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Ciclo biológico de endoparásitos de la familia anisakidae en relación a la dieta de la merluza chilena Merluccius Gayi (Guichenot, 1848) Integrantes: Mónica Coloma Olmedo Carolina Uribe Ulloa Profesor Asesor: Ricardo Sánchez A. Establecimiento Educacional: Colegio Alicante del Sol, Puente Alto Región: Metropolitana

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Page 1: Trabajo Para Presentar en El Museo de Historia Natural[1][1]

Ciclo biológico de endoparásitos de la familia anisakidae en relación a la dieta

de la merluza chilena Merluccius Gayi (Guichenot, 1848)

Integrantes: Mónica Coloma Olmedo Carolina Uribe Ulloa

Profesor Asesor: Ricardo Sánchez A. Establecimiento Educacional: Colegio Alicante del Sol, Puente Alto Región: Metropolitana

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INDICE

RESUMEN…………………………………………………………………………….Pág. 1

INTRODUCCIÓN…………………………………………………………………….Pág.1 y 2

Pregunta de investigación...………………………………………………………Pág. 2

Hipótesis..…………………………………………………………………………....Pág. 3

Objetivo general.…………………………………………………………………....Pág. 3

Objetivos específicos………………………………………………………………Pág. 3

MATERIALES Y MÉTODO...……………………………………………………....Pág. 3 y 4

RESULTADOS……………………………………………………………………...Pág. 4 y 5

DISCUSIÓN…………………………………………………………………………Pág. 5 y 6

CONCLUSIÓN……………………………………………………………………...Pág. 6

REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS…………………………………………….Pág. 6 y 7

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Ciclo biológico de endoparásitos de la familia anisakidae en relación a la dieta de la merluza chilena Merluccius Gayi (Guichenot, 1848) RESUMEN Se determina la composición de la dieta de Merluccius gayi en pescaderías de Puente Alto, entre el periodo de Marzo a Octubre de 2010 y se relaciona con el ciclo biológico del endoparásito de la familia Anisakidae. Los animales examinados se recolectaron aleatoriamente, siendo preservados a -10ºC. En el laboratorio del Colegio Alicante del Sol cada ejemplar fue masado y medido en su longitud estándar. Las presas encontradas al analizar el estómago se separaron, identificándose, en lo posible, hasta el nivel taxonómico más específico, luego se contaron y masaron. Las presas pequeñas pertenecientes a un mismo taxón fueron pesadas conjuntamente y las grandes, en el caso de peces y macrocrustáceos (langostino), de forma individual. El mayor aporte a la dieta estuvo representado por el crustáceo del género Pleuroncodes sp. (44%), seguido por otros crustáceos (23%), presas de anchoveta de una talla aproximada de 10 cm (12%) y otros teleósteos (21%). Luego por medio del método translúcido se analizaron las merluzas y sus presas, tanto su musculatura como sus vísceras para determinar presencia de endoparásitos. Las larvas encontradas fueron fijadas en etanol al 70% y luego diafanizadas con lactofenol para identificarlas. Del total de las merluzas el 65% y el 75% de sus presas se encontraba infectado con larvas de anisakidae. En conclusión el tipo de dieta de Merluccius gayi incide directamente en la presencia de endoparásito nematodo de la familia anisakidae. Con estos datos preliminares se puede inferir el ciclo de infección de la merluza chilena, comenzando con el crustáceo Pleuroncodes, donde ellos comerían los huevos eliminados por los mamíferos (Ej. Otaria flavescens), luego la M. gayi se alimentaría de los crustáceos y teleósteos óseos como los de la familia Engraulidae y accidentalmente llegaría a los humanos, pudiendo causar la anisakiasis. Palabras claves: Anisakis, Anisakidae, Anisakiasis, Merluccius gayi, dieta, ciclo biológico

INTRODUCCIÓN En Chile no existen actualmente normas de control sobre la ingesta de mariscos y pescados crudos (pescado frito, pescado ahumado, sushi y cebiche), aunque en el Reglamento Sanitario de los alimentos DTO. Nº 977/96, actualizado en agosto de 2006 plantea los tratamientos que debe tener el pesado fresco (desviscerar y congelar). El consumo de pescado crudo es muy común y riesgoso, siendo esto un grave problema, ya que puede generar no sólo la infección conocida como Anisakidosis; que es producida por la larva del nematodo Anisakis simplex (también se relaciona con los nematodos Anisakis spp., Contracaecum osculatum, Pseudoterranova decipiens y Phocanema spp.), si no que también por cestodos que se pueden encontrar en los huevos de los pescados. En Chile se han descrito 33 casos. Cuatro de los casos fue causado por una larva de Anisakis sp. (Sapunar et al., 1976 en Mercado et al., 1997 y en Jofré et al., 2008), 26 por una larva del cuarto estadio de Pseudoterranova decipiens (Mercado et al., 1997 y Jofré et al., 2008)), otro por una nematodo sin identificar (Torres et al., 2000), uno por una larva de cuarto estadio de Pseudoterranova sp (Mercado et al., 2006) y otro por Phocanema sp (en Jofré et al., 2008) en su mayoría afectaron la mucosa gástrica y la esofágica. La anisakidosis es una enfermedad del tracto gastrointestinal que puede presentar síntomas muy variados, desde náuseas hasta fuertes dolores abdominales. La patología se presenta con un cuadro clínico de dos tipos. En el síndrome gástrico agudo, sobreviene un fuerte cólico epigástrico, con náuseas y vómitos que se presentan 4 a 6 horas después de la ingestión del pescado infectado. Algunas veces se requiere

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una intervención quirúrgica, en otros casos la evolución puede ser de hasta 2 años. Cuando se afecta el intestino delgado, ocurre la aparición brusca de náuseas, vómitos, cólicos y fiebre; todo esto en unos 7 días después de la ingestión de las larvas. Adicionalmente, se pueden presentar cuadros alérgicos (anafilaxia), caracterizados por urticaria, angioedema, angioedema facial (hinchazón del rostro), sintomatología gastrointestinal, respiratoria (edema de glotis, broncoconstricción); y, en casos más severos, choque anafiláctico (Audícana et al., 1995 y Mendizabal-Basagoiti, 1999 en Fernández de Corres et al., 2001). Los anisakideos adultos son parásitos de mamíferos acuáticos: ballenas, delfines, marsopas, focas, leones marinos. El ciclo vital exige dos hospedadores intermediarios. El primero de ellos son los crustáceos, que son ingeridos por el segundo hospedador intermediario (peces, cefalópodos). Varias especies pueden participar en esta etapa, dentro de las cuales cabe mencionar: 87% en caballa (Scomber spp.), 62% en bacaladilla, salmón (Oncorhynchus spp.), mero (Epinephalidae) calamar y muchas otras. En América Latina varias especies de pescado han sido descritas como parasitadas por Anisakideos, dentro de ellas: 67% en el jurel (Trachurus murphyi) y 95% en la merluza (Merluccius gayi) (Yubero et al., 2004; Cabezas et al., 2007 en Rodríguez et al., 2009). Eventualmente este segundo hospedador intermediario puede ser consumido por otro pez o cefalópodos, hasta llegar accidentalmente al humano. En el ciclo biológico del endoparásito de la familia Anisakidae generalmente admitido después de los trabajos de Koei et al. (1995), en Rodríguez et al. (2009) se asume que de los huevos eliminados con las heces del hospedador mamífero marino definitivo emergen larvas de tercer estadio, que entran en las cadenas alimentarías de crustáceos, moluscos y peces hasta llegar al hospedador definitivo. Dado que en el ciclo biológico parecen intervenir, sobre todo, tres tipos de hospedadores (crustáceos, peces/cefalópodos y mamíferos marinos y accidentalmente los humanos), las variaciones en cada una de estas poblaciones debe estar interrelacionada; así, un aumento de la población en los hospedadores definitivos puede suponer una mayor presencia de larvas en el resto de hospedadores y también, la aparición de determinadas especies de peces hospedadores puede aumentar esta presencia. Considerando aquello y las recomendaciones de EFSA (Riesgos Biológicos de la Autoridad Europea para la Seguridad Alimentaria) es relevante proponer un estudio sobre la dieta de la merluza, que presenta una mayor incidencia de infección por Anisakis (95%), que aporte a comprender el ciclo biológico del Anisakis, en relación a los hospedadores que participan y en que condiciones puede generar un aumento de casos en chile, de acuerdo a esto el propósito de esta investigación es Inferir el ciclo biológico del endoparásito de la familia anisakidae en relación a la dieta de la merluza chilena Merluccius gayi (Guichenot, 1848) en pescaderías de la zona centro de Chile, donde la hipótesis más probable es: el tipo de dieta de la merluza chilena Merluccius gayi incide directamente en la presencia de endoparásito nematodo de la familia anisakidae. Pregunta de Investigación ¿Cómo se relaciona la dieta de la merluza chilena Merluccis gayi (Guichenot 1848) con el ciclo biológico de endoparásitos de la familia anisakidae en merluzas provenientes de pescaderías de ferias libres de la zona centro de Chile?

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Hipótesis El tipo de dieta de la merluza chilena Merluccius gayi incide directamente en la presencia de endoparásito nematodo de la familia anisakidae. Objetivo general Inferir el ciclo biológico del endoparásito de la familia anisakidae en relación a la dieta de la merluza chilena Merluccius gayi (Guichenot, 1848) en pescaderías de la zona centro de Chile. Objetivos específicos

1. Identificar taxonómicamente las presas encontradas en el estomago de las merluzas.

2. Analizar los endoparásitos encontrados en las presas y en la merluza chilena 3. Relacionar la prevalencia de endoparásitos de las presas con los encontrados en

la merluza. 4. Elaborar el ciclo biológico del endoparásito de la familia anisakidae en relación a

la dieta de la merluza chilena. 5. Verificar los alcances del estudio tanto para próximas investigaciones como en el

sentido de los aprendizajes obtenidos por los estudiantes participantes. MATERIALES Y MÉTODO

Se obtuvo un total de 120 individuos de M. gayi en pescaderías de ferias libres de la comuna de Puente Alto, durante el periodo de Marzo a Octubre de 2010, mediante dos muestreos semanales. El diseño es del tipo cuasi-experimental descriptivo correlacional, donde las muestras se recolectaron de forma probabilística aleatoria-simple, solicitando el número de 25 piezas por vez, siendo preservados a -10º C. En el laboratorio del Colegio Alicante del Sol cada ejemplar fue masado (masa viscerada); Las presas

encontradas en el estomago se separaron, identificándose, en lo posible, hasta el nivel taxonómico más específico se contaron y masaron después de eliminar el exceso de agua con papel absorbente. Las presas pequeñas pertenecientes a un mismo taxón fueron masadas conjuntamente y las grandes, en el caso de peces y macrocrustáceos (langostino), de forma individual. La mayor parte de las presas no se hallaban en un estado avanzado de digestión, por lo que se decidió someterla a claves dicotómicas para cada taxa, utilizando para su clasificación final en los peces la aleta caudal, la línea lateral con escamas, la dimensión de la cabeza y la longitud cefálica, entre otras. Aun así, los organismos zooplanctónicos que no fue posible identificar se agruparon en crustáceos sin identificar. Lo mismo se hizo para restos de peces digeridos, agrupándolos en teleósteos sin identificar. Luego por medio de luz blanca (método

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translúcido) se analizan las merluzas y sus presas, tanto su musculatura como sus vísceras en relación a la presencia de endoparásitos de la familia anisakidae, luego se grafican los resultados aplicándole un test de correlación (r2). Las larvas encontradas fueron fijadas en etanol al 70% y luego diafanizadas con lactofenol para observar sus estructuras e identificarla. Finalmente se esquematiza un posible ciclo biológico del anisakis con las especies encontradas en su dieta. RESULTADOS

Los resultados se muestran en la figura 1, donde se observa que el crustáceo langostino amarillo del genero Pleuroncodes presenta una mayor presencia porcentual (44%) y la anchoveta (Engraulis ringens) (fue posible distinguir por encontrarse de forma completa) que exhibe un 12%. Para el análisis es importante considerar que los crustáceos y peces pequeños como la anchoveta son parte del ciclo del Anisakis, siendo de esta manera transmitido a la merluza Merluccius gayi, como se observa en la propuesta de ciclo biológico del endoparásito de la familia anisakidae. La mayoría de las larvas presentaron las siguientes características

morfológicas (dimensiones en mm): tres labios en la región cefálica y sin diente perforador, no se observó mucrón en la región caudal; longitud corporal: 25,7; anchura

máxima: 0,7; longitud del esófago: 1,6; longitud del ventrículo: 0,9; longitud de ciego intestinal: 0,9; cola: 0,2; distancia anillo nervioso-extremo anterior: 0,4, con estos antecedentes a priori se puede inferir de que las larvas pertenecen a la familia anisakidae.

De acuerdo a lo que se observa en la figura 2 existe una correlación de 0,98

Figura 1. Porcentaje de presas encontradas en

el estomago de Merluccius gayi.

Figura3. Propuesta de ciclo biológico de los nematodos de la familia

anisakidae presentes en las presa y en la merluza chilena Merluccius

gayi.

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Figura 2. Correlación entre la presencia de endoparásitos en

las presas con relación a los encontrados en M. gayi

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entre la presencia de endoparásitos anisakidae en relación con los que se encontraron en la merluza, suponiendo con esto que entre más parásitos tenga la presa mayor cantidad de parásitos tendrá M. gayi y viceversa.

En la figura 3 se establece la propuesta del ciclo biológico de los endoparásitos de la familia anisakidae. Este ciclo se elabora en base al estudio de las presas encontradas en el estomago de las merluzas y el análisis de la prevalencia de endoparásitos y estudios generales para el ciclo biológico de los endoparásitos de la familia anisakidae (Koie et al., 1995). El ciclo comienza cuando un mamífero marino (Otaria flavescens) (Walter, 1999) excreta sus heces con los huevos de los endoparásitos en el fondo marino y estos sirven de alimento para la larvas de crustáceos (Pleuroncodes sp) y algunos peces para luego estos ser alimento para peces como la anchoveta (Engraulis ringens) la cual posteriormente es comida por Merluccius gayi y es esta la que permite que este endoparásito de la familia anisakidae llegue al ser humano. DISCUSIÓN

Al comparar los resultados del presente estudio con los encontrados en investigaciones anteriores se puede establecer que M. gayi se alimenta de una gran variedad de crustáceos y peces óseos, aunque en la mayoría de los casos un determinado grupo de organismos se presenta como dominante (Arana y Williams, 1970; Arancibia, 1991; Arancibia y Fuentealba, 1993; Fuentes, Antoniette y Muck, 1988; Meléndez, 1984 en Vidal et al., 1997).

La dieta descrita es semejante a la encontrada en otras regiones en relación a la ocurrencia de presas como ejemplares de la familia Engraulidae (Arana y Williams, 1970; Arantibia y Meléndez, 1987; Bahamonde, 1958; Meléndez, 1984 en Vidal et al., 1997) y del genero Pleuroncodes o Cervimunida (Porter, 1903 en Vidal et al., 1997) al analizar la alimentación. Arancibia et al. (1986) en Vidal et al. (1997) determinaron que P. monodon es predado por M. gayi cuyas longitudes se encuentran principalmente en el intervalo 26,0-55,0 cm y, en especial, por aquéllas que han alcanzado la talla de primera madurez. Dicha predación es notoriamente efectiva sobre ejemplares que pertenecen al grupo de edad 0 (menores de 1,1 cm). Siendo esta la talla que se encuentra en este estudio. En Vidal et al., (1997) se presenta una alimentación semejante a la encontrada en esta investigación como los crustáceos P. monodon y C. johni, que son las presas principales en los grupos de tallas promedios 27 cm y que se mantienen a lo largo de todas las clases establecidas, demostrando una constancia en la predación independiente de la talla del predador. Este proceso es importante para entender el ciclo biológico del endoparásito del genero Anisakis a la merluza chilena M. gayi, si se considera a Koei et al. (1995) en Rodríguez et al. (2009) que plantea que el ciclo biológico se asume que de los huevos eliminados con las heces del hospedador mamífero marino definitivo emergen larvas de tercer estadio, que entran en las cadenas alimentarías de crustáceos, moluscos y peces hasta llegar al hospedador definitivo. El parásito adulto suele encontrarse en el estómago de gran variedad de mamíferos marinos que actúan como hospedadores definitivos, en particular cetáceos y más raramente pinnípedos. Los huevos del parásito, no embrionados, acceden al mar envueltos en las heces y en este medio tiene lugar su desarrollo embrionario que se liberan al medio después de la eclosión de los huevos. Las larvas pueden sobrevivir en

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el agua hasta 14 semanas a una temperatura de 4-10 ºC y no más de una semana a 24 ºC. Para que el ciclo continúe, las larvas han de ser ingeridas por un hospedador intermediario, bien directamente (en el caso de eufásidos, un tipo de pequeños crustáceos) o indirectamente a través de un copépodo que actúa como un hospedador de transporte que sirve como alimento a los crustáceos, siendo en estos donde las larvas completan su desarrollo. En este sentido los crustáceos P. monodon y C. johni sirven de alimento a la M. gayi, a los que pasan las larvas. Estos últimos se comportan como nuevos hospedadores paraténicos de esta fase. Finalmente se puede mencionar que en el ciclo biológico parecen intervenir, sobre todo, tres tipos de hospedadores (P. monodon y C. johni, M. gayi y algunos mamíferos marinos), quedando de esta forma una red de transmisión simple para describir el ciclo biológico del Anisakis desde los crustáceos hasta la M. gay. Es importante continuar con este estudio y determinar las variaciones en cada una de estas poblaciones considerando que están interrelacionadas; así, un aumento de la población en los hospedadores definitivos puede suponer una mayor prevalencia de larvas en el resto de hospedadores y también, la presencia de determinadas especies de peces hospedadores puede aumentar esta prevalencia. CONCLUSIÓN La merluza chilena Merluccius gayi tiene una dieta basada principalmente de crustáceos del genero Pleuroncodes o Cervimunida y teleósteos de la familia Engraulidae. De acuerdo a esto se puede entender la gran incidencia de endoparásitos del genero Anisakis que posee la merluza M. gayi, ya que según Rodríguez et al. (2009) los crustáceos y algunos peces son hospedadores del Anisakis y si la M. gayi se alimenta de ellos aumenta su infección por encontrarse en el ciclo del helminto Anisakis. Por último el ciclo de infección de la merluza chilena, según este estudio comenzaría con el crustáceo Pleuroncodes, donde ellos comerían los huevos eclosionados eliminados por los mamíferos (Otaria flavescens) y luego la M. gayi se alimentaria de los crustáceos y teleósteos óseos como los de la familia Engraulidae y luego algún mamífero predaría a la M. gayi y accidentalmente llegaría a los humanos, pudiendo causar la anisiakasis. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS 1. FERNÁNDEZ DE CORRES, M. D. Del Pozo, F. Aizpuru. 2001 Prevalencia de la sensibilización a Anisakis simplex en tres áreas españolas, en relación a las diferentes tasas de consumo de pescado. Relevancia de la alergia a Anisakis simplex. Alergol Inmunol Clin 16: 337-346 2. JOFRÉ, Leonor M., Patricia Neira O., Isabel Noemí H. y José L. Cerva C, 2008 Pseudoterranovosis y sushi, Rev. Chil. Infect; 25 (3): 200-206,

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3. Koie, M.; Berland, B. y Burt, M.D.B. 1995 Development to third-stage larvae occurs in the eggs of Anisakis simplex and Pseudoterranova decipiens (Nematoda, Ascaridoidea, Anisakidae) Can. J. Fish.Aquat. Sci., 52: 134-139, 4. MERCADO, Rubén, Patricio Torres y Jorge Maira, 1997 Human case of gastric infection by a fourth larval stage of Pseudoterranova decipiens (Nematoda, Anisakidae), Rev. Saúde Pública, 31 (2): 178-81, 5. MERCADO, Rubén, Patricio Torres, Luis Carlos Gil, Luis Goldin. 2006 Anisakiasis en una paciente portadora de una pequeña hernia hiatal. Caso clínico, Rev. Méd. Chile; v. 134: 1562-1564, 6. RODRÍGUEZ, Elías, A. Cepeda Sáez, L. Domínguez Rodríguez, M. Martín Esteban, A. Martínez Fernández, V. Marcos Suárez. 2009 Informe del Comité Científico de la Agencia Española de Seguridad Alimentaria y Nutrición (AESAN) sobre la incidencia de la eliminación del pescado o partes del mismo en relación con la reducción de la prevalencia de la anisakiosis humana. Revista del comité científico; 10:19-25, 7. TORRES, Marisa, Marilena Canales, Mónica Concha, Ximena Cofre y Paula Tellez, 2000 Un caso de anisakiosis en un adulto, Parasitol. v.24 n.3-4, 8. VIDAL, R, E. Acuñar y M. Rey Méndez. 1997 Dieta de la merluza Merluccius gayi (Guichenot, 1848) del norte de Chile. Bol. Znst. Esp. Oceanogr; 13 (1 y 2).: 35-45, 9. WALTER, Sielfeld. 1999 Estado del conocimiento sobre conservación y preservación de Otaria flavescens (Shaw, 1800) y Arctocephalus australis (Zimmermann, 1783) en las costas de chile. Estud. Oceanol. 18: 81-96,

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