla

y peso.

3.2.3. Identificar a los estudiantes secundarios: Cuyos valores de las

pruebas se alejen de los rangos considerados normales.

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CAPITULO IV

4. METODOLOGIA.

4.1. Tipo de estudio.

El presente estudio fue observacional de tipo descriptivo, consistió en

determinar los valores hematológicos, químicos y microscópicos en las

muestras obtenidas de los estudiantes secundarios en un lugar y tiempo

determinado.

4.2. UNIVERSO.

Estuvo representado por 23.706 estudiantes secundarios que se

encuentren entre las edades de 12 a 17 años de edad cumplidos, de los

colegios pertenecientes al Área de influencia del centro de Salud # 2 de

la ciudad de Cuenca.

4.3. MUESTRA.

La muestra fue probabilística con elección no aleatoria de la muestra,

cuyos características fueron similares a las de la población objetivo, por

ser parte de una línea de investigación la muestra fue de 250 estudiantes

de ambos sexos del Colegio Nacional República de Israel, sección

nocturna.

Para calcular el tamaño de la muestra se introdujo los datos en el

programa estadístico SPSS, tomando en cuenta la población general, con

los siguientes datos:

Nivel de confianza: 95%

Margen de error: 5.0%

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Los colegios que entraron en la investigación fueron los siguientes:

Colegio Dominicano San Luis Beltrán, Julio María Matovelle, Colegio

Nacional Luis Monsalve Pozo, Manuel J.Calle, Colegio Nacional Checa,

Nacional Chiquintad, Unidad Educativa Santa Mariana de Jesús, Unidad

Educativa María Auxiliadora, Colegio Luisa de Jesús Cordero, República

de Israel (sección vespertina y nocturna), Colegio Francisco Tamariz,

Colegio Carlos Cueva Tamariz, Colegio Francisco Febres

Cordero,(sección vespertina y nocturna).

4.4. CRITERIOS DE INCLUSIÓN.

Se incluyeron:

Estudiantes secundarios comprendidos entre los 12 a 17 años

cumplidos, que pertenezcan al Colegio Nacional República de

Israel sección nocturna, de cualquier sexo o condición social.

Que tengan el consentimiento informado firmado por el

representante y el asentimiento firmado por el estudiante.

4.5. CRITERIOS DE EXCLUSIÓN.

Quedaron fuera de la investigación:

Muestras hemolizadas.

Muestras lipémicas.

Orinas con más de 2 horas de recolección.

Encuestas incompletas.

Estudiantes que no estén en ayunas.

4.6. Métodos, técnicas y procedimentos.

4.6.1. Para cumplir el primer objetivo se procedió de manera aleatoria a

ubicar el Colegio Nacional República de Israel sección nocturna para

seleccionar a los 250 estudiantes aparentemente sanos en las diferentes

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Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 69

aulas del establecimiento educativo, a los cuales se les aplicó una

encuesta para contar con el consentimiento del representante o padre de

familia de cada estudiante.

A los estudiantes incluidos en el proyecto, se receptó el consentimiento

informado que abalizó su aceptación; y posteriormente se obtuvo las

muestras de sangre en ayunas, muestras de orina, de heces y la

determinación de su talla y peso.

4.6.2. Para cumplir el segundo objetivo, se procedió a la extracción de

sangre a los adolescentes seleccionados. Para la extracción de la misma

el paciente debió estar sentado extendido su antebrazo firmemente;

luego procedimos a aplicar el torniquete provocando la estasis venosa, se

desinfectó el sitio de punción utilizando una torunda empapada de

alcohol; se procedió a la punción utilizando agujas descartables o

vacutainer estériles, de calibre 20; las venas utilizadas fueron la cefálica,

basílica o mediana basílica; se recogió 5 ml de sangre en tubos al vacío

con anticoagulante EDTA para las pruebas hematológicas y 10 ml sin

anticoagulante para las pruebas bioquímicas, envases estériles para la

recolección de muestras de orina y heces.

Las muestras obtenidas fueron trasladadas inmediatamente al Laboratorio

Clínico del Hospital Vicente Corral Moscoso.

Para determinar los valores hematológicos y de sustancias bioquímicas,

utilizamos sangre total y suero de las personas seleccionadas, siguiendo

rigurosamente las siguientes técnicas.

4.7. TÉCNICAS Y EQUIPOS.

4.7.1. Técnicas hematológicas.

HEMOGRAMA (CELL-DYN 3700).

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Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 70

El sistema CELL-DYN 3700 es un analizador de hematología automático

y multiparamétrico, diseñado para utilizarse en el diagnóstico in vitro en

los laboratorios clínicos.

El sistema CELL-DYN® 3700 efectúa las siguientes mediciones

hematológicas en sangre anticoagulada con EDTA:

WBC: Recuento de leucocitos.

NEU: Recuento absoluto de neutrófilos.

LYM: Recuento absoluto de linfocitos.

MONO: Recuento absoluto de monocitos.

EOS: Recuento absoluto de eosinófilos.

BASO: Recuento absoluto de basófilos.

%N: Porcentaje de neutrófilos.

%L: Porcentaje de linfocitos.

%M: Porcentaje de monocitos.

%E: Porcentaje de eosinófilos.

%B: Porcentaje de basófilos.

RBC: Recuento de glóbulos rojos o eritrocitos.

HGB: Concentración de hemoglobina.

HCT: Hematocrito.

MCV: Volumen corpuscular medio.

MCH: Hemoglobina corpuscular media.

MCHC: Concentración de hemoglobina corpuscular media.

RDW: Amplitud de la distribución del tamaño de los eritrocitos.

PLT: Recuento de plaquetas o trombocitos.

MPV: Volumen plaquetario medio.

PDW: Amplitud de la distribución del tamaño de las plaquetas.

PCT: Plaquetocrito.

DESCRIPCIÓN GENERAL.

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Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 71

El analizador es la unidad central del sistema CELL-DYN 3700; aspira y

diluye las muestras de sangre, transporta y analiza las diluciones

preparadas y lava los conductos, para preparar la siguiente muestra.

SISTEMA DE REACTIVOS.

Diluyente.

El diluyente CELL-DYN ha sido formulado para cumplir los requisitos

siguientes:

Actúa como diluyente para los leucocitos (únicamente para el

recuento por impedancia), los eritrocitos, las plaquetas y la

hemoglobina.

Mantiene estable el volumen celular diluido de cada eritrocito y

plaqueta durante el recuento y la fase de clasificación volumétrica

del ciclo de medición.

Reactivo hemolizante HGB/WIC:

El reactivo hemolizante CELL-DYN HGB/WIC ha sido formulado para

cumplir los siguientes requisitos:

Hemoliza rápidamente los eritrocitos y minimiza el estroma

resultante.

Desprende el citoplasma de los glóbulos blancos, dejando intacta la

membrana nuclear, para poder contar los núcleos leucocitarios.

Transforma la hemoglobina en una sola sustancia cromógena, que

puede medirse a 540 nm. (El lisado de amonio cuaternario participa

como cromógeno.

Reactivo hemolizante WIC/HGB sin cianuro.

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Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 72

El reactivo hemolizante CELL-DYN WIC/HGB sin cianuro ha sido

formulado para cumplir los siguientes requisitos:

Hemoliza rápidamente los eritrocitos y minimiza el estroma

resultante.

Desprende el citoplasma de los glóbulos blancos, dejando intacta la

membrana nuclear, para poder contar los núcleos leucocitarios.

Transforma la hemoglobina en una sola sustancia cromógena, que

puede medirse a 540 nm.

Proporciona una lectura de fondo igual o inferior a 0,2 g/dl.

Detergente:

El detergente CELL-DYN ha sido formulado para cumplir los siguientes

requisitos:

Una solución ópticamente clara, necesaria para obtener el valor

cero de referencia durante el ciclo de medición de la hemoglobina.

Facilita la formación del menisco apropiado en los tubos

volumétricos WIC y RBC/PLT y lo mantiene durante cada ciclo de

procesado.

Lava la cámara de recuento WIC, el tubo volumétrico WIC, la

cámara de recuento RBC/PLT, el tubo volumétrico RBC/PLT y la

celda de flujo de HGB, con una formación mínima de burbujas.

Reactivo envolvente:

El reactivo envolvente CELL-DYN ha sido formulado para cumplir los

siguientes requisitos:

Hemoliza los eritrocitos por un mecanismo osmótico.

Mantiene las propiedades de dispersión de la luz de los leucocitos

durante el periodo de medición.

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Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 73

Actúa como líquido envolvente, necesario en el proceso de enfoque

hidrodinámico.

Proporciona una acción humectante adecuada que impide la

acumulación de burbujas de aire en el sistema de flujo WOC.

Proporciona una lectura de fondo WOC igual o inferior a 0,3 x

103/ul (109/1).

Limpiador enzimático:

El limpiador enzimático CELL-DYN ha sido formulado para eliminar con

eficacia los depósitos de proteínas acumuladas en el analizador.

Mensajes de alerta de los parámetros

PARÁMETRO ALERTA DE RESULTADOS FUERA DE RANGO

MENSAJES INTERPRETATIVOS

WBC

El resultado se visualiza en color amarillo, si se encuentra por debajo del límite inferior. El resultado se visualiza en color violeta, si se encuentra por encima del límite superior. El resultado aparece subrayado en el informe grafico impreso si excede de los límites. El resultado aparece subrayado en el ticket en blanco, si excede de los límites. El resultado aparece marcado con un asterisco (*) en el ticket pre-impreso si excede de los limites.

Leucopenia Leucocitosis

Diferencial NEU LYN MONO EOS BASO

Igual que WBC

Neutropenia Neutrofilia Linfopenia Linfocitosis Monocitosis Eosinofilia Basofilia

RBC MCV RDW MCH MCHC

Igual que WBC

Anemia Policitemia Eritrocitos microcíticos Eritrocitos macrocíticos Hipocromía Anisocitosis

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Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 74

Las muestras, cuyos resultados exceden de la linealidad, deben diluirse

con el diluyente, según el procedimiento del laboratorio, luego se repetirá

su procesado. Cerciorarse de corregir el resultado según el factor de

dilución aplicado.

NOTA: MCB, MCH, MCHC, MPV, no se alteran con la dilución ni precisan

corrección.

Parámetros de la formula leucocitaria

TIPO DE CELULA

INTERVALO

DIFERENCIA RESPECTO AL VALOR MEDIO DE N= 31

% Neutrófilos 45 – 70 + 2.1

% Linfocitos 20 – 40 + 2.6

% Monolitos 3.5 – 11.5 + 2.4

% Eosinófilos 0.5 – 8.0 + 1.0

% Basófilos 0-5 – 2.0 + 1.0

Limite confianza: 95%.

4.7.2. PRUEBAS QUÍMICAS.

4.7.2.1. GLICEMIA.

PLT MVP

Igual que WBC

Trombocitopenia Trombocitosis Plaquetas microcíticas Plaquetas macrocíticas

PARAMETRO CV (COEFICIENTE DE VARIACION)

WBC (WOC) < 2.5%

WBC (WIC) < 2.8%

RBC < 1.5%

HGB < 1.2%

MCV < 1.0%

RDW < 5.0%

PLT < 5.0%

MPV < 6.1%

RETIC. % < 15.0%

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Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 75

Fundamento.

Prueba enzimática colorimétrica: Debido al oxigeno del aire, la glucosa se

oxida a gluconolactona bajo la acción de la glucosaoxidada (GOD). Se

forma peróxido de hidrógeno que, en presencia de la peroxidasa (POD),

oxida la 4-aminofenazona y el fenol a 4-(p-benzoquinona-monoimino)-

fenazona.

La intensidad del color es directamente proporcional a la concentración de

glucosa que se mide fotométricamente.

Almacenamiento y estabilidad de la muestra.

Centrifugar la sangre lo antes posible: los eritrocitos y leucocitos

consumen glucosa, por tanto, si el contacto con las células es

prolongado se pueden dar resultados falsamente bajos (a

temperatura ambiente puede incluso desaparecer al cabo de 6h).

Actualmente existen tubos con separador de suero que funciona

como una interface entre las células y el suero después de la

centrifugación, haciendo que no sea necesario separar el suero en

otro tubo.

Si no se van a analizar inmediatamente, se puede refrigerar la

muestra o añadir un conservante ej. Fluoruro sódico.

Si los análisis no se completan en 48 horas, las muestras

separadas se deben congelar entre -15°C y -20°C. Estas deben

descongelarse sólo una vez. Puede haber deterioro del compuesto

en muestras congeladas y descongeladas repetidamente.

La concentración de glucosa en suero refrigerado es estable

durante 3 días.

Metodología.

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El Sistema Sistemas SYNCHRON® determina la concentración de

GLUCm mediante un método cinético que emplea el electrodo para

oxígeno de Beckman Coulter.

Técnica.

Un volumen preciso de muestra (10 microlitros) es inyectado en una

cubeta de reacción que contiene solución de glucosa oxidasa. La

proporción es una parte de muestra a 76 partes de reactivo. La velocidad

pico de consumo de oxígeno es directamente proporcional a la

concentración de GLUCm en la muestra.

Reactivos.

Dos frascos de Reactivo Glucosa (2 x 2 L).El Reactivo GLUCm, junto con

el AQUA CAL 1 y 2, SYNCHRON ® y el Sistemas LX®, Sistemas UniCel®

DxC 600/800, se usa para la determinación cuantitativa de la

concentración de Glucosa en suero, plasma, orina o líquido

cefalorraquídeo (LCR) humanos.

Almacenamiento y estabilidad del reactivo.

El Reactivo GLUCm, almacenado sin abrir entre +2°C y +8°C, permanece

estable hasta la fecha de caducidad indicada en cada botella. El reactivo

permanece estable en el instrumento 30 días o hasta la fecha de

caducidad, si ésta es anterior.

Si el reactivo ha sido congelado para su transporte, deje que alcance la

temperatura ambiente y mézclelo bien, invirtiendo el frasco suavemente

por lo menos 10 veces.

Calibración.

Calibrador necesario: AQUA CAL 1 y 2, SYNCHRON ®

Preparación del calibrador: No requiere preparación.

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4.7.2.2. ANTIESTREPTOLISINA-O o ASTO.

Fundamento.

Test inmunoturbidimétrico: La estreptolisina O que cubre el látex

reacciona con los anticuerpos de la muestra formando un complejo

antígeno-anticuerpo. La aglutinación en subsecuente se mide

turbidimetricamente.

Almacenamiento y estabilidad de la muestra.

Centrifugar las muestras que contienen precipitado antes de efectuar el

test.

Es estables: 2 días a 15 – 25°C

8 días a 2 – 8°C

6 meses a (-15) – (-25) °C

Metodología.

El Reactivo ASO se usa para medir los anticuerpos humanos contra la

estreptolisina-O mediante un método de turbidimetría cinética. En la

reacción, los anticuerpos contra la estreptolisina-O en la muestra se

combinan con partículas de látex recubiertas con estreptolisina-O

recombinante altamente purificada, lo que produce aglutinación y un

cambio en la absorbancia.

Técnica.

El Sistemas SYNCHRON® dispensa en forma automática los volúmenes

apropiados de muestra y reactivo en una cubeta. La proporción para

Antiestreptolisina-O es una parte de muestra a 50 partes de reactivo. El

sistema controla el cambio de absorbancia a 340 nanómetros.

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Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 78

Este cambio de absorbancia es directamente proporcional a la

concentración de anticuerpos Antiestreptolisina-O humanos en la

muestra, y es usado por el Sistemas SYNCHRON® para calcular y

expresar la concentración de anticuerpos Antiestreptolisina-O humanos

basándose en una calibración lineal de un solo punto usando un

calibrador estandarizado según la Organización Mundial de la Salud.

Reactivo.

El Reactivo ASO-, junto con el SYNCHRON® Systems CAL 5 Plus

Sistemas SYNCHRON LX® y el Sistema UniCel® DxC 600/800, se usa

para la determinación cuantitativa de la concentración de anticuerpos

humanos contra estreptolisina O en suero o plasma humanos.

Almacenamiento y estabilidad del reactivo.

Sin abrir, a 2-8°C: hasta la fecha de caducidad indicada. Una vez abierto y

refrigerado en el analizador es estable 90 días.

4.8. UROANÁLISIS:

Materiales para el examen de Orina.

Recipiente para orina estéril.

Tubos de ensayo.

Gradillas.

Portaobjetos.

Cubreobjetos.

Tiras reactivas.

Equipo; Microscopio.

Técnica.

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En un tubo de ensayo colocamos la muestra.

Observar el Aspecto, Color, Olor.

Luego introducimos una tira reactiva en la muestra.

Mandar a centrifugar (durante 10 minutos a 5000 rpm).

Se desecha la orina centrifugada.

El sedimento se coloca en un portaobjeto.

Colóquese un cubreobjetos sobre la muestra.

Examínese las preparaciones en el microscopio con el objetivo de

10x para enfocar y con el lente de 40x para identificar las

estructuras presentes en la muestra.

4.9. COPROANALISIS:

Materiales:

Recipiente para heces estéril.

Portaobjetos

Cubreobjetos

Goteros

Palillos

Suero fisiológico

Equipo; Microscopio

Técnica.

Destapar el envase y observar el aspecto, color, consistencia, presencia

de estructuras macroscópicas y reportar.

En un portaobjetos colocamos una gota de solución salina en un extremo

y una gota de lugol en el otro.

Con un palillo, tómese una pequeña porción de heces mézclese con

solución salina y lugol para obtener una muestra homogénea.

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Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 80

Colóquese un cubreobjetos sobre la muestra preparada.

Examínese las preparaciones en el microscopio con el objetivo de 10x

para enfocar y con el lente de 40x para identificar las estructuras

presentes en la muestra.

4.10. EQUIPOS DE LABORATORIO CLÍNICO UTILIZADOS EN LA

INVESTIGACIÓN.

Centrífuga.

Consiste en un motor rotatorio de velocidad controlable mediante el cual

se logra que un cabezal fijado al mismo mediante un eje vertical gire en el

cabezal, se encuentran dispuestos simétricamente, recipientes en los

cuales se colocarán los tubos cuyo contenido permite separar los

componentes de acuerdo a su densidad.

La velocidad de giro crea una fuerza de alejamiento del centro (centrífuga)

es más intensa en los elementos más pesados los cuales van hacia el

fondo de los tubos (sedimento), en tanto que los más livianos

permanecerán en la superficie (sobrenadante).

Toda centrífuga moderna tiene sus partes móviles dentro de un recipiente

cerrado con el fin de evitar que el desprendimiento accidental de

elementos durante el giro pueda causar accidentes al personal.

La marca de la centrifuga utilizada es: HETTICH ROTOFIX 32A.

4.11. CONTROL DE CALIDAD DE LOS RESULTADOS.

La fuente de investigación trata de determinar el estado de salud de los

adolescentes de 12 a 17 años del Colegio Nacional República de Israel

sección nocturna. Mediante los parámetros químicos, hematológicos,

orina y heces.

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Para que los resultados obtenidos en el laboratorio del Hospital Vicente

Corral Moscoso sean fiables se realizaron controles de calidad internos e

inter – laboratorios.

4.12. CONTROL DE CALIDAD INTER-LABORATORIO.

Se realizaron controles en laboratorios calificados como son el Hospital

Militar y Laboratorios GM tomando 2 muestras al azar por día.

Las muestras fueron enviadas en la brevedad posible para así obtener

resultados más confiables.

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4.13. RESULTADOS COMPARATIVOS OBTENIDOS EN EL CONTROL

DE CALIDAD.

Paciente NO. 23030426

PRUEBA HOSP. VCM LABORATORIOS

MG

BIOMETRÍA HEMÁTICA

Recuento Blancos (mm3) 5.810 6.100

Recuento Rojos (mm3) 4.790.000 4’600.000

Plaquetas (mm3) 326.000 332.000

Neutrófilos % 44,3 50

Linfocitos % 48,4 42,8

Eosinófilos % 1.29 1.6

Monocitos % 5,51 5.1

Basófilos % 0.51 0.5

Hemoglobina (g/dl) 14,3 14,9

Hematocrito (%) 41.2 43,5

QUÍMICA SANGUÍNEA

Glucosa mg/dl 85 79

ASTO UI/l 135.5 133.4

Paciente NO. 23030448

PRUEBA HOSP. VCM LABORATORIOS MG

BIOMETRÍA HEMÁTICA

Recuento Blancos (mm3) 6.970 6.510

Recuento Rojos (mm3) 5.470.000 5.210.000

Plaquetas (mm3) 243.000 351.000

Neutrófilos % 42.6 48.4

Linfocitos % 39.7 42,6

Eosinófilos % 1.29 1.1

Monocitos % 8,64 7.4

Basófilos % 0.05 0.5

Hemoglobina (g/dl) 15,9 15.2

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Hematocrito (%) 46,4 45,9

QUÍMICA SANGUÍNEA

Glucosa mg/dl 85 81

ASTO UI/l 58,9 64.2

Paciente NO. 25030355

PRUEBA HOSP. VCM LABORATORIOS

MG

BIOMETRÍA HEMÁTICA

Recuento Blancos (mm3) 6.190 6.320

Recuento Rojos (mm3) 5.050.000 4.910.000

Plaquetas (mm3) 385.000 401.000

Neutrófilos % 48.1 51.2

Linfocitos % 44.5 41,1

Eosinófilos % 0.53 1

Monocitos % 6.84 6.6

Basófilos % 0.09 0.1

Hemoglobina (g/dl) 14,8 15.1

Hematocrito (%) 41.4 45.4

QUÍMICA SANGUÍNEA

Glucosa mg/dl 69 63

ASTO UI/l 65.1 49.9

Paciente NO. 25030358

PRUEBA HOSP. VCM LABORATORIOS MG

BIOMETRÍA HEMÁTICA

Recuento Blancos (mm3) 7.760 7.600

Recuento Rojos (mm3) 5.900.000 5.770.00

Plaquetas (mm3) 298.000 312.000

Neutrófilos % 66.6 62.9

Linfocitos % 26.2 29.8

Eosinófilos % 0,95 1

Monocitos % 5.55 6.1

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Basófilos % 0,06 0,2

Hemoglobina (g/dl) 17.3 16.8

Hematocrito (%) 50 51

QUÍMICA SANGUÍNEA

Glucosa mg/dl 92 88

ASTO UI/l 67.3 62.6

Paciente NO. 29030554

PRUEBA HOSP. VCM HOSP. MILITAR

BIOMETRÍA HEMÁTICA

Recuento Blancos (mm3) 7.470 5.500

Recuento Rojos (mm3) 4.080.00 4.160.000

Plaquetas (mm3) 319.000 305.000

Neutrófilos % 49 52

Linfocitos % 33,7 36

Eosinófilos % 10,2 12

Monocitos % 5.89 0

Basófilos % 1.25 0

Hemoglobina (g/dl) 12.4 11.9

Hematocrito (%) 35.1 37

QUÍMICA SANGUÍNEA

Glucosa mg/dl 88 85

ASTO UI/l 71,3 128.7

Paciente NO. 29030555

PRUEBA HOSP. VCM LABORATORIOS

MG

BIOMETRÍA HEMÁTICA

Recuento Blancos (mm3) 8.420 6,500

Recuento Rojos (mm3) 4.800.000 5.050.000

Plaquetas (mm3) 303.000 309.000

Neutrófilos % 54.7 51

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Linfocitos % 35.1 41

Eosinófilos % 1.3 0

Monocitos % 7.0 0

Basófilos % 1.73 0

Hemoglobina (g/dl) 14,3 13.9

Hematocrito (%) 40.9 44

QUÍMICA SANGUÍNEA

Glucosa mg/dl 86 79

ASTO UI/l 26.2 82.9

La aplicación de un buen control de calidad permite obtener resultados

fidedignos y confiables, siendo necesario vigilar los procedimientos

durante las tres fase pre – analítica, analítica y la post – analítica.

En la fase pre – analítica: los pacientes seleccionados cumplieron todos

los criterios de inclusión, las muestras fueron tomadas en ayunas a las

07:30 am, receptadas e identificadas correctamente y llevadas al

laboratorio al laboratorio.

En la fase analítica, se siguieron minuciosamente las instrucciones de

cada técnica, no se realizó variación en el personal y los reactivos

estaban almacenados siguiendo las indicaciones respectivas de cada set.

En la fase post–analítica los resultados fueron ingresados inmediatamente

al programa SPSS para el consecuente análisis y la discusión.

4.14. CONTROL DE CALIDAD DEL EQUIPO HEMATOLÓGICO.

Con este mismo esquema se realizó el resto de parámetros que enmarca

el hemograma obteniendo resultados similares.

Se realizó una evaluación interna de calidad (analizador hematológico

marca CELL-DYN 3700 SYSTEM versión 1,3 del software) corriendo un

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calibrador, este análisis lleva a determinar errores aleatorios que se

originan cuando no se logra el mismo resultado al repetir una medición

utilizando el mismo proceso (instrumento, operador, método, etc.); estos

errores afectan poco a la media aritmética y la variabilidad de los

resultados.

Las discordancias básicamente se encontraron en los grupos celulares

(Glóbulos rojos, leucocito, plaquetas) lo que puede atribuirse a:

aglutininas frías, agregación plaquetaria, eritroblastosis, glóbulos rojos

nucleados, crioglobulinas, microcitosis severa, glóbulos rojos

fragmentados, leucocitosis (>100.000/ul).

4.15. CONTROL DE CALIDAD DE TEMPERATURAS.

Temperatura de la refrigeradora

Concentración: 4,38ºC

Desviación Típica: 0,740 %

Formula: CV = S x 100

FECHA T. DE LA

REFRIGERADORA

FECHA T. DE LA

REFRIGERADORA

23/03/2011 4,0 23/03/2011 4,0

24/03/2011 5,0 24/03/2011 4,0

2/03/2011 4,0 25/03/2011 5,0

29/03/2011 3,0 29/03/2011 5,0

m =4,38ºC

CV = 0,740 %

N = 4

Se concluye que no se ha violado ninguna de las reglas de westgard, por

lo tanto, se puede validar todos los resultados obtenidos en la

investigación.

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CAPITULO V 5.1. ANÁISIS DE RESULTADOS.

Cuadro No. 1

DISTRIBUCIÓN DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA, SEGÚN LA EDAD.

CUENCA 2011.

Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores.

EDAD (años)

Media 15,57

Mediana 16,00

Moda 17

Desv. Típ. 1,416

Varianza 2,005

Mínimo 12

Máximo 17

EDAD (años)

Frecuencia Porcentaje

12 9 3,6

13 17 6,8

14 30 12,0

15 45 18,0

16 65 26,0

17 84 33,6

Total 250 100,0

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Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 89

De los 250 adolescentes estudiados el 59.6% se encuentran entre 16 y 17 años de edad, y el 3,6% corresponden a la edad de 12 años.

Gráfico No. 1

Fuente: Cuadro No. 1

Cuadro No. 2

DISTRIBUCIÓN DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO

REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA, SEGÚN EL SEXO. CUENCA – 2011

Sexo Frecuencia Porcentaje

Masculino 134 53,6

Femenino 116 46,4

Total 250 100,0

Fuente: Datos obtenidos Autores: Los investigadores De los adolescentes estudiados el 53,6% corresponde al sexo masculino, y el 46,4% al sexo femenino.

Gráfico No. 2

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Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 90

Fuente: Cuadro No. 2

Cuadro No. 3

DISTRIBUCIÓN DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA, SEGÚN LA TALLA.

CUENCA - 2011

Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores.

TALLA EN METROS

Media 1,5383

Mediana 1,5400

Moda 1,52

Desv. Típ. ,07783

Varianza ,006

Mínimo 1,33

Máximo 1,75

De los adolescentes estudiados el 47.2% están entre 1.51 y 1.60 metros de estatura, y el 4,4% miden entre 1,31 y 1,40 metros.

Talla (metros) Frecuencia Porcentaje

1.31 - 1.40 11 4,4

1.41 - 1.50 72 28,8

1.51 - 1.60 118 47,2

>1.60 49 19,6

Total 250 100,0

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Gráfico No. 3

Fuente: Cuadro No. 3

TALLA EN METROS

1.801.701.601.501.401.30

Frec

uenc

ia

40

30

20

10

0

Histograma

Media =1.54

Desviación típica =0.078

N =250

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 92

TALLA EN METROS

1.80

1.70

1.60

1.50

1.40

1.30

Cuadro No.4

DISTRIBUCIÓN DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA, SEGÚN EL PESO.

CUENCA – 2011

PESO (Kg) Frecuencia Porcentaje

31 – 40 4 1,6

41 – 50 80 32,0

51 – 60 93 37,2

>60 73 29,2

Total 250 100,0

Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores.

En los adolescentes estudiados el 37,2% pesan de 51 a 60 kg, y el 1,6% tienen un peso entre 31 y 40 Kg.

Gráfico No. 4

PESO (Kg)

Media 55,434 Mediana 55,000

Moda 45,0 Desv. Típ. 9,2719 Varianza 85,969 Mínimo 33,0 Máximo 85,0

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 93

Fuente: Cuadro No. 4

PESO EN Kg.

90.080.070.060.050.040.030.0

Frec

uenc

ia

30

20

10

0

Histograma

Media =55.43

Desviación típica =9.272

N =250

PESO EN Kg.

90.0

80.0

70.0

60.0

50.0

40.0

30.0

194

164

Cuadro No. 5

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 94

DISTRIBUCIÓN DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA, SEGÚN LA

RESIDENCIA. CUENCA - 2011.

Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores. De los adolescentes estudiados el 84,8% pertenecen al área urbana, y el 15,2% al área rural.

Gráfico No. 5

Fuente: Cuadro No. 5

Cuadro No. 6

DISTRIBUCIÓN DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO

REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA, SEGÚN EL TIPO DE COLEGIO, CUENCA – 2011

RESIDENCIA

Frecuencia

Porcentaje

Urbano

212

84,8

Rural

38

15,2

Total

250

100,0

TIPO

Frecuencia

Porcentaje

Fiscal

250

100.0

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 95

Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores. El 100% de los adolescentes estudiantes pertenecen a un colegio fiscal.

Cuadro No. 7

DISTRIBUCIÓN DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO

REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA, SEGÚN LA CLASE DE COLEGIO, CUENCA 2011.

Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores. El 100% de los adolescentes estudiados pertenecen a un colegio mixto.

Cuadro No. 8

VALOR DE HEMOGLOBINA EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA.

CUENCA - 2011.

Hemoglobina (gr/dl)

Frecuencia Porcentaje

8 – 10 6 2,4

11 – 13 48 19,2

14 – 16 175 70

17 – 19 20 8

>19 1 ,4

Total 250 100,0

Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores.

CLASE

Frecuencia

Porcentaje

Mixto 250 100,0

HEMOBLOBINA (gr/dl)

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 96

El 70% de los adolescentes tienen un valor de Hemoglobina entre 14 a 16 g%, el 2.4% hemoglobina de 8 a 10 g%, y el 0,4% un valor superior a 19 g/dl.

Gráfico No. 8

Fuente: Cuadro No. 8

Media 14,885

Mediana 15,000

Moda 14,5

Desv. Típ. 1,5243

Varianza 2,323

Mínimo 9,7

Máximo 18,4

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 97

HEMOBLOBINA gr/dl

20.018.016.014.012.010.08.0

Frec

uenc

ia

40

30

20

10

0

Histograma

Media =14.88

Desviación típica =1.524

N =250

HEMOBLOBINA gr/dl

20.0

18.0

16.0

14.0

12.0

10.0

8.0

27

120213

21976

96

Cuadro No. 9

VALOR DE HEMATOCRITO EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA.

CUENCA - 2011.

HEMATOCRITO (%) Frecuencia Porcentaje <35 10 4,0

35 – 39 32 12,8 40 – 44 106 42,4 45 – 49 87 34,8 50 – 54 14 5,6

>54 1 0,4 Total 250 100,0

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 98

Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores.

El 77.2% de los adolescentes tienen un valor de hematocrito entre 40 - 49%, el 4,0% presentan un hematocrito menor a 35% y el 0,4% un valor superior a 54%.

Gráfico No. 9

Fuente: Cuadro No. 9

HEMATOCRITO (%)

Media 43,420

Mediana 43,750

Moda 45,0

Desv. Típ. 4,3243

Varianza 18,699

Mínimo 28,0

Máximo 57,0

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 99

HEMATOCRITO %

60.050.040.030.020.0

Frec

uenc

ia

50

40

30

20

10

0

Histograma

Media =43.42

Desviación típica =4.324

N =250

HEMATOCRITO %

60.0

50.0

40.0

30.0

20.0

105

89

120

193

76213

96

Cuadro No. 10

VALOR DE GLÓBULOS ROJOS EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA.

CUENCA 2011.

GLÓBULOS ROJOS

(mm3)

Frecuencia

Porcentaje

<4.000.000

7

2,8

4.000.000 - 4.499.999

19

7,6

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 100

4.500.000 - 4.999.999 72 28,8

5.000.000 - 5.499.999

103

41,2

5.500.000 - 5.999.999

43

17,2

>5.999.999 6

2,4

Total

250

100,0

Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores.

De los adolescentes estudiados el 70% tienen un valor de glóbulos rojos entre 4.500.000 - 5.499.999 x mm, el 2,8% menor a 4.000.00 x mm3, y el 2,4% un valor mayor a 5.999.999 x mm3.

GLÓBULOS ROJOS (mm3)

Media 5,088.916.00

Mediana 5,130.000.00

Moda 5,300.000

Desv. Típ. ,526912684

Varianza ,278

Mínimo 3,230.000

Máximo 6,380.000

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 101

Gráfico No. 10

Fuente: Cuadro No. 10

RECUENCTO DE GLOBULOS ROJOS mm3

7.0000006.0000005.0000004.0000003.000000

Frec

uenc

ia

40

30

20

10

0

Histograma

Media =5.088916

Desviación típica =0.

526913

N =250

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 102

RECUENCTO DE GLOBULOS ROJOS mm3

7.000000

6.000000

5.000000

4.000000

3.000000

139

2739

76

60

213

79

96

Cuadro No. 11

VALOR DE GLÓBULOS BLANCOS EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA.

CUENCA 2011.

GLÓBULOS BLANCOS

(mm3)

Frecuencia

Porcentaje

<4.000 3 1,2

4.000 - 5.999 41 16,4

6.000 - 7.999 106 42,4

8.000 - 9.999 67 26,8

>9.999 33 13,2

Total 250 100,0

Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores.

GLÓBULOS BLANCOS (mm3)

Media 7,764.72 Mediana 7,615.00

Moda 6,390 Desv. Típ. 2,024948 Varianza 4,100 Mínimo 2,370 Máximo 15,200

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 103

El 69,2% de los adolescentes tienen un valor de glóbulos blancos que va de 6.000 - 9.999 x mm3, y solo el 1,2% menor a 4.000 x mm3.

Gráfico No. 11

Fuente: Cuadro No. 11

RECUENCTO DE GLOBULOS BLANCOS mm3

15.00012.50010.0007.5005.0002.500

Frec

uenc

ia

40

30

20

10

0

Histograma

Media =7.765

Desviación típica =2.025

N =250

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 104

RECUENCTO DE GLOBULOS BLANCOS mm3

15.000

12.500

10.000

7.500

5.000

2.500

248

113

200

145

196

214

Cuadro No. 12

VALOR DE PLAQUETAS EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA.

CUENCA 2011.

Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores.

Plaquetas (mm3)

Media 304.976,00

Mediana 310.000,00

Moda 271.000

Desv. Típ. 68935,447

Varianza 4752095807,229

Mínimo 142.000

PLAQUETAS (mm3) Frecuencia Porcentaje

<150.000 1 0,4

150.000 - 249.999 46 18,4

250.000 - 349.999 151 60,4

350.000 - 449.999 49 19,6

>449.999 3 1,2

Total 250 100

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 105

Máximo 646.000

El 60,4% de los adolescentes tienen un valor plaquetario de 250.000 - 349.999 x mm3, y el 0,4% un valor menor a 150.000 x mm3.

Gráfico No. 12

Fuente: Cuadro No. 12

Recuento de plaquetas

700000600000500000400000300000200000100000

Frec

uenc

ia

50

40

30

20

10

0

Histograma

Media =304976

Desviación típica

=68935.447

N =250

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 106

Recuento de plaquetas

700000

600000

500000

400000

300000

200000

100000

219

Cuadro No. 13

VALOR DE NEUTRÒFILOS EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA.

CUENCA 2011.

Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores.

NEUTRÓFILOS (%) Frecuencia Porcentaje

<21 1 0,4

21 – 30 5 2

31 – 40 21 8,4

41 – 50 89 35,6

51 – 60 90 36,0

61 – 70 33 13,2

>70 11 4,4

Total 250 100,0

NEUTRÓFILOS (%)

Media 52,11136

Mediana 52,0

Moda 50,0 Desv. Típ. 10,87989807

Varianza 118,3721821

Mínimo 1,94

Máximo 85,0

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 107

El 71,6% de los adolescentes estudiados, en la formula diferencial los neutrófilos se mantienen entre 41 - 60%, mientras que en el 0,4 % de los estudiantes se observa un porcentaje menor a 21%.

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 108

Gráfico No. 13

Fuente: Cuadro No. 13

NEUTROFILOS %

80.060.040.020.0

Frec

uenc

ia

40

30

20

10

0

Histograma

Media =52.22

Desviación típica =10.

507

N =250

NEUTROFILOS %

80.0

60.0

40.0

20.0

39

7079

15

29

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 109

Cuadro No. 14

VALOR DE LINFOCITOS EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO

REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA. CUENCA 2011.

Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores.

El 40,8% de los adolescentes estudiados, en la formula diferencial los linfocitos se mantienen entre 31 - 40%, mientras que en el 1,2% de los estudiantes se observa un porcentaje menor a 11. %.

Gráfico No. 14

LINFOCITOS

(%)

Frecuencia

Porcentaje

<11 3 1,2 11 – 20 13 5,2 21 – 30 37 14,8 31 – 40 102 40,8 41- 50 77 30,8

>50 18 7,2 Total 250 100,0

LINFOCITOS (%)

Media 37,49404

Mediana 37,5

Moda 37,0

Desv. Típ. 10,18748362

Varianza 103,7848226

Mínimo 7,0

Máximo 73,6

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 110

Fuente: Cuadro No. 14

LINFOCITOS %

60.040.020.00.0

Frec

uenc

ia

40

30

20

10

0

Histograma

Media =37.46

Desviación típica =10.09

N =250

LINFOCITOS %

60.0

40.0

20.0

0.0

82214

41

29

79

27

81

3970

Cuadro No. 15

VALOR DE MONOCITOS EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA.

CUENCA - 2011.

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 111

Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores.

MONOCITOS (%)

Media 4,76916

Mediana 5

Moda 1

Varianza 7,48155391

Desv. Típ. 2,735242934

Mínimo 0,31

Máximo 15,5

El 34,8% de los adolescentes estudiados, en la formula diferencial los monocitos se mantienen en un rango menor al 4%, mientras que en el 16,8% de los estudiantes se observa un porcentaje mayor a 7%.

Gráfico No. 15

Fuente: Cuadro No. 15

Monocitos

(%)

Frecuencia

Porcentaje

< 4 87 34,8

4 – 5 69 27,6

6 – 7 52 20,8

> 7 42 16,8

Total 250 100,0

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 112

MONOCITOS %

20.0015.0010.005.000.00

Frec

uenc

ia

50

40

30

20

10

0

Histograma

Media =4.77

Desviación típica =2.735

N =250

MONOCITOS %

20.00

15.00

10.00

5.00

0.00

214

Tabla No. 16

VALOR DE BASÓFILOS EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA.

CUENCA 2011.

BASOFILOS (%) Frecuencia Porcentaje

<1 95 38,0

1 – 2 139 55,6

>2 16 6,4

Total 250 100,0

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 113

Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores. El 55,6% de los adolescentes estudiados, en la formula diferencial, los basófilos se mantienen entre 1 - 2%, mientras que en el 38% de los estudiantes se observa un porcentaje menor a 1%.

Gráfico No. 16

Fuente: Cuadro No. 16

BASÓFILOS (%)

Media 1,269516

Mediana 1,0

Varianza 1,963885391

Desv. Típ. 1,401386953

Mínimo 0,1

Máximo 10,0

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 114

BASOFILOS %

10.008.006.004.002.000.00

Frec

uenc

ia

120

100

80

60

40

20

0

Histograma

Media =1.27

Desviación típica =1.401

N =250

BASOFILOS %

10.00

8.00

6.00

4.00

2.00

0.00

2

5557

214

7

5

10

53

81

113

44

221

42

50

101

109

12791

93

96

105

227 205178

162

150 153

232106

Cuadro No. 17

VALOR DE EOSINÓFILOS EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO

REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA. CUENCA, 2011

EOSINÓFILOS Frecuencia Porcentaje

0 – 1 119 47,6

2 – 3 81 32,4

4 – 5 12 4,8

>5 38 15,2

Total 250 100

Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores.

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 115

EOSINOFILOS %

Media 2,8615

Mediana 2,135

Moda 0,48

Desv. Típ. 2,5793

Varianza 6,6529

Mínimo 0,13

Máximo 12,4

El 47,6 % de los adolescentes estudiados en la formula diferencial los eosinófilos son menores al 1%, mientras que en el 15,2% de los estudiantes se observa un porcentaje mayor al 5%.

Gráfico No. 17

Fuente: Cuadro No. 17

EOSINOFILOS %

12.0010.008.006.004.002.000.00

Frec

uenc

ia

60

50

40

30

20

10

0

Histograma

Media =2.86

Desviación típica =2.579

N =250

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 116

EOSINOFILOS %

12.00

10.00

8.00

6.00

4.00

2.00

0.00

6129

56179 84

207

33

156

73196

103226

105

228

114

237

123

246

Cuadro No. 18

VALOR DE GLUCOSA EN LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA.

CUENCA 2011.

Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores.

GLUCOSA mg/dl

Media 86,06

Mediana 85,0

Moda 95,0

Desv. Típ. 10,36911153

Mínimo 61,0

Máximo 113,0

GLUCOSA (mg/dl) Frecuencia Porcentaje

<71 3 1,2

71 - 80 87 34,8

81 - 90 68 27,2

91 - 100 91 36,4

>110 1 0,4

Total 250 100,0

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 117

De los adolescentes estudiados el 62,0% tienen el valor de glucosa entre 71 - 90mg/dl, el 1,2 % menor a 71mg/dl y el 0,4% de los estudiantes un valor mayor a110 mg/dl.

Gráfico No. 18

Fuente: Cuadro No. 18

GLUCOSA mg/dl

12011010090807060

Frec

uenc

ia

40

30

20

10

0

Histograma

Media =86.06

Desviación típica =10.

369

N =250

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 118

GLUCOSA mg/dl

120

110

100

90

80

70

60

Cuadro No. 19

VALOR DE ASTO EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA.

CUENCA 2011.

Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores.

ASTO (UI/l)

Frecuencia

Porcentaje

<200

218

87,2

200

1

0,4

>200

31

12,4

Total

250

100,0

ASTO (UI/l)

Media 112,522

Mediana 76,45

Varianza 18443,31963

Desv. Típ. 135,8061841

Mínimo 3,2

Máximo 1208,3

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 119

El 87,2 % de los estudiantes secundarios mantienen su valor de ASTO menor a 200 UI/l, y el 12,4% un valor de ASTO mayor a 200UI/l.

Gráfico No. 19

Fuente: Cuadro No. 19

ASTO UI/ml

1200.01000.0800.0600.0400.0200.00.0

Frec

uenc

ia

120

100

80

60

40

20

0

Histograma

Media =112.52

Desviación típica =135.

806

N =250

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 120

ASTO UI/ml

1200.0

1000.0

800.0

600.0

400.0

200.0

0.0

125

174

236

122

245

3429

62

51

194

151

192

162

200

Cuadro No. 20

COLOR DE LA ORINA EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO

REPÙBLICA DE ISRAEL, SECCIÒN NOCTURNA. CUENCA 2011.

COLOR (orina) Frecuencia Porcentaje

Amarillo 230 93,6

Pajizo 13 6,4

Total 250 100

Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores.

Gráfico No. 20

Fuente: Cuadro No. 20

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 121

El 93,6% de los adolescentes estudiados presentan orina de color amarillo, y el 6,4% de color pajizo.

Cuadro No. 21

ASPECTO DE LA ORINA EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO

REPÙBLICA DE ISRAEL, SECCIÒN NOCTURNA. CUENCA 2011.

Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores. El 93,6% de los adolescentes estudiados presentan orina de color amarillo, y el 1,6% presenta un aspecto turbio.

Gráfico No. 21

Fuente: Cuadro No. 21

ASPECTO

(orina)

Frecuencia

Porcentaje

Transparente 234 93,6

Lig. Turbio 12 4,8

Turbio 4 1,6

Total 250 100

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 122

ASPECTO DE LA ORINA

3.532.521.510.5

Frec

uenc

ia

400

300

200

100

0

Histograma

Media =1.07

Desviación típica =0.303

N =249

Tabla No. 22

DENSIDAD URINARIA EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÙBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA.

CUENCA 2011.

Densidad en orina Frecuencia Porcentaje

1.001 - 1.010 6 2,4

1.011 – 1020 204 81,6

1.021 - 1.030 40 16,0

Total 250 100,0

Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores. De los 250 estudiantes el 81,6% tienen su densidad urinaria entre 1.011 - 1.020, y el 2,4% una densidad de 1.001 - 1.010.

Densidad (orina)

Media 1,018 Mediana 1,020

Moda 1,015 Desv. Típ. 0,004682703 Varianza 2,19277E-05 Mínimo 1,010 Máximo 1,030

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 123

Gráfico No 22

Fuente: Cuadro No. 22

DENSIDAD EN ORINA

1.0351.0301.0251.0201.0151.0101.005

Frec

uenc

ia

120

100

80

60

40

20

0

Histograma

Media =1.019

Desviación típica =0.005

N =250

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 124

DENSIDAD EN ORINA

1.030

1.025

1.020

1.015

1.010

196213

219221

Cuadro No. 23

PH EN ORINA DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA.

CUENCA 2011.

Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores.

pH (orina)

Frecuencia

Porcentaje

5.0 - 6.0 217 87,4

6.1 - 7.0 33 12,6

Total 250 100

PH (orina)

Media 5,528

Mediana 5,0

Moda 5,0

Desv. Típ. 0,625123281

Varianza 0,390779116

Mínimo 5,0

Máximo 7,0

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 125

De los 250 adolescentes estudiados el 87,4% tienen el pH acido entre 5,0 - 6,0, y el 12,6% un PH de 6,1 - 7,0.

Grafico No. 23

Fuente: Cuadro No. 23

PH RECODIFICADO

7.507.006.506.005.505.004.50

Frec

uenc

ia

125

100

75

50

25

0

Histograma

Media =5.53

Desviación típica =0.625

N =250

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 126

PH DE ORINA

3.0

2.8

2.6

2.4

2.2

2.0

223

232242244

Cuadro No.24

GLUCOSA EN ORINA DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA.

CUENCA 2011.

Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores. De los 250 adolescentes estudiados el 100% no presenta glucosa en orina.

Cuadro No.25

PROTEINAS EN ORINA DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA.

CUENCA 2011.

Glucosa en orina

Frecuencia

Porcentaje

Negativo

250

100

Proteínas en orina

Frecuencia

Porcentaje

Negativo

250

100

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 127

Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores. De los 250 adolescentes estudiados el 100% no presentan proteínas en orina.

Cuadro No.26

UROBILINÓGENO EN ORINA DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA.

CUENCA 2011.

Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores. De los 250 adolescentes estudiados el 100% no presentan Urobilinógeno en orina.

Cuadro No.27

BILIRRUBINA EN ORINA DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO

TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA. CUENCA 2011.

Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores. De los 250 adolescentes estudiados el 100% no manifiestan bilirrubinas en la orina.

Urobilinògeno en orina

Frecuencia

Porcentaje

Negativo

250

100

Bilirrubina en orina

Frecuencia

Porcentaje

Negativo

250

100

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 128

Cuadro No.28

CUERPOS CETÓNICOS EN ORINA DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA.

CUENCA 2011.

Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores. De los 250 adolescentes estudiados el 100% no presentan cuerpos cetónicos en orina.

Cuadro No.29

NITRITOS EN ORINA DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA.

CUENCA 2011. Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores. De los 250 adolescentes estudiados el 100% no presentaron nitritos en la muestra de orina.

Cuadro No.30

SANGRE EN ORINA DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO

REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA. CUENCA 2011.

Cuerpos cetónicos en orina

Frecuencia Porcentaje

Negativo

250

100

Nitritos en orina

Frecuencia Porcentaje

Negativo

250

100

Sangre en orina

Frecuencia Porcentaje

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 129

Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores. De los 250 adolescentes estudiados el 96,8% presentan un valor negativo, y el 3,2% positivo para sangre en la orina.

Gráfico No.30

Fuente: cuadro No.30

Cuadro No.31

HEMOGLOBINA EN ORINA DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA.

CUENCA 2011.

Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores.

Positivo 8 3,2

Negativo 242 96,8

Total 250 100

Hemoglobina en orina Frecuencia

Porcentaje

Negativo

250

100

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 130

De los 250 adolescentes estudiados el 100% no presentan Hemoglobina en la orina.

Tabla No.32

LEUCOCITOS EN ORINA DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA.

CUENCA 2011.

Leucocitos en orina

Frecuencia

Porcentaje

Positivo 3 1,2 Negativo 247 98,8

Total 250 100

Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores. Los 250 adolescentes estudiados el 1,2% presentaron leucocitos en orina, y el 98,8% no presentan leucocitos.

Gráfico No. 32

Fuente: cuadro No.32

Cuadro No.33

LEUCOCITOS EN ORINA DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA.

CUENCA - 2011.

Leucocitos (sedimento)

Frecuencia Porcentaje

Ausentes 130 51,8 0 – 2 98 39,0 3 – 5 10 4,0 6 – 8 9 3,6 >11 3 1,6

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 131

Total 250 100

Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores. De los 250 adolescentes estudiados el 51,8% no presentan leucocitos por campo, y el 1,6% presentan más de 11 leucocitos por campo.

Gráfico No.33

Fuente: Cuadro No. 33

Cuadro No.34

CÉLULAS EPITELIALES EN SEDIMENTO DE ORINA DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL,

SECCIÓN NOCTURNA. CUENCA 2011.

Celulas epiteliales en sedimento

Frecuencia Porcentaje

Ausentes 91 36,4 + 143 57,2

++ 8 3,2 +++ 8 3,2

Total 250 100

Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores. El 57,2% de los adolescentes estudiados presentan una cruz de células epiteliales en sedimento, mientras que el 3,2% presentan tres cruces de células.

Gráfico No.34

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 132

Fuente: Cuadro No. 34

Cuadro No.35

HEMATIES EN SEDIMENTO DE ORINA DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA.

CUENCA - 2011.

Hematíes en sedimento Frecuencia Porcentaje

Ausentes 121 48,2 0 – 2 114 45,4 3 – 5 7 2,8 6 – 8 8 3,6 Total 250 100

Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores. De los 250 adolescentes estudiados el 48,2 % no presentaron eritrocitos por campo, y el 3,6% presentan de 6 - 8 eritrocitos por campo.

Gráfico No.35

Fuente: Cuadro No.35

Cuadro No. 36

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 133

BACTERIAS EN SEDIMENTO DE ORINA DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA.

CUENCA - 2011.

Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores. De los 250 adolescentes estudiados el 51,0% no presentan bacterias en sedimento urinario, mientras que el 0,4% presentan 3 cruces de bacterias.

Gráfico No.36

Fuente: Cuadro No. 36

Cuadro No.37

CRISTALES EN SEDIMENTO DE ORINA DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA.

CUENCA 2011

Cristales en sedimento Frecuencia Porcentaje

Ausentes 223 89,2

Oxalato de calcio 8 3,2

Acido úrico 7 2,8

Uratos amorfos 12 4,8

Total 250 100

Bacterias en Sedimento

Frecuencia Porcentaje

Ausentes 127 51,0

+ 120 47,8

++ 2 0,8

+++ 1 0,4

Total 250 100,0

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 134

Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores. De los 250 adolescentes estudiados el 89,2 % no presentaron cristales en el sedimento urinario, y el 10,8% presentan cristales de varias tipos.

Gráfico No. 37

Fuente: Cuadro No. 37

Cuadro No.38

PRESENCIA DE PARÁSITOS EN HECES DE LOS ESTUDIANTES DEL COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN

NOCTURNA. CUENCA 2011

PARASITOS Frecuencia Porcentaje

Positivo 87 34,8

Negativo 163 65,2

Total 250 100

Fuente: Datos obtenidos. Autores: Los investigadores. De los 250 adolescentes estudiados el 65,2% no presentaron parásitos.

Gráfico No. 38

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 135

Fuente: Cuadro No. 38

Cuadro No.39

QUISTES DE PARASITOS EN HECES DE LOS ESTUDIANTES DEL

COLEGIO TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA. CUENCA 2011.

QUISTES Frecuencia Porcentaje

Ausente 179 71,6 Ameba Histolítica 60 24,0

Ameba Cóli 10 4,0 Giardia Lamblia 1 0,4

Total 250 100,0

Fuente: Datos obtenidos Autores: Los investigadores De los 250 adolescentes estudiados el 71.6% no presentan parásitos, el 28% presenta quistes de amebas Cóli e Histolítica, y el 0,4% quiste de Giardia Lamblia.

Gráfico No. 39

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 136

Fuente: Cuadro No. 39

Cuadro No. 40

RELACIÓN DE LOS VALORES DE GLÓBULOS ROJOS CON EDAD EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL TÉNICO REPÚBLICA

DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA, CUENCA-2011.

G. ROJOS – EDAD

GLÓBULOS ROJOS

<4.000.000 4.000.000 –

4.499.999

4.500.000 –

4.999.999

5.000.000 –

5.499.999

5.500.000 –

5.999.999

>5.999.999 Total

EDAD (años)

# % # % # % # % # % # % # %

12 0 0 1 11,1 2 22,2 5 55,5 1 11,2 0 0 9 100

13 0 0 2 11,7 2 11,7 9 52,9 4 23,7 0 0 17 100

14 1 3,3 3 10.0 7 23,3 14 46,6 5 16,8 0 0 30 100

15 2 4,4 3 6,6 18 40.0 15 33,3 5 11,1 2 4,6 45 100

16 3 4,6 5 7,6 19 29,2 23 35,3 14 21,5 1 1,5 65 100

17 1 1,5 5 5,9 24 28,5 37 44,0 14 16,6 3 3,5 84 100

Total 7 2,8 19 7,6 72 28,8 103 41,2 43 17,2 6 2,4 250 100

Fuente: Formularios de recolección de datos. Autores: Los investigadores. El 55,5 % de los adolescentes estudiados tienen 12 años de edad, tienen un valor de glóbulos rojos de 5.000.000 –5.499.000 x mm3, el 2,8% un

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 137

valor de glóbulos rojos menor a 4.000.000 x mm3, y el 2,4% un valor mayor a 5.999.999 x mm3. Chi – cuadrado: 0,924 (No Significativo).

Gráfico No. 40

Fuente: Cuadro No. 40

Cuadro No. 41

RELACIÓN DE LOS VALORES DE GLÓBULOS ROJOS CON TALLA EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL TÉCNICO REPÚBLICA

DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA, CUENCA 2011.

G. ROJOS – TALLA

GLÓBULOS ROJOS

<4.000.000 4.000.000 4.499.999

4.500.000 4.999.999

5.000.000 –

5.499.999

5.500.000 5.999.999

>5.999.999 Total

TALLA(metros) # % # % # % # % # % # % # %

1.32 – 1.40 0 0 1 9.0 6 54,5 3 27,2 1 9.0 0 0 11 100

1.41 - 1.50 3 4,1 6 8,3 19 26,3 30 41,6 14 19,4 0 0 72 100

1,51 - 1,60 2 1,6 11 9,3 42 35,5 43 36,4 18 15,2 2 1,6 118 100

>1.60 2 4 1 2.0 5 10,2 27 55,1 10 20,4 4 8,1 49 100

Total 7 2,8 19 7,6 72 28,8 103 41,2 43 17,2 6 2,4 250 100

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 138

Fuente: Formularios de recolección de datos. Autores: Los investigadores. El 54,5 % de los adolescentes estudiados miden entre 1,32 a 1,40 metros, con un valor de glóbulos rojos de 4.500.000 - 4.999.999 x mm3, el 2,8% de los estudiantes presentan un valor de glóbulos rojos menor a 4.000.000 x mm3, y el 2,4% un valor superior a 5.999.999 x mm3. Chi – cuadrado: 0 ,020 (Significativo).

Gráfico No. 41

Fuente: Cuadro No. 41

Cuadro No. 42

RELACIÓN DE LOS VALORES DE GLÓBULOS ROJOS CON PESO EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL TÈCNICO REPÚBLICA DE

ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA, CUENCA 2011.

G. ROJOS – PESO

GLÓBULOS ROJOS

<4.000.000 4.000.000

4.499.999

4.500.000

4.999.999

5.000.000

5.499.999

5.500.000 5.999.999

>5.999.999 Total

PESO(kg) # % # % # % # % # % # % # %

30 – 40 0 0 0 0 0 0 2 50.0 2 50.0 0 0 4 100

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 139

41 – 50 4 5.0 9 11,2 21 26,2 35 43,7 11 13,7 0 0 80 100

51 – 60 2 2,1 5 5,3 30 32,2 36 38,7 18 19,3 2 2,1 93 100

>60 1 1,3 5 6,7 21 28,7 30 16,4 12 16,4 4 5,4 73 100

Total 7 2,8 19 7,6 72 28,8 103 41,2 43 17,2 6 2,4 250 100

Fuente: Formularios de recolección de datos. Autores: Los investigadores. El 50,0% de los adolescentes estudiados con un peso de 30 a 40 kg, tienen un valor de glóbulos rojos de 5.000.000 - 5.999.999 x mm3, el 2,8% con un valor menor a 4.000.000 x mm3, y el 2,4% un valor superior a 5.999.999 x mm

3.

Chi – cuadrado: 0,430 (Significativo).

Gráfico No. 42

Fuente: Cuadro No. 42

Cuadro No. 43

RELACIÓN DE LOS VALORES DE GLÓBULOS BLANCOS CON EDAD EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL TÈCNICO REPÙBLICA

DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA, CUENCA 2011.

GLÓBULOS BLANCOS – EDAD

GLÓBULOS BLANCOS

<4.000 4.000 - 6.000 - 8.000 - >9.999 Total

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 140

5.999 7.999 9.999

EDAD (años) # % # % # % # % # % # %

12 0 0 1 11,1 4 44,4 3 33,3 1 11.1 9 100

13 0 0 2 11,7 10 58,8 3 17,6 2 11,7 17 100

14 1 3,3 2 6,6 14 46,6 8 26,6 5 16,6 30 100

15 1 2,2 9 20.0 16 35,5 11 24,4 8 17,7 45 100

16 1 1,5 18 27,6 23 35,3 14 21,5 9 13,8 65 100

17 0 0 9 10,7 39 46,4 28 33,3 8 9,5 84 100

Total 3 1,2 41 16,4 106 42,4 67 26,8 33 13,2 250 100

Fuente: Formularios de recolección de datos. Autores: Los investigadores. El 58,8% de los adolescentes de 13 años tienen un valor de glóbulos blancos de 6.000 – 7.999 x mm3 , el 1,2% de los adolescentes tienen un valor de glóbulos blancos inferior a 4.000 x mm3, y el 13,2% un valor superior a 9.999 x mm3. Chi – cuadrado: 0,484 (No Significativo).

Gráfico No. 43

Fuente: Cuadro No. 43

Cuadro No.44

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 141

RELACION DE LOS VALORES DE GLÓBULOS BLANCOS CON TALLA EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL SECCIÓN NOCTURNA, CUENCA 2011.

GLÓBULOS BLANCOS – TALLA

GLÓBULOS BLANCOS

<4.000 4.000 - 5.999

6.000 - 7.999

8.000 - 9.999

>9.999 Total

TALLA(metros) # % # % # % # % # % # %

1.32 – 1.40 0 0 1 9.0 3 27,2 5 45,4 2 18,1 11 100

1.41 - 1.50 0 0 6 8,3 34 47,2 21 29,1 11 15,2 72 100

1,51 - 1,60 2 1,6 26 22.0 44 37,2 32 271 14 11,8 118 100

>1.60 1 2.0 8 16,3 25 51.0 9 18,3 6 12,2 49 100

Total 3 1,2 41 16,4 106 42,4 67 26,8 33 13,2 250 100

Fuente: Formularios de recolección de datos. Autores: Las autoras. El 51,0 % de los adolescentes con una talla mayor a 160 metros mantienen un valor de glóbulos blancos de 6.000 - 7.999 x mm3, el 1,2% tienen un valor de glóbulos blancos menor a 4.000 x mm3, y el 13,2% un valor superior a 9.999 x mm3. Chi – cuadrado: 0,361 (No Significativo).

Gráfico No. 44

Fuente: Cuadro No. 44

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 142

Cuadro No.45 RELACIÓN DE LOS VALORES DE GLÓBULOS BLANCOS CON PESO EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL TÉCNICO REPÚBLICA

DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA. CUENCA 2011.

GLÓBULOS BLANCOS – PESO

GLÓBULOS BLANCOS

<4.000 4.000 - 5.999

6.000 - 7.999

8.000 - 9.999

>9.999 Total

PESO(kg) # % # % # % # % # % # %

30 – 40 0 0 0 0 1 25.0 2 2,9 1 25.0 4 100

41 – 50 2 2,5 15 18,7 32 40.0 23 28,7 8 10.0 80 100

51 – 60 0 0 15 16,1 48 51,6 18 19,3 12 12,9 93 100

>60 1 1,3 11 15.0 25 34,2 24 32,8 12 16,4 73 100

Total 3 1,2 41 16,4 106 42,4 67 26,8 33 13,2 250 100

Fuente: Formularios de recolección de datos. Autores: Las autoras. El 51,6 % de los adolescentes con un peso de 51 - 60 kg, tienen un valor de glóbulos blancos de 6.000 - 7.999 x mm3, el 1,2% tienen un valor de glóbulos blancos inferior a 4.000 x mm3, y el 13,2% un valor superior a 9.999 x mm3. Chi – cuadrado: 0,430 (No Significativo)

Gráfico No. 45

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 143

Fuente: Cuadro No.45

Cuadro No. 46

RELACIÓN DE LOS VALORES DE HEMATOCRITO CON EDAD EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL TÉCNICO REPÚBLICA DE

ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA, CUENCA 2011.

HEMATOCRITO – EDAD

HEMATOCRITO

<35 35 – 39 40 – 44 45 - 49 50 - 54 >54 TOTAL

EDAD (años) # % # % # % # % # % # % # %

12 0 0 2 22,2 5 55,5 2 22,2 0 0 0 0 9 100

13 0 0 3 17,6 9 52,9 3 17,6 2 11,7 0 0 17 100

14 1 3,3 4 13,3 15 50 9 30 1 3,3 0 0 30 100

15 3 6,6 5 11,1 19 42,2 16 35,5 2 4,4 0 0 45 100

16 3 4,6 8 12,3 22 33,8 30 46,1 1 1,5 1 1,5 65 100

17 3 3,5 10 11,9 36 42,8 27 32,1 8 9,5 0 0 84 100

Total 10 4,0 32 12,8 106 42,4 87 34,8 14 5,6 1 0,4 250 100

Fuente: Formularios de recolección de datos. Autores: Los investigadores. El 55,5% de los adolescentes de 12 años, tienen un valor de Hematocrito de 40 - 44%, el 4% de los estudiantes presentan un valor de hematocrito inferior a 35%, y el 0,4% un valor superior a 54%.

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 144

Chi – cuadrado: 0,789 (No Significativo)

Gráfico No. 46

Fuente: Cuadro No. 46

Cuadro No. 47

RELACIÓN DE LOS VALORES DE HEMATOCRITO CON TALLA EN

ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÒN NOCTURNA, CUENCA 2011.

HEMATOCRITO – TALLA

HEMATOCRITO

<35 35 – 39 40 – 44 45 - 49 50 - 54 >54 TOTAL

TALLA(metros) # % # % # % # % # % # % # %

1.31 – 1.40 0 0,0 2 18,1 6 54,5 2 18,1 1 9,0 0 9,0 11 100

1.41 - 1.50 3 4,1 11 15,2 33 45,8 22 30,5 3 4,1 0 4,1 72 100

1,51 - 1,60 5 4,2 17 14,4 53 44,9 39 33,0 4 3,3 0 3,3 118 100

>1.60 2 4,0 2 4,0 14 28,5 24 48,9 6 12,2 1 12,2 49 100

Total 10 4,0 32 12,8 106 42,4 87 34,8 14 5,6 1 0,4 250 100

Fuente: Formularios de recolección de datos. Autores: Los investigadores.

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 145

El 54,5 % de los adolescentes con una talla de 1,31 - 1,40 metros, tienen un valor de hematocrito de 40 - 44%, el 4% de los estudiantes presentan un valor de hematocrito inferior a 35%, y el 0,4% un valor superior a 54%. Chi – cuadrado: 0,142 (No Significativo)

Gráfico No. 47

Fuente: Cuadro No. 47

CUADRO No. 48

RELACIÓN DE LOS VALORES DE HEMATOCRITO CON PESO EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL TÉCNICO REPÚBLICA DE

ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA, CUENCA 2011.

HEMATOCRITO – PESO

HEMATOCRITO

<35 35 – 39 40 – 44 45 – 49 50 - 54 >54 TOTAL

PESO(kg) # % # % # % # % # % # % # %

31 – 40 0 0 0 0 2 50 2 50 0 0 0 0 4 100

41 – 50 6 7,5 9 11,2 39 48,7 24 30 2 2,5 6 7,5 80 100

51 – 60 2 2,1 11 11,8 38 40,8 35 37,6 7 7,5 2 2,1 93 100

>60 2 2,7 12 16,4 27 36,9 26 35,6 5 6,8 1 1,3 73 100

Total 10 4,0 32 12,8 106 2,4 87 34,8 14 5,6 1 0,4 250 100

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 146

Fuente: Formularios de recolección de datos. Autores: Los investigadores. El 50 % de los adolescentes con un peso de 31 - 40 kg, tienen un valor de hematocrito de 40 – 44%, el 4% de los estudiantes presentan un valor de hematocrito inferior a 35%, y el 0,4% un valor superior a 54%. Chi – cuadrado: 0,647 (No Significativo)

Gráfico No. 48

Fuente: Cuadro No. 48

CUADRO No. 49

RELACIÓN DE LOS VALORES DE HEMOGLOBINA CON EDAD EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL TÉCNICO REPÚBLICA DE

ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA, CUENCA 2011.

HEMOGLOBINA – EDAD

HEMOGLOBINA

8 – 10 11 – 13 14 – 16 17 – 19 >19 TOTAL

EDAD (años) # % # % # % # % # % # %

12 1 11,1 1 11,1 6 66,6 1 11,1 0 0 9 100

13 0 0 3 17,6 12 70,5 2 2 0 0 17 100

14 0 0 7 23,3 21 70 2 6,6 0 0 30 100

15 2 4,4 9 20 31 68,8 3 6,6 0 0 45 100

16 2 3 13 20 46 70,7 4 6,1 0 0 65 100

17 1 1,1 15 17,8 60 71,4 8 9,5 0 0 84 100

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 147

Total 6 2,4 48 19,2 176 70,4 20 8,0 0 0 250 100

Fuente: Formularios de recolección de datos. Autores: Los investigadores. El 71.4 % de los adolescentes de 17 años, presentan un valor de hemoglobina de 14 - 16 gr%, el 2,4% de los adolescentes presentan un valor de hemoglobina de 8 - 10 gr%. Chi – cuadrado: 0,950 (No Significativo).

Gráfico No. 49

Fuente: Cuadro No. 49

CUADRO No. 50

RELACIÓN DE LOS VALORES DE HEMOGLOBINA CON TALLA EN

ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA, CUENCA 2011.

HEMOGLOBINA – TALLA

HEMOGLOBINA

8 – 10 11 – 13 14 – 16 17 – 19 >19 TOTAL

TALLA(metros) # % # % # % # % # % # %

1.31 – 1.40 0 0 3 27,2 7 63,6 1 9 0 0 11 100

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 148

1.41 - 1.50 2 2,7 15 20,8 52 72,2 3 4,1 0 0 72 100

1,51 - 1,60 4 3,3 26 22 81 68,6 7 5,9 0 0 118 100

>1.60 0 0 4 8,1 36 73,4 9 18,3 0 0 49 100

Total 6 2,4 48 19,2 176 70,4 20 8,0 0 0 250 100

Fuente: Formularios de recolección de datos. Autores: Los investigadores. El 73,4 %de los adolescentes con una talla superior a 1.60 metros, mantienen un valor de hemoglobina de 14 - 16 gr%, el 2,4% de los adolescentes presentan un valor de hemoglobina de 8 - 10 gr%. Chi – cuadrado: 0,096 (No Significativo).

Gráfico No. 50

Fuente: Cuadro No. 50

CUADRO No. 51

RELACIÓN DE LOS VALORES DE HEMOGLOBINA CON PESO EN

ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA, CUENCA 2011.

HEMOGLOBINA – PESO

HEMOGLOBINA

8 - 10 11 – 13 14 – 16 17 - 19 >19 TOTAL

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 149

PESO(kg) # % # % # % # % # % # %

31 – 40 0 0 0 0 4 100 0 0 0 0 4 100

41 – 50 4 5 20 25 54 67,5 2 2,5 0 0 80 100

51 – 60 1 1 15 16,1 67 72 10 10,7 0 0 93 100

>60 1 1,3 13 17,8 51 69,8 8 10,9 0 0 73 100

Total 6 2,4 48 19,2 176 70,0 20 8,0 0 0,0 250 100

Fuente: Formularios de recolección de datos. Autores: Los investigadores. El 100,0% de los adolescentes con un peso de 31 - 40 kg, mantienen un valor de hemoglobina de 14 - 16 gr%, el 2,4% de los adolescentes presentan un valor de hemoglobina de 8 - 10 gr%. Chi – cuadrado: 0,230 (No Significativo).

Gráfico No. 51

Fuente: Cuadro No. 51

CUADRO No. 52

RELACIÓN DE LOS VALORES DE GLUCOSA CON EDAD EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL TÉCNICO REPÚBLICA DE

ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA, CUENCA 2011.

GLUCOSA – EDAD

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 150

GLUCOSA

<71 71 - 80 81 - 90 91 - 100 >110 TOTAL

EDAD (años) # % # % # % # % # % # %

12 0 0 3 33,3 3 33,3 3 33,3 0 0 9 100

13 0 0 5 29,4 4 23,5 8 47,0 0 0 17 100

14 0 0 8 26,6 8 26,6 14 46,6 0 0 30 100

15 0 0 19 42,1 11 24,4 14 31,1 1 2,2 45 100

16 2 3 2 3,0 20 30,7 20 30,7 0 0 65 100

17 1 1,1 29 34,5 22 26,1 32 38,0 0 0 84 100

Total 3 1,2 87 34,8 68 27,2 91 36,4 1 0,4 250 100

Fuente: Formularios de recolección de datos. Autores: Los investigadores. El 47,0% de los adolescentes de 13 años mantienen un valor de glucosa de 91 - 100mg/dl, el 1,2% de los adolescentes presentan un valor de glucosa inferior a 71mg/dl, y el 0,4% presentan un valor superior a 110mg/dl. Chi – cuadrado: 0,909 (No Significativo).

Gráfico No. 52

Fuente: Cuadro No. 52

CUADRO No. 53

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 151

RELACIÓN DE LOS VALORES DE GLUCOSA CON TALLA EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL TÉCNICO REPÚBLICA DE

ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA, CUENCA 2011.

GLUCOSA – TALLA

GLUCOSA

<71 71 - 80 81 - 90 91 - 100 >110 TOTAL

TALLA(metros) # % # % # % # % # % # %

1.32 – 1,40 0 0 3 27,2 3 27,2 5 45,4 0 0 11 100

1.41 - 1.50 1 1,3 26 26,6 18 25 27 37,5 0 0 72 100

1,51 - 1,60 2 1,6 39 33 32 27,1 45 38,1 0 0 118 100

>1,60 0 0 19 38,7 15 30,6 14 28,5 1 2 49 100

Total 18 7,2 72 87,0 68 27,2 91 36,4 1 0,4 250 100

Fuente: Formularios de recolección de datos. Autores: Los investigadores. El 45,4% de los adolescentes con una talla de 1,32 - 1,40 mantienen un valor de glucosa de 91 - 100mg/dl, el 7,2% de los adolescentes presentan un valor de glucosa inferior a 71mg/dl, y el 0,4% presentan un valor superior a 110mg/dl. Chi – cuadrado: 0,846 (No Significativo)

Gráfico No. 53

Fuente: Cuadro No. 53

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 152

CUADRO No. 54

RELACIÓN DE VALORES DE GLUCOSA CON PESO EN

ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA, CUENCA 2011.

GLUCOSA – PESO

GLUCOSA

<71 71 - 80 81 - 90 91 - 100 >110 TOTAL

PESO(kg) # % # % # % # % # % # %

30 – 40 0 0 2 50 2 50 0 0 0 0 4 100

41 – 50 0 0 26 32,5 25 31,2 29 36,2 0 0 80 100

51 – 60 2 2,1 30 32,2 27 29 34 36,5 0 0 93 100

>60 1 1,3 29 39,7 14 19,1 28 38,3 1 1,3 73 100

Total 3 1,2 87 34,8 68 27,2 91 36,4 1 0,4 250 100

Fuente: Formularios de recolección de datos Autores: Los investigadores. El 100,0 % de los adolescentes con un peso de 30 - 40kg, mantienen un valor de glucosa de 71 - 90mg/dl, el 1,2% de los adolescentes presentan un valor de glucosa inferior a 71mg/dl, y el 0,4% presentan un valor superior a 110mg/dl. Chi – cuadrado: 0,630 (No Significativo).

Gráfico No. 54

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 153

Fuente: Cuadro No. 54

CUADRO No. 55

RELACIÓN DE LOS VALORES DE ASTO CON EDAD EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL TÉCNICO REPÚBLICA DE

ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA, CUENCA 2011.

ASTO – EDAD

ASTO

<200 200 >200 TOTAL

EDAD (años) # % # % # % # %

12 7 77,7 0 0 2 22,2 9 100

13 14 82,3 0 0 3 17,6 17 100

14 26 86,6 0 0 4 13,3 30 100

15 37 82,2 0 0 8 17,7 45 100

16 61 93,8 0 0 4 6,1 65 100

17 73 86,9 1 1,1 10 11,9 84 100

Total 218 87,2 1 0,4 31 12,4 250 100

Fuente: Formularios de recolección de datos Autores: Los investigadores. El 93,8 % de los adolescentes de 16 años tienen un valor de ASTO menor a 200U/L, y el 22,2% de estudiantes de 12 años un ASTO mayor a 200 U/l.

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 154

Chi – cuadrado: 0,745 (No Significativo).

Gráfico No. 55

Fuente: Cuadro No. 55

CUADRO No. 56

RELACIÓN DE LOS VALORES DE ASTO CON PESO EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL TÉCNICO REPÚBLICA DE

ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA, CUENCA 2011.

ASTO – TALLA

ASTO

<200 200 >200 TOTAL

TALLA(metros) # % # % # % # %

1.32 - 1.40 10 90,9 0 0 1 9 11 100

1.41 - 1.50 62 86,1 1 1,3 9 12,5 72 100

1,51 - 1,60 103 87,2 0 0 15 12,7 118 100

>1.60 43 87,5 0 0 6 12,2 49 100

Total 218 87,2 1 0,4 31 12,4 250 100

Fuente: Formularios de recolección de datos. Autores: Los investigadores.

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 155

El 100% de los adolescentes con un peso de 30 - 40 kg, tienen un valor de ASTO menor a 200 UI/l, el 13,7% de los estudiantes con un peso de 41 - 50 kg, un valor de ASTO mayor a 200 UI/l. Chi – cuadrado: 0,590 (No Significativo).

Gráfico No. 56

Fuente: Cuadro No. 56

CUADRO No. 57

RELACIÓN DE LOS VALORES DE ASTO CON TALLA EN

ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA, CUENCA 2011.

ASTO – TALLA

ASTO

<200 200 >200 TOTAL

TALLA(metros) # % # % # % # %

1.32 - 1.40 10 90,9 0 0 1 9 11 100

1.41 - 1.50 62 86,1 1 1,3 9 12,5 72 100

1,51 - 1,60 103 87,2 0 0 15 12,7 118 100

>1.60 43 87,5 0 0 6 12,2 49 100

Total 218 87,2 1 0,4 31 12,4 250 100

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 156

Fuente: Formularios de recolección de datos. Autores: Los investigadores. El 90,9% de los adolescentes con una talla de 1.32 - 1.40 metros tienen un valor de ASTO menor a 200 UI/l, y el 12,7% de los estudiantes con una talla de 1.41 - 1.50 un valor de ASTO mayor a 200 UI/L. Chi – cuadrado: 0,856 (No Significativo).

Gráfico No. 57

Fuente: Cuadro No. 57

CUADRO No. 58

REALCIÓN DE VALORES DE GLUCOSA CON SEXO EN

ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA, CUENCA 2011.

GLUCOSA – SEXO

GLUCOSA

<71 71 - 80 81 - 90 91 - 100 >110 TOTAL

SEXO # % # % # % # % # % # %

Masculino 1 0,7 46 34,3 38 28,3 48 35,8 1 0,7 134 100

Femenino 2 1,7 41 35,3 30 25,8 43 37,0 0 0 116 100

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 157

Total 3 1,2 87 34,8 68 27,2 91 36,4 1 0,4 250 100

Fuente: Formularios de recolección de datos. Autores: Los investigadores. El 37% de los adolescentes de sexo femenino tienen un valor de glucosa de 91 - 100 mg/dl, y el 0,7% de los adolescentes de sexo masculino un valor de glucosa mayor a 110 mg/dl. Chi – cuadrado: 0,817 (No Significativo).

Gráfico No. 58

Fuente: Cuadro No. 58

CUADRO No. 59

REALCIÓN DE VALORES DE ASTO CON SEXO EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL TÉCNICO REPÚBLICA DE ISRAEL,

SECCIÓN NOCTURNA, CUENCA 2011.

ASTO – SEXO

ASTO

<200 200 >200 TOTAL

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 158

SEXO # % # % # % # %

Masculino 118 88,0 1 0,7 15 11,1 134 100

Femenino 100 86,2 0 0 16 13,7 116 100

Total 218 87,2 1 0,4 31 12,4 250 100

Fuente: Formularios de recolección de datos. Autores: Los investigadores. El 88% de los adolescentes de sexo masculino tienen un valor de ASTO inferior a 200 UI/l, el 13,7% de los estudiantes de sexo femenino tienen un valor de ASTO mayor a 200 UI/l. Chi – cuadrado: 0,540 (No Significativo).

Gráfico No. 59

Fuente: Cuadro No. 59

CUADRO No. 60

REALCIÓN DE VALORES DE SANGRE EN ORINA CON EDAD EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL TÉCNICO REPÚBLICA DE

ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA, CUENCA 2001.

SANGRE EN ORINA - EDAD

SANGRE EN ORINA

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 159

Positivo Negativo TOTAL

EDAD (años) # % # % # %

12 0 0 9 100 9 100

13 0 0 17 100 17 100

14 1 3,3 29 96,6 30 100

15 2 4,4 43 95,5 45 100

16 1 1,5 64 98,4 65 100

17 4 4,7 80 95,2 84 100

Total 8 3,2 242 96,8 250 100

Fuente: Formularios de recolección de datos. Autores: Los investigadores. El 3,2% de los adolescentes de 12 - 17 años de edad, presentan un resultado positivo para sangre en orina. Chi – cuadrado: 0,802 (No Significativo).

Gráfico No. 60

Fuente: Cuadro No. 60

CUADRO No. 61

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 160

REALCIÓN DE VALORES DE BACTERIAS EN ORINA CON EDAD EN ESTUDIANTES DEL COLEGIO NACIONAL TÉCNICO REPÚBLICA DE

ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA, CUENCA 2011.

BACTERIAS EN SEDIMENTO - EDAD

BACTERIAS EN SEDIMENTO

Ausentes + ++ + + + TOTAL

EDAD (años) # % # % # % # % # %

12 3 33,3 5 55,5 1 11,1 0 0 9 100

13 7 41,1 10 58,8 0 0 0 0 17 100

14 14 46,6 16 53,3 0 0 0 0 30 100

15 23 51,1 22 48,8 0 0 0 0 45 100

16 40 61,5 25 38,4 0 0 0 0 65 100

17 40 47,6 42 50 1 1,1 1 1,1 84 100

Total 127 50,8 120 48 2 0,8 1 0,4 250 100

Fuente: Formularios de recolección de datos. Autores: Los investigadores. El 0,4% de los adolescentes de 12 - 17 años de edad, presentan tres cruces de bacterias en sedimento urinario. Chi – cuadrado: 0,173 (No Significativo).

Gráfico No. 61

Fuente: Cuadro No. 61

5.2. DISCUSIÓN.

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 161

Se determinaron valores bioquímicos, hematológicos, elemental

microscópico de orina y examen coproparasitario en 23.607 estudiantes

de 12 a 17 años pertenecientes al área de influencia del Centro de Salud

No.2 de la ciudad de Cuenca de diferente sexo, edad, peso y talla,

obteniéndose los siguientes resultados:

Dentro del estudio Hematológico se observó la relación de varios

parámetros, obteniéndose los siguientes valores:

El valor promedio de glóbulos rojos obtenidos en nuestra investigación

varía de 5.0 - 5.5 millones x mm3,en relación a la edad, talla y peso

considerados, mientras que los valores de Glóbulos Rojos obtenidos en

otras realidades son los siguientes: en Perú determinaron los valores

referenciales de glóbulos rojos en hombres: 4.5 - 5.8 millones x mm3; en

Perú se registran valores de 3,9 - 6,0 millones x mm3, mujer de 3,3 - 4,7

millones x mm3; en Venezuela hombres de 4,3 - 5,6 millones x mm3,

mujeres de 3,9 - 5,2 millones x mm3.

El valor promedio de glóbulos blancos obtenidos en la presente

investigación en relación a la edad, talla y peso de los adolescentes

estudiados varía entre 6.000 - 7.999 x mm3, mientras que en

investigaciones realizadas en otros países se considera valores inferiores

como rango referencial.

EL recuento de glóbulos blancos en Venezuela va de 3.800 - 10.100 x

mm3, en México de 3.500 - 7.500 x mm

3, en Chile 4.000 - 9.000 x mm

3 en

Argentina de 5.000 - 8.000 x mm3, en Perú de 5.000 - 10.000 x mm3, en

Brasil de 3.500 - 9.000 x mm3, en Bolivia de 4.800 - 10.800 x mm3, en

Colombia de 3.500 - 11.000 x mm3, en España de 4.500 - 7.500 x mm3 y

en Nueva York - Estados Unidos de 3.480 - 10.500 x mm3.

El valor promedio de hemoglobina en nuestro estudio en relación a la

edad, talla y peso, varía entre 14 - 16 g% mientras que el valor promedio

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 162

de Hemoglobina en Estados Unidos es de 13,0 – 18,0 g/dl, mientras que

en mujeres va de 12 – 16 g/dl. En Brasil se encontraron valores en

mujeres 14,2 – 18,0 g/dl, y en varones de 16 a 20 g/dl, En Argentina de

13,6 – 17,2 g%, en Colombia es de 16,3 g/dl, en nuestro medio se

manejan valores inferiores a estos rangos.

El valor promedio de hematocrito en la presente investigación en relación

a la edad, talla y peso, varía entre 40 - 44%, En el Perú se observan los

siguientes valores para hematocrito: hombres de 43 - 53%. En Medellín -

Colombia el valor referencial de hematocrito es 43 - 49%. En la mayoría

de los casos los valores dependen de la edad y del sexo, así como de la

altitud. Se observó que existen diferencias significativas al compararse

con los resultados obtenidos en nuestra investigación.

Los valores obtenidos de Neutrófilos en esta investigación varían entre 51

- 60%, Linfocitos 31 - 40%, Monocitos menor a 4%, Basófilos 1 - 2%,

Eosinófilos menor al 2%, mientras que en Argentina los valores

referenciales son: Linfocitos 25 – 35%; Monocitos 4 – 8%; Neutrófilos 55 –

65%; Eosinófilos 0,5 – 4,0% y Basófilos 0,2%, en Perú Linfocitos 25 –

33%; Monocitos 3 – 7%; Neutrófilos 45 – 62%; Eosinófilos 1 – 2% y

Basófilos 0 – 1%; en Chile Linfocitos 30 – 45%; Monocitos 5 – 7%;

Neutrófilos 50 – 65%; Eosinófilos 1 – 5% y Basófilos 0 – 1% ; en España

Linfocitos 20 – 40%; Monocitos 2 – 8%; Neutrófilos 55 – 70%; Eosinófilos

1 – 4,0% y Basófilos 0,5 – 1% ; en Nueva York – Estados Unidos

Linfocitos 22 – 44%; Monocitos 0 – 7%; Neutrófilos 40 – 60%; Eosinófilos

0 – 4,0% y Basófilos 0–1%, se observa similitud con los valores

encontrados en la presente investigación.

El valor promedio de glucosa obtenido es de 91 - 100 mg/dl en relación a

la edad, talla y peso, el cual al comparar con un estudio realizado en

Talca - Chile el promedio fue de 74 ± 10 mg/dl; en Argentina fue 76 ± 11

mg/dl; en la ciudad de México se obtuvo un promedio de 81 ± 24,4 mg/dl;

y en Perú de 75,9 ± 2,1 mg/dl. Con lo que se demuestra que dichos

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 163

valores no difieren significativamente con los obtenidos en nuestra

investigación.

En relación al examen de orina en su mayoría se presenta de color

amarillo, ligeramente turbio, con un pH ácido que varía de 5,0 - 6,0, una

densidad urinaria que va de 1.011 - 1.020, en el examen químico

presenta un índice bajo de positividad para sangre y leucocitos, en el

sedimento urinario baja cantidad de células epiteliales (+), bacterias (+),

leucocitos (0 - 2), eritrocitos (0 - 2), y cristales se observaron de manera

ocasional.

En esta investigación en el examen coproparasitario se observo la

presentan quistes de ameba (Cóli e Histolítica) 28%, y el 0,4% quiste de

Giardia Lamblia.

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 164

CAPÍTULO VI

6.1. CONCLUSIONES.

Como conclusión final se comprueba que existe una leve variación entre

los valores existentes con los valores encontrados en la presente

investigación.

El 59,6% de los estudiantes tienen entre 16 y 17 años de edad, el 47,2%

una talla entre 1.51 – 1.60 m, el 69,2% un peso entre 41 – 60 kg.

El 84,8% de los adolescentes pertenecen al área urbana, el 100% colegio

fiscal mixto.

El 70% con un valor promedio de hemoglobina de 14 - 16 g/dl, el 2,4%

con un valor mínimo de 8 - 10 g/dl, y el 0,4% con un valor superior a 19

g/dl.

El 42,4% con un valor promedio de Hematocrito de 40 - 44%, el 4%

menor a 35%, y el 0,4% con un valor mayor a 54%.

El 70% con un valor promedio de Glóbulos Rojos de 4.500.000 -

5.499.000 x mm3, el 2,8% menor a 4.000.000 x mm3 y el 2,4%, un valor

mayor a 5.999.999 x mm3.

El 42,4% con un valor promedio de Glóbulos Blancos de 6.000 - 7.999 x

mm3, el 1,2% un valor menor a 4.000 x mm3, y el 13,2% mayor a 9.999 x

mm3.

El 60,4% con un valor promedio de plaquetas de 250.000 - 349.999 x

mm3.

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 165

El 36% con un valor promedio de neutrófilos de 51 - 60%, el 40,8% con un

valor promedio de linfocitos de 31 - 40%, el 55,6% con un valor de

basófilos de 1 a 2%, y el 51,2% con un valor de eosinófilos mayor al 2%.

El 36,4% con un valor de glucosa de 91 - 100 mg/dl, el 1,2% con un valor

inferior a 71 mg/dl.

El 87,2% con un valor promedio de ASTO de menor a 200 UI/l, y el 12,4%

con un valor superior a 200 UI/l.

El 93,6% con orina de color amarillo, transparente, 81,6% con una

densidad de 1.011 - 1.020, 87,4% pH ácido de 5 - 6, en el exámen

químico el 3,2% positivo para sangre.

El 1,2% positivo para leucocitos, en el sedimento el 39% leucocitos 0 - 2

por campo, el 57,2% (+) de células epiteliales, el 45,4% de 0 - 2 eritrocitos

por campo, el 47,8 (+) de bacterias, y en el 89,2% ausencia de cristales.

El 28% presentan quistes de ameba Cóli e Histolítica, y el 0,4% quiste de

Giardia Lamblia.

6.2 RECOMENDACIONES

Recomendamos realizar investigaciones similares a la actual en otros

grupos etarios, especialmente en niños y adultos mayores.

En futuras investigaciones en donde se necesite constatar el estado de

salud de las personas, recomendamos realizar una valoración más

profunda tanto del historial clínico como del examen físico, de tal manera

que los investigados sean verdaderamente sanos.

Debería aplicarse normas más rigurosas para un mejor control de calidad

de los exámenes realizados.

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 166

Se recomienda además difundir los resultados a nivel local, nacional e

internacional a través de publicaciones de texto, internet y otros medios

de difusión.

CAPITULO VII

7. REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS.

1.Definiciónd de Salud (OMS-1946) Disponible en:

http://www.sap.org.ar/staticfiles/actividades/congresos/congre2006/conarp

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4. Ídem. 1

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6. WILLIAMS, W y Colaboradores; “Manual de Hematología”; Sexta

Edición;

Madrid España; Marban Libros, SL; 2005; pág. 3.

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voIi_K28cE8tSwDdnSxufChLY_S0LtBwxFqChOhO-idK2MbsI9ywhsXu7F-

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13. RACHED Ingrid y colaboradores. Pruebas Hematológicas y

Bioquímicas. Medellín / Colombia.2002. Disponible en:

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gktzlx47qrjjw8tPXvFzvTrEAeTxr_wLGA39T_jZiXk8cP-

nQdhNZCIgaX0t79Spmr64bIMc0ejfyUGfnZx8Hd5gM4sNWzxeoaBg39hw

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18. http://salud.doctissimo.es/diccionario-medico/sangre.html

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34. http://www.misrespuestas.com/que-es-la-glicemia.html

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40. Dr. Gil Flores Garcia, Analisis Biologico, Universidad de Cuenca

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41. ANÁLISIS DE ORINA Y DE LOS LÍQUIDOS CORPORALES.

Strasinger Di Lorenzo. Editorial Médica PANAMERICA. 5a edición 2010.

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44. Maldonado, A y Colaboradores. Prácticas de Parasitología. 2da. Ed.

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48. 12Lic. En Sociología Marcelo Tardy. “Salud - Diferentes miradas sobre

el concepto de Salud”.Copyright ® 2007-2009 - Psico-web.com –

Argentina. Página 3 de 6 Disponible en: http://www.psico-

web.com/salud/concepto_salud_03.htm .

49. Azuay Cuenca wikipedia enciclopedia libre

50. www.el mercurio.com.ec.

51. Ídem 49

CAPITULO VIII

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 172

8. ANEXOS

8.1 CONSENTIMIENTO INFORMADO

“REALIZACIÓN DE PRUEBAS BÁSICAS DE LABORATORIO CLINICO

EN ESTUDIANTES SECUNDARIOS DEL COLEGIO REPÚBLICA DE

ISRAEL, SECCIÓN NOCTURNA, CUENCA 2010 – 2011”

Nosotros:,Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega estudiantes del

Área de Laboratorio Clínico, Escuela de Tecnología Médica, de la

Facultad de Ciencias Médicas de la Universidad de Cuenca, por medio de

la presente nos es grato informarle que se lleva a cabo un estudio cuyo fin

es la realización de nuestro trabajo investigativo – Tesis, en los

estudiantes de este Plantel, mediante la determinación de pruebas

básicas de laboratorio que proporcionará información sobre el estado

funcional del organismo para el diagnóstico, prevención y tratamiento de

los diversos cuadros de anemia, diabetes, infecciones, parasitismo,

enfermedades que pueden aparecer como resultados de alteraciones en

los valores de las pruebas a realizarse.

Le hacemos conocer, que el Centro Educativo en donde su hija/o estudia,

ha sido seleccionado para formar parte de una línea de investigación.

En este lugar se le pesará, medirá y se obtendrá una muestra de sangre;

con los directivos acordaremos una fecha y hora para la toma de la

misma, debiendo el estudiante tener un ayuno previo de 10 horas.

El mismo día deberá llevar una muestra de heces y una de orina las

cuales será recolectadas en casa por la mañana antes de acudir al

colegio.

Para la toma de muestra de sangre se utilizara guantes quirúrgicos

estériles y descartables, se extraerá la sangre de una vena del antebrazo

porque resulta de fácil acceso.

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 173

Se desinfectara la zona con un algodón humedecido en alcohol

antiséptico, aplicando un torniquete unos 5cm por encima del sitio

escogido. Se indicará al estudiante que abra y cierre el puño varias veces

con el fin de palpar la vena distendida y se introducirá la aguja que debe

penetrar la piel y la pared de la vena. Al momento que comience a salir la

sangre se recolectara en los tubos indicados. Se retirara el torniquete y

la aguja al mismo tiempo, colocando el algodón con alcohol, luego se

colocara una cinta adhesiva estéril en el sitio de punción.

Para la obtención de la muestra de heces y orina, deberá recolectarse en

un recipiente estéril, una cantidad adecuada de la muestra sin exceder la

capacidad del recipiente.

Para la muestra de orina, deberá ser la primera de la mañana de la cual

se recolectará “solo” el chorro medio en un frasco recolector. Nosotros

facilitaremos los frascos recolectores tanto para la muestra de heces y de

orina.

Garantizamos que la información obtenida, se manejará de forma

profesional y únicamente serán de uso estadístico para nuestro estudio

científico.

Riesgos:

Las molestias (efectos secundarios) que pudieran ocurrir son mínimos,

como un leve dolor al momento del pinchazo, un ligero moretón en el

lugar de la extracción y con una posible sensación de mareo.

La cantidad de sangre que se le extraerá al estudiante es de 10 ml de los

cuales, 5 ml son para las pruebas hematológicas y los otros 5ml serán

para las pruebas bioquímicas, lo cual no afectará el estado de salud. Los

materiales a utilizarse como agujas y tubos serán estériles y descartables

por lo que no corre el riesgo de adquirir alguna enfermedad durante el

proceso.

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 174

Las muestras serán procesadas en el Centro de Diagnóstico de la

Facultad de Ciencias Médicas de la Universidad de Cuenca.

Beneficios:

Una vez obtenido el resultado de las muestras de los estudiantes, estos

aportarán información a esta línea de investigación científica, a través de

la cual se podrá conocer el estado de salud del adolescente; a la vez

usted contará con exámenes sin costo alguno; los resultados serán

entregados de forma personal por los investigadores.

¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨ ¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨¨

FIRMA DE PADRE/MADRE FIRMA DEL

REPRESENTANTE CI…………………………………

CI…………………………………………….

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 175

8.2 ASENTIMIENTO FIRMADO

UNIVERSIDA DE CUENCA

FACULTAD DE COENCIAS MÉDICAS

ESCUELA DE TECNOLOGIA MÉDICA

ASENTIMIENTO INFORMADO DEL Y LA ADOLESCENTE

Nosotros: Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega, estudiantes del

Área de Laboratorio Clínico, Escuela de Tecnología Médica, estamos por

realizar nuestro tesis con una línea investigativa con el tema:

“REALIZACIÓN DE PRUEBAS BÁSICAS DE LABORATORIO CLÍNICO

EN ESTUDIANTES SECUNDARIOS DEL COLEGIO REPUBLICA DE

ISRAEL SECCION NOCTURNA, CUENCA 2010 – 2011.

Con el objetivo de contar plenamente con el consentimiento y

conocimiento del o la adolescente para la realización de dicho estudio.

Muestra de sangre:

Para la toma de muestra de sangre se utilizara guantes quirúrgicos

estériles y descartables, se extraerá la sangre de una vena del antebrazo

porque resulta de fácil acceso. Se desinfectara la zona con un algodón

humedecido en alcohol antiséptico, aplicando un torniquete unos 5cm por

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 176

encima del sitio escogido. Se pedirá al estudiante que abra y cierre el

puño varias veces con el fin de palpar la vena distendida y se introducirá

la aguja que debe penetrar la piel y la pared de la vena. Al momento que

comience a salir la sangre se recolectara en los tubos indicados. Se

retirara el torniquete y la aguja al mismo tiempo, colocando el algodón

con alcohol, luego se colocara una cinta adhesiva estéril en el sitio de

punción.

Para la obtención de la muestra de heces y orina, deberá recolectarse en

un recipiente estéril, una cantidad adecuada de la muestra sin exceder la

capacidad del recipiente. Para la muestra de orina, deberá ser la primera

de la mañana de la cual se recolectará “solo” el chorro medio en un frasco

recolector. Nosotros facilitaremos los frascos recolectores tanto para la

muestra de heces y de orina.

Garantizamos que la información obtenida, se manejará de forma

profesional y únicamente serán de uso estadístico para nuestro estudio

científico.

Riesgos:

Las molestias (efectos secundarios) que pudieran ocurrir son mínimos,

como un leve dolor al momento del pinchazo, un ligero moretón en el

lugar de la extracción y con una posible sensación de mareo.

La cantidad de sangre que se le extraerá al estudiante es de 10 ml de los

cuales, 5 ml son para las pruebas hematológicas y los otros 5ml serán

para las pruebas bioquímicas, lo cual no afectará el estado de salud. Los

materiales a utilizarse como agujas y tubos serán estériles y descartables

por lo que no corre el riesgo de adquirir alguna enfermedad durante el

proceso.

Las muestras serán procesadas en el Centro de Diagnóstico de la

Facultad de Ciencias Médicas de la Universidad de Cuenca.

UNIVERSIDAD DE CUENCA

Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 177

Beneficios:

Una vez obtenido el resultado de las muestras de los estudiantes, estos

aportarán información a esta línea de investigación científica, a través de

la cual se podrá conocer el estado de salud del adolescente; a la vez

usted contará con exámenes sin costo alguno; los resultados serán

entregados de forma personal por los investigadores.

Yo:

………………………………………………………………………………………

……….

Curso:

………………………………………………………………………………………

…

8.3 FICHA DEL ESTUDIANTE

Universidad de Cuenca Facultad de Ciencia

Médicas

Escuela de Tecnología Médica Área Laboratorio Clínico

Formulario # ________

Nombre Estudiante ______________________________________

Edad: _____ Sexo: ____ Talla: ______ Peso: ____

Domicilio: Urbano ___________ Rural ____________

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Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 178

Dirección: Calle _____________________ Teléfono _________

Colegio: _______________________________________________

Varones Mujeres Mixto

Dirección del Colegio: __________________Teléfono _________

Fecha:…………………………………………

Firma de Responsabilidad:…………………………………………….

8.4 HOJA DE REPORTE DE RESULTADOS.

Universidad de Cuenca Facultad de Ciencias Médicas

Escuela de Tecnología Médica Área Laboratorio Clínico

Ficha de Resultados

Hemograma: Resultado Unidad

Leucocitos xmm3

Eritrocitos xmm3

Hematocrito %

Hemoglobina g/dl

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Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 179

Neutrófilos %

Linfocitos %

Monocitos %

Eosinófilos %

Basófilos %

QUIMICOS: Resultado Unidad

GLUCOSA: mg/dl

ASTO: UI/l

EXAMEN DE

ORINA: SEDIMENTO: Resultado

EXAMEN DE

HECES: Resultado

Color

Cél.

Epiteliales Color:

Aspecto Hematíes Olor:

pH Cristales Consistencia:

Densidad Cilindros Moco:

Glucosa Bacterias Restos

Acido Ascórbico Macroscópicos

Cuerpos

Cetónicos

Ex.

Microscópico Resultado

Nitritos

Proteínas

Bilirrubinas

Urobilinógeno

Sangre

8.5. RECURSOS Y FINANCIAMIENTO.

RECURSOS HUMANOS.

DIRECTOS:

Autores: Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega.

Director: Lcdo. Mauricio Baculima.

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Elsa Molina, Sandra Mora, Alexandra Ortega. Página 180

Asesores Metodológicos: Dr. José Cabrera Vicuña.

Dr. Hugo Cañar.

INDIRECTOS:

Todas las personas que salieron favorecidas en este estudio.

RECURSOS MATERIALES.

Reactivos 300,00

Materiales 360,00

Papelería y limpieza 75,00

Hemogramas 400,00

Otros 30,00

TOTAL 1.165,00

8.6. FINANCIAMIENTO.

El costo de este estudio será financiado en un 100% por parte de las

investigadoras, de igual manera se contará con el apoyo de equipos por

parte del Hospital Vicente Corral Moscoso.

8.7. MAPA DE LA CIUDAD DE CUENCA – ECUADOR.

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