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Revista Electrónica Iberoamericana de Educación en Ciencias y Tecnología — Volumen 6, Número 2, Junio 2015. Página 51
Técnicas de obtención de cuerpos de moluscos lymneidos para
su identificación taxonómica
Tomassi CA.; Soria CC.; Fresco M.J.; Covarrubia E.; Valdez P.; Malandrini JB. Facultad de Ciencias de la Salud. UNCa.
RESUMEN
Fasciolosis es una zoonosis parasitaria con un ciclo de vida donde participa como hospedero intermedio un caracol de agua dulce. Los moluscos de la Familia Lymnaeidae, (Gasterópoda, Pulmonata) modelan la transmisión de Fasciola hepatica de acuerdo a la especie de caracol involucrado Limnea viatrix fue considerado durante años como el único hospedero involucrado en la epidemiología de la enfermedad en Argentina. Estudios recientes demuestran la presencia de otras especies, y que los caracoles intervinientes en los casos humanos y animales, inclusive de la misma zona, serían de distintas especies.
El objetivo del presente trabajo fue reportar los resultados comparativos obtenidos con distintas técnicas utilizadas para la observación morfológica de caracoles que permitan identificar los principales hospederos intermediarios que intervienen en la parasitosis.
Se colectaron a mano caracoles (n = 673) de una vega ubicada a la vera del río Abaucán (27°29´52” S - 67°35´53,5 O) a 1650 mnm y se trasladaron vivos al laboratorio. Los moluscos se separaron en lotes iguales y se enfrentaron para estudio con tres técnicas: una directa, la de Railliet y la propuesta por Pointier, para poder obtener la separación de su cuerpo, conchilla, aparato reproductor masculino y una porción de su pie, permitiendo una mejor observación de los órganos internos de los caracoles para su reconocimiento taxonómico e identificación por morfología. Paralelamente se sacó
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la parte blanda de la Lymnea en busca de formas intermedias de Fh en el hepatopáncreas del molusco.
Los resultados permiten afirmar que la técnica recomendada por Pointier es la de más fácil aplicación, además de ser más económica. Los resultados obtenidos permiten acercar nuevos conocimientos sobre la enfermedad y los actores involucrados en el mantenimiento y difusión de la parasitosis.
Palabras clave: Técnicas; Lymneidos; Identificación; Taxonomía; Catamarca
Getting technical lymneidos mollusc bodies for taxonomic
identification
ABSTRACT
Fascioliasis is a zoonosis with a life cycle where it participates as a snail intermediate host of fresh water. Mollusks of the Family Lymnaeidae, (Gastropoda, Pulmonata) model Fasciola hepatica transmission according to the snail species involved. Limnea viatrix was considered for years as the only host involved in the epidemiology of the disease in Argentina. Recent studies show the presence of other species, and that the snails involved in human and animal cases, including in the same area, would be of different species.
The aim the present work was report the comparative results obtained with different techniques used for morphological observation of snails that allow identify the main hosts intermediaries that intervene in the parasitosis.
Snails were collected by hand (n = 673) of a plain located on the banks of the Abaucán river (27 ° 29'52 "S - 67 ° 35'53, 5 O) 1650 masl and moved to the laboratory alive. The mollusks were separated into equal lots and clashed for study with three techniques: a straightforward as that of Railliet and the proposal for Pointier, order to obtain the separation of his body, shells, male reproductive system and a portion of your foot, allowing better observation of the internal organs of the snails for taxonomic recognition and
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identification by morphology. Parallel pulled the soft part of the Lymnaea in search of intermediate forms of Fh in the liver - pancreas of shellfish.
The results confirm that the technique recommended by Pointier is the easiest to implement, as well as being cheaper. The results allow us to bring new knowledge about the disease and the actors involved in the maintenance and dissemination of the parasite.
Keywords: Techniques; Lymneidos; Identification; Taxonomy; Catamarca
INTRODUCCIÓN
Fasciolosis es una zoonosis parasitaria con un ciclo de vida en el que
participa como hospedero intermedio un caracol de agua dulce. Los moluscos de
la Familia Lymnaeidae, (Gasterópoda, Pulmonata) modelan la transmisión de
Fasciola hepatica de acuerdo a la especie de caracol involucrado. Lymnaea viatrix
fue considerado durante años como el único hospedero en la epidemiología de
fasciolosis en Argentina (1). Estudios recientes demuestran la presencia de otras
especies involucradas y sostienen que los caracoles intervinientes en los casos
humanos y animales, inclusive de la misma zona, son de distintas especies (2).
Es necesario estudiar los diversos lymneidos encontrados en distintas
regiones de Catamarca debido a que se desconocen las especies que habitan en
un mismo nicho ecológico y que a su vez pudieran actuar de manera diferencial en
la dinámica de transmisión. Está posibilidad se presenta por parámetros de tipo
fisiográficos y factores climáticos.
La obtención de cuerpos de moluscos del género Lymnaedae permite
realizar observaciones microscópicas para observar la estructura y disposición de
sus órganos reproductores como también su hepatopáncreas. Para la
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identificación molecular de especies, se retira una porción de su pie para posterior
análisis que permita investigarlos a fin de describir con mayor precisión la
enfermedad con un importante número de afectados por la misma (1).
Por las condiciones de altitud, así como de temperatura (con variaciones
extremas durante el día), humedad y presión se encontrarían distintos genotipos
de lymneidos en diferentes regiones o en distintos nichos de una misma región y
causes de agua, los que a su vez podrían también variar en el modo de transmisión
de la fasciolosis en animales y en humanos.
Es por ello que con el fin de identificar los principales hospederos
intermediarios que intervienen en la parasitosis se colectan manualmente
ejemplares para su caracterización taxonómica y molecular en los distintos
departamentos de la provincia. Los resultados permitirán obtener nuevos
conocimientos sobre la enfermedad y los actores involucrados en el
mantenimiento y difusión de la parasitosis (1).
El objetivo del presente trabajo fue reportar los resultados comparativos
obtenidos con distintas técnicas utilizadas para la observación morfológica de
caracoles que permiten identificar los principales hospederos intermediarios que
intervienen en el ciclo de fasciolosis.
REFERENTE TEÓRICO
Hay que tener en cuenta que la fasciolosis es una enfermedad presente
desde la antigüedad que fue hallada en poblaciones humanas prehistóricas,
considerada una patología secundaria hasta mediados de los años `90. Fue
recientemente incluida por la Organización Mundial de la Salud en la lista de
importantes enfermedades parasitarias humanas y se encuentra en el grupo de
las 17 enfermedades tropicales desatendidas (“neglected tropical diseases”). El
desarrollo del parásito es muy dependiente de las características ambientales de
acuerdo con la naturaleza de las fases del ciclo de vida libre que ocurren en el
entorno externo de agua dulce y la fase de vector, que se desarrolla
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completamente dentro de un caracol del género Lymnaea. Estudios realizados
recientemente han demostrado que es un problema importante de salud pública,
y los casos humanos se han incrementando en 51 países de los cinco continentes
(3). Sin embargo, un análisis global de la distribución geográfica de casos humanos
muestra que la correlación esperada entre fasciolosis animal y humana sólo
aparece en un nivel básico. Altas prevalencias en los seres humanos no parecen
estar necesariamente relacionadas con áreas donde la fasciolosis es un gran
problema de los animales.
Fasciola hepatica muestra un gran potencial de adaptación a nuevas
condiciones ambientales, consecuencia de la propia capacidad parasitaria junto
con la adaptación y habilidad de colonización de los hospedadores intermediarios.
Conocidos patrones epidemiológicos de fasciolosis pueden no siempre explicar las
características de transmisión en una zona determinada. Cuando se trata de una
zona endémica no estudiada previamente, los patrones epidemiológicos
conocidos de fasciolosis siempre deben tenerse en cuenta simplemente como la
base de partida, la adaptación a las nuevas condiciones ambientales puede
cambiar las características de las especies intermedias.
La ecología de la fasciolosis está estrechamente relacionada con la de los
caracoles que sirven de hospedadores intermediarios. Los caracteres fisiográficos,
la composición del suelo y los factores climáticos determinan el ritmo de la
reproducción de las Lymnaea y, por consiguiente, la dinámica epidemiológica.
El ciclo de infección en la naturaleza se mantiene mediante animales y los
caracoles de la familia Lymnaeidae. Desde el punto de vista ecológico, los hábitats
de Lymnaea pueden dividirse en dos grandes clases: focos primarios o reservorios
y áreas de extensión o diseminación. Los focos primarios son parajes
permanentemente húmedos, como ríos de poco curso, lagos, lagunas y acequias,
donde los caracoles se reproducen de modo constante. Los campos húmedos de
suelo arcilloso constituyen otro tipo de reservorio. Las áreas donde se alternan
inundaciones y estados secos son de especial interés epidemiológico. Estos
lugares de extensión de los focos originales contienen grandes concentraciones
de Lymnaea.
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Los hábitat temporales o de extensión en los campos de pastoreo
constituyen las áreas enzoóticas donde ocurren brotes graves de fasciolosis (4).
En Argentina se ha registrado la presencia de Lymnaea viatrix en la provincia de
Buenos Aires (5) y en provincias del Centro, Centro-Oeste y Sur (6, 7, 8), L.
diaphana en Patagonia (9), Galba truncatula al norte de la Patagonia (10) y
Pseudosuccinea columella en el noreste del país (6, 11).
Estudios previos han demostrado diferencias a nivel del parásito y de su
hospedador intermediario que se pueden interpretar como estrategias
relacionadas con la adaptación a las condiciones geográficas (12).
El uso de técnicas moleculares para identificar y diferenciar Lymneidos sp
ofrece ventajas considerables; en los últimos años, los métodos basados en PCR
han permitido la rápida caracterización del parásito (13, 14, 15). La disponibilidad
de una variedad de técnicas moleculares también provee un método de dilucidar
la biología, epidemiología, genética y evolución de Lymnaea sp. así como medidas
de control más efectivas (15).
Paraense utilizando la morfología clásica, ha reportado para la región de
América del Sur las siguientes especies: L. viatrix Orbigny, 1835, L. columella Say,
1817, L. diaphana King, 1830, L. cousini Jousseaume, 1887, L. rupestris Paraense,
1982, L. plicata Scott, 1953, la especial identificación de estos lymneidos está
basada en la comparación de caracteres morfológicos de la conchilla, rádula, riñón
y órganos reproductivos.
En efecto, Parense, nombró a L. peregrina Clessin, 1882 como un sinónimo
de L. columella. Se reportaron en el norte del Altiplano boliviano L. viatrix y L.
cubensis Peiffer, 1839 pero se sugirió que esas dos especies corresponden a dos
formas extremas de la especie europea L. truncatula. (16)
L. columella fue identificada por primera vez en Argentina en la provincia
de Misiones por Scott en 1953 (17). L. cubenisis fue encontrada en Venezuela y en
varios sitios de República Dominica. L. truncatula en Francia (18). L. plicata Hylton-
Scott, 1953 fue encontrada en la provincia de Chubut Argentina (19). En Perú L.
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neotropica (es igual a L. viatrix var. B elongata) y fue diferenciada como las dos
especies presentes junto con L. viatrix (20).
METODOLOGÍA
En una vega del rio Abaucán (27° 29' 52 "S - 67° 35' 53,5 O) localizada
aproximadamente a1650 msnm, se colectaron manualmente los moluscos
presentes (n = 673) y fueron llevados vivos al laboratorio en donde iban a ser
sometidos a las diferentes técnicas.
Fueron separados (n=224) para realización con técnica de Paraense, para
técnica de Pointier (n=225) y los restantes para observación directa de la
morfología de su conchilla
La técnica de Railliet (21) consiste en un protocolo para la fijación y
conservación de moluscos de agua dulce que comprende tres etapas, una de
relajación, una de sacrificio y finalmente otra de fijación y conservación.
En la etapa de relajación se colocaron los caracoles recolectados en una
solución de agua declorinada a temperatura ambiente con tres a siete cristales de
mentol en cápsulas de Petri, durante aproximadamente 20 minutos luego durante
el proceso, se corroboró continuamente que los moluscos se encuentren
sumergidos, para que no pudieran realizar movimientos, perder el contacto con la
solución y de este modo no lograr una relajación completa, Se los tapó
parcialmente con las tapas de la capsula para permitir que entre aire. Luego de
realizar esto se observó claramente como los cuerpos de los moluscos empezaran
a salir en parte de las conchillas. Este procedimiento se continuó hasta corroborar
su relajación o inmovilidad completa.
El sacrificio se logró sumergiendo a los caracoles relajados en agua a 70ºC
durante 40-45 segundos (tiempo sugerido para ejemplares de entre 10 y 20 mm de
largo), inmediatamente después de hacer esto se colocan los caracoles muertos
en agua fría para evitar la cocción de los tejidos, y por último se desprende el
cuerpo de la conchilla tirando del pie con una pinza adecuada.
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En la etapa de fijación y conservación del proceso se colocan los cuerpos
de cada caracol en líquido fijador Railliet-Henry que se prepara en una solución
con formol 4% neutralizado (50 ml), solución fisiológica (930 ml); y ácido acético
glacial (20 ml), teniendo en cuenta que el volumen del fijador debe ser veinte
veces mayor al volumen del cuerpo. Transcurridas 24 horas se renovó el líquido
fijador. Finalmente se pudo conservar el material en el fijador por tiempo
indefinido manteniéndolo en un recipiente hermético. Para evitar posibles
confusiones, como actividad final se rotuló con un mismo código el cuerpo y la
conchilla de cada espécimen para saber qué tipo de cuerpo estamos analizando
con su conchilla correspondiente
La técnica Pointier consiste en trasladar los caracoles al laboratorio,
lavándolos con agua para de este modo eliminar posibles suciedades arrastradas
en la recolección de las zonas de obtención. A posteriori se colocan los moluscos
en agua caliente (a 70°C) aproximadamente 30 segundos, consiguiendo la muerte
de los lymneidos. Inmediatamente se deben colocar en agua fría para evitar la
cocción de los mismos, se dispone de un colador con el que se sumergen los
moluscos y así retirarlos más fácil y rápidamente una vez transcurrido el tiempo
que deban estar en agua caliente.
Una vez realizado este procedimiento se colocan los ejemplares en una
solución de alcohol 70° durante 24 horas. Transcurrido este tiempo, los cuerpos
de los lymneidos se desprenden con una pinza adecuada o una aguja, conseguido
esto se debe quitar una porción del pie de estos moluscos que posteriormente
será utilizada para identificación de su especie mediante análisis molecular. Tanto
el pie como el cuerpo de estos ejemplares debe ser conservado en alcohol 70° pero
no así las conchillas las que no requieren de ninguna solución conservante.
Se conservan conchilla, cuerpo y pie de cada molusco en un recipiente
hermético, se identifican cada uno con un mismo código para luego con la
obtención de los resultados de análisis molecular poder realizar especificaciones
de la conchilla y del los órganos reproductores que se pudieran observar a
microscopio con los cuerpos.
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La tercera técnica consistió en una observación directa de los ejemplares
obtenidos a simple vista, tomando en cuenta los diferentes aspectos de los
moluscos.
RESULTADOS
Los resultados comparativos obtenidos con distintas técnicas utilizadas
para la observación morfológica de caracoles permitieron identificar los
principales hospederos intermediarios y reportar que la técnica de Pointier es la
más práctica y económica para ser utilizada en la rutina del laboratorio
malacológico (Véase Tabla 1, anexo 1).
De las técnicas utilizadas para la obtención de cuerpos de los distintos
ejemplares se concluye que estas presentan ventajas y desventajas
comparándolas entre sí.
En la técnica de Railliet se pueden obtener cuerpos que presenten mayor
relajación en sus órganos internos que presentan otras técnicas, los cuales
permitirán una observación con mayor detalle de los mismos al microscopio
pudiendo obtener de esta forma la realización de un boceto de estos. En contra
posición al conservar los cuerpos mediante este procedimiento no se pueden
obtener porciones de pie de estos caracoles para análisis molecular, además de
presentar mayores costos al emplear cristales de mentol.
Con la técnica de Pointier se permite una obtención con mayor rapidez y
menos costos de los cuerpos de los lymneidos al emplear para su uso agua y
alcohol. Como desventaja presenta que mediante esta técnica los órganos
internos que se observaran a microscopio no lograrán una relajación como la
obtenida en la técnica anterior, por lo que la identificación de las diferentes partes
será más dificultosa.
La tercera técnica de observación en forma directa a pesar de ser rápida y
no requerir de múltiples instrumentos, presenta resultados de baja confiabilidad
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debido a que estos están condicionados a la subjetividad del observador al
momento de realizar la observación.
CONCLUSIONES
La técnica que brinda mejores resultados de trabajo es la propuesta por Pointier
debido a que permite con menores costos obtener importantes ventajas para la
identificación morfológica de moluscos y permitir un posterior empleo de los
mismos en análisis de técnicas enzimáticas.
REFERENCIAS
1. Boero JJ. 1970. Parasitosis Animales, tomo III edición 2° Editorial Universitaria
Buenos Aires. (353-354)
2. Tomassi C.A., Soria C.C. Malandrini J.B. Búsqueda de caracoles intermediarios del
ciclo de Fasciola hepatica en Tinogasta. VII Jornadas Universitarias de Ciencias
Exactas y Naturales – Educación en la Ciencia y en la Tecnología. 2012
3. Mas-Coma S. 2004. Human fascoliasis: epidemiological patterns in human endemic
areas of South America, Africa and Asia. Southeast Asian J Trop Med Public Health
35 (Suppl 1): 1-11
4. Acha PN, Szyfres B. 1986. Fascioliasis. En: P.N. Acha, B. Szyfres (ed.), Zoonosis y
enfermedades transmisibles comunes al hombre y los animales, Segunda edición.
Organización Panamericana de la Salud, Washington, D.C., 689-698.
5. Issia L., Pietrokovsky S., Duffy T., Wisnivesky. 2009. Hallazgo simultáneo de
Lymnaea viatrix y Galba trunculata en un mismo cuerpo de agua en Mendoza,
Argentina. Acta Bioquím Clín Latinoam Supl 1 90
6. Paraense LW. 1982. Lymnaea viatrix y L. columella in the Neotropical region: a
distributional outline. Mem Inst Oswaldo Cruz (77) 181-188.
7. Lombardero O, Moriena RA, Racioppi O y Quiroz L. (1979) . Bionomía de Lymnaea
sp. en la provincia de Corrientes. Veterinaria (2) 5:19.
8. Kleiman F, Pietrokovsky S, Paraense LW, Wisnivesky-Colli C. 2004. Southernmost
finding of Lymnaea viatrix Orbigny, 1835 (Pulmonata: Lymnaeidae), intermediate
Técnicas de obtención de cuerpos de moluscos lymneidos para su identificación taxonómica: Tomassi CA.; Soria CC.; Fresco M.J.; Covarrubia E.; Valdez P.; Malandrini JB.
Revista Electrónica Iberoamericana de Educación en Ciencias y Tecnología — Volumen 6, Número 2, Junio 2015. Página 61
host of Fasciola hepatica (Linnaeus, 1758) (Trematoda: Digenea), in urban and rural
areas of Patagonia, Argentina. Mem Inst Oswaldo Cruz (99) 23-24.
9. Hubendick B. (1951). Recent Lymnaeidae, their variation, morphology, taxonomy,
nomenclature and distribution. Kungl Svenska Vetenskapsakademiens Handlingar
( 3): 1-223
10. Issia L, Pietrokovsky S, Kleiman F, Carmanchahi P, Wisnivesky -Colli C. 2008.Galba
truncatula Müller, 1774 (Pulmonata: Lymnaeidae) in Argentina: Presence and
Natural Infection by Fasciola hepatica (Linnaeus, 1758) (Trematoda: Digenea). The
Veliger (50): 185-189.
11. Prepelitchi L., Kleiman F., Pietrokovsky SM., Moriena RA., Racioppi O., Alvarez J.,
Wisnivesky-Colli C. 2003. First Report of Lymnaea columella Say, 1817 (Pulmonata:
Lymnaeidae) Naturally Infected with Fasciola hepatica (Linnaeus, 1758)
(Trematoda: Digenea) in Argentina. Mem Inst Oswaldo Cruz, 98 (7):889-891.
12. Mas-Coma S, Funatsu IR, Bargues MD. 2001. Fasciola hepatica and lymnaeid snails
occurring at very high altitude in South America. Parasitology 123: 115-127.
13. Cucher MA, Carnevale S, Prepelitchi L, Labbé JH, Wisnivesky -Colli C. 2006. PCR
diagnosis of Fasciola hepatica in field-collected Lymnaea columella and Lymnaea
viatrix snails. Vet Parasitol 137:74-82.
14. Ali H, Ai L, Song HQ, Ali S, Lin RQ, Seyni B, Issa G, Zhu XQ . 2008. Genetic
characterization of Fasciola samples from different host species and geographical
localities revealed the existence of F. hepatica and F. gigantica in Niger. Parasitol
Res 102: 1021-1024.
15. Ai L, Dong SJ, Zhang WY, Elsheikha HM, Mahmmod YS, L in RQ, Yuan ZG, Shi YL,
Huang WY, Zhu XQ. 2010a. Specific PCR-based assays for the identification of
Fasciola species: their development, evaluation and potential usefulness in
prevalence surveys. Ann Trop Med Parasitol 104: 65 -72.
16. Carvalho O., Cardoso P., Pollanah M.L., Rumi A., Roche A., Berne E., Müller G.,
Caldeira R.L. 2004. The use of the polymerase chain reaction and restriction
fragment length polymorphism techinque associated with the classical
morphology for characterization of Lymnaea columella, L. viatrix and L. diaphana.
Mem Inst Oswaldo Cruz, Rio de Janeiro, Vol. 95 (5): 503-507 August. 2004
17. Paraense L. 1982. Lymnaea viatrix and Lymnaea columella in the neotropical
region: a distibutional outline. Mem Inst Oswaldo Cruz, Rio de Janeiro, Vol. 77 (2)
: 181-188, abr./jun. 1982
Técnicas de obtención de cuerpos de moluscos lymneidos para su identificación taxonómica: Tomassi CA.; Soria CC.; Fresco M.J.; Covarrubia E.; Valdez P.; Malandrini JB.
Revista Electrónica Iberoamericana de Educación en Ciencias y Tecnología — Volumen 6, Número 2, Junio 2015. Página 62
18. Jabbour-Zahab R., Poinitier J.P., Joudane J., Jarne P., Oviedo J.A., Bargues M.D.,
Mas-Coma S., Anglés R., Perera G., Balzan C., Khallayoune K., Renaud F. 1996.
Phylogeography and genetic divergence of some lymnaied snails, intermédiate
hosts of human and animal fascioliasis with special reference to lymnaeids from
the bolivian altiplano. Acta Tropica 64 (1997) 191-203
19. Pointier J.P., Cazzaniga N.J., González-Salas C., Gutiérrez A., Arenas J.A., Bargues
M.D., Mas-Coma S. 2006. Anatomical studies of sibiling species within neotropical
lymnaeids, snail intermediate host of fasciolasis. Mem Inst Oswaldo Cruz, Rio de
Janeiro, Vol. 101 (4) : 431-435, June 2006.
20. Bargues M.D., Artigas P., Mera y Sierra R.L., Pointier J.P., Mas-Coma S. 2007.
Characterisation of lymnaea cubenis, L. viatrix and L. neotropica n. sp., by analysis
of their ribosomal and mitochondrial DNA. Annals of Tropical Medicine &
Parasitology, Vol 101, N° 7, 621 -641 (2007).
21. Pointier J.P., Noya O., Alarcón de Noya B., Théron A. 2009. Distribution of
lymnaeidae (mollusca pulmonata), intermédiate snail hosts of Fasciola hepatica in
Venezuela. Mem Inst Oswaldo Cruz, Rio de Janeiro, Vol. 104 (5): 790 -796 August.
2009
AGRADECIMIENTOS
A los doctores, Carlos Ovejero; Roberto Córdoba y a la Agente Sanitario Agustina López
por su invalorable colaboración en la obtención de los ejemplares y a la Doctora Lucila
Prepelitchi por su desinteresada colaboración en la capacitación de la becaria.
Esta investigación fue realizada en el marco del proyecto de investigación “Estudio
epidemiológico y molecular de la transmisión de Fasciola hepatica en diferentes
ecosistemas: aplicaciones al diagnostico y prevención de la zoonosis”. Subsidiada por la
Secretaria de Ciencia y Técnica de la Universidad Nacional de Catamarca.
Tabla 1
Características de las técnicas de estudio de moluscos del género Lymnaea _______________________________________________________________
Técnicas Características Observación
Directa Técnica de Pointier Técnica de Railliet
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Materiales Pinzas Microscopio (eventualmente)
Agua destilada Mechero Termómetro Pinzas Bisturí Alcohol Capsulas de Petri Tubos herméticos Pipetas.
Agua declorinada Agua destilada Cristales de Mentol Mechero Termómetro Pinzas Alcohol Capsulas de Petri Tubos herméticos Pipetas.
Tiempo Dependiente de la cantidad de moluscos a observar
Poco más de 24 hs Cerca de 30 hs
Ventajas Observación rápida en corto tiempo.
Menos Costos y mayor rapidez de trabajo, además del posible empleo de los moluscos trabajados para análisis con técnicas de reacción enzimática en la identificación de especies de los gasterópodos.
Relajación de los cuerpos de los lymneidos para observación de sus sistemas de identificación como el reproductor.
Desventajas Baja fiabilidad de los datos obtenidos debido a la subjetividad en la observación del operador.
Baja o nula relajación de los cuerpos de los lymneidos para observación de sus sistemas de identificación como el reproductor
Costos mayores en comparación con otras técnicas, mayores tiempos de trabajo y la imposibilidad de empleo de los moluscos trabajados para análisis con técnicas de reacción enzimáticas que brinden una identificación de las especies de gasterópodos.
Fuente propia
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