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REGIONES BIÓTICAS DELIMITADAS UTILIZANDO COMO UNIDAD DE ANÁLISIS LOS POLÍGONOS RESULTADOS DEL PROCESO DE DELIMITACIÓN POR LA UNIDAD EJECUTORA. UN MAPA PARA CADA GRUPO TAXONÓMICO: AVES, MAMÍFEROS Y HERPETOS Y UN MAPA CONSENSO Laboratorio de Biogeografía Aplicada y Bioacústica Convenio interadministrativo 13-014 (FA 005 de 2013) Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt - Fondo Adaptación Subdirección de Servicios Científicos y Proyectos Especiales Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt Bogotá, D.C., 2015

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REGIONES BIÓTICAS DELIMITADAS UTILIZANDO COMO UNIDAD DE ANÁLISIS LOS POLÍGONOS RESULTADOS DEL

PROCESO DE DELIMITACIÓN POR LA UNIDAD EJECUTORA. UN MAPA PARA CADA GRUPO

TAXONÓMICO: AVES, MAMÍFEROS Y HERPETOS Y UN MAPA CONSENSO

Laboratorio de Biogeografía Aplicada y Bioacústica

Convenio interadministrativo 13-014 (FA 005 de 2013) Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt - Fondo Adaptación

Subdirección de Servicios Científicos y Proyectos Especiales Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt

Bogotá, D.C., 2015

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30-10-2015

Documento técnico: Cuatro (4) mapas con regiones bióticas delimitadas utilizando como unidad de análisis los polígonos resultados del proceso de delimitación por la unidad ejecutora. Un mapa para cada grupo taxonómico: aves, mamíferos y herpetos y un mapa consenso. Proyecto Delimitación de Páramos y Humedales No. 13-014

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Documento técnico: Cuatro (4) mapas con regiones bióticas delimitadas utilizando como unidad de análisis los polígonos resultados del proceso de delimitación por la unidad ejecutora. Un mapa para cada grupo taxonómico: aves, mamíferos y herpetos y un mapa consenso. Agosto 2015 · Laboratorio de Biogeografía Aplicada y Bioacústica

María Cecilia Londoño, María Helena Olaya, Carolina Bello, Iván González, Cesar Gutiérrez, Daniel López y Jorge Velásquez.

Tabla de contenido

1. Introducción ........................................................................................................................... 3

1.1 Diversidad Beta (β) como herramienta para la delimitación de ecosistemas ..................... 4

1.1.1 Métricas para medir la diversidad ............................................................................. 5

1.2 Datos Biológicos para realizar los análisis ........................................................................... 6

1.3 Modelos de distribución de especies .................................................................................. 7

2. Marco metodológico ............................................................................................................ 10

2.1 Paso 1: Verificación de los registros biológicos ................................................................. 11

2.1.1 Información requerida ................................................................................................ 11

2.1.2 Análisis de datos ......................................................................................................... 12

2.2 Paso 2. Análisis de vacíos geográficos ............................................................................... 13

2.2.1 Información requerida ................................................................................................ 13

2.2.2 Índice de selección de vacíos geográficos (Gap Selection Index GSI) ......................... 14

2.3 Paso 3: Modelos de distribución de especies .................................................................... 15

2.3.1 Variables...................................................................................................................... 15

2.3.2 Modelamiento ............................................................................................................ 16

2.3.3 Evaluación ................................................................................................................... 17

2.3.4 Procesamiento de los modelos ................................................................................... 17

2.3.5 Validación de los modelos .......................................................................................... 17

2.4 Paso 4: Análisis de diversidad beta .................................................................................... 18

2.4.1 Matriz de distribución ................................................................................................. 20

2.4.2 Selección de la métrica de distancia ........................................................................... 20

2.4.3 Cálculo de matriz de distancia. ................................................................................... 21

2.4.5 Agregaciones jerárquicas ............................................................................................ 21

3. Resultados ............................................................................................................................ 22

4. Referencias ........................................................................................................................... 28

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1. Introducción

Los factores abióticos han sido la base de la clasificación de diversas unidades ecológicas (ej. biomas, ecosistemas) pues ha sido muy difícil tener un conocimiento suficientemente completo sobre la biodiversidad para poder incorporarlo en dicha clasificación. Las variables ambientales podrían ser un buen sustituto del componente biótico, suponiendo que la distribución espacial de las especies está principalmente determinada por éstas. Sin embargo es paradójico delimitar ecosistemas según factores físicos cuando el objetivo de su clasificación tiene fines de manejo y conservación de la biodiversidad. En realidad, la base teórica para la clasificación de unidades ecológicas es débil, pues éstas se caracterizan por una “multidimensionalidad” que no debe reducirse a variables abióticas o a datos de cobertura.

La presencia de un grupo particular de plantas, animales y/o microorganismos no es sólo el resultado de las características climáticas y geo-pedológicas, sino de las interacciones bióticas y de la historia biogeográfica de las especies (Figura 1). Es por esto que el integrar el componente biótico dentro de la delimitación de los ecosistemas permite dar más precisión a las unidades descritas, pues se enfatiza la importancia de grupos taxonómicos endémicos y diferencias en la composición de las comunidades bióticas, evidenciando por ejemplo, el efecto que eventos como las glaciaciones o el surgimiento de barreras geográficas han tenido sobre la formación de los ecosistemas como los conocemos (Olson et al. 2001).

Conocer el componente biótico de un ecosistema permite guiar de mejor manera las decisiones sobre su uso y conservación. Al incluir este aspecto se pueden identificar las características de la biodiversidad que lo componen tales como endemismos, rareza, riqueza y de alguna manera fenómenos evolutivos o ecológicos que brindan herramientas para comprender la funcionalidad e importancia de un determinado ecosistema dentro de un territorio en particular. Por esto la utilidad de un mapa de ecosistemas para la gestión y monitoreo de la biodiversidad va a depender de la capacidad de éste para reflejar las diferencias en el componente biótico identificando variación en el patrón geográfico de su distribución.

El objetivo principal de este documento es presentar un marco conceptual y metodológico, que da pie a la implementación de una herramienta para representar y diferenciar unidades ecológicas en los humedales del territorio nacional incorporando el componente biótico desde su composición de especies.

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Figura 1. Factores que influencian la presencia de una especie en un área geográfica. Modificado de Soberón y Peterson (2011).

1.1 Diversidad Beta (β) como herramienta para la delimitación de ecosistemas

Una de las principales dificultades en la delimitación de unidades ecológicas es que las líneas frontera que diferencian una unidad de otra son construcciones arbitrarias que no necesariamente reflejan una transición efectiva (Bailey 2009). De hecho, las transiciones entre dos unidades ecológicas contiguas son generalmente graduales y difíciles de identificar. Una buena aproximación para integrar el componente biótico en la delimitación de unidades ecológicas es evaluando la variación en la composición de las especies entre unidades de muestreo. Dado que estos cambios son probablemente el resultado de transiciones ambientales y/o climáticas a lo largo de un gradiente, pueden revelar las fronteras de dos unidades ecológicas contiguas.

Esta aproximación se conjuga muy bien con el concepto de diversidad (beta), que evalúa la variación en la composición taxonómica entre unidades de muestreo (Whittaker 1960). Más específicamente, si la similitud composicional entre unidades de muestreo es alta, la diversidad

es baja, y viceversa. La variación geográfica en la diversidad refleja principalmente diferencias taxonómicas y ambientales, pero es el resultado de complejos procesos ecológicos, evolutivos y biogeográficos. Por estas razones, este concepto puede ser un instrumento muy valioso que permita diferenciar unidades ecológicas de manera integrativa y sintética.

Desde un punto de vista más práctico, este tipo de aproximaciones también se ha utilizado para evaluar el nivel de recuperación de bosques secundarios que están regenerando después de diversos usos de la tierra (Dent and Joseph Wright 2009, Letcher and Chazdon 2009, Norden et al. 2009, Norden et al. 2012). Igualmente, evaluar la variación en la composición de especies provee una información valiosa sobre la distribución de la diversidad que puede ser utilizada para el desarrollo de planes de manejo, pues permite detectar las áreas que no comparten especies con otras áreas, y por lo tanto que probablemente contienen especies de rango restringido o endémicas. Este tipo de aproximación ha sido utilizado para priorizar áreas de conservación en Israel (Steinitz et al. 2005) y en Canadá (Wiersma and Urban 2005).

A

B

C

Factores abióticos (ej.: clima-pedología) Factores bióticos

(ej.: competencia-predación)

Factores evolutivos y biogeográficos (ej.: dispersión-

barreras geográficas)

Área donde se encuentra presente la especie

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A partir del 2010 se han publicado más de ocho artículos científicos usando la diversidad beta o el recambio de especies para caracterizar y delimitar regiones biogeográficas (Kreft y Jetz 2010, Tuomisto 2010, Baselga et al 2012, Linder et al 2012a, Linder et al 2012b, Ebach et al 2013, González-Orosco et al 2013, González-Orosco et al 2014) trabajos que han usado diferentes grupos taxonómicos y se han desarrollado en distintas regiones del planeta, sirviendo como evidencia de que este procedimiento puede ser una herramienta ideal para delimitar y caracterizar unidades ecológicas de manera cuantitativa y objetiva y así aportar información relevante para los mapas de ecosistemas estratégicos de Colombia.

Entendida así la diversidad puede ser usada como herramienta para delimitar y caracterizar ecosistemas estratégicos para el país como lo son los páramos, humedales y el bosque seco. La identificación de los límites de estos ecosistemas así como las comunidades de especies que están asociadas a ellos pueden facilitar la gestión y manejo que se da a estas regiones. Teniendo en cuenta que son ecosistemas con serios problemas de conservación y de especial importancia por su potencial en la prestación de servicios ecosistémicos, metodologías como esta permiten identificar comunidades que deban ser preservadas para así asegurar la funcionalidad de los ecosistemas.

Los humedales, por ejemplo, son espacios que comparten sus características biogeográficas generales y están integrados entre sí funcionalmente. Sin embargo, la ubicación geográfica de estos sistemas no se ha podido establecer muy bien. De forma más general, se presenta asociándolos con las Ecorregiones de Agua Dulce, que fueron definidas por el Fondo Mundial para la Naturaleza (WWF) y Wetlands International (Olson et al. 1997) pero para Colombia no existe aún una clasificación que permita un buen manejo de este tipo de ecosistemas. Es aquí donde esta herramienta de regionalización basada en la diversidad Beta de las comunidades puede ayudar a realizar dicha clasificación.

1.1.1 Métricas para medir la diversidad

Hoy en día la diversidad puede ser vista como un concepto sombrilla que resguarda una

pluralidad de definiciones. Varias métricas de diversidad han sido introducidas en la literatura, y no existe un consenso claro sobre cuáles son las más apropiadas para cumplir con un objetivo particular (Tuomisto 2010, Anderson et al. 2011).

Las primeras métricas que se desarrollaron para medir diversidad se basan en la presencia-ausencia de especies y usan las siguientes medidas: a, el número de especies que se comparten entre las unidades de muestreo i y j; b, el número de especies presentes en la unidad i pero no en la unidad j; y c, el número de especies presentes en la unidad j pero no en la unidad i. Los índices más populares para calcular la similitud composicional entre pares de unidades de muestreo son los de Jaccard y Sorensen (Jost 2007, Anderson et al. 2011). En algunos casos, se tiene en cuenta e, el número de especies ausentes de ambas unidades (ausencia conjunta). Sin embargo, esta aproximación no es muy corriente pues la ausencia de especies en dos unidades de muestreo no las hace más similares. La información que contiene e puede ser útil en casos particulares, como la evaluación de extinciones locales en distintas unidades de muestreo.

Más recientemente, se desarrollaron nuevas métricas que integran la abundancia de las

especies en la evaluación de la diversidad (ej. índice de Bray-Curtis). Incluir esta nueva información puede dar resultados muy diferentes a los basados en datos de presencia-ausencia, pues dos unidades pueden tener las mismas especies pero con abundancias relativas muy distintas. Sin embargo, a la escala de análisis que se propone no se cuenta con la información necesaria para estimar la abundancia relativa de las especies que se encuentran presentes en las unidades de muestreo que definen un mapa territorial. Otra limitación que se mantiene en este tipo de análisis es la prevalencia de especies raras, que son difíciles de detectar, y que probablemente aparecerán como ausentes de una unidad de muestreo aunque en realidad sí

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estén presentes. Cuando el número de especies raras es importante, la similitud real que existe entre dos unidades de muestreo puede ser subestimada, ya que las especies raras que no aparecen en una unidad son probablemente diferentes de las especies raras que no aparecen en otra unidad. Chao y colaboradores (2004) desarrollaron un modelo probabilístico que incorpora el efecto de las especies raras en el cálculo de los índices de Jaccard y Sorensen.

1.2 Datos Biológicos para realizar los análisis

Las bases de datos de registros biológicos provenientes de colecciones y museos son, en muchos casos, el único recurso documentado de registros biológico. La información provenientes de estas bases de datos tiene muchas aplicaciones incluyendo procesos de mapeo de distribución pasada, actual y futura de especies, estudios sobre tendencias y patrones de biodiversidad, evaluación de acciones de conservación y seguimiento del estado de conservación de la biodiversidad, entre otros (Margules et al. 2007, Boakes et al. 2010).

La disponibilidad de estos datos en línea, la información ambiental geográficamente explícita y el desarrollo de tecnologías computacionales para su análisis, han permitido potencializar el uso de registros biológicos en procesos de planificación de la conservación (Graham et al. 2004) generando respuestas y apoyando la toma de decisiones frente al estado y continua pérdida de la diversidad mundial. Sin embargo, si bien esta información es útil, no está exenta de problemas de calidad, bien sea por errores u omisiones en la información (Chapman 2005a). En términos generales los registros presentan tres tipos de error: 1) error en la identidad taxonómica, 2) errores en la georreferenciación y, 3) errores o sesgos de representatividad asociados a la presencia y ausencia de registros para toda el área de estudio (Graham et al. 2004).

Los errores taxonómicos se presentan por la cantidad de pasos que incluye la toma y análisis de datos, por lo que es viable que en cada etapa se afecten la calidad de la información o su “fitness of use” (usabilidad) debido a inexactitudes y sesgos en aspectos taxonómicos. La registros en un sistema son identificados, almacenados, sistematizados, copiados, estudiados, e interpretados desde su fuente original y por cada paso/persona en la cadena de la información hasta que es sistematizada, se introducen cambios que afectan los datos, siendo entonces la calidad de la información biológica un reflejo de las etapas en el proceso de manejo de la información, incluyendo la toma de datos en campo, sistematización, hasta su uso final.

Por su parte los sesgos geográficos se presentan por errores en la localización de las coordenadas geográficas o bien por factores causantes de sesgos en su distribución como la cercanía a ciertas localidades como carreteras, parques naturales, ríos etc. lo que genera problemas de auto-correlación espacial. (Phillips et al. 2006, Boakes et al. 2010, Garcia Márquez et al. 2012). Las coordenadas geográficas (latitud y longitud) asociadas al registro de las especies son la principal fuente de información en los análisis de distribución geográfica de las especies, por lo que los sesgos geográficas pueden llevar a descripciones erróneas de los patrones de distribución real de las especies o comunidades (Williams et al. 2002, Phillips et al. 2009), siendo entonces indispensable el análisis de los vacíos geográficas de los registros para ayudar a reducir el sesgo que pueden presentar los modelos utilizados para análisis biogeográficos.

Identificar el sesgo de muestreo es útil ya que ayuda a responder la pregunta de cuándo la información disponible en una base de datos es suficiente para un análisis biogeográfico, además de determinar cuánto esfuerzo adicional se necesita invertir y en dónde. Así entonces el reconocer los sesgos espaciales permite introducirlo en los proceso de modelación y realizar técnicas de sub-muestreo para reducir el sesgo, sin embargo uno de los sesgo más difícil de remediar es la baja representatividad de un gradiente ambiental (Graham et al. 2004). Incluso si los registros se encuentran geográficamente sesgados, se pude aplicar un modelo predictivo, valido siempre y cuando el arreglo geográfico de los registros represente la variabilidad ambiental del área de estudio (Garcia Márquez et al. 2012). Estos dos tipos de errores también

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pueden causar la ausencia de ciertas especies raras o específicas de las áreas no representadas (Kadmon et al. 2004).

Estas deficiencias en los datos afecta la interpretación y la fiabilidad en el resultado de los análisis de biodiversidad, por esta razón al momento de usar la información se debe verificar su contenido, mediante un proceso analítico que permita evaluar calidad y entender los errores y sesgos con el fin de generar conclusiones contundentes acerca de las tendencias reales de la diversidad biológica (Boakes et al. 2010). Hay que tener claro que el error no puede desaparecer, ya que siempre habrá un rango de incertidumbre, pero el fin es disminuir el error y mostrar que se tienen errores, identificarlos y solventarlos hasta cierto punto de acuerdo a las políticas de calidad de la información.

Varias herramientas estadísticas ya se han desarrollado para analizar bases de datos, identificar la fuente y la naturaleza de los errores e inconsistencias en los datos (Ricciuti 1993), pero aún no se ha desarrollado un método que integre un análisis de la calidad taxonómica y geográfica de los datos.

Por ello, el Laboratorio de Biogeografía Aplicada y Bioacústica del Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt, ha diseñado un flujo de análisis que permite la verificación taxonómica y geográfica de los datos, y ha modificado el índice de vacíos descrito por (Garcia Márquez et al. 2012) para identificar sesgos en la representatividad geográfica de los datos. Estos pasos de análisis son primordiales antes de realizar los análisis de diversidad beta.

1.3 Modelos de distribución de especies

Hasta hace poco la distribución de las especies era caracterizada exclusivamente mediante mapas de puntos y mapas de expertos (Figura 2). En un mapa de puntos se grafican las localidades donde una determinada especie ha sido registrada, mientras que en un mapa de experto, un experto en un determinado grupo taxonómico traza un polígono que abarca los registros conocidos de una especie pero también incluye/excluye áreas que en criterio del experto son o no habitables por la especie. Los mapas de experto pueden ser refinados utilizando información geográfica secundaria, por ejemplo topografía y vegetación, escogiendo las categorías que a criterio del experto representan condiciones habitables por la especie. Los mapas de puntos son en definitiva los más exactos pues representan las localidades donde existe evidencia de la existencia de una especie. Sin embargo su utilidad depende de la intensidad y extensión del muestreo y por lo tanto son poco útiles en países con muestreos sesgados y de baja intensidad como Colombia. Los mapas de experto infieren la distribución de las especies en lugares no muestreados, pero su construcción es necesariamente arbitraria e irrepetible. No obstante los mapas de expertos son en muchas ocasiones la única herramienta disponible para caracterizar las distribuciones de especies y un gran progreso en la investigación de patrones macroecológicos (Brown 1995, Gaston and Blackburn 2000) y la evaluación del riesgo de extinción de especies (IUCN Standards and Petitions Subcommittee 2011) ha sido posible gracias al uso de los mismos.

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Figura 2. Mapa de puntos (izquierda) y mapa de experto (derecha) para el Silfo Celeste (Aglaiocercus coelestis). Datos de GBIF (www.gbif.org) y IUCN (www.redlist.org).

Recientemente, los modelos de distribución de especies (MDE) han emergido como una herramienta para la caracterización de las distribuciones de especies. Estos modelos son una alternativa poderosa frente a los mapas de expertos, ya que son repetibles, basados en la evidencia y su tiempo de elaboración es mínimo una vez la evidencia (datos ambientales y de distribución puntual) ha sido compilada. Los MDE se basan en (1) experimentos eco-fisiológicos que miden la supervivencia y/o productividad de individuos a diversos tipos de estrés ambiental, o (2) correlaciones entre la distribución de las especies y las variables ambientales de los sitios que habitan, para inferir en que otras localidades podrían estar presentes, con el apoyo de sistemas de información geográfica (Franklin and Miller 2009; Figura 3). Aunque los experimentos eco-fisiológicos aportan información muy valiosa y de carácter determinista para inferir las distribuciones de especies, en general estos son bastante costosos y evalúan solo unas cuantas de las variables que determinan la distribución de las especies, lo cual los hace difíciles de implementar. En contraste, los modelos correlativos únicamente requieren información sobre la distribución puntual de las especies, la cual está disponible para un creciente número de especies a través de portales como GBIF, SIB, speciesLink, eBird, Vernet, Amphibiaweb, etc., y capas geográficas de las variables ambientales de interés, lo cual hace que estos puedan ser implementados para un gran número de especies en poco tiempo. Esta flexibilidad de los MDE ha dado origen a una plétora de aplicaciones en los campos de planeación sistemática de la conservación (Ferrier 2002), restauración ecológica (Hirzel et al. 2004, Martínez-Meyer et al. 2006), evaluación de los riesgos e impactos de especies invasoras (Peterson and Vieglais 2001, Peterson et al. 2003, Richardson and Thuiller 2007), patógenos (Peterson 2006) y cambio climático (Thomas et al. 2004, Iverson et al. 2008, Velásquez-Tibatá et al. 2012), entre otras.

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Figura 3. Diagrama esquemático del modelamiento de distribución de especies.

Los modelos de distribución de especies desde su concepción han sido fuertemente vinculados con el concepto de nicho ecológico (e.g. Austin et al. 1990, Leibold 1995). Sin embargo, existen múltiples definiciones de nicho ecológico y conceptualizaciones acerca de la relación entre los modelos de distribución de especies y el nicho ecológico, lo cual se ha traducido en una barrera para la comunicación entre investigadores que utilizan la misma herramienta. Un creciente número de autores han preferido declarar explícitamente que representan sus modelos de distribución sin apoyarse en el concepto de nicho (Franklin y Miller 2009, McInerny y Etienne 2012). Aquí, nosotros definimos un modelo de distribución como el resultado de un proceso de asociación estadística entre variables ambientales y la ocurrencia de una especie determinada que representa las condiciones ambientales donde la ocurrencia de una especie es posible. El hecho de que no incluimos en el proceso de modelamiento información sobre las capacidades de dispersión de las especies, ni de su estructura poblacional o interacciones tiene como consecuencias principales que (1) nuestros modelos pueden hacer predicciones a sitios climáticamente adecuados pero de los que la especie puede estar excluida por sus capacidades de dispersión o interacciones con otras especies y (2) pueden incluir sitios que son sumideros de la especie (tasa de crecimiento poblacional < 0). Al resultado directo de aplicar un método de modelamiento nos referiremos a lo largo de este documento como la distribución potencial mientras que al resultado del procesamiento de un mapa de distribución potencial para eliminar áreas donde la especie pueda estar excluida por sus capacidades de dispersión o interacciones con otras especies lo llamaremos distribución real (Figura 4).

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Figura 4. Distribución modelada del Silfo Celeste. Mapa de distribución potencial en escala continúa (Izquierda). Mapa de distribución potencial después de la aplicación de un umbral de presencia (Medio). Mapa de distribución real, creado mediante la selección de parches de distribución con al menos un registro de distribución de la especie (Derecha).

En la actualidad existe una variedad de métodos estadísticos para el modelamiento de distribución de especies, los cuales pueden ser divididos entre discriminativos y generativos (Ng y Jordan 2001). Pertenecen a la categoría de discriminativos los derivados de métodos de regresión, como modelos linearles generalizados (GLMs), modelos generales aditivos (GAMs), Boosted Regression Trees (BRTs), entre otros. Estos métodos son llamados así pues buscan el conjunto de parámetros que discriminen mejor los datos de presencia y ausencia. Para una implementación eficiente de métodos discriminativos se necesitan conjuntos de datos grandes (>100 registros) y datos de ausencia, los cuales son una limitante cuando los registros provienen de colecciones biológicas y no de muestreos estandarizados. En la categoría de modelos generativos solo se encuentra MAXENT (Phillips et al. 2006), un método basado en el principio de entropía máxima. MAXENT estima la distribución de probabilidad de máxima entropía (i.e. más cercana a una distribución uniforme) de cada variable ambiental en el área de estudio, sujeta a la condición que el valor esperado de los momentos de la distribución de probabilidad estimada (e.g. promedio, varianza, covarianza) debe ser igual a los momentos empíricos generados a partir de los datos de distribución de especies (Phillips et al. 2006). Este método de modelamiento esta únicamente habilitado para modelar la distribución de especies con datos de sólo presencia (como los provenientes de colecciones biológicas), y ha sido evaluado consistentemente como uno de los mejores (Elith et al. 2006).

2. Marco metodológico

Se propone un marco metodológico (Figura 5) para generar una capa de unidades taxonómicas que apoye la delimitación de ecosistemas de humedales en Colombia.

Los pasos a seguir son los siguientes:

1. Verificar los registros biológicos provenientes de las bases de datos con el fin de eliminar datos con errores taxonómicos o geográficos. Los datos provienen de diferentes fuentes de información entre los que se encuentran el Sistema de Información de Biodiversidad de Colombia (SiB), el Sistema de Información Global de Biodiversidad (GBIF por sus siglas en ingles) y datos de proyectos particulares realizados en el Instituto Humboldt entre otros.

2. Realizar un análisis de vacíos geográficos y taxonómicos a la información de registros biológicos que han sido verificados, con el fin de evaluar los sesgos en los datos.

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3. Realizar mapas de distribución de especies. Este paso tiene dos vías: a) A partir de registros puntuales de las especies presentes en la base de datos SiB y GBIF, y con base a variables bioclimáticas de la base de datos WorldClim se crean modelos de distribución geográfica; b) descargar y rasterizar los mapas de distribución hechos por expertos para las especies presentes en Colombia para las cuales no se cuenta con suficientes registros geográficos que permitan generar un modelos de distribución geográfica.

4. Calcular la similitud composicional entre unidades de análisis. Para esto hay seis pasos: a) definir la unidad de análisis, lo ideal sería trabajar con celdas de 1 km x 1 km provenientes de la resolución de los modelos de distribución de especies, sin embargo por limitaciones de procesamiento esta versión tiene celdas de 10km x 10km. Una vez definida las unidades de análisis se construye una matriz en donde las filas indican el número o ID de la unidad de análisis y las columnas la identidad de la especie. Esta matriz se llena con la información proveniente de los mapas de distribución de especies para obtener una matriz de presencias (1) y ausencias (0); b) calcular una matriz de distancias entre las unidades de análisis con base en la información de presencia/ausencia de las especies; c) realizar un análisis de agregación sobre la matriz de distancia para formar una jerarquía en la clasificación, agrupando las unidades de análisis que sean más similares entre ellas; d) identificar el número de grupos que son significativamente diferentes los unos de los otros mediante un método estadístico que se basa en la aleatorización, e) Realizar el mapa de las distintas unidades taxonómicas, mediante la asignación de los grupo que se discriminan en el paso c) a las unidades de análisis de 10km x 10km y f) Realizar análisis de la contribución de especies en y entre los grupos discriminados.

Figura 5. Diagrama metodológico.

2.1 Paso 1: Verificación de los registros biológicos

Este proceso se desarrolló en 5 grandes pasos que permiten la identificación de inconsistencias

en los datos de registros biológicos. Este proceso metodológico de verificación fue automatizado

en el lenguaje de programación R.

2.1.1 Información requerida

La información requerida de entrada fue:

a) Base de datos con registros biológicos:

La información de registros biológicos contiene obligatoriamente la información pertinente a los

campos: ID del registro, Nombre de la especie, país, departamento, municipio, localidad, fecha,

latitud y longitud.

Verificación de los registros biológicos

Análisis de vacíos geográficos

Mapas de distribución de especies

Análisis de diversidad Beta (Similitud en

composición, análisis de agregación, contribución

de especies)

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b) Información geográfica:

Capas de información geográfica del área de estudio en formato shapefile (departamentos,

municipios y cascos urbanos) y raster de altitud a resolución de 1 km2.

Para los municipios se contó con un conjunto de 6 shapefiles históricos que reconstruyen los

cambios en la delimitación de los municipios desde 1964 hasta el 2011 (años 1964, 1973, 1985,

1993, 2003, 2011) del IGAC, (s.f.).Todas las capas cartográficas tienen un sistema de

coordenadas en grados decimales WGS84.

2.1.2 Análisis de datos

A partir de estos insumos se realizaron los 5 pasos descritos a continuación:

a. Validación taxonómica: El proceso de validación taxonómica utilizó los valores de

nombre científico reportados en cada uno de los registros utilizados. El proceso de

validación se hizo a través de la base de datos MySQL de Catalogue of Life en su versión

anual del 2014 y hace reconocimiento de nombres científicos hasta nivel de especies.

Esta base de datos genera un reconocimiento taxonómico utilizando el género y epíteto

específico. Para poder hacer la validación es necesario generar una partición de texto

separando estos dos elementos y aplicar una depuración para remover calificadores

taxonómicos, autorías científicas y demás. Una vez establecido el género y epíteto

específico la base de datos Catalogue of Life 2014 retorna campos de la taxonomía

superior (reino, filo, clase y demás) y la validez actual del nombre y el nombre científico

vigente. De esta manera los resultados de la validación permiten consolidar el nombre

original, el nombre depurado, el estado taxonómico del nombre (aceptado, sinónimo,

etc.), el nombre aceptado actualmente y la fuente taxonómica (base de datos de

especialistas) que aportó ese nombre científico a Catalogue of Life 2014. En caso de no

encontrarse una validación al nombre científico sometido, los campos quedan vacíos

b. Validación geográfica: Se descartan los registros que no posean latitud y longitud en

grados decimales. Posteriormente se verificó que los registros estuvieran dentro del

área de estudio (Colombia). Se generó el Set 5 con los registros que tiene coordenadas

de longitud y latitud y que caen en el área de estudio (Colombia).

c. Consistencia en datos de ubicación: Se realizó una sobre posición espacial entre los

puntos de los registros y las capas de municipios, departamentos y cascos urbanos. Con

esta unión se verificó que la información que tiene originalmente el registro en los

campos de departamento y municipio correspondiera con su ubicación espacial. De la

misma forma se removieron los registros que cayeron en los cascos urbanos para evitar

introducir registros que usen la cabecera municipal como georreferencia aunque el sitio

de colecta se encuentre fuera de esta, o para evitar introducir información proveniente

de decomisos, zoológicos y jardines botánicos. Según el objetivo del estudio será

pertinente o no incorporar aquellos registros que se encuentren dentro de los cascos

urbanos, sin embargo para conservación in situ es conveniente no incorporarlos a no ser

que la especie se encuentre distribuida naturalmente en áreas urbanas (ej. aves de

humedales).

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d. Eliminación de duplicados: Se eliminaron los registros duplicados. Se consideró que un

registro es duplicado cuando es la misma especie con las mismas coordenadas

geográficas.

e. Datos únicos geográficos: Se seleccionaron los datos únicos geográficos, es decir un

conjunto de registros de diferentes especies en la misma coordenada geográfica, o la

misma especie en diferentes coordenadas geográficas, y que pasaron todos los pasos

de depuración. Este último set es el que se utilizó para los siguientes análisis.

2.2 Paso 2. Análisis de vacíos geográficos

El análisis de vacíos fue automatizado en el lenguaje de programación R y tiene como objetivo

explorar la información disponible en una base de datos de registros biológicos para realizar una

investigación biogeográfica e identificar en dónde es necesario esfuerzo adicional de muestreo

(en el espacio geográfico y ambiental).

2.2.1 Información requerida

Para poder llevar a cabo el análisis de vacíos y sesgo geográficos de una base de datos de

registros biológicos se requirió contar con:

• Base de datos con registros biológicos a analizar.

• Capas de las unidades geográficas de análisis en formato shapefile y raster.

• Capas de variables ambientales del área de estudio en formato raster.

a. Base de datos con registros biológicos a analizar: La información de registros biológicos fue

organizada en archivo de texto (.txt) y contó como los campos obligatorios: ID, nombre de la

especie, latitud y longitud.

La base de datos provino del resultado del proceso de verificación explicada en el numeral 2.1,

sin embargo este análisis se le puede realizar a cualquier base de datos con registros biológicos

siempre y cuando tenga los campos obligatorios.

b. Capas de las unidades geográficas de análisis en formato shapefile y raster: Las capas geográficas

de la unidades geográficas de análisis de departamentos (IGAC 2012), municipios (IGAC 2012),

áreas protegidas (Parques Nacionales Naturales 2012), Corporaciones autónomas regionales

(IGAC (Ajustado por IAVH), 2010), Parques Nacionales Naturales (Parques Nacionales Naturales

de Colombia 2010), Biomas (IDEAM 2007) y Complejos de páramo (IAvH 2012) se organizaron

en formato shapefile y raster a resolución de 1 km2 y en el sistema de coordenadas geográficas

con datum WGS84.

c. Capas de variables ambientales del área de estudio en formato raster: Las capas ambientales

incorporadas en el análisis se dividen en variables bioclimáticas, y variables topográficas (Turner

et al. 2003). Las variables climáticas fueron obtenidas de WorldClim versión 1.4 (Hijmans et al.

2005) a resolución de 1 km2 y re-muestreadas a 10 km2. En total se contó con 19 variable

bioclimáticas de las cuales 11 están relacionadas con la temperatura y 8 con la precipitación

Page 16: REGIONES BIÓTICAS DELIMITADAS UTILIZANDO COMO UNIDAD …

14

(Hijmans et al. 2005). Las 2 variables topográficas (altura y pendiente) fueron derivadas del

modelo de elevación digital (DEM) a resolución de 1 km2 (Hijmans et al. 2005).

2.2.2 Índice de selección de vacíos geográficos (Gap Selection Index GSI)

Calculamos el índice de vacíos geográficos (GSI) propuesto por García Márquez et al. (2012). El

GSI identifica áreas carentes de información y dónde un muestreo adicional mejoraría la

representatividad de la base de datos, la representatividad ambiental y la representatividad

taxonómica.

Para desarrollar este índice la unidad mínima de análisis fue 10 km2 y se desarrolló en 3 etapas

(Figura 6).

Figura 6. Diagrama metodológico del índice de selección de vacíos geográficas

a. Densidad estimada de registros por celda de 10 km2: Las coordenadas geográficas de los

registros fueron consideradas como puntos en el espacio lo que permite usar análisis de

patrones puntuales. A partir de estos patrones de puntos se determinó la densidad del número

de registros por cada 10km2. Para visualizar el patrón se generó un mapa de densidad de

registros del área de estudio (Garcia Márquez et al. 2012).

b. Representatividad ambiental: Para comprobar si el sesgo espacial de las localidades de

los registros representa un sesgo ambiental, se realizó un muestreo de puntos aleatorios de las

variables ambientales y un muestreo de las variables solo para los puntos de los registros. A

partir de este muestreo se construyeron las distribución de densidad para cada variables y se

compararon las dos distribuciones de probabilidad con una prueba de Kolmogorov-Smirnov con

la hipótesis nula que las dos distribuciones de probabilidad son iguales (Abadie, 2002).

Posteriormente se determinó el sesgo ambiental al dividir cada una de las capas ambientales en

cuatro intervalos y calculando el índice de Kadmon et al., (2004) de la misma forma que en el

ÍNDICE DE SELECCIÓN DE VACÍOS (GSI)

Densidad de registros

Representatividad ambiental

Completitud de la base de datos

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15

paso anterior. Las capas resultado de los sesgos ambientales se sumaron y se obtuvo una capa

conjunta de representatividad ambiental (García Márquez et al. 2012).

c. Completitud taxonómica de la base de datos: Para analizar la completitud taxonómica

de la base de datos se usó el índice de Soberón et al., (2000). Este índice se basa en la

comparación del total (estimado) de especies presentes en un área geográfica (S*) con el

número de especies observadas (Sobs) en esa área, de tal forma que el índice de completitud C

se define como:

𝐶 = 𝑆𝑜𝑏𝑠 − 𝑆∗

El cálculo de C se realiza para cada pixel de 10 km2.

El número de especies estimadas se calculó con el método de Bootstrap:

𝑆∗ = 𝑆𝑜𝑏𝑠 + ∑(1 − 𝑝𝑖)𝑁

Donde 𝑝𝑖 es la frecuencia de la especie i y N es el total de registros en la celda (Smith & Belle

1984).

d. Estimación del índice GSI: A partir de los insumos generados en los pasos previos se

calculó en índice de selección de vacíos propuesto por García Márquez et al., (2012) que toma:

Capa de densidad estimada de registros (d).

Capa conjunta de sesgo ambiental (b).

Capa de completitud de la base de datos (C).

Cada uno de estas capas fueron estandarizadas de 0 a 1 siguiendo la ecuación de Legendre &

Legendre (1998).

𝑦′ = 𝑦𝑖 − 𝑦𝑚𝑖𝑛

𝑦𝑚𝑎𝑥 − 𝑦𝑚𝑖𝑛

Una vez las capas fueron estandarizadas se procedió a calcular el GSI de la siguiente forma

𝐺𝑆𝐼 =3 − 𝑑′ − 𝑏′ − 𝐶′

𝐹

Donde: 𝑑′ es la capa de densidad estandarizada, 𝑏′ es la capa de sesgo ambiental estandarizada,

𝐶′ la capa de representatividad estandarizada y F es el número de factores introducidos en el

índice.

Los resultados del índice están en el rango de 0 -1, donde 0 representa áreas que han sido

correctamente representadas mientras que 1 representa áreas que no están bien representadas

en la base de datos (García Márquez et al. 2012).

2.3 Paso 3: Modelos de distribución de especies

2.3.1 Variables

Un gran número de variables de clima, terreno, suelo, geología, vegetación, paisaje, entre otras,

han sido utilizadas para modelar la distribución de especies (Franklin and Miller 2009). Aunque

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16

cada uno de estas variables tiene el potencial de determinar la distribución de las especies, a

menudo no es posible incluirlas todas en el modelamiento por dos razones: 1) la información no

se encuentra disponible a la escala adecuada o la variable física no es fácilmente mapeable y 2)

el número de registros es mucho menor que el número de variables disponibles para el

modelamiento, lo cual puede resultar en modelos sobre-ajustados y con poco poder de

predicción. Este último punto es importante cuando se consideran variables categóricas como

tipos de suelo, ya que los métodos de regresión frecuentemente utilizados para modelar la

distribución de especies interpretan cada categoría como una variable binaria. Adicionalmente,

el número de variables también aumenta cuando se consideran relaciones no lineares entre la

ocurrencia de la especie y las variables ambientales (ej. respuesta en forma de campana

respecto a un gradiente de elevación) o cuando se consideran interacciones entre variables (ej.

humedad topográfica). Por esas razones, el conjunto de variables a escoger para el

modelamiento debe corresponder a variables biológicamente significativas para el grupo de

organismos considerados sin ser mucho mayor que el número de registros disponibles en

promedio para el modelamiento.

Para modelar las distribuciones de organismos en Colombia utilizamos un conjunto de 19

variables bioclimáticas disponibles en WorldClim (www.worldclim.org) que han sido

ampliamente utilizadas para modelar la distribución de organismos alrededor del mundo y

representan variables biológicamente significativas para caracterizar las distribuciones de

especies. Las capas climáticas disponibles en Worldclim fueron interpoladas a partir de una red

meteorológica mundial y corresponden a promedios principalmente para el periodo 1960-1990

(Hijmans et al. 2005). Adicionalmente utilizamos dos variables topográficas que fueron

derivadas a partir de un modelo de elevación digital producido por USGS con datos del Shuttle

Radar Topography Mission. Todas las variables ambientales fueron manipuladas a una

resolución de 30 segundos (1 km aproximadamente).

2.3.2 Modelamiento

El modelamiento de distribución de especies se realizó utilizando el software MAXENT (version

3.3.3k; Phillips et al. 2006), el cuál usa un método estadístico basado en el principio de máxima

entropía. MAXENT estima la distribución de probabilidad de máxima entropía (i.e. más cercana

a una distribución uniforme) de cada variable ambiental en el área de estudio, sujeta a la

condición que el valor esperado de los momentos de la distribución de probabilidad estimada

(ej. promedio, varianza, covarianza) debe ser igual a los momentos empíricos generados a partir

de los datos de distribución de especies (Phillips et al. 2006).

MAXENT fue corrido usando los valores de regularización dados por defecto en el programa y se

forzó el uso de únicamente funciones lineares, cuadráticas e hinge con el propósito de poder

modelar relaciones no lineares entre las variables ambientales y los datos de ocurrencia sin

sobreajustar el modelo. Los datos de fondo (N=10000) fueron obtenidos aleatoriamente de la

extensión de Colombia. Dado el elevado número de especies, MAXENT se corrió mediante el

desarrollo de un código de paralelización del modelamiento en R adaptado para una maquina

Intel Core i7 de 4 núcleos. Este desarrollo disminuyó 8 veces el tiempo de procesamiento de los

modelos. Los modelos utilizados en los análisis finales utilizaron todos los registros disponibles

para cada especie.

Page 19: REGIONES BIÓTICAS DELIMITADAS UTILIZANDO COMO UNIDAD …

17

2.3.3 Evaluación

Los modelos fueron evaluados usando el estadístico área bajo la curva (AUC) mediante una

validación cruzada de K iteraciones (k-fold partitioning). El área bajo la curva es un estadístico

que asume valores entre 0 y 1 y mide la capacidad de discriminación de los modelos. Un valor

de 1 corresponde a una discriminación perfecta de áreas de presencia y ausencia, mientras que

un valor de 0.5 corresponde a una discriminación similar a la obtenida por un modelo aleatorio

(no significativa). Modelos con valores de AUC mayores a 0.7 son asumidos como aceptables

(Fielding and Bell 1997). Para la validación cruzada, los registros de cada especie fueron divididos

en 4 grupos, usando los datos de 3 grupos para el desarrollo del modelo (conjunto de

entrenamiento) y el grupo restante para la evaluación (conjunto de evaluación). Cada uno de los

grupos hizo parte del conjunto de evaluación una vez, resultando en 4 estimaciones de AUC para

cada una de las especies. La validación cruzada asegura que el modelo es evaluado con datos

independientes a los utilizados en el desarrollo del modelo.

2.3.4 Procesamiento de los modelos

Para convertir los modelos en escala continúa producidos por MAXENT, a mapas de

presencia/ausencia, es necesaria la aplicación de umbrales. Varios métodos para definir

umbrales han sido propuestos (Liu et al. 2005), sin embargo estos han sido desarrollados

pensando principalmente en datos de presencia/ausencia. En datos de sólo presencia, es más

difícil justificar la aplicación de un umbral u otro y ejercicios anteriores en el país han

determinado el mismo basado en criterio de experto, considerando cuatro umbrales posibles

(0, 10, 20 y 30) en percentiles de omisión de los datos de presencia por el modelo (Velásquez-

Tibatá et al. 2012; Renjifo et al. in prep). Aunque en teoría el mínimo umbral de presencia

(percentil 0) debería ser satisfactorio para todas las especies, puntos de presencia en zonas

ocasionales o marginales (sumideros) presentes en la base de datos resultan en modelos

demasiado amplios para la mayoría de especies cuando se usa este umbral. Por lo tanto

utilizamos un umbral de 10 que deberá ser validado a futuro por expertos.

Adicionalmente, los modelos de distribución de especies basados en sólo clima resultan en

sobrepredicciones en áreas donde las especies no están presente por factores históricos,

barreras geográficas y/o factores bióticos (Graham et al. 2010). Como una medida para eliminar

automatizadamente dichas áreas de sobrepredicción, eliminamos los parches de distribución

(áreas de distribución potencial geográficamente continuas) de las especies que no tenían

registros verificados de presencia (Kremen et al. 2008). Este método asume que las especies

tienen una capacidad ilimitada de dispersión dentro de los parches y capacidad nula de

dispersión a parches cercanos.

2.3.5 Validación de los modelos

Dado que los modelos no integran factores bióticos ni históricos (Figura 1), y el resultado de estos puede variar para una misma especie debido a la información disponible, las variables que se tienen en cuenta y los algoritmos utilizados, es importante tener en cuenta la opinión de expertos que contribuyan a realizar una retroalimentación de los resultados obteniendo modelos validados.

Sin embargo, para obtener la opinión de un experto es necesario contar con su presencia, de manera individual o en talleres, esta puede llegar a ser una tarea muy difícil dada la cantidad de grupos taxonómicos de las cuales se maneja información para el componente biótico.

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18

Adicionalmente la información se está actualizando constantemente cambiando los resultados para algunas especies lo que implicaría eventos de encuentro constante con los expertos.

Como una solución alternativa se elaboró una aplicación web que permite, de manera abierta, a la comunidad en general tener acceso a los resultados de los modelos, y a través de la cual se construye una comunidad de expertos que los evalúan, comentan y editan.

Esta aplicación web es de fácil navegación, rápido acceso a las principales funcionalidades y con

un diseño sencillo y agradable para los diferentes usuarios que la visiten y que a su vez esté

acorde a la imagen Institucional del Instituto Humboldt.

Los objetivos principales de la aplicación son los siguientes:

1. Generar un canal de comunicación entre expertos y el LBAB, para así verificar los datos

y modelos obtenidos por el LBAB y conseguir resultados robustos que acerquen a todos los

usuarios a una información más precisa sobre la distribución de especies en Colombia.

2. Compartir abiertamente los datos y resultados generados por el LBAB al público general,

concretamente los modelos de distribución de especies en Colombia, para que sean utilizados

como referencia en estudios e investigaciones.

3. Formar una comunidad de expertos para generar discusiones constructivas sobre los

modelos de distribución de especies presentados.

La primera versión de la aplicación BioModelos fue lanzada en el IV Congreso de Zoología en Cartagena de Indias en Diciembre de 2014. Esta aplicación se encuentra funcional en el vínculo: http://biomodelos.humboldt.org.co

2.4 Paso 4: Análisis de diversidad beta

El análisis de la diversidad beta busca clasificar a Colombia en unidades taxonómicas en función de su composición de especies e investigar las relaciones jerárquicas entre las unidades generadas a diferente detalle de análisis, por lo que elegimos un enfoque jerárquico

La unidad de análisis definida fue generada a partir de la rasterización y remuestreo del mapa resultado de la intersección entre la clasificación de humedales realizada por la Unidad Ejecutora del Proyecto Delimitación de Humedales del Instituto Humboldt y el mapa oficial de 311 subzonas hidrográficas del IDEAM (Figura 7).

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19

Figura 7. Diagrama metodológico para la generación de las Unidades Geográficas de Análisis (UGA).

En este análisis entraron como insumos los mapas de distribución de especies (MDE) generados en el paso anterior que tenían datos de presencia en el área de humedales definida por la Unidad Ejecutora del Proyecto Delimitación de Humedales Interiores de Colombia. En total se tomaron 1908 especies para construir los mapas de unidades taxonómicas para las clases Mammalia (168 especies), Aves (1522 especies), Amphibia (116 especies) y Reptilia (102 especies).

De este primer grupo de 1908 especies, se realizó una nueva selección de especies de humedales para realizar el mapa de unidades taxonómicas consenso, siguiendo las listas generadas para el Proyecto Delimitación de Humedales Interiores de Colombia que se enfocaban en especies biondicadoras de humedales (Morales-Betancourt, 2014), la lista de especies de páramos y humedales generada por el Sistema de Información de la Biodiversidad (Sistema de Información Sobre Biodiversidad de Colombia, 2014) y la determinación de asociaciones vegetales en humedales (Arias, 2015); así mismo, para esta nueva selección de especies se usaron otras listas generadas por fuera de este proyecto, como fueron la lista de aves acuáticas de Colombia (Ruiz, 2013) y el catálogo de recursos pesqueros continentales de Colombia (Lasso et al., 2011). La nueva lista identificó en total 5176 especies, sin embargo solo 1490 especies tenían asociado su MDE (Anexo 1).

El proceso para generar los mapas de unidades taxonómicas consta de 4 grandes pasos, siguiendo el marco metodológico propuesto por Kreft y Jeft (2010) (Figura 8).

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20

Figura 8. Diagrama metodológico para el análisis de la diversidad beta (Tomado de: Kreft y Jeft, 2010).

2.4.1 Matriz de distribución

Se construyó una matriz para cada clase taxonómica y para el mapa consenso mediante la asignación a cada Unidad Geográfica de Análisis presente en el área de humedales de Colombia la presencia o ausencia (1/0) de cada especie de acuerdo con su mapa de distribución.

2.4.2 Selección de la métrica de distancia

Para los mapas consenso en donde se trabajó con todas las especies, se eligió el índice pareado de diversidad beta, βsim, el cual se centra en las diferencias en la composición de las especies y que no es influenciado por la riqueza de especies (Lennon et al 2001). βsim asemeja el índice de asimétrica de Simpson (Simpson 1943), pero en una forma simétrica. Cualquier diferencia en la riqueza de especies influencia el índice volviéndolo asimétrico, por lo que elegir el valor de la más pequeña de ellas disminuye la influencia que el gradiente de riqueza tiene en la disimilitud. βsim tiene un límite máximo de 1 (cuando no existen especies en común entre dos unidades de análisis) y un límite inferior de 0 (cuando todas las especies tienen la misma identidad taxonómica en las dos unidades de análisis) (Lennon et al 2001).

βsim se define como:

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21

𝛽𝑠𝑖𝑚 =1

𝑛∑ (1 − 𝑆2𝑖)𝑛

𝑖=1 ; 𝑆2𝑖 =𝑎𝑖

𝑎𝑖+min (𝑏𝑖𝑐𝑖)

Donde: S2i es el índice simétrico de Simpson, ai son las especies compartidas entre b y c, bison las especies únicas en b y cison las especies únicas en c.

Para los mapas por grupos taxonómicos se trabajó el índice de Jaccard:

𝑗 = 100 × (𝑎

𝑎 + 𝑏 + 𝑐)

Donde a son las especies compartidas entre b y c; b son las especies únicas en b; y c son las especies únicas en c.

2.4.3 Cálculo de matriz de distancia.

Se calculó la distancia pareada entre todas las unidades geográficas de análisis con el índice βsim o Jaccard. La matriz resultante contiene el valor de similitud para todos los pares posibles de unidades de análisis. Hay una matriz para cada clase taxonómica y una para el consenso (todas las especies).

2.4.5 Agregaciones jerárquicas

Para los mapas desarrollados por grupos taxonómicos se usó la prueba de SIMPROF en el Programa PRIMER (Primer-E Ltd, 2013). Esta es una prueba de permutaciones para probar la hipótesis nula de que el conjunto dado de unidades de análisis no responden a una estructura multivariada.

Para las construcciones de agregaciones jerárquicas para el mapa de unidades taxonómicas consenso se exploraron 7 diferentes algoritmos (UPGMA (unweighted pair-group method average), WPGMA (weighted pair-group method using arithmetic averages), WPGMC (weighted pair-group method centroids), Ward’s method, SL (single) y CL (complete linkage). Se seleccionó UPGMA pues presentaba el valor más alto de coeficiente de correlación cofenética (Sokal y Rohlf, 1962; Sneath y Sokal, 1973) (Tabla 1).

Tabla 1. Método de aglomeración y valor de correlación cofenética.

Método aglomeración Correlación cofenética

Average (UPGMA) 0.667

Single (SL) 0.13

Complete (CL) 0.59

Ward 0.62

WPGMA 0.6

WPGMC 0.65

El coeficiente de correlación cofenética correlaciona la distancia pareada de las ramas de un dendrograma con las distancias en la matriz original. Por lo tanto, representa una medida directa de la cantidad de la información original que se conserva en el dendrograma (Sneath y Sokal, 1973).

Para el caso del mapa consenso, una vez seleccionado el mejor método de clúster, identificamos el número óptimo de grupos mediante la aplicación métrica de evaluación frente a número de

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grupos de clúster. La métrica de evaluación fue la altura de los nodos en el dendrograma contra la cantidad de grupos. Para ello se aplicó el algoritmo L- método propuesto por Salvador y Chan (2004) para localizar la posición de inflexión. El número de grupo en el punto de inflexión es el número máximo de grupos posibles, sin embargo, exploramos diferentes cortes para entender las relaciones jerárquicas entre las unidades de muestra a diferentes niveles de detalle y finalmente se realizó la escogencia de 90 cortes.

Una vez los grupos definidos, se asignó un grupo a cada unidad de análisis. Esta fue la base para

realizar el mapa consenso ya que las unidades taxonómicas se definieron por su similitud

composicional.

Este proceso fue automatizado en el lenguaje de programación R (versión 2.15.2, 2012) y los

códigos implementados se encuentran disponibles en: https://github.com/LBAB-

Humboldt/BIOGEOGRAPHICAL_REGIONALIZATION

3. Resultados

Los resultados del análisis de diversidad beta se muestran en los siguientes mapas que muestran

las regiones formadas para los grupos taxonómicos seleccionados: anfibios (Figura 9), aves

(Figura 10), mamíferos (Figura 11) y reptiles (Figura 12), así como para todas las especies

(consenso) (Figura 13), en las unidades geográficas de análisis (tipos de humedales en las

subzonas hidrográficas de Colombia).

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Figura 9. Mapa de unidades taxonómicas por especies de la clase Amphibia.

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Figura 10. Mapa de unidades taxonómicas por especies de la clase Aves.

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Figura 11. Mapa de unidades taxonómicas por especies de la clase Mammalia.

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.

Figura 12. Mapa de unidades taxonómicas por especies de la clase Reptilia.

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Figura 13. Mapa de unidades taxonómicas consenso (90 cortes).

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4. Referencias

Acevedo, P., A. Jiménez-Valverde, J. M. Lobo, and R. Real. 2012. Delimiting the geographical background in species distribution modelling. Journal of Biogeography 39:1383-1390.

Anderson, M. J., T. O. Crist, J. M. Chase, M. Vellend, B. D. Inouye, A. L. Freestone, N. J. Sanders, H. V. Cornell, L. S. Comita, and K. F. Davies. 2011. Navigating the multiple meanings of β diversity: a roadmap for the practicing ecologist. Ecology Letters 14:19-28.

Anderson, R. P. and A. Raza. 2010. The effect of the extent of the study region on GIS models of species geographic distributions and estimates of niche evolution: preliminary tests with montane rodents (genus Nephelomys) in Venezuela. Journal of Biogeography 37:1378-1393.

Arias García, J. C. 2014. Propuesta de clasificación de humedales basada en asociaciones vegetales (composición y estructura) de las macrounidades Dominio Orinoqués y Dominio Amazónico en cuanto al subsistema morfogénico de primer nivel (1000 k). Informe Final. Instituto Alexander von Humboldt. Bogotá. 32p.

Austin, M. P., A. O. Nicholls, and C. R. Margules. 1990. Measurement of the Realized Qualitative Niche: Environmental Niches of Five Eucalyptus Species. Ecological Monographs 60:161-177.

Bailey, R. G. 2009. Ecosystem geography: from ecoregions to sites. Springer. Barve, N., V. Barve, A. Jiménez-Valverde, A. Lira-Noriega, S. P. Maher, A. T. Peterson, J. Soberón,

and F. Villalobos. 2011. The crucial role of the accessible area in ecological niche modeling and species distribution modeling. Ecological Modelling 222:1810-1819.

Baselga A, Gomez-Rodriguez C, Lobo JM (2012) Historical legacies in the world amphibian diversity revealed by the turnover and nestedness components of beta diversity. PloS ONE 7: e32341.

Boakes, E. H., P. J. K. McGowan, R. A. Fuller, D. Chang-qing, N. E. Clark, K. O'Connor, and G. M. Mace. 2010. Distorted views of biodiversity: spatial and temporal bias in species occurrence data. PLoS biology 8:e1000385.

Brown, J. H. 1995. Macroecology. University of Chicago Press, Chicago. Buckley LB, Jetz W (2008) Linking global turnover of species and environments. PNAS 105:

17836–17841. CDB. Convenio de Diversidad Biológica. (1992). Documento de trabajo. Chapman, A. D. 2005a. Principles of Data Quality, version 1.0. Report for the Global Biodiversity

Information Facility, Copenhagen. Chao, A., R. L. Chazdon, R. K. Colwell, and T. J. Shen. 2004. A new statistical approach for

assessing similarity of species composition with incidence and abundance data. Ecology Letters 8:148-159.

Chust, G., J. Chave, R. Condit, S. Aguilar, S. Lao, and R. Pérez. 2009. Determinants and spatial modeling of tree β‐diversity in a tropical forest landscape in Panama. Journal of Vegetation Science 17:83-92.

Condit, R., N. Pitman, E. G. Leigh Jr, J. Chave, J. Terborgh, R. B. Foster, P. Núnez, S. Aguilar, R. Valencia, and G. Villa. 2002. Beta-diversity in tropical forest trees. Science 295:666-669.

Conover, W. J. 1998. Practical nonparametric statistics. Dent, D. H. and S. Joseph Wright. 2009. The future of tropical species in secondary forests: a

quantitative review. Biological Conservation 142:2833-2843. Diggle, P. J. and P. J. Diggle. 1983. Statistical analysis of spatial point patterns. Ebach MC, Gill AC, Kwan A, Ahyong ST, Murphy DJ, et al. (2013) Towards an Australian

Bioregionalization Atlas: A Provisional Area Taxonomy of Australia’s Biogeographical Regions. Zootaxa 3619: 315–342.

Elith, J., C. H. Graham, R. P. Anderson, M. Dudík, S. Ferrier, A. Guisan, R. J. Hijmans, F. Huettmann, J. R. Leathwick, A. Lehmann, J. Li, L. G. Lohmann, B. A. Loiselle, G. Manion, C. Moritz, M. Nakamura, Y. Nakazawa, J. McC. M. Overton, A. Townsend Peterson, S. J. Phillips, K. Richardson, R. Scachetti-Pereira, R. E. Schapire, J. Soberón, S. Williams, M. S. Wisz, and N.

Page 31: REGIONES BIÓTICAS DELIMITADAS UTILIZANDO COMO UNIDAD …

29

E. Zimmermann. 2006. Novel methods improve prediction of species’ distributions from occurrence data. Ecography 29:129-151.

Etter A. 1998. Mapa general de ecosistemas de Colombia (1: 1.500.000). Chaves ME, Arango N (eds.)

Hernández, J., y H. Sánchez (1992). Biomas de Colombia. En: Diversidad Biológica de Iberoamérica I. Halffter, G. (Ed). Acta Zoológica Mexicana (n.s.). 153-174 p.

IAvH. 2012. Proyecto: Actualización del Atlas de Páramos de Colombia. Convenio

Interadministrativo de Asociación 11-103, Instituto de investigación de recursos

biológicos Alexander von Humboldt y Ministerio de Ambiente y Desarrollo Sostenible.

Esc 1: 100.000. Bogotá D.C. Colombia.

IDEAM, IGAC, IAvH, Invemar, I. Sinchi e IIAP. 2007. Ecosistemas continentales, costeros y

marinos de Colombia. Instituto de Hidrología, Meteorología y Estudios Ambientales,

Instituto Geográfico Agustín Codazzi, Instituto de Investigación de Recursos Biológicos

Alexander von Humboldt, Instituto de Investigaciones Ambientales del Pacífico Jhon von

Neumann, Instituto de Investigaciones Marinas y Costeras José Benito Vives De Andréis

e Instituto Amazónico de Investigaciones Científicas Sinchi. Bogotá, D. C, 276 p. + 37

hojas cartográficas.

IGAC (s.f.).Limite municipal de los años 1964, 1973, 1985, 1993, 2003, 2011. Bogotá. Colombia.

IGAC .2012. Base cartográfica integrada a escala 1:100000. Bogotá. Colombia.

IGAC (Ajustado por IAVH, 2010). Corporaciones Autónomas Regionales y Autoridades

Ambientales de Grandes Centros Urbanos. Ajuste realizado con base a información

tomada del IGAC, Asocars, Corporaciones Autónomas Regionales y Autoridades

Ambientales de Grandes Centros Urbanos. Bogotá D.C. Colombia.

IGAC. Mapa de Regiones Naturales de Colombia escala 1:100 000.

Informe Nacional sobre el estado de la biodiversidad, Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt, PNUMA y Ministerio de Medio Ambiente. 3 vol, Bogotá, Colombia.

INSEB. 1998. Informe nacional sobre el estado de la biodiversidad. Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt, PNUMA y Ministerio de Medio Ambiente. 3 vol, Bogotá, Colombia.

Ferrier, S. 2002. Mapping Spatial Pattern in Biodiversity for Regional Conservation Planning: Where to from Here? Systematic Biology 51:331-363.

Fielding, A. H. and J. F. Bell. 1997. A review of methods for the assessment of prediction errors in conservation presence/absence models. Environmental Conservation 24:38-49.

Franklin, J. and J. A. Miller. 2009. Mapping species distributions : spatial inference and prediction. Cambridge University Press, Cambridge ; New York.

Garcia Márquez, J. R. G., C. F. Dormann, J. H. Sommer, M. Schmidt, A. Thiombiano, S. S. Da, C. Chatelain, S. Dressler, and W. Barthlott. 2012. A methodological framework to quantify the spatial quality of biological databases. Biodiversity and Ecology 4:25-39.

Gaston, K. J. and T. M. Blackburn. 2000. Pattern and process in macroecology. Blackwell Science, Oxford, OX ; Malden, MA, USA.

González-Orozco, C.E., Thornhill, A.H., Knerr, N., Laffan, S.W y J.M. Miller (2013) Biogeographical regions and phytogeography of the Eucalypts. Diversity and Distributions 20: 46–58.

González-Orozco, C.E., Ebach, M.C., Laffan, S., Thornhill, A.H., Knerr, N,J., Schmidt-Lebuhn, A,N., Cargill, C,C., Clements, M., Nagalingum, N,S., Mishler, B,D y J.T. Milller. 2014. Quantifying Phytogeographical Regions of Australia Using Geospatial Turnover in Species Composition. Plus One, 9(3): e92558. doi:10.1371/journal.pone.0092558.

Graham, C. H., S. Ferrier, F. Huettman, C. Moritz, and A. T. Peterson. 2004. New developments in museum-based informatics and applications in biodiversity analysis. Trends in Ecology & Evolution 19:497-503.

Page 32: REGIONES BIÓTICAS DELIMITADAS UTILIZANDO COMO UNIDAD …

30

Graham, C. H., N. Silva, and J. Velásquez-Tibatá. 2010. Evaluating the potential causes of range limits of birds of the Colombian Andes. Journal of Biogeography:no-no.

Hijmans, R. J., S. E. Cameron, J. L. Parra, P. G. Jones, and A. Jarvis. 2005. Very high resolution interpolated climate surfaces for global land areas. International Journal of Climatology 25:1965-1978.

Hirzel, A. H., B. Posse, P.-A. Oggier, Y. Crettenand, C. Glenz, and R. Arlettaz. 2004. Ecological requirements of reintroduced species and the implications for release policy: the case of the bearded vulture. Journal of Applied Ecology 41:1103-1116.

Iglewicz, B. H., D. . 1993. How to Detect and Handle Outliers. IUCN Standards and Petitions Subcommittee. 2011. Guidelines for using the IUCN Red List

Categories and Criteria. Version 9.0. IUCN Species Survival Comission, Gland, Switzerland and Cambridge, UK.

Iverson, L. R., A. M. Prasad, S. N. Matthews, and M. Peters. 2008. Estimating potential habitat for 134 eastern US tree species under six climate scenarios. Forest Ecology and Management 254:390-406.

Josse, C. 2003. Ecological systems of Latin America and the Caribbean: A working classification of terrestrial systems. NatureServe.

Jost, L. 2007. Partitioning diversity into independent alpha and beta components. Ecology 88:2427-2439.

Jurasinski, G., V. Retzer, and C. Beierkuhnlein. 2009. Inventory, differentiation, and proportional diversity: a consistent terminology for quantifying species diversity. Oecologia 159:15-26.

Kadmon, R., O. Farber, and A. Danin. 2004. Effect of roadside bias on the accuracy of predictive maps produced by bioclimatic models. Ecological Applications 14:401-413.

Kraft, N. J. B., L. S. Comita, J. M. Chase, N. J. Sanders, N. G. Swenson, T. O. Crist, J. C. Stegen, M. Vellend, B. Boyle, and M. J. Anderson. 2011. Disentangling the drivers of β diversity along latitudinal and elevational gradients. Science 333:1755-1758.

Kreft H, Jetz W (2010) A framework for delineating biogeographical regions based on species distributions. Journal of Biogeography 37: 2029–2053.

Kremen, C., A. Cameron, A. Moilanen, S. J. Phillips, C. D. Thomas, H. Beentje, J. Dransfield, B. L. Fisher, F. Glaw, T. C. Good, G. J. Harper, R. J. Hijmans, D. C. Lees, E. Louis, R. A. Nussbaum, C. J. Raxworthy, A. Razafimpahanana, G. E. Schatz, M. Vences, D. R. Vieites, P. C. Wright, and M. L. Zjhra. 2008. Aligning Conservation Priorities Across Taxa in Madagascar with High-Resolution Planning Tools. Science 320:222-226.

Lasso, C. A., E. Agudelo Córdoba, L. F. Jiménez-Segura, H. Ramírez-Gil, M. Morales-Betancourt,

R. E. Ajiaco-Martínez, F. de Paula Gutiérrez, J. S. Usma Oviedo, S. E. Muñoz Torres y A. I.

Sanabria Ochoa (Editores). 2011. I. Catálogo de los recursos pesqueros continentales de

Colombia. Serie Editorial Recursos Hidrobiológicos y Pesqueros Continentales de

Colombia. Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt

(IAvH). Bogotá, D. C., Colombia, 715 pp. Leibold, M. A. 1995. The niche concept revisited: mechanistic models and community context.

Ecology 76:1371-1382. Letcher, S. G. and R. L. Chazdon. 2009. Rapid recovery of biomass, species richness, and species

composition in a forest chronosequence in northeastern Costa Rica. Biotropica 41:608-617.

Linder HP, Klerk HM, Born J, Burgess ND, Fjeldsa J, et al. (2012) The partitioning of Africa: statistically defined biogeographical regions in sub-Saharan Africa. Journal of Biogeography 39: 1189–1205.

Liu, C., P. M. Berry, T. P. Dawson, and R. G. Pearson. 2005. Selecting thresholds of occurrence in the prediction of species distributions. Ecography 28:385-393.

Margules, C., S. Sarkar, and C. Margules. 2007. Systematic conservation planning. Cambridge University Press.

Page 33: REGIONES BIÓTICAS DELIMITADAS UTILIZANDO COMO UNIDAD …

31

Martínez-Meyer, E., A. T. Peterson, J. I. Servín, and L. F. Kiff. 2006. Ecological niche modelling and prioritizing areas for species reintroductions. Oryx 40:411-418.

Mateo, R. G., T. B. Croat, Á. M. Felicísimo, and J. Muñoz. 2010. Profile or group discriminative techniques? Generating reliable species distribution models using pseudo-absences and target-group absences from natural history collections. Diversity and Distributions 16:84-94.

McInerny, G. J. and R. S. Etienne. 2012. Ditch the niche – is the niche a useful concept in ecology or species distribution modelling? Journal of Biogeography 39:2096-2102.

McKnight, M. W., P. S. White, R. I. McDonald, J. F. Lamoreux, W. Sechrest, R. S. Ridgely, and S. N. Stuart. 2007. Putting beta-diversity on the map: broad-scale congruence and coincidence in the extremes. PLoS biology 5:e272.

Morales-Betancourt, D. 2014. Documento de los bioindicadores así como ecosistemas y hábitats de los humedales de interiores de Colombia. Cuarta Entrega. Programa biología de la conservación y uso de la biodiversidad. Instituto Alexander von Humboldt. Bogotá. 156p.

Nekola, J. C. and P. S. White. 2004. The distance decay of similarity in biogeography and ecology. Journal of Biogeography 26:867-878.

Ng, A. Y. and M. I. Jordan. 2001. On discriminative vs. generative classifiers: a comparison of logistic regression and naive Bayes. Advances in Neural Information Processing Systems 14:605-610.

Norden, N., R. L. Chazdon, A. Chao, Y. H. Jiang, and B. Vílchez Alvarado. 2009. Resilience of tropical rain forests: tree community reassembly in secondary forests. Ecology Letters 12:385-394.

Norden, N., S. G. Letcher, V. Boukili, N. G. Swenson, and R. Chazdon. 2012. Demographic drivers of successional changes in phylogenetic structure across life-history stages in plant communities. Ecology 93:70-82.

Olson, D. M., E. Dinerstein, E. D. Wikramanayake, N. D. Burgess, G. V. N. Powell, E. C. Underwood, J. A. D'amico, I. Itoua, H. E. Strand, and J. C. Morrison. 2001. Terrestrial ecoregions of the world: a new map of life on earth. BioScience 51:933-938.

Parques Nacionales Naturales de Colombia. 2010. Límite de áreas de Parques Nacionales

Naturales de Colombia. Escala. 1:100 000. Bogotá D.C. Colombia

Parques Nacionales Naturales. 2012. Registro único nacional de áreas protegidas. Bogotá D.C.

Colombia.

Peterson, A. T. 2006. Ecologic Niche Modeling and Spatial Patterns of Disease Transmission. Emerging Infectious Diseases 12:1822-1826.

Peterson, A. T., M. Papes, and D. A. Kluza. 2003. Predicting the potential invasive distributions of four alien plant species in North America. Weed Science 51:863-868.

Peterson, A. T. and D. A. Vieglais. 2001. Predicting Species Invasions Using Ecological Niche Modeling: New Approaches from Bioinformatics Attack a Pressing Problem. BioScience 51:363-371.

Phillips, S. J., R. P. Anderson, and R. E. Schapire. 2006. Maximum entropy modeling of species geographic distributions. Ecological Modelling 190:231-259.

Phillips, S. J., M. Dudík, J. Elith, C. H. Graham, A. Lehmann, J. Leathwick, and S. Ferrier. 2009. Sample selection bias and presence-only distribution models: implications for background and pseudo-absence data. Ecological Applications 19:181-197.

Primer-E Ltd, 2013, Primer 6, versión 6.1.16. Qian, H., R. E. Ricklefs, and P. S. White. 2004. Beta diversity of angiosperms in temperate floras

of eastern Asia and eastern North America. Ecology Letters 8:15-22. Rangel-CH, Orlando (2012) http://www.colombiadiversidadbiotica.com/ consultada 1 de Agosto

de 2012. Ricciuti, M. 1993. How to clean up your dirty data. Datamation 39:51-52. Richardson, D. M. and W. Thuiller. 2007. Home away from home — objective mapping of high-

risk source areas for plant introductions. Diversity and Distributions 13:299-312.

Page 34: REGIONES BIÓTICAS DELIMITADAS UTILIZANDO COMO UNIDAD …

32

Ricklefs, R. E. 1987. Community diversity: relative roles of local and regional processes. Science(Washington) 235:167-171.

Ruokolainen, K., A. Linna, and H. Tuomisto. 1997. Use of Melastomataceae and pteridophytes for revealing phytogeographical patterns in Amazonian rain forests. Journal of Tropical Ecology 13:243-256.

Ruiz-Guerra, C. 2013. Lista de las Aves Acuáticas de Colombia, 284 registros, En línea,

http://ipt.sibcolombia.net/valle/resource.do?=aves_acuaticas_colombia, publicado el

25/10/2013. http://ipt.sibcolombia.net/valle/resource.do?=aves_acuaticas_colombia. Sistema de Información Sobre Biodiversidad de Colombia (2014 - ). Lista de taxones asociados a

Páramos y Humedales de Colombia. 11569 registros, aportados por: Buitrago, L., Beltrán, N., Zamudio, J. (Procesadores, Proveedores de metadatos, Editores). En línea:http://ipt.sibcolombia.net/test/resource.do?r=lista_par-hum Versión 2 [actualizado el 28/10/2015].

Steinitz, O., J. Heller, A. Tsoar, D. Rotem, and R. Kadmon. 2005. Predicting regional patterns of similarity in species composition for conservation planning. Conservation Biology 19:1978-1988.

Thomas, C. D., A. Cameron, R. E. Green, M. Bakkenes, L. J. Beaumont, Y. C. Collingham, B. F. N. Erasmus, M. F. de Siqueira, A. Grainger, L. Hannah, L. Hughes, B. Huntley, A. S. van Jaarsveld, G. F. Midgley, L. Miles, M. A. Ortega-Huerta, A. Townsend Peterson, O. L. Phillips, and S. E. Williams. 2004. Extinction risk from climate change. Nature 427:145-148.

Tuomisto, H. 2010. A diversity of beta diversities: straightening up a concept gone awry. Part 1. Defining beta diversity as a function of alpha and gamma diversity. Ecography 33:2-22.

Tuomisto, H., K. Ruokolainen, and M. Yli-Halla. 2003. Dispersal, environment, and floristic variation of western Amazonian forests. Science 299:241-244.

Turner, W., S. Spector, N. Gardiner, M. Fladeland, E. Sterling, and M. Steininger. 2003. Remote sensing for biodiversity science and conservation. Trends in Ecology & Evolution 18:306-314.

Veech, J. A., K. S. Summerville, T. O. Crist, and J. C. Gering. 2002. The additive partitioning of species diversity: recent revival of an old idea. Oikos 99:3-9.

Velásquez-Tibatá, J., P. Salaman, and C. Graham. 2012. Effects of climate change on species distribution, community structure, and conservation of birds in protected areas in Colombia. Regional Environmental Change:1-14.

Whittaker, R. H. 1960. Vegetation of the Siskiyou mountains, Oregon and California. Ecological Monographs 30:279-338.

Wiersma, Y. F. and D. L. Urban. 2005. Beta diversity and nature reserve system design in the Yukon, Canada. Conservation Biology 19:1262-1272.

Williams, P., C. Margules, and D. Hilbert. 2002. Data requirements and data sources for biodiversity priority area selection. Journal of Biosciences 27:327-338.

Williams, P. H. 1996. Mapping variations in the strength and breadth of biogeographic transition zones using species turnover. Proceedings of the Royal Society of London. Series B: Biological Sciences 263:579-588.

Zipkin, E. F., E. H. C. Grant, and W. F. Fagan. 2012. Evaluating the predictive abilities of community occupancy models using AUC while accounting for imperfect detection. Ecological Applications 22:1962-1972.

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Anexo 1: Lista de especies seleccionadas para el mapa de unidades taxonómicas consenso.

Kingdom Phylum Clase Orden Familia Genero Epiteto especifico

Animalia Chordata Aves Charadriiformes Scolopacidae Actitis macularius

Animalia Chordata Aves Pelecaniformes Ardeidae Agamia agami

Animalia Chordata Aves Gruiformes Rallidae Amaurolimnas concolor

Animalia Chordata Aves Anseriformes Anatidae Amazonetta brasiliensis

Animalia Chordata Aves Anseriformes Anatidae Anas acuta

Animalia Chordata Aves Anseriformes Anatidae Anas americana

Animalia Chordata Aves Anseriformes Anatidae Anas flavirostris

Animalia Chordata Aves Anseriformes Anatidae Anas bahamensis

Animalia Chordata Aves Anseriformes Anatidae Anas clypeata

Animalia Chordata Aves Anseriformes Anatidae Anas cyanoptera

Animalia Chordata Aves Anseriformes Anatidae Anas discors

Animalia Chordata Aves Anseriformes Anatidae Anas georgica

Animalia Chordata Aves Anseriformes Anhimidae Anhima cornuta

Animalia Chordata Aves Suliformes Anhingidae Anhinga anhinga

Animalia Chordata Aves Gruiformes Rallidae Anurolimnas castaneiceps

Animalia Chordata Aves Gruiformes Rallidae Anurolimnas fasciatus

Animalia Chordata Aves Gruiformes Rallidae Anurolimnas viridis

Animalia Chordata Aves Gruiformes Rallidae Aramides axillaris

Animalia Chordata Aves Gruiformes Rallidae Aramides wolfi

Animalia Chordata Aves Gruiformes Aramidae Aramus guarauna

Animalia Chordata Aves Pelecaniformes Ardeidae Ardea alba

Animalia Chordata Aves Pelecaniformes Ardeidae Ardea cocoi

Animalia Chordata Aves Pelecaniformes Ardeidae Ardea herodias

Animalia Chordata Aves Charadriiformes Scolopacidae Arenaria interpres

Animalia Chordata Aves Passeriformes Tyrannidae Arundinicola leucocephala

Animalia Chordata Aves Passeriformes Hirundinidae Atticora fasciata

Animalia Chordata Aves Anseriformes Anatidae Aythya affinis

Animalia Chordata Aves Charadriiformes Scolopacidae Bartramia longicauda

Animalia Chordata Aves Pelecaniformes Ardeidae Botaurus pinnatus

Animalia Chordata Aves Pelecaniformes Ardeidae Bubulcus ibis

Animalia Chordata Aves Charadriiformes Burhinidae Burhinus bistriatus

Animalia Chordata Aves Accipitriformes Accipitridae Busarellus nigricollis

Animalia Chordata Aves Accipitriformes Accipitridae Buteogallus anthracinus

Animalia Chordata Aves Accipitriformes Accipitridae Buteogallus urubitinga

Animalia Chordata Aves Pelecaniformes Ardeidae Butorides striata

Animalia Chordata Aves Pelecaniformes Ardeidae Butorides virescens

Animalia Chordata Aves Anseriformes Anatidae Cairina moschata

Animalia Chordata Aves Charadriiformes Scolopacidae Calidris alba

Animalia Chordata Aves Charadriiformes Scolopacidae Calidris bairdii

Animalia Chordata Aves Charadriiformes Scolopacidae Calidris canutus

Animalia Chordata Aves Charadriiformes Scolopacidae Calidris fuscicollis

Animalia Chordata Aves Charadriiformes Scolopacidae Calidris himantopus

Animalia Chordata Aves Charadriiformes Scolopacidae Calidris mauri

Page 36: REGIONES BIÓTICAS DELIMITADAS UTILIZANDO COMO UNIDAD …

1

Kingdom Phylum Clase Orden Familia Genero Epiteto especifico

Animalia Chordata Aves Charadriiformes Scolopacidae Calidris melanotos

Animalia Chordata Aves Charadriiformes Scolopacidae Calidris minutilla

Animalia Chordata Aves Charadriiformes Scolopacidae Calidris pusilla

Animalia Chordata Aves Passeriformes Furnariidae Certhiaxis cinnamomeus

Animalia Chordata Aves Charadriiformes Charadriidae Charadrius collaris

Animalia Chordata Aves Charadriiformes Charadriidae Charadrius semipalmatus

Animalia Chordata Aves Charadriiformes Charadriidae Charadrius vociferus

Animalia Chordata Aves Charadriiformes Charadriidae Charadrius wilsonia

Animalia Chordata Aves Anseriformes Anhimidae Chauna chavaria

Animalia Chordata Aves Charadriiformes Laridae Chlidonias niger

Animalia Chordata Aves Coraciiformes Alcedinidae Chloroceryle aenea

Animalia Chordata Aves Coraciiformes Alcedinidae Chloroceryle amazona

Animalia Chordata Aves Coraciiformes Alcedinidae Chloroceryle americana

Animalia Chordata Aves Coraciiformes Alcedinidae Chloroceryle inda

Animalia Chordata Aves Passeriformes Icteridae Chrysomus icterocephalus

Animalia Chordata Aves Ciconiiformes Ciconiidae Ciconia maguari

Animalia Chordata Aves Passeriformes Cinclidae Cinclus leucocephalus

Animalia Chordata Aves Accipitriformes Accipitridae Circus buffoni

Animalia Chordata Aves Accipitriformes Accipitridae Circus cinereus

Animalia Chordata Aves Passeriformes Troglodytidae Cistothorus apolinari

Animalia Chordata Aves Passeriformes Troglodytidae Cistothorus platensis

Animalia Chordata Aves Pelecaniformes Ardeidae Cochlearius cochlearius

Animalia Chordata Aves Passeriformes Thraupidae Conirostrum bicolor

Animalia Chordata Aves Anseriformes Anatidae Dendrocygna autumnalis

Animalia Chordata Aves Anseriformes Anatidae Dendrocygna bicolor

Animalia Chordata Aves Anseriformes Anatidae Dendrocygna viduata

Animalia Chordata Aves Passeriformes Donacobiidae Donacobius atricapilla

Animalia Chordata Aves Pelecaniformes Ardeidae Egretta caerulea

Animalia Chordata Aves Pelecaniformes Ardeidae Egretta rufescens

Animalia Chordata Aves Pelecaniformes Ardeidae Egretta thula

Animalia Chordata Aves Pelecaniformes Ardeidae Egretta tricolor

Animalia Chordata Aves Pelecaniformes Threskiornithidae Eudocimus albus

Animalia Chordata Aves Pelecaniformes Threskiornithidae Eudocimus ruber

Animalia Chordata Aves Gruiformes Eurypygidae Eurypyga helias

Animalia Chordata Aves Passeriformes Tyrannidae Fluvicola nengeta

Animalia Chordata Aves Passeriformes Tyrannidae Fluvicola pica

Animalia Chordata Aves Suliformes Fregatidae Fregata magnificens

Animalia Chordata Aves Gruiformes Rallidae Fulica americana

Animalia Chordata Aves Gruiformes Rallidae Fulica ardesiaca

Animalia Chordata Aves Charadriiformes Scolopacidae Gallinago delicata

Animalia Chordata Aves Charadriiformes Scolopacidae Gallinago imperialis

Animalia Chordata Aves Charadriiformes Scolopacidae Gallinago jamesoni

Animalia Chordata Aves Charadriiformes Scolopacidae Gallinago nobilis

Animalia Chordata Aves Charadriiformes Scolopacidae Gallinago paraguaiae

Animalia Chordata Aves Charadriiformes Scolopacidae Gallinago undulata

Page 37: REGIONES BIÓTICAS DELIMITADAS UTILIZANDO COMO UNIDAD …

2

Kingdom Phylum Clase Orden Familia Genero Epiteto especifico

Animalia Chordata Aves Gruiformes Rallidae Gallinula melanops

Animalia Chordata Aves Charadriiformes Haematopodidae Haematopus palliatus

Animalia Chordata Aves Accipitriformes Accipitridae Helicolestes hamatus

Animalia Chordata Aves Gruiformes Heliornithidae Heliornis fulica

Animalia Chordata Aves Charadriiformes Recurvirostridae Himantopus mexicanus

Animalia Chordata Aves Passeriformes Tyrannidae Inezia subflava

Animalia Chordata Aves Pelecaniformes Ardeidae Ixobrychus exilis

Animalia Chordata Aves Pelecaniformes Ardeidae Ixobrychus involucris

Animalia Chordata Aves Ciconiiformes Ciconiidae Jabiru mycteria

Animalia Chordata Aves Charadriiformes Jacanidae Jacana jacana

Animalia Chordata Aves Charadriiformes Laridae Larosterna inca

Animalia Chordata Aves Charadriiformes Laridae Larus argentatus

Animalia Chordata Aves Gruiformes Rallidae Laterallus albigularis

Animalia Chordata Aves Gruiformes Rallidae Laterallus exilis

Animalia Chordata Aves Gruiformes Rallidae Laterallus melanophaius

Animalia Chordata Aves Charadriiformes Scolopacidae Limnodromus griseus

Animalia Chordata Aves Charadriiformes Scolopacidae Limosa fedoa

Animalia Chordata Aves Coraciiformes Alcedinidae Megaceryle alcyon

Animalia Chordata Aves Coraciiformes Alcedinidae Megaceryle torquata

Animalia Chordata Aves Anseriformes Anatidae Merganetta armata

Animalia Chordata Aves Pelecaniformes Threskiornithidae Mesembrinibis cayennensis

Animalia Chordata Aves Gruiformes Rallidae Micropygia schomburgkii

Animalia Chordata Aves Ciconiiformes Ciconiidae Mycteria americana

Animalia Chordata Aves Anseriformes Anatidae Neochen jubata

Animalia Chordata Aves Gruiformes Rallidae Neocrex erythrops

Animalia Chordata Aves Anseriformes Anatidae Netta erythrophthalma

Animalia Chordata Aves Anseriformes Anatidae Nomonyx dominicus

Animalia Chordata Aves Charadriiformes Scolopacidae Numenius phaeopus

Animalia Chordata Aves Pelecaniformes Ardeidae Nyctanassa violacea

Animalia Chordata Aves Pelecaniformes Ardeidae Nycticorax nycticorax

Animalia Chordata Aves Passeriformes Tyrannidae Ochthornis littoralis

Animalia Chordata Aves Cuculiformes Opisthocomidae Opisthocomus hoazin

Animalia Chordata Aves Anseriformes Anatidae Oxyura jamaicensis

Animalia Chordata Aves Accipitriformes Pandionidae Pandion haliaetus

Animalia Chordata Aves Gruiformes Rallidae Pardirallus maculatus

Animalia Chordata Aves Gruiformes Rallidae Pardirallus nigricans

Animalia Chordata Aves Passeriformes Emberizidae Paroaria gularis

Animalia Chordata Aves Pelecaniformes Pelecanidae Pelecanus occidentalis

Animalia Chordata Aves Charadriiformes Laridae Phaetusa simplex

Animalia Chordata Aves Suliformes Phalacrocoracidae Phalacrocorax brasilianus

Animalia Chordata Aves Charadriiformes Scolopacidae Phalaropus tricolor

Animalia Chordata Aves Pelecaniformes Threskiornithidae Phimosus infuscatus

Animalia Chordata Aves Phoenicopteriformes Phoenicopteridae Phoenicopterus ruber

Animalia Chordata Aves Pelecaniformes Ardeidae Pilherodius pileatus

Animalia Chordata Aves Passeriformes Tyrannidae Pitangus lictor

Page 38: REGIONES BIÓTICAS DELIMITADAS UTILIZANDO COMO UNIDAD …

3

Kingdom Phylum Clase Orden Familia Genero Epiteto especifico

Animalia Chordata Aves Pelecaniformes Threskiornithidae Platalea ajaja

Animalia Chordata Aves Pelecaniformes Threskiornithidae Plegadis falcinellus

Animalia Chordata Aves Charadriiformes Charadriidae Pluvialis dominica

Animalia Chordata Aves Charadriiformes Charadriidae Pluvialis squatarola

Animalia Chordata Aves Podicipediformes Podicipedidae Podiceps occipitalis

Animalia Chordata Aves Podicipediformes Podicipedidae Podilymbus podiceps

Animalia Chordata Aves Gruiformes Rallidae Porphyrio flavirostris

Animalia Chordata Aves Gruiformes Rallidae Porphyrio martinica

Animalia Chordata Aves Gruiformes Rallidae Porzana albicollis

Animalia Chordata Aves Gruiformes Rallidae Porzana carolina

Animalia Chordata Aves Gruiformes Rallidae Porzana flaviventer

Animalia Chordata Aves Passeriformes Tyrannidae Pseudocolopteryx acutipennis

Animalia Chordata Aves Passeriformes Icteridae Quiscalus mexicanus

Animalia Chordata Aves Gruiformes Rallidae Rallus limicola

Animalia Chordata Aves Gruiformes Rallidae Rallus semiplumbeus

Animalia Chordata Aves Accipitriformes Accipitridae Rostrhamus sociabilis

Animalia Chordata Aves Charadriiformes Laridae Rynchops niger

Animalia Chordata Aves Anseriformes Anatidae Sarkidiornis melanotos

Animalia Chordata Aves Passeriformes Tyrannidae Sayornis nigricans

Animalia Chordata Aves Passeriformes Tyrannidae Serpophaga cinerea

Animalia Chordata Aves Passeriformes Tyrannidae Serpophaga hypoleuca

Animalia Chordata Aves Charadriiformes Stercorariidae Stercorarius pomarinus

Animalia Chordata Aves Charadriiformes Laridae Sterna hirundo

Animalia Chordata Aves Suliformes Sulidae Sula leucogaster

Animalia Chordata Aves Suliformes Sulidae Sula nebouxii

Animalia Chordata Aves Suliformes Sulidae Sula variegata

Animalia Chordata Aves Pelecaniformes Ardeidae Syrigma sibilatrix

Animalia Chordata Aves Podicipediformes Podicipedidae Tachybaptus dominicus

Animalia Chordata Aves Passeriformes Hirundinidae Tachycineta albiventer

Animalia Chordata Aves Pelecaniformes Threskiornithidae Theristicus caudatus

Animalia Chordata Aves Pelecaniformes Ardeidae Tigrisoma fasciatum

Animalia Chordata Aves Pelecaniformes Ardeidae Tigrisoma lineatum

Animalia Chordata Aves Pelecaniformes Ardeidae Tigrisoma mexicanum

Animalia Chordata Aves Charadriiformes Scolopacidae Tringa flavipes

Animalia Chordata Aves Charadriiformes Scolopacidae Tringa melanoleuca

Animalia Chordata Aves Charadriiformes Scolopacidae Tringa solitaria

Animalia Chordata Aves Charadriiformes Charadriidae Vanellus chilensis

Animalia Chordata Aves Charadriiformes Charadriidae Vanellus resplendens

Animalia Chordata Aves Pelecaniformes Ardeidae Zebrilus undulatus

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Serrasalmidae Pygocentrus nattereri

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Curimatidae Potamorhina altamazonica

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Curimatidae Potamorhina latior

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Prochilodontidae Semaprochilodus insignis

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Serrasalmidae Mylossoma aureum

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Doradidae Oxydoras niger

Page 39: REGIONES BIÓTICAS DELIMITADAS UTILIZANDO COMO UNIDAD …

4

Kingdom Phylum Clase Orden Familia Genero Epiteto especifico

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Characidae Triportheus angulatus

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Prochilodontidae Prochilodus reticulatus

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Characidae Gymnocorymbus thayeri

Animalia Chordata Amphibia Anura Hylidae Hypsiboas crepitans

Animalia Chordata Amphibia Anura Hylidae Phyllomedusa hypochondrialis

Animalia Chordata Amphibia Anura Hylidae Scinax ruber

Animalia Chordata Amphibia Anura Leptodactylidae Leptodactylus pentadactylus

Animalia Chordata Amphibia Anura Leptodactylidae Leptodactylus bolivianus

Animalia Chordata Amphibia Anura Hylidae Hypsiboas pugnax

Animalia Chordata Amphibia Anura Hylidae Dendropsophus labialis

Animalia Chordata Amphibia Anura Dendrobatidae Colostethus inguinalis

Animalia Chordata Amphibia Anura Hylidae Dendropsophus subocularis

Animalia Chordata Amphibia Anura Bufonidae Rhaebo haematiticus

Animalia Chordata Amphibia Anura Hylidae Hyloscirtus palmeri

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Erythrinidae Hoplias curupira

Animalia Chordata Amphibia Anura Leptodactylidae Leptodactylus lineatus

Animalia Chordata Amphibia Anura Bufonidae Rhinella sternosignata

Animalia Chordata Amphibia Anura Hylidae Phyllomedusa venusta

Animalia Chordata Amphibia Anura Microhylidae Elachistocleis ovalis

Animalia Chordata Amphibia Anura Hylidae Hypsiboas punctatus

Animalia Chordata Amphibia Anura Hylidae Hyloscirtus bogotensis

Animalia Chordata Amphibia Anura Hylidae Osteocephalus taurinus

Animalia Chordata Amphibia Anura Leptodactylidae Leptodactylus fuscus

Animalia Chordata Amphibia Anura Dendrobatidae Hyloxalus abditaurantius

Animalia Chordata Amphibia Anura Dendrobatidae Hyloxalus subpunctatus

Animalia Chordata Amphibia Anura Leiuperidae Pseudopaludicola pusilla

Animalia Chordata Amphibia Anura Hylidae Smilisca sila

Animalia Chordata Amphibia Anura Hylidae Scinax wandae

Animalia Chordata Amphibia Anura Leiuperidae Edalorhina perezi

Animalia Chordata Amphibia Anura Hylidae Dendropsophus ebraccatus

Animalia Chordata Amphibia Anura Leptodactylidae Leptodactylus fragilis

Animalia Chordata Amphibia Anura Hylidae Dendropsophus bogerti

Animalia Chordata Amphibia Anura Hylidae Dendropsophus mathiassoni

Animalia Chordata Amphibia Anura Leiuperidae Pleurodema brachyops

Animalia Chordata Amphibia Anura Dendrobatidae Colostethus pratti

Animalia Chordata Aves Galliformes Odontophoridae Odontophorus erythrops

Animalia Chordata Aves Anseriformes Anatidae Anas platyrhynchos

Animalia Chordata Amphibia Anura Leptodactylidae Leptodactylus mystaceus

Animalia Chordata Amphibia Anura Aromobatidae Rheobates palmatus

Animalia Chordata Aves Apodiformes Trochilidae Chrysolampis mosquitus

Animalia Chordata Aves Gruiformes Rallidae Gallinula chloropus

Animalia Chordata Aves Charadriiformes Scolopacidae Gallinago gallinago

Animalia Chordata Aves Pelecaniformes Threskiornithidae Cercibis oxycerca

Animalia Chordata Aves Passeriformes Hirundinidae Stelgidopteryx ruficollis

Animalia Chordata Aves Passeriformes Hirundinidae Atticora melanoleuca

Page 40: REGIONES BIÓTICAS DELIMITADAS UTILIZANDO COMO UNIDAD …

5

Kingdom Phylum Clase Orden Familia Genero Epiteto especifico

Animalia Chordata Aves Passeriformes Icteridae Sturnella militaris

Animalia Chordata Aves Passeriformes Icteridae Gymnomystax mexicanus

Animalia Chordata Aves Passeriformes Parulidae Seiurus noveboracensis

Animalia Chordata Aves Passeriformes Parulidae Oporornis philadelphia

Animalia Chordata Aves Passeriformes Parulidae Geothlypis trichas

Animalia Chordata Aves Passeriformes Motacillidae Anthus bogotensis

Animalia Chordata Aves Passeriformes Motacillidae Anthus lutescens

Animalia Chordata Aves Passeriformes Icteridae Sturnella magna

Animalia Chordata Aves Passeriformes Parulidae Geothlypis aequinoctialis

Animalia Chordata Aves Passeriformes Thamnophilidae Cercomacra nigricans

Animalia Chordata Aves Passeriformes Thraupidae Thraupis cyanocephala

Animalia Chordata Aves Passeriformes Tyrannidae Cnemotriccus fuscatus

Animalia Chordata Aves Passeriformes Tyrannidae Knipolegus orenocensis

Animalia Chordata Aves Passeriformes Tyrannidae Muscisaxicola fluviatilis

Animalia Chordata Aves Passeriformes Tyrannidae Ochthoeca cinnamomeiventris

Animalia Chordata Aves Passeriformes Tyrannidae Tolmomyias sulphurescens

Animalia Chordata Reptilia Squamata Gymnophthalmidae Cercosaura argulus

Animalia Chordata Aves Passeriformes Thamnophilidae Taraba major

Animalia Chordata Reptilia Squamata Gymnophthalmidae Tretioscincus bifasciatus

Animalia Chordata Reptilia Squamata Colubridae Phimophis guianensis

Animalia Chordata Reptilia Squamata Elapidae Micrurus mipartitus

Animalia Chordata Reptilia Crocodylia Alligatoridae Melanosuchus niger

Animalia Chordata Reptilia Squamata Colubridae Mastigodryas pleei

Animalia Chordata Reptilia Squamata Scincidae Mabuya mabouya

Animalia Chordata Reptilia Testudines Kinosternidae Kinosternon scorpioides

Animalia Chordata Reptilia Crocodylia Crocodylidae Crocodylus acutus

Animalia Chordata Reptilia Squamata Teiidae Cnemidophorus lemniscatus

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Serrasalmidae Myloplus rubripinnis

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Loricariidae Pterygoplichthys undecimalis

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Loricariidae Hypostomus watwata

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Loricariidae Hemiancistrus wilsoni

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Loricariidae Chaetostoma fischeri

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Loricariidae Chaetostoma marginatum

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Loricariidae Chaetostoma milesi

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Loricariidae Chaetostoma niveum

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Loricariidae Chaetostoma patiae

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Loricariidae Chaetostoma thomsoni

Animalia Chordata Actinopterygii Perciformes Gobiidae Awaous banana

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Trichomycteridae Trichomycterus spilosoma

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Trichomycteridae Trichomycterus taenia

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Trichomycteridae Ochmacanthus alternus

Animalia Chordata Actinopterygii Perciformes Cichlidae Apistogramma ortmanni

Animalia Chordata Actinopterygii Perciformes Cichlidae Bujurquina mariae

Animalia Chordata Aves Piciformes Picidae Picumnus granadensis

Animalia Chordata Aves Strigiformes Caprimulgidae Caprimulgus maculicaudus

Page 41: REGIONES BIÓTICAS DELIMITADAS UTILIZANDO COMO UNIDAD …

6

Kingdom Phylum Clase Orden Familia Genero Epiteto especifico

Animalia Chordata Aves Strigiformes Caprimulgidae Chordeiles rupestris

Animalia Chordata Aves Strigiformes Caprimulgidae Nyctiprogne leucopyga

Animalia Chordata Aves Strigiformes Caprimulgidae Podager nacunda

Animalia Chordata Mammalia Rodentia Muridae Chibchanomys trichotis

Animalia Chordata Mammalia Rodentia Muridae Ichthyomys hydrobates

Animalia Chordata Mammalia Lagomorpha Leporidae Sylvilagus brasiliensis

Animalia Chordata Aves Passeriformes Emberizidae Sporophila minuta

Animalia Chordata Aves Passeriformes Emberizidae Sporophila nigricollis

Animalia Chordata Aves Strigiformes Tytonidae Tyto alba

Animalia Chordata Aves Passeriformes Tyrannidae Poecilotriccus sylvia

Animalia Chordata Aves Passeriformes Tyrannidae Elaenia flavogaster

Animalia Chordata Aves Passeriformes Tyrannidae Todirostrum cinereum

Animalia Chordata Aves Passeriformes Tyrannidae Phaeomyias murina

Animalia Chordata Reptilia Squamata Colubridae Leptophis ahaetulla

Animalia Chordata Aves Passeriformes Emberizidae Sporophila intermedia

Animalia Chordata Aves Passeriformes Tyrannidae Camptostoma obsoletum

Animalia Chordata Aves Passeriformes Emberizidae Volatinia jacarina

Animalia Chordata Aves Passeriformes Cardinalidae Cyanocompsa brissonii

Animalia Chordata Aves Apodiformes Trochilidae Amazilia tzacatl

Animalia Chordata Aves Passeriformes Furnariidae Synallaxis albescens

Animalia Chordata Aves Strigiformes Caprimulgidae Nyctidromus albicollis

Animalia Chordata Aves Passeriformes Tyrannidae Myiophobus fasciatus

Animalia Chordata Mammalia Didelphimorphia Didelphidae Philander opossum

Animalia Chordata Aves Passeriformes Emberizidae Sicalis flaveola

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Crenuchidae Characidium steindachneri

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Characidae Odontostilbe fugitiva

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Characidae Moenkhausia lepidura

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Characidae Astyanax bimaculatus

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Cynodontidae Hydrolycus scomberoides

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Pimelodidae Brachyplatystoma filamentosum

Animalia Chordata Actinopterygii Osteoglossiformes Arapaimidae Arapaima gigas

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Characidae Brycon cephalus

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Pimelodidae Pimelodus blochii

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Doradidae Pterodoras granulosus

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Pimelodidae Brachyplatystoma juruense

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Pimelodidae Calophysus macropterus

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Pimelodidae Platynematichthys notatus

Animalia Chordata Actinopterygii Gymnotiformes Hypopomidae Steatogenys elegans

Animalia Chordata Actinopterygii Gymnotiformes Sternopygidae Sternopygus macrurus

Animalia Chordata Actinopterygii Perciformes Cichlidae Aequidens tetramerus

Animalia Chordata Actinopterygii Perciformes Cichlidae Biotodoma cupido

Animalia Chordata Actinopterygii Perciformes Cichlidae Biotodoma wavrini

Animalia Chordata Actinopterygii Perciformes Cichlidae Crenicichla saxatilis

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Anostomidae Leporinus friderici

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Characidae Aphyocharax alburnus

Page 42: REGIONES BIÓTICAS DELIMITADAS UTILIZANDO COMO UNIDAD …

7

Kingdom Phylum Clase Orden Familia Genero Epiteto especifico

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Acestrorhynchidae Acestrorhynchus microlepis

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Characidae Bryconops caudomaculatus

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Characidae Charax gibbosus

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Characidae Moenkhausia dichroura

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Characidae Moenkhausia oligolepis

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Pimelodidae Brachyplatystoma vaillantii

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Pimelodidae Hemisorubim platyrhynchos

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Pimelodidae Leiarius marmoratus

Animalia Chordata Actinopterygii Perciformes Cichlidae Mesonauta insignis

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Characidae Ctenobrycon spilurus

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Pimelodidae Pseudoplatystoma tigrinum

Animalia Chordata Actinopterygii Gymnotiformes Sternopygidae Eigenmannia macrops

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Anostomidae Schizodon corti

Animalia Chordata Actinopterygii Perciformes Sciaenidae Plagioscion squamosissimus

Animalia Chordata Actinopterygii Clupeiformes Pristigasteridae Pellona castelnaeana

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Anostomidae Leporinus agassizii

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Loricariidae Dekeyseria scaphirhyncha

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Loricariidae Hypostomus sculpodon

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Doradidae Pterodoras rivasi

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Pimelodidae Platystomatichthys sturio

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Pimelodidae Platysilurus mucosus

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Pimelodidae Brachyplatystoma rousseauxii

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Pimelodidae Sorubim cuspicaudus

Animalia Chordata Actinopterygii Perciformes Cichlidae Caquetaia umbrifera

Animalia Chordata Actinopterygii Perciformes Cichlidae Dicrossus filamentosus

Animalia Chordata Actinopterygii Perciformes Cichlidae Satanoperca daemon

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Pimelodidae Pseudoplatystoma orinocoense

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Pimelodidae Pseudoplatystoma metaense

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Pimelodidae Pseudoplatystoma magdaleniatum

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Pseudopimelodidae Batrochoglanis transmontanus

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Pseudopimelodidae Pseudopimelodus schultzi

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Curimatidae Steindachnerina guentheri

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Characidae Cynopotamus atratoensis

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Characidae Cynopotamus magdalenae

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Pimelodidae Hypophthalmus edentatus

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Characidae Astyanax maximus

Animalia Chordata Actinopterygii Cyprinodontiformes Poeciliidae Poecilia sphenops

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Ariidae Ariopsis seemanni

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Hemiodontidae Hemiodus gracilis

Animalia Chordata Actinopterygii Synbranchiformes Synbranchidae Synbranchus marmoratus

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Characidae Brycon moorei

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Hemiodontidae Hemiodus unimaculatus

Animalia Chordata Actinopterygii Perciformes Cichlidae Cichla temensis

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Characidae Brycon falcatus

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Parodontidae Parodon apolinari

Page 43: REGIONES BIÓTICAS DELIMITADAS UTILIZANDO COMO UNIDAD …

8

Kingdom Phylum Clase Orden Familia Genero Epiteto especifico

Animalia Chordata Actinopterygii Gymnotiformes Sternopygidae Sternopygus aequilabiatus

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Cynodontidae Hydrolycus armatus

Animalia Chordata Actinopterygii Perciformes Cichlidae Cichla orinocensis

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Doradidae Hemidoras morrisi

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Doradidae Hemidoras stenopeltis

Animalia Chordata Actinopterygii Gymnotiformes Apteronotidae Adontosternarchus clarkae

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Curimatidae Cyphocharax oenas

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Characidae Salminus affinis

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Characidae Salminus hilarii

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Characidae Moenkhausia cotinho

Animalia Chordata Elasmobranchii Myliobatiformes Potamotrygonidae Potamotrygon magdalenae

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Prochilodontidae Prochilodus mariae

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Anostomidae Leporinus striatus

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Characidae Bryconamericus cismontanus

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Heptapteridae Rhamdia quelen

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Auchenipteridae Trachelyopterus galeatus

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Auchenipteridae Ageneiosus inermis

Animalia Chordata Actinopterygii Perciformes Gobiidae Sicydium salvini

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Characidae Brycon henni

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Serrasalmidae Colossoma macropomum

Animalia Chordata Actinopterygii Perciformes Gobiidae Sicydium hildebrandi

Animalia Chordata Actinopterygii Perciformes Cichlidae Crenicichla wallacii

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Serrasalmidae Pygocentrus cariba

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Characidae Iguanodectes spilurus

Animalia Chordata Actinopterygii Perciformes Cichlidae Crenicichla lenticulata

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Pseudopimelodidae Microglanis poecilus

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Curimatidae Cyphocharax festivus

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Serrasalmidae Piaractus brachypomus

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Prochilodontidae Prochilodus nigricans

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Erythrinidae Hoplias macrophthalmus

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Gasteropelecidae Thoracocharax stellatus

Animalia Chordata Actinopterygii Gymnotiformes Sternopygidae Eigenmannia virescens

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Serrasalmidae Serrasalmus rhombeus

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Trichomycteridae Eremophilus mutisii

Animalia Chordata Actinopterygii Perciformes Cichlidae Astronotus ocellatus

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Characidae Moenkhausia collettii

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Characidae Moenkhausia intermedia

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Chilodontidae Chilodus punctatus

Animalia Chordata Actinopterygii Gymnotiformes Gymnotidae Gymnotus carapo

Animalia Chordata Actinopterygii Perciformes Cichlidae Aequidens metae

Animalia Chordata Actinopterygii Perciformes Cichlidae Cichlasoma atromaculatum

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Loricariidae Hypostomus hondae

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Pimelodidae Pimelodus punctatus

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Erythrinidae Hoplias teres

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Loricariidae Farlowella vittata

Page 44: REGIONES BIÓTICAS DELIMITADAS UTILIZANDO COMO UNIDAD …

9

Kingdom Phylum Clase Orden Familia Genero Epiteto especifico

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Pseudopimelodidae Pseudopimelodus bufonius

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Characidae Astyanax fasciatus

Animalia Chordata Actinopterygii Perciformes Cichlidae Satanoperca jurupari

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Characidae Astyanax integer

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Parodontidae Parodon buckleyi

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Characidae Microschemobrycon casiquiare

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Characidae Creagrutus bolivari

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Curimatidae Curimata mivartii

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Characidae Hyphessobrycon minimus

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Prochilodontidae Ichthyoelephas longirostris

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Characidae Triportheus magdalenae

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Anostomidae Leporinus fasciatus

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Loricariidae Hypostomus pyrineusi

Animalia Chordata Actinopterygii Perciformes Cichlidae Caquetaia kraussii

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Characidae Brycon sinuensis

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Characidae Odontostilbe pulchra

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Characidae Jupiaba polylepis

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Characidae Jupiaba zonata

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Characidae Hemigrammus newboldi

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Loricariidae Hypostomus plecostomoides

Animalia Chordata Actinopterygii Perciformes Cichlidae Cichlasoma ornatum

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Characidae Bryconamericus alpha

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Characidae Moenkhausia copei

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Characidae Hemigrammus analis

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Characidae Hemigrammus micropterus

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Pimelodidae Zungaro zungaro

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Pimelodidae Pimelodus grosskopfii

Animalia Chordata Actinopterygii Osteoglossiformes Osteoglossidae Osteoglossum bicirrhosum

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Erythrinidae Hoplias microlepis

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Callichthyidae Hoplosternum littorale

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Curimatidae Curimata vittata

Animalia Chordata Actinopterygii Perciformes Cichlidae Cichla monoculus

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Pimelodidae Pinirampus pirinampu

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Serrasalmidae Mylossoma duriventre

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Curimatidae Cyphocharax magdalenae

Animalia Chordata Aves Passeriformes Furnariidae Certhiaxis mustelinus

Animalia Chordata Mammalia Chiroptera Phyllostomidae Desmodus rotundus

Animalia Chordata Mammalia Didelphimorphia Didelphidae Chironectes minimus

Animalia Chordata Mammalia Didelphimorphia Didelphidae Micoureus demerarae

Animalia Chordata Mammalia Carnivora Mustelidae Lontra longicaudis

Animalia Chordata Amphibia Anura Centrolenidae Hyalinobatrachium colymbiphyllum

Animalia Chordata Amphibia Anura Hylidae Hyloscirtus larinopygion

Animalia Chordata Amphibia Anura Dendrobatidae Colostethus fraterdanieli

Animalia Chordata Amphibia Anura Hylidae Scarthyla vigilans

Animalia Chordata Amphibia Anura Bufonidae Rhaebo glaberrimus

Page 45: REGIONES BIÓTICAS DELIMITADAS UTILIZANDO COMO UNIDAD …

10

Kingdom Phylum Clase Orden Familia Genero Epiteto especifico

Animalia Chordata Amphibia Anura Hylidae Dendropsophus triangulum

Animalia Chordata Amphibia Anura Centrolenidae Cochranella euknemos

Animalia Chordata Amphibia Anura Centrolenidae Hyalinobatrachium fleischmanni

Animalia Chordata Amphibia Anura Hylidae Scinax rostratus

Animalia Chordata Amphibia Anura Leptodactylidae Leptodactylus wagneri

Animalia Chordata Mammalia Primates Cebidae Alouatta seniculus

Animalia Chordata Mammalia Primates Cebidae Aotus lemurinus

Animalia Chordata Mammalia Rodentia Hydrochaeridae Hydrochaeris hydrochaeris

Animalia Chordata Aves Apodiformes Trochilidae Chlorostilbon melanorhynchus

Animalia Chordata Mammalia Chiroptera Phyllostomidae Lonchophylla thomasi

Animalia Chordata Mammalia Chiroptera Phyllostomidae Anoura caudifera

Animalia Chordata Mammalia Chiroptera Phyllostomidae Glossophaga soricina

Animalia Chordata Aves Passeriformes Troglodytidae Troglodytes aedon

Animalia Chordata Mammalia Perissodactyla Tapiridae Tapirus terrestris

Animalia Chordata Mammalia Cetacea Delphinidae Sotalia fluviatilis

Animalia Chordata Mammalia Cingulata Dasypodidae Dasypus novemcinctus

Animalia Chordata Mammalia Cingulata Dasypodidae Cabassous centralis

Animalia Chordata Mammalia Didelphimorphia Didelphidae Didelphis marsupialis

Animalia Chordata Mammalia Pilosa Megalonychidae Choloepus hoffmanni

Animalia Chordata Mammalia Pilosa Myrmecophagidae Tamandua tetradactyla

Animalia Chordata Mammalia Sirenia Trichechidae Trichechus inunguis

Animalia Chordata Mammalia Chiroptera Emballonuridae Peropteryx macrotis

Animalia Chordata Mammalia Chiroptera Emballonuridae Rhynchonycteris naso

Animalia Chordata Mammalia Chiroptera Emballonuridae Saccopteryx bilineata

Animalia Chordata Mammalia Chiroptera Emballonuridae Saccopteryx leptura

Animalia Chordata Amphibia Anura Ranidae Lithobates palmipes

Animalia Chordata Amphibia Anura Hylidae Hypsiboas boans

Animalia Chordata Amphibia Anura Bufonidae Rhinella margaritifera

Animalia Chordata Amphibia Anura Ranidae Lithobates catesbeianus

Animalia Chordata Amphibia Anura Hylidae Dendropsophus minutus

Animalia Chordata Amphibia Anura Ranidae Lithobates vaillanti

Animalia Chordata Amphibia Anura Hylidae Hypsiboas lanciformis

Animalia Chordata Amphibia Anura Leptodactylidae Leptodactylus hylaedactylus

Animalia Chordata Amphibia Anura Leiuperidae Engystomops pustulosus

Animalia Chordata Amphibia Anura Leiuperidae Physalaemus fischeri

Animalia Chordata Amphibia Anura Hylidae Smilisca phaeota

Animalia Chordata Amphibia Anura Dendrobatidae Dendrobates truncatus

Animalia Chordata Amphibia Anura Hylidae Hyloscirtus colymba

Animalia Chordata Amphibia Anura Hylidae Dendropsophus microcephalus

Animalia Chordata Amphibia Anura Ceratophryidae Ceratophrys calcarata

Animalia Chordata Amphibia Anura Centrolenidae Nymphargus griffithsi

Animalia Chordata Amphibia Anura Hylidae Dendropsophus columbianus

Animalia Chordata Amphibia Anura Centrolenidae Centrolene buckleyi

Animalia Chordata Amphibia Anura Bufonidae Rhinella marina

Animalia Chordata Aves Strigiformes Nyctibiidae Nyctibius griseus

Page 46: REGIONES BIÓTICAS DELIMITADAS UTILIZANDO COMO UNIDAD …

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Kingdom Phylum Clase Orden Familia Genero Epiteto especifico

Animalia Chordata Amphibia Anura Leptodactylidae Leptodactylus colombiensis

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Erythrinidae Hoplias malabaricus

Animalia Chordata Mammalia Cetacea Iniidae Inia geoffrensis

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Pimelodidae Sorubim lima

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Pimelodidae Sorubimichthys planiceps

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Loricariidae Limatulichthys griseus

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Doradidae Megalodoras uranoscopus

Animalia Chordata Actinopterygii Perciformes Cichlidae Crenicichla anthurus

Animalia Chordata Aves Cuculiformes Cuculidae Coccyzus americanus

Animalia Chordata Reptilia Squamata Corytophanidae Basiliscus galeritus

Animalia Chordata Reptilia Squamata Viperidae Bothrops asper

Animalia Chordata Reptilia Crocodylia Alligatoridae Caiman crocodilus

Animalia Chordata Reptilia Squamata Colubridae Clelia clelia

Animalia Chordata Reptilia Squamata Colubridae Leptodeira septentrionalis

Animalia Chordata Reptilia Squamata Elapidae Micrurus surinamensis

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Anostomidae Schizodon scotorhabdotus

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Curimatidae Pseudocurimata lineopunctata

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Prochilodontidae Semaprochilodus kneri

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Characidae Creagrutus amoenus

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Characidae Brycon argenteus

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Erythrinidae Hoplerythrinus unitaeniatus

Animalia Chordata Reptilia Testudines Podocnemididae Podocnemis expansa

Animalia Chordata Reptilia Squamata Colubridae Sibon nebulatus

Animalia Chordata Reptilia Squamata Colubridae Pseudoeryx plicatilis

Animalia Chordata Reptilia Testudines Podocnemididae Podocnemis unifilis

Animalia Chordata Reptilia Testudines Podocnemididae Podocnemis vogli

Animalia Chordata Reptilia Testudines Podocnemididae Podocnemis erythrocephala

Animalia Chordata Reptilia Testudines Chelidae Phrynops geoffroanus

Animalia Chordata Reptilia Testudines Chelidae Mesoclemmys gibba

Animalia Chordata Reptilia Crocodylia Alligatoridae Paleosuchus palpebrosus

Animalia Chordata Reptilia Crocodylia Alligatoridae Paleosuchus trigonatus

Animalia Chordata Reptilia Squamata Colubridae Mastigodryas boddaerti

Animalia Chordata Reptilia Squamata Colubridae Leptodeira annulata

Animalia Chordata Reptilia Squamata Colubridae Lampropeltis triangulum

Animalia Chordata Reptilia Squamata Iguanidae Iguana iguana

Animalia Chordata Reptilia Squamata Colubridae Helicops angulatus

Animalia Chordata Reptilia Squamata Sphaerodactylidae Gonatodes albogularis

Animalia Chordata Reptilia Squamata Colubridae Erythrolamprus bizonus

Animalia Chordata Reptilia Crocodylia Crocodylidae Crocodylus intermedius

Animalia Chordata Reptilia Squamata Colubridae Chironius carinatus

Animalia Chordata Reptilia Testudines Chelidae Chelus fimbriatus

Animalia Chordata Reptilia Squamata Corytophanidae Basiliscus basiliscus

Animalia Chordata Reptilia Squamata Teiidae Ameiva ameiva

Animalia Chordata Reptilia Squamata Colubridae Dendrophidion bivittatus

Animalia Chordata Aves Passeriformes Parulidae Phaeothlypis fulvicauda

Page 47: REGIONES BIÓTICAS DELIMITADAS UTILIZANDO COMO UNIDAD …

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Kingdom Phylum Clase Orden Familia Genero Epiteto especifico

Animalia Chordata Aves Cuculiformes Cuculidae Piaya minuta

Animalia Chordata Aves Gruiformes Rallidae Aramides cajanea

Animalia Chordata Aves Cuculiformes Cuculidae Crotophaga major

Animalia Chordata Aves Passeriformes Cotingidae Pachyramphus rufus

Animalia Chordata Aves Passeriformes Furnariidae Cranioleuca vulpina

Animalia Chordata Reptilia Squamata Colubridae Spilotes pullatus

Animalia Chordata Reptilia Squamata Colubridae Oxybelis aeneus

Animalia Chordata Reptilia Squamata Colubridae Drymarchon corais

Animalia Chordata Actinopterygii Perciformes Gobiidae Sicydium plumieri

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Characidae Brycon melanopterus

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Characidae Tetragonopterus argenteus

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Cynodontidae Rhaphiodon vulpinus

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Cynodontidae Cynodon gibbus

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Pimelodidae Brachyplatystoma tigrinum

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Characidae Brycon amazonicus

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Characidae Brycon oligolepis

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Characidae Brycon meeki

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Characidae Bryconops giacopinii

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Crenuchidae Characidium chupa

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Curimatidae Steindachnerina dobula

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Prochilodontidae Semaprochilodus laticeps

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Heptapteridae Rhamdia laukidi

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Heptapteridae Rhamdia muelleri

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Anostomidae Leporinus muyscorum

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Auchenipteridae Ageneiosus pardalis

Animalia Chordata Actinopterygii Characiformes Prochilodontidae Prochilodus magdalenae

Animalia Chordata Actinopterygii Clupeiformes Pristigasteridae Pellona flavipinnis

Animalia Chordata Actinopterygii Siluriformes Loricariidae Hypostomus plecostomus

Animalia Chordata Aves Passeriformes Parulidae Dendroica petechia

Animalia Chordata Mammalia Sirenia Trichechidae Trichechus manatus

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Abarema jupunba

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Euphorbiaceae Acalypha cuneata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Melastomataceae Acanthella sprucei

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Asterales Asteraceae Acmella alba

Plantae Tracheophyta Polypodiopsida Polypodiales Pteridaceae Adiantum latifolium

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Bromeliaceae Aechmea contracta

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Bromeliaceae Aechmea mertensii

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Euphorbiaceae Alchornea latifolia

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Euphorbiaceae Alchornea triplinervia

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Amaioua corymbosa

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Sapindales Anacardiaceae Anacardium occidentale

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Magnoliales Annonaceae Anaxagorea phaeocarpa

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Andira inermis

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Poaceae Andropogon bicornis

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Poaceae Andropogon leucostachyus

Page 48: REGIONES BIÓTICAS DELIMITADAS UTILIZANDO COMO UNIDAD …

13

Kingdom Phylum Clase Orden Familia Genero Epiteto especifico

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Magnoliales Annonaceae Annona hypoglauca

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Magnoliales Annonaceae Annona montana

Plantae Tracheophyta Liliopsida Alismatales Araceae Anthurium kunthii

Plantae Tracheophyta Liliopsida Alismatales Araceae Anthurium obtusum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Euphorbiaceae Aparisthmium cordatum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malvales Malvaceae Apeiba tibourbou

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Apuleia leiocarpa

Plantae Tracheophyta Polypodiopsida Polypodiales Aspleniaceae Asplenium serratum

Plantae Tracheophyta Liliopsida Arecales Arecaceae Astrocaryum aculeatum

Plantae Tracheophyta Liliopsida Arecales Arecaceae Astrocaryum chambira

Plantae Tracheophyta Liliopsida Arecales Arecaceae Astrocaryum murumuru

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Lamiales Acanthaceae Avicennia germinans

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Poaceae Axonopus aureus

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Poaceae Axonopus compressus

Plantae Tracheophyta Polypodiopsida Salviniales Salviniaceae Azolla filiculoides

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Asterales Asteraceae Baccharis latifolia

Plantae Tracheophyta Liliopsida Arecales Arecaceae Bactris acanthocarpa

Plantae Tracheophyta Liliopsida Arecales Arecaceae Bactris fissifrons

Plantae Tracheophyta Liliopsida Arecales Arecaceae Bactris gasipaes

Plantae Tracheophyta Liliopsida Arecales Arecaceae Bactris hirta

Plantae Tracheophyta Liliopsida Arecales Arecaceae Bactris setulosa

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Poaceae Guadua angustifolia

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Bauhinia guianensis

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Cyperaceae Becquerelia cymosa

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Melastomataceae Bellucia pentamera

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Magnoliales Annonaceae Bocageopsis canescens

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Magnoliales Annonaceae Bocageopsis multiflora

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Spermacoce latifolia

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Rosales Moraceae Brosimum guianense

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Rosales Moraceae Brosimum utile

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Brownea ariza

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Brownea grandiceps

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Combretaceae Buchenavia tetraphylla

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Malpighiaceae Byrsonima crassifolia

Plantae Tracheophyta Liliopsida Zingiberales Marantaceae Calathea altissima

Plantae Tracheophyta Liliopsida Zingiberales Marantaceae Calathea lutea

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Calliandra trinervia

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Calopogonium mucunoides

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Campsiandra angustifolia

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Solanales Solanaceae Capsicum annuum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Solanales Solanaceae Capsicum chinense

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Sapindales Meliaceae Carapa guianensis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Caryocaraceae Caryocar glabrum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Caryocaraceae Caryocar microcarpum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Salicaceae Casearia sylvestris

Page 49: REGIONES BIÓTICAS DELIMITADAS UTILIZANDO COMO UNIDAD …

14

Kingdom Phylum Clase Orden Familia Genero Epiteto especifico

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Chamaecrista nictitans

Plantae Tracheophyta Liliopsida Arecales Arecaceae Chamaedorea pinnatifrons

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Chrysobalanaceae Chrysobalanus icaco

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Ericales Sapotaceae Chrysophyllum amazonicum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Cinchonopsis amazonica

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Vitales Vitaceae Cissus erosa

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Clathrotropis macrocarpa

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Melastomataceae Clidemia hirta

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Melastomataceae Clidemia pustulata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Melastomataceae Clidemia rubra

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Clitoria arborea

Plantae Tracheophyta Liliopsida Commelinales Commelinaceae Commelina diffusa

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Euphorbiaceae Conceveiba guianensis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Euphorbiaceae Conceveiba martiana

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Euphorbiaceae Conceveiba terminalis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Asterales Asteraceae Erigeron bonariensis

Plantae Tracheophyta Liliopsida Zingiberales Costaceae Costus arabicus

Plantae Tracheophyta Liliopsida Zingiberales Costaceae Costus scaber

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Chrysobalanaceae Couepia guianensis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Chrysobalanaceae Couepia paraensis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Capparales Capparaceae Crateva tapia

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Euphorbiaceae Croton cuneatus

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Euphorbiaceae Croton trinitatis

Plantae Tracheophyta Polypodiopsida Cyatheales Cyatheaceae Cyathea pungens

Plantae Tracheophyta Liliopsida Pandanales Cyclanthaceae Cyclanthus bipartitus

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Cyperaceae Cyperus aggregatus

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Cyperaceae Cyperus laxus

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Cyperaceae Cyperus luzulae

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Cyperaceae Cyperus odoratus

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Cyperaceae Cyperus sphacelatus

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Dalbergia brownei

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Dalbergia monetaria

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Deguelia scandens

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Desmodium adscendens

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Desmodium barbatum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Melastomataceae Desmoscelis villosa

Plantae Tracheophyta Liliopsida Commelinales Commelinaceae Dichorisandra hexandra

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Magnoliales Annonaceae Diclinanona tessmannii

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Phyllanthaceae Didymocistus chrysadenius

Plantae Tracheophyta Liliopsida Alismatales Araceae Dieffenbachia parvifolia

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Cymbosema roseum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Ericales Ebenaceae Diospyros poeppigiana

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Cyperaceae Diplasia karatifolia

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Diplotropis martiusii

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Magnoliales Annonaceae Duguetia flagellaris

Page 50: REGIONES BIÓTICAS DELIMITADAS UTILIZANDO COMO UNIDAD …

15

Kingdom Phylum Clase Orden Familia Genero Epiteto especifico

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Magnoliales Annonaceae Duguetia latifolia

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Magnoliales Annonaceae Duguetia quitarensis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Magnoliales Annonaceae Duguetia spixiana

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Magnoliales Annonaceae Duguetia trunciflora

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Duroia saccifera

Plantae Tracheophyta Liliopsida Commelinales Pontederiaceae Eichhornia crassipes

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Ericales Sapotaceae Elaeoluma glabrescens

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Asterales Asteraceae Emilia sonchifolia

Plantae Tracheophyta Liliopsida Asparagales Orchidaceae Epidendrum ibaguense

Plantae Tracheophyta Liliopsida Asparagales Orchidaceae Epidendrum nocturnum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Caryophyllales Cactaceae Epiphyllum phyllanthus

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Ericales Lecythidaceae Eschweilera albiflora

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Ericales Lecythidaceae Eschweilera andina

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Ericales Lecythidaceae Eschweilera coriacea

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Ericales Lecythidaceae Eschweilera decolorans

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Ericales Lecythidaceae Eschweilera gigantea

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Ericales Lecythidaceae Eschweilera parvifolia

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Ericales Lecythidaceae Eschweilera tessmannii

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Myrtaceae Eugenia florida

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Myrtaceae Eugenia lambertiana

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Myrtaceae Eugenia patrisii

Plantae Tracheophyta Liliopsida Arecales Arecaceae Euterpe precatoria

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Faramea anisocalyx

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Faramea occidentalis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Faramea tamberlikiana

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Ferdinandusa loretensis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Ferdinandusa uaupensis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Rosales Moraceae Ficus americana

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Cyperaceae Fimbristylis littoralis

Plantae Tracheophyta Liliopsida Commelinales Commelinaceae Floscopa robusta

Plantae Tracheophyta Liliopsida Arecales Arecaceae Geonoma macrostachys

Plantae Tracheophyta Liliopsida Arecales Arecaceae Geonoma deversa

Plantae Tracheophyta Liliopsida Arecales Arecaceae Geonoma maxima

Plantae Tracheophyta Liliopsida Arecales Arecaceae Geonoma piscicauda

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Asterales Asteraceae Gongylolepis martiana

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Sapindales Meliaceae Guarea glabra

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Sapindales Meliaceae Guarea guidonia

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Magnoliales Annonaceae Guatteria elata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Magnoliales Annonaceae Guatteria guianensis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Magnoliales Annonaceae Guatteria schomburgkiana

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Ericales Lecythidaceae Gustavia augusta

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Ericales Lecythidaceae Gustavia longifolia

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Ericales Lecythidaceae Gustavia poeppigiana

Plantae Tracheophyta Liliopsida Zingiberales Heliconiaceae Heliconia acuminata

Plantae Tracheophyta Liliopsida Zingiberales Heliconiaceae Heliconia hirsuta

Page 51: REGIONES BIÓTICAS DELIMITADAS UTILIZANDO COMO UNIDAD …

16

Kingdom Phylum Clase Orden Familia Genero Epiteto especifico

Plantae Tracheophyta Liliopsida Zingiberales Heliconiaceae Heliconia juruana

Plantae Tracheophyta Liliopsida Zingiberales Heliconiaceae Heliconia marginata

Plantae Tracheophyta Liliopsida Zingiberales Heliconiaceae Heliconia stricta

Plantae Tracheophyta Liliopsida Alismatales Araceae Heteropsis oblongifolia

Plantae Tracheophyta Liliopsida Alismatales Araceae Heteropsis spruceana

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Heterostemon mimosoides

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Euphorbiaceae Hevea guianensis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Euphorbiaceae Hevea nitida

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Chrysobalanaceae Hirtella bullata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Chrysobalanaceae Hirtella elongata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Chrysobalanaceae Hirtella racemosa

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Chrysobalanaceae Hirtella schultesii

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Euphorbiaceae Hura crepitans

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Poaceae Hymenachne amplexicaulis

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Cyperaceae Hypolytrum longifolium

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Inga auristellae

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Inga cayennensis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Inga gracilior

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Inga nobilis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Inga punctata

Plantae Tracheophyta Liliopsida Arecales Arecaceae Iriartea deltoidea

Plantae Tracheophyta Liliopsida Arecales Arecaceae Iriartella setigera

Plantae Tracheophyta Liliopsida Zingiberales Marantaceae Ischnosiphon arouma

Plantae Tracheophyta Liliopsida Zingiberales Marantaceae Ischnosiphon leucophaeus

Plantae Tracheophyta Liliopsida Zingiberales Marantaceae Ischnosiphon puberulus

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Isertia rosea

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Ixora acuminatissima

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Lamiales Acanthaceae Justicia comata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Lacistemataceae Lacistema aggregatum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Lacistemataceae Lacistema nena

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Ladenbergia amazonensis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Lamiales Verbenaceae Lantana camara

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Melastomataceae Leandra glandulifera

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Melastomataceae Leandra secunda

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Chrysobalanaceae Licania apetala

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Chrysobalanaceae Licania caudata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Chrysobalanaceae Licania heteromorpha

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Chrysobalanaceae Licania hypoleuca

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Chrysobalanaceae Licania micrantha

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Chrysobalanaceae Licania mollis

Plantae Tracheophyta Polypodiopsida Polypodiales Lindsaeaceae Lindsaea stricta

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Onagraceae Ludwigia leptocarpa

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Onagraceae Ludwigia octovalvis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Euphorbiaceae Mabea nitida

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Euphorbiaceae Mabea occidentalis

Page 52: REGIONES BIÓTICAS DELIMITADAS UTILIZANDO COMO UNIDAD …

17

Kingdom Phylum Clase Orden Familia Genero Epiteto especifico

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Euphorbiaceae Mabea speciosa

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Melastomataceae Macairea thyrsiflora

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Macrolobium acaciifolium

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Macrolobium angustifolium

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Macrolobium multijugum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Ericales Sapotaceae Manilkara bidentata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Ericales Sapotaceae Manilkara inundata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Euphorbiaceae Maprounea guianensis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Margaritopsis astrellantha

Plantae Tracheophyta Liliopsida Arecales Arecaceae Mauritia flexuosa

Plantae Tracheophyta Liliopsida Arecales Arecaceae Mauritiella armata

Plantae Tracheophyta Liliopsida Asparagales Orchidaceae Christensonella uncata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Melastomataceae Meriania urceolata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Melastomataceae Miconia aplostachya

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Melastomataceae Miconia eugenioides

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Melastomataceae Miconia goniostigma

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Melastomataceae Miconia minutiflora

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Melastomataceae Miconia punctata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Melastomataceae Miconia rubiginosa

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Melastomataceae Miconia serrulata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Melastomataceae Miconia ternatifolia

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Melastomataceae Miconia tomentosa

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Melastomataceae Miconia trinervia

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Euphorbiaceae Micrandra spruceana

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Ericales Sapotaceae Micropholis egensis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Ericales Sapotaceae Micropholis guyanensis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Ericales Sapotaceae Micropholis venulosa

Plantae Tracheophyta Liliopsida Zingiberales Marantaceae Monotagma laxum

Plantae Tracheophyta Liliopsida Zingiberales Marantaceae Monotagma plurispicatum

Plantae Tracheophyta Liliopsida Alismatales Araceae Montrichardia arborescens

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Melastomataceae Mouriri cauliflora

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Melastomataceae Mouriri myrtifolia

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Melastomataceae Mouriri myrtilloides

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Myrtaceae Myrcia aliena

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Myrtaceae Myrcia bracteata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Myrtaceae Myrcia splendens

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Myrtaceae Myrcia guianensis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Myrtaceae Myrcia paivae

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Myrtaceae Myrciaria dubia

Plantae Tracheophyta Liliopsida Arecales Arecaceae Oenocarpus bataua

Plantae Tracheophyta Liliopsida Arecales Arecaceae Oenocarpus mapora

Plantae Tracheophyta Liliopsida Arecales Arecaceae Oenocarpus minor

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Poaceae Olyra latifolia

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Ormosia coccinea

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Melastomataceae Ossaea sessilifolia

Page 53: REGIONES BIÓTICAS DELIMITADAS UTILIZANDO COMO UNIDAD …

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Kingdom Phylum Clase Orden Familia Genero Epiteto especifico

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Magnoliales Annonaceae Oxandra mediocris

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Magnoliales Annonaceae Oxandra polyantha

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malvales Malvaceae Pachira aquatica

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Pagamea coriacea

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Pagamea guianensis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Palicourea corymbifera

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Palicourea grandiflora

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Palicourea guianensis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Palicourea lasiantha

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Palicourea nigricans

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Palicourea fastigiata

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Poaceae Brachiaria mutica

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Parkia igneiflora

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Parkia multijuga

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Parkia nitida

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Parkia panurensis

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Poaceae Pennisetum clandestinum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Perama galioides

Plantae Tracheophyta Liliopsida Alismatales Araceae Philodendron fragrantissimum

Plantae Tracheophyta Liliopsida Alismatales Araceae Philodendron linnaei

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Piperales Piperaceae Piper marginatum

Plantae Tracheophyta Liliopsida Alismatales Araceae Pistia stratiotes

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Picrodendraceae Podocalyx loranthoides

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Asterales Asteraceae Pollalesta discolor

Plantae Tracheophyta Liliopsida Commelinales Pontederiaceae Pontederia rotundifolia

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Ericales Sapotaceae Pouteria caimito

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Ericales Sapotaceae Pouteria cuspidata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Ericales Sapotaceae Pouteria guianensis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Ericales Sapotaceae Pouteria torta

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Apocynaceae Prestonia quinquangularis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Myrtaceae Psidium acutangulum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Psychotria cuspidata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Psychotria deflexa

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Psychotria ernestii

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Psychotria herzogii

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Psychotria hoffmannseggiana

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Psychotria huampamiensis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Psychotria lupulina

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Psychotria florentina

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Psychotria platypoda

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Psychotria poeppigiana

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Notopleura siggersiana

Plantae Tracheophyta Polypodiopsida Polypodiales Dennstaedtiaceae Pteridium aquilinum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Pterocarpus amazonum

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Rapateaceae Rapatea paludosa

Page 54: REGIONES BIÓTICAS DELIMITADAS UTILIZANDO COMO UNIDAD …

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Kingdom Phylum Clase Orden Familia Genero Epiteto especifico

Plantae Tracheophyta Liliopsida Zingiberales Zingiberaceae Renealmia alpinia

Plantae Tracheophyta Liliopsida Zingiberales Zingiberaceae Renealmia krukovii

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Retiniphyllum concolor

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Caryophyllales Cactaceae Rhipsalis baccifera

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Cyperaceae Rhynchospora barbata

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Cyperaceae Rhynchospora nervosa

Plantae Tracheophyta Polypodiopsida Polypodiales Pteridaceae Acrostichum aureum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Albizia carbonaria

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Albizia saman

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Euphorbiaceae Alchornea grandis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Euphorbiaceae Alchornea glandulosa

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Euphorbiaceae Alchornea discolor

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Euphorbiaceae Alchorneopsis floribunda

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Melastomataceae Acisanthera quadrata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Spermacoce capitata

Plantae Tracheophyta Liliopsida Dioscoreales Burmanniaceae Burmannia capitata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Euphorbiaceae Caperonia castaneifolia

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Euphorbiaceae Caperonia palustris

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malvales Cochlospermaceae Cochlospermum vitifolium

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Crotalaria sagittalis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Dussia tessmannii

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Poaceae Echinochloa colona

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Cyperaceae Eleocharis filiculmis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Ericales Lecythidaceae Eschweilera laevicarpa

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Myrtaceae Eugenia biflora

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Apocynaceae Funastrum clausum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Asterales Asteraceae Heterocondylus vitalbae

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Chrysobalanaceae Hirtella paniculata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Indigofera lespedezioides

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Solanales Convolvulaceae Ipomoea batatas

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Cyperaceae Kyllinga brevifolia

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Onagraceae Ludwigia hyssopifolia

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Euphorbiaceae Manihot brachyloba

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Mimosa pudica

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Mimosa somnians

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Melastomataceae Mouriri acutiflora

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Palicourea croceoides

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Poaceae Paspalum conjugatum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Phyllanthaceae Phyllanthus stipulatus

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Cyperaceae Rhynchospora rugosa

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Rudgea cornifolia

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Lamiales Acanthaceae Blechum pyramidatum

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Cyperaceae Scleria secans

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Poaceae Setaria parviflora

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malvales Malvaceae Sida linifolia

Page 55: REGIONES BIÓTICAS DELIMITADAS UTILIZANDO COMO UNIDAD …

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Kingdom Phylum Clase Orden Familia Genero Epiteto especifico

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Simira rubescens

Plantae Tracheophyta Liliopsida Liliales Smilacaceae Smilax spinosa

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Swartzia leptopetala

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Bromeliaceae Tillandsia elongata

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Xyridaceae Xyris savanensis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Zornia reticulata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Zygia cataractae

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Poaceae Acroceras zizanioides

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Lamiales Lamiaceae Aegiphila integrifolia

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Amaioua guianensis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Phyllanthaceae Amanoa guianensis

Plantae Tracheophyta Liliopsida Alismatales Araceae Anthurium clavigerum

Plantae Tracheophyta Liliopsida Alismatales Araceae Anthurium gracile

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Lamiales Acanthaceae Aphelandra pulcherrima

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Poaceae Arundinella berteroniana

Plantae Tracheophyta Polypodiopsida Polypodiales Aspleniaceae Asplenium formosum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Bathysa bracteosa

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Bauhinia tarapotensis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Melastomataceae Bellucia grossularioides

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Cyperaceae Bulbostylis junciformis

Plantae Tracheophyta Liliopsida Zingiberales Marantaceae Calathea crotalifera

Plantae Tracheophyta Liliopsida Zingiberales Marantaceae Calathea latifolia

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Myrtaceae Calyptranthes speciosa

Plantae Tracheophyta Polypodiopsida Polypodiales Polypodiaceae Campyloneurum repens

Plantae Tracheophyta Liliopsida Pandanales Cyclanthaceae Carludovica palmata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Centrosema angustifolium

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Solanales Solanaceae Cestrum nocturnum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Ericales Sapotaceae Chrysophyllum argenteum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Clitoria javitensis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Coccocypselum lanceolatum

Plantae Tracheophyta Liliopsida Zingiberales Costaceae Costus lasius

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Sapindales Sapindaceae Cupania americana

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Cyperaceae Cyperus haspan

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Apiales Apiaceae Daucus montanus

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Declieuxia fruticosa

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Apiales Araliaceae Dendropanax arboreus

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Desmodium distortum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Desmodium scorpiurus

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Desmodium tortuosum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Dialium guianense

Plantae Tracheophyta Liliopsida Zingiberales Costaceae Dimerocostus strobilaceus

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Diodella teres

Plantae Tracheophyta Liliopsida Dioscoreales Dioscoreaceae Dioscorea polygonoides

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Duroia hirsuta

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Duroia micrantha

Page 56: REGIONES BIÓTICAS DELIMITADAS UTILIZANDO COMO UNIDAD …

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Kingdom Phylum Clase Orden Familia Genero Epiteto especifico

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Ericales Sapotaceae Ecclinusa lanceolata

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Cyperaceae Eleocharis montana

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Entada polystachya

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Eriosema crinitum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Erythrina poeppigiana

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Faramea capillipes

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Faramea multiflora

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Genipa spruceana

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Magnoliales Annonaceae Guatteria cargadero

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malvales Malvaceae Guazuma ulmifolia

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Hamelia patens

Plantae Tracheophyta Liliopsida Zingiberales Heliconiaceae Heliconia chartacea

Plantae Tracheophyta Liliopsida Zingiberales Heliconiaceae Heliconia rostrata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Celastrales Celastraceae Hippocratea volubilis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Chrysobalanaceae Hirtella americana

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Chrysobalanaceae Hirtella triandra

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Solanales Hydroleaceae Hydrolea spinosa

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Lamiales Lamiaceae Hyptis lantanifolia

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Inga cylindrica

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Salicaceae Laetia procera

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Poaceae Lasiacis procerrima

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Melastomataceae Leandra chaetodon

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Chrysobalanaceae Licania octandra

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Euphorbiaceae Mabea piriri

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Machaerium capote

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Machaerium inundatum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Apocynaceae Mandevilla hirsuta

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Melastomataceae Miconia albicans

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Melastomataceae Miconia chrysophylla

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Melastomataceae Miconia dolichorrhyncha

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Melastomataceae Miconia elata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Melastomataceae Miconia ibaguensis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Melastomataceae Miconia nervosa

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Melastomataceae Miconia prasina

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Asterales Asteraceae Mikania psilostachya

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Myrtaceae Myrcia dichasialis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Myrtaceae Myrciaria floribunda

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Laurales Lauraceae Nectandra hihua

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Asterales Menyanthaceae Nymphoides indica

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Laurales Lauraceae Ocotea floribunda

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Palicourea triphylla

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Parkia pendula

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Poaceae Paspalum virgatum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Passifloraceae Passiflora foetida

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Caryophyllales Phytolaccaceae Phytolacca rivinoides

Page 57: REGIONES BIÓTICAS DELIMITADAS UTILIZANDO COMO UNIDAD …

22

Kingdom Phylum Clase Orden Familia Genero Epiteto especifico

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Piperales Piperaceae Piper aduncum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Piperales Piperaceae Piper aequale

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Asterales Asteraceae Piptocarpha poeppigiana

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Platymiscium pinnatum

Plantae Tracheophyta Liliopsida Asparagales Orchidaceae Cleistes rosea

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Ericales Sapotaceae Pouteria bangii

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Psychotria brachiata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Psychotria panamensis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Psychotria racemosa

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Melastomataceae Pterogastra divaricata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Ciliosemina pedunculata

Plantae Tracheophyta Liliopsida Zingiberales Zingiberaceae Renealmia breviscapa

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Rhynchosia phaseoloides

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Cyperaceae Rhynchospora globosa

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Phyllanthaceae Richeria grandis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Magnoliales Annonaceae Annona edulis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Magnoliales Annonaceae Annona mucosa

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Ronabea latifolia

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Sabicea villosa

Plantae Tracheophyta Polypodiopsida Polypodiales Saccolomataceae Saccoloma inaequale

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Euphorbiaceae Sapium laurifolium

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Ochnaceae Sauvagesia erecta

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Apiales Araliaceae Schefflera morototoni

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Lamiales Plantaginaceae Scoparia dulcis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Senna macrophylla

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Senna silvestris

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malvales Malvaceae Sida acuta

Plantae Tracheophyta Liliopsida Arecales Arecaceae Socratea exorrhiza

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Solanales Solanaceae Solanum grandiflorum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Sapindales Anacardiaceae Spondias mombin

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Lamiales Verbenaceae Stachytarpheta cayennensis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Swartzia cardiosperma

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Swartzia myrtifolia

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Swartzia trianae

Plantae Tracheophyta Liliopsida Arecales Arecaceae Syagrus orinocensis

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Eriocaulaceae Syngonanthus caulescens

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Melastomataceae Tibouchina gracilis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Melastomataceae Tococa guianensis

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Eriocaulaceae Tonina fluviatilis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Sapindales Meliaceae Trichilia pallida

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malvales Malvaceae Urena lobata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Rosales Urticaceae Urera baccifera

Plantae Tracheophyta Liliopsida Alismatales Araceae Urospatha sagittifolia

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Lamiales Lentibulariaceae Utricularia pusilla

Plantae Tracheophyta Liliopsida Pandanales Velloziaceae Vellozia tubiflora

Page 58: REGIONES BIÓTICAS DELIMITADAS UTILIZANDO COMO UNIDAD …

23

Kingdom Phylum Clase Orden Familia Genero Epiteto especifico

Plantae Tracheophyta Liliopsida Commelinales Haemodoraceae Xiphidium caeruleum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Magnoliales Annonaceae Xylopia aromatica

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Euphorbiaceae Acalypha diversifolia

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Caryophyllales Amaranthaceae Achyranthes aspera

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Melastomataceae Aciotis acuminifolia

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Asterales Asteraceae Acmella brachyglossa

Plantae Tracheophyta Polypodiopsida Polypodiales Pteridaceae Adiantum pulverulentum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Aeschynomene americana

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Aeschynomene sensitiva

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Poaceae Agrostis breviculmis

Plantae Tracheophyta Liliopsida Arecales Arecaceae Aiphanes horrida

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Euphorbiaceae Alchornea castaneifolia

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Alibertia bertierifolia

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Alibertia edulis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Alibertia latifolia

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Apocynaceae Allamanda cathartica

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Sapindales Sapindaceae Allophylus racemosus

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Caryophyllales Amaranthaceae Amaranthus dubius

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Caryophyllales Amaranthaceae Amaranthus viridis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Magnoliales Annonaceae Anaxagorea dolichocarpa

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Magnoliales Annonaceae Annona muricata

Plantae Tracheophyta Liliopsida Alismatales Araceae Anthurium atropurpureum

Plantae Tracheophyta Liliopsida Alismatales Araceae Anthurium bonplandii

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Arachnothryx reflexa

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Poaceae Aristida capillacea

Plantae Tracheophyta Liliopsida Arecales Arecaceae Attalea butyracea

Plantae Tracheophyta Liliopsida Arecales Arecaceae Attalea maripa

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Asterales Asteraceae Ayapana amygdalina

Plantae Tracheophyta Liliopsida Arecales Arecaceae Bactris major

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Bathysa bathysoides

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Bauhinia aculeata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Lamiales Bignoniaceae Cydista aequinoctialis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Rosales Moraceae Brosimum alicastrum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Sapindales Burseraceae Bursera simaruba

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Malpighiaceae Byrsonima spicata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Caesalpinia pulcherrima

Plantae Tracheophyta Liliopsida Zingiberales Marantaceae Calathea inocephala

Plantae Tracheophyta Liliopsida Zingiberales Marantaceae Calathea marantifolia

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Calopogonium caeruleum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Capirona decorticans

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Euphorbiaceae Caryodendron orinocense

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Salicaceae Casearia aculeata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Sapindales Meliaceae Cedrela odorata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malvales Malvaceae Ceiba pentandra

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Chamaecrista desvauxii

Page 59: REGIONES BIÓTICAS DELIMITADAS UTILIZANDO COMO UNIDAD …

24

Kingdom Phylum Clase Orden Familia Genero Epiteto especifico

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Euphorbiaceae Euphorbia hirta

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Euphorbiaceae Euphorbia hypericifolia

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Caryophyllales Amaranthaceae Chamissoa altissima

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Chiococca alba

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Chomelia spinosa

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Asterales Asteraceae Chromolaena odorata

Plantae Tracheophyta Liliopsida Asparagales Iridaceae Cipura paludosa

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Vitales Vitaceae Cissus verticillata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Melastomataceae Clidemia capitellata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Melastomataceae Clidemia dentata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Melastomataceae Clidemia sericea

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Clitoria falcata

Plantae Tracheophyta Liliopsida Commelinales Commelinaceae Commelina erecta

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malvales Malvaceae Corchorus hirtus

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Boraginales Boraginaceae Cordia panamensis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Coussarea paniculata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Asterales Asteraceae Critonia morifolia

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Crotalaria incana

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Crotalaria pallida

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Crotalaria pilosa

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Crotalaria retusa

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Euphorbiaceae Croton hirtus

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Euphorbiaceae Croton lechleri

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Caryophyllales Amaranthaceae Cyathula prostrata

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Poaceae Cynodon dactylon

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Cyperaceae Cyperus articulatus

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Cyperaceae Cyperus miliifolius

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Cyperaceae Cyperus surinamensis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Desmodium axillare

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Desmodium cajanifolium

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Desmodium incanum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Desmodium intortum

Plantae Tracheophyta Liliopsida Arecales Arecaceae Desmoncus orthacanthos

Plantae Tracheophyta Liliopsida Arecales Arecaceae Desmoncus polyacanthos

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Poaceae Digitaria horizontalis

Plantae Tracheophyta Liliopsida Asparagales Orchidaceae Dimerandra emarginata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Lamiales Bignoniaceae Macfadyena uncata

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Poaceae Echinochloa polystachya

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Asterales Asteraceae Eclipta prostrata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Elaeagia karstenii

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Elaeagia mariae

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Cyperaceae Eleocharis elegans

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Cyperaceae Eleocharis geniculata

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Cyperaceae Eleocharis interstincta

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Asterales Asteraceae Elephantopus mollis

Page 60: REGIONES BIÓTICAS DELIMITADAS UTILIZANDO COMO UNIDAD …

25

Kingdom Phylum Clase Orden Familia Genero Epiteto especifico

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Poaceae Eleusine indica

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Poaceae Eragrostis acutiflora

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Apiales Apiaceae Eryngium foetidum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Myrtaceae Eugenia stipitata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Euphorbiaceae Euphorbia heterophylla

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Euphorbiaceae Euphorbia hyssopifolia

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Faramea torquata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Ferdinandusa chlorantha

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Rosales Moraceae Ficus obtusifolia

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Cyperaceae Fimbristylis dichotoma

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Cyperaceae Fimbristylis quinquangularis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Asterales Asteraceae Fleischmannia microstemon

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Cyperaceae Fuirena umbellata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Galium hypocarpium

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Genipa americana

Plantae Tracheophyta Liliopsida Arecales Arecaceae Geonoma orbignyana

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Geophila macropoda

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Geophila repens

Plantae Tracheophyta Gnetopsida Gnetales Gnetaceae Gnetum nodiflorum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Gonzalagunia cornifolia

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Rosales Rhamnaceae Gouania lupuloides

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Rosales Rhamnaceae Gouania polygama

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Guettarda aromatica

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Guettarda elliptica

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Bromeliaceae Guzmania monostachia

Plantae Tracheophyta Liliopsida Zingiberales Heliconiaceae Heliconia episcopalis

Plantae Tracheophyta Liliopsida Zingiberales Heliconiaceae Heliconia latispatha

Plantae Tracheophyta Liliopsida Zingiberales Heliconiaceae Heliconia platystachys

Plantae Tracheophyta Liliopsida Zingiberales Heliconiaceae Heliconia psittacorum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Boraginales Boraginaceae Heliotropium indicum

Plantae Tracheophyta Liliopsida Commelinales Pontederiaceae Heteranthera reniformis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Hippotis brevipes

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Hoffmannia latifolia

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Violaceae Hybanthus attenuatus

Plantae Tracheophyta Liliopsida Arecales Arecaceae Hyospathe elegans

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Poaceae Hyparrhenia rufa

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Lamiales Lamiaceae Hyptis capitata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Lamiales Lamiaceae Hyptis mutabilis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Lamiales Lamiaceae Hyptis suaveolens

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Indigofera suffruticosa

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Inga laurina

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Inga vera

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Solanales Convolvulaceae Ipomoea nil

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Poaceae Isachne polygonoides

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Euphorbiaceae Jatropha gossypiifolia

Page 61: REGIONES BIÓTICAS DELIMITADAS UTILIZANDO COMO UNIDAD …

26

Kingdom Phylum Clase Orden Familia Genero Epiteto especifico

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Cyperaceae Kyllinga odorata

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Cyperaceae Kyllinga pumila

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Ladenbergia lambertiana

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Lamiales Verbenaceae Lantana trifolia

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Poaceae Lasiacis divaricata

Plantae Tracheophyta Liliopsida Alismatales Alismataceae Limnocharis flava

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Onagraceae Ludwigia decurrens

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Onagraceae Ludwigia erecta

Plantae Tracheophyta Polypodiopsida Schizaeales Lygodiaceae Lygodium venustum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Machaerium floribundum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Rosales Moraceae Maclura tinctoria

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malvales Malvaceae Malvaviscus arboreus

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Manettia reclinata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Phyllanthaceae Margaritaria nobilis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Margaritopsis boliviana

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Apocynaceae Marsdenia macrophylla

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Lamiales Lamiaceae Marsypianthes chamaedrys

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Lamiales Plantaginaceae Mecardonia procumbens

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Poaceae Panicum maximum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malvales Malvaceae Melochia pyramidata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malvales Malvaceae Melochia spicata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Cucurbitales Cucurbitaceae Melothria pendula

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Solanales Convolvulaceae Merremia umbellata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Melastomataceae Miconia aeruginosa

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Melastomataceae Miconia rufescens

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Melastomataceae Miconia stenostachya

Plantae Tracheophyta Polypodiopsida Polypodiales Polypodiaceae Microgramma reptans

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Asterales Asteraceae Mikania cordifolia

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Mimosa pigra

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Mitracarpus hirtus

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Cucurbitales Cucurbitaceae Momordica charantia

Plantae Tracheophyta Liliopsida Alismatales Araceae Monstera adansonii

Plantae Tracheophyta Liliopsida Alismatales Araceae Monstera pinnatipartita

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Mucuna pruriens

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malvales Muntingiaceae Muntingia calabura

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Brassicales Brassicaceae Nasturtium officinale

Plantae Tracheophyta Liliopsida Alismatales Alismataceae Sagittaria guayanensis

Plantae Tracheophyta Liliopsida Asparagales Orchidaceae Epidendrum anceps

Plantae Tracheophyta Liliopsida Asparagales Orchidaceae Epidendrum rigidum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Coccocypselum hirsutum

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Poaceae Gynerium sagittatum

Plantae Tracheophyta Liliopsida Zingiberales Cannaceae Canna indica

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Bromeliaceae Aechmea angustifolia

Plantae Tracheophyta Liliopsida Asparagales Orchidaceae Polystachya foliosa

Plantae Tracheophyta Liliopsida Alismatales Araceae Philodendron tripartitum

Page 62: REGIONES BIÓTICAS DELIMITADAS UTILIZANDO COMO UNIDAD …

27

Kingdom Phylum Clase Orden Familia Genero Epiteto especifico

Plantae Tracheophyta Liliopsida Alismatales Araceae Philodendron hederaceum

Plantae Tracheophyta Liliopsida Alismatales Araceae Philodendron barrosoanum

Plantae Tracheophyta Liliopsida Alismatales Araceae Monstera obliqua

Plantae Tracheophyta Liliopsida Alismatales Araceae Anthurium scandens

Plantae Tracheophyta Liliopsida Alismatales Araceae Anthurium bogotense

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Euphorbiaceae Croton hibiscifolius

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Ericales Sapotaceae Chrysophyllum cainito

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Cyperaceae Rhynchospora corymbosa

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Myrtaceae Syzygium jambos

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Cyperaceae Scleria gaertneri

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Bromeliaceae Tillandsia bulbosa

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Bromeliaceae Tillandsia fendleri

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Bromeliaceae Tillandsia juncea

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Bromeliaceae Tillandsia recurvata

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Bromeliaceae Tillandsia usneoides

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Hymenaea courbaril

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Asterales Asteraceae Ambrosia peruviana

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Solanales Solanaceae Brugmansia candida

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Melastomataceae Clidemia ciliata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Lamiales Plantaginaceae Plantago lanceolata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Sapindales Sapindaceae Sapindus saponaria

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Onagraceae Ludwigia peruviana

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Salicaceae Salix humboldtiana

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Caryophyllales Amaranthaceae Alternanthera sessilis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Piperales Piperaceae Peperomia obtusifolia

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Piperales Piperaceae Peperomia rotundifolia

Plantae Tracheophyta Polypodiopsida Polypodiales Polypodiaceae Microgramma lycopodioides

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Senna reticulata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Pithecellobium dulce

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Erythrina fusca

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Asterales Asteraceae Ageratina tinifolia

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Poaceae Agrostis tolucensis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Arcytophyllum muticum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Arcytophyllum nitidum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Asterales Asteraceae Bidens triplinervia

Plantae Bryophyta Bryopsida Bryales Bartramiaceae Breutelia chrysea

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Melastomataceae Bucquetia glutinosa

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Poaceae Calamagrostis effusa

Plantae Bryophyta Bryopsida Dicranales Dicranaceae Campylopus cavifolius

Plantae Bryophyta Bryopsida Dicranales Dicranaceae Campylopus pittieri

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Brassicales Brassicaceae Cardamine bonariensis

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Cyperaceae Carex pichinchensis

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Cyperaceae Carex bonplandii

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Cyperaceae Carex jamesonii

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Caryophyllales Caryophyllaceae Cerastium arvense

Page 63: REGIONES BIÓTICAS DELIMITADAS UTILIZANDO COMO UNIDAD …

28

Kingdom Phylum Clase Orden Familia Genero Epiteto especifico

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Poaceae Chusquea tessellata

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Poaceae Cortaderia bifida

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Poaceae Cortaderia nitida

Plantae Bryophyta Bryopsida Hypnales Amblystegiaceae Cratoneuron filicinum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Asterales Asteraceae Diplostephium floribundum

Plantae Bryophyta Bryopsida Hypnales Amblystegiaceae Drepanocladus aduncus

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Apiales Apiaceae Eryngium humile

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Asterales Asteraceae Espeletia hartwegiana

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Geraniales Geraniaceae Geranium sibbaldioides

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Rosales Rosaceae Hesperomeles obtusifolia

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Juncaceae Juncus microcephalus

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Rosales Rosaceae Lachemilla nivalis

Plantae Tracheophyta Lycopodiopsida Lycopodiales Lycopodiaceae Lycopodium clavatum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Melastomataceae Miconia salicifolia

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Melastomataceae Miconia splendens

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Asterales Asteraceae Pentacalia nitida

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Nertera granadensis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Asterales Asteraceae Oritrophium limnophilum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Asterales Asteraceae Oritrophium peruvianum

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Eriocaulaceae Paepalanthus alpinus

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Poaceae Paspalum bonplandianum

Plantae Bryophyta Bryopsida Bryales Bartramiaceae Philonotis andina

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Lamiales Plantaginaceae Plantago australis

Plantae Bryophyta Bryopsida Hypnales Hylocomiaceae Pleurozium schreberi

Plantae Bryophyta Bryopsida Polytrichales Polytrichaceae Polytrichum juniperinum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Asterales Asteraceae Senecio wedglacialis

Plantae Tracheophyta Liliopsida Asparagales Iridaceae Sisyrinchium tinctorium

Plantae Bryophyta Sphagnopsida Sphagnales Sphagnaceae Sphagnum cuspidatum

Plantae Bryophyta Sphagnopsida Sphagnales Sphagnaceae Sphagnum cyclophyllum

Plantae Bryophyta Sphagnopsida Sphagnales Sphagnaceae Sphagnum recurvum

Plantae Bryophyta Sphagnopsida Sphagnales Sphagnaceae Sphagnum sparsum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Acacia tenuifolia

Plantae Tracheophyta Polypodiopsida Polypodiales Pteridaceae Adiantum tetraphyllum

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Bromeliaceae Aechmea tillandsioides

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Caryophyllales Amaranthaceae Amaranthus spinosus

Plantae Tracheophyta Liliopsida Alismatales Araceae Anthurium fendleri

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Apocynaceae Asclepias curassavica

Plantae Tracheophyta Liliopsida Arecales Arecaceae Bactris coloradonis

Plantae Tracheophyta Liliopsida Arecales Arecaceae Bactris maraja

Plantae Tracheophyta Liliopsida Arecales Arecaceae Bactris pilosa

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Brownea macrophylla

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Apocynaceae Calotropis procera

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Cyperaceae Calyptrocarya glomerulata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Boraginales Boraginaceae Cordia collococca

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Dioclea reflexa

Page 64: REGIONES BIÓTICAS DELIMITADAS UTILIZANDO COMO UNIDAD …

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Kingdom Phylum Clase Orden Familia Genero Epiteto especifico

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Dilleniales Dilleniaceae Doliocarpus major

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Stenostomum acreanum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Ericales Lecythidaceae Gustavia superba

Plantae Tracheophyta Liliopsida Zingiberales Zingiberaceae Hedychium coronarium

Plantae Tracheophyta Liliopsida Alismatales Araceae Homalomena wendlandii

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Inga multijuga

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Inga edulis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Asterales Asteraceae Melanthera nivea

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Melastomataceae Miconia ciliata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Melastomataceae Miconia magdalenae

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Euphorbiaceae Omphalea diandra

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Poaceae Panicum pilosum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Passifloraceae Passiflora vitifolia

Plantae Tracheophyta Liliopsida Alismatales Araceae Philodendron brevispathum

Plantae Tracheophyta Liliopsida Alismatales Araceae Philodendron inaequilaterum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Piperales Piperaceae Piper hispidum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Ericales Sapotaceae Pouteria multiflora

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Ronabea emetica

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Psychotria micrantha

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Sabicea panamensis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Euphorbiaceae Sapium stylare

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Cyperaceae Schoenoplectus californicus

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Cyperaceae Scleria microcarpa

Plantae Tracheophyta Liliopsida Alismatales Araceae Spathiphyllum floribundum

Plantae Tracheophyta Liliopsida Alismatales Araceae Syngonium podophyllum

Plantae Tracheophyta Polypodiopsida Polypodiales Tectariaceae Tectaria incisa

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Caryophyllales Phytolaccaceae Trichostigma octandrum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Zygia longifolia

Plantae Tracheophyta Liliopsida Arecales Arecaceae Geonoma interrupta

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Inga umbellifera

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Combretaceae Laguncularia racemosa

Plantae Tracheophyta Liliopsida Alismatales Araceae Lemna aequinoctialis

Plantae Bryophyta Bryopsida Hookeriales Daltoniaceae Lepidopilum scabrisetum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Chrysobalanaceae Licania harlingii

Plantae Tracheophyta Liliopsida Alismatales Hydrocharitaceae Limnobium laevigatum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Macrolobium limbatum

Plantae Tracheophyta Liliopsida Arecales Arecaceae Manicaria saccifera

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Melastomataceae Miconia poeppigii

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Acacia macracantha

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Acacia polyphylla

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Euphorbiaceae Acalypha macrostachya

Plantae Tracheophyta Polypodiopsida Polypodiales Pteridaceae Adiantum lucidum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Albizia niopoides

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Lamiales Bignoniaceae Amphilophium paniculatum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Solanales Convolvulaceae Aniseia martinicensis

Page 65: REGIONES BIÓTICAS DELIMITADAS UTILIZANDO COMO UNIDAD …

30

Kingdom Phylum Clase Orden Familia Genero Epiteto especifico

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Magnoliales Annonaceae Annona cherimola

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Lamiales Bignoniaceae Arrabidaea chica

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Rosales Moraceae Artocarpus altilis

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Poaceae Bambusa vulgaris

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Bauhinia ungulata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Cajanus cajan

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Myrtaceae Calycolpus moritzianus

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Sapindales Sapindaceae Cardiospermum halicacabum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Cassia grandis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Rosales Urticaceae Cecropia obtusifolia

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Centrosema pubescens

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Chloroleucon mangense

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Ericales Sapotaceae Chrysophyllum sanguinolentum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Sapindales Rutaceae Citrus limon

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Euphorbiaceae Cnidoscolus urens

Plantae Tracheophyta Liliopsida Zingiberales Costaceae Costus guanaiensis

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Poaceae Cymbopogon citratus

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Euphorbiaceae Dalechampia scandens

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Dioclea guianensis

Plantae Tracheophyta Liliopsida Dioscoreales Dioscoreaceae Dioscorea altissima

Plantae Tracheophyta Liliopsida Dioscoreales Dioscoreaceae Dioscorea trifida

Plantae Tracheophyta Liliopsida Alismatales Araceae Dracontium spruceanum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Caryophyllales Amaranthaceae Dysphania ambrosioides

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Enterolobium cyclocarpum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Enterolobium schomburgkii

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Erythroxylaceae Erythroxylum coca

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Erythroxylaceae Erythroxylum novogranatense

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Euphorbiaceae Euphorbia tithymaloides

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Solanales Convolvulaceae Evolvulus alsinoides

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Rosales Moraceae Ficus citrifolia

Plantae Tracheophyta Liliopsida Zingiberales Heliconiaceae Heliconia metallica

Plantae Tracheophyta Liliopsida Zingiberales Heliconiaceae Heliconia wagneriana

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Melastomataceae Henriettea stellaris

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Euphorbiaceae Hevea pauciflora

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Phyllanthaceae Hieronyma alchorneoides

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Lamiales Lamiaceae Hyptis verticillata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Inga acuminata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Inga oerstediana

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Inga sapindoides

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Inga tenuistipula

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Solanales Convolvulaceae Ipomoea carnea

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Solanales Convolvulaceae Ipomoea hederifolia

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Solanales Convolvulaceae Ipomoea quamoclit

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Isertia haenkeana

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Euphorbiaceae Jatropha curcas

Page 66: REGIONES BIÓTICAS DELIMITADAS UTILIZANDO COMO UNIDAD …

31

Kingdom Phylum Clase Orden Familia Genero Epiteto especifico

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Lamiales Acanthaceae Justicia pectoralis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Lamiales Acanthaceae Justicia secunda

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Ericales Lecythidaceae Lecythis minor

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Solanales Solanaceae Solanum lycopersicum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Malpighiaceae Malpighia glabra

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Euphorbiaceae Manihot carthaginensis

Plantae Tracheophyta Liliopsida Zingiberales Marantaceae Maranta arundinacea

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Margaritopsis microdon

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Sapindales Sapindaceae Melicoccus bijugatus

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Asterales Asteraceae Mikania micrantha

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Mimosa quitensis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Mucuna mutisiana

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Laurales Lauraceae Nectandra turbacensis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Lamiales Lamiaceae Ocimum campechianum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Palicourea crocea

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Piperales Piperaceae Peperomia pellucida

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Caryophyllales Phytolaccaceae Petiveria alliacea

Plantae Tracheophyta Polypodiopsida Polypodiales Polypodiaceae Phlebodium decumanum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Phyllanthaceae Phyllanthus amarus

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Phyllanthaceae Phyllanthus brasiliensis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Solanales Solanaceae Physalis angulata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Piperales Piperaceae Piper amalago

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Caryophyllales Nyctaginaceae Pisonia aculeata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Caryophyllales Portulacaceae Portulaca oleracea

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Albizia guachapele

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Myrtaceae Psidium guajava

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Psychotria carthagenensis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Psychotria horizontalis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Psychotria officinalis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Randia aculeata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Randia armata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Apocynaceae Rauvolfia tetraphylla

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Euphorbiaceae Ricinus communis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Caryophyllales Phytolaccaceae Rivina humilis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Rosenbergiodendron formosum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Rustia occidentalis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Euphorbiaceae Sapium glandulosum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Senna bacillaris

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Senna multijuga

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Senna obtusifolia

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Senna occidentalis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malvales Malvaceae Sida glomerata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malvales Malvaceae Sida rhombifolia

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Solanales Solanaceae Solanum americanum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Solanales Solanaceae Solanum hazenii

Page 67: REGIONES BIÓTICAS DELIMITADAS UTILIZANDO COMO UNIDAD …

32

Kingdom Phylum Clase Orden Familia Genero Epiteto especifico

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Solanales Solanaceae Solanum hirtum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Solanales Solanaceae Solanum sycophanta

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Solanales Solanaceae Solanum jamaicense

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Solanales Solanaceae Solanum lanceifolium

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Spermacoce remota

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Loganiaceae Spigelia anthelmia

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Sapindales Anacardiaceae Spondias purpurea

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malvales Malvaceae Sterculia apetala

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Swartzia arborescens

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Swartzia benthamiana

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Myrtaceae Syzygium malaccense

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Caryophyllales Talinaceae Talinum paniculatum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Lamiales Bignoniaceae Tecoma stans

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Coursetia caribaea

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Combretaceae Terminalia oblonga

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malvales Malvaceae Theobroma cacao

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Asterales Asteraceae Tilesia baccata

Plantae Tracheophyta Liliopsida Commelinales Commelinaceae Tradescantia zebrina

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Sapindales Meliaceae Trichilia hirta

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malvales Malvaceae Triumfetta bogotensis

Plantae Tracheophyta Liliopsida Asparagales Orchidaceae Vanilla planifolia

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Zygia latifolia

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Myrtaceae Calyptranthes macrophylla

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Asterales Asteraceae Erigeron floribundus

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Asterales Asteraceae Conyza uliginosa

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Ericales Lecythidaceae Couratari oligantha

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Euphorbiaceae Croton magdalenensis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Ericales Lecythidaceae Eschweilera itayensis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Euphorbiaceae Euphorbia cotinifolia

Plantae Tracheophyta Liliopsida Arecales Arecaceae Euterpe catinga

Plantae Tracheophyta Liliopsida Arecales Arecaceae Euterpe oleracea

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Magnoliales Annonaceae Guatteria decurrens

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Malpighiales Chrysobalanaceae Hirtella pilosissima

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Apiales Apiaceae Hydrocotyle umbellata

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Inga acreana

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Inga alba

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Inga brachyrhachis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Inga densiflora

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Inga ingoides

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Poaceae Pennisetum purpureum

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Asterales Asteraceae Pentacalia vaccinioides

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Gentianales Rubiaceae Platycarpum orinocense

Plantae Tracheophyta Liliopsida Poales Poaceae Polypogon elongatus

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Ericales Sapotaceae Pouteria hispida

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Ericales Sapotaceae Pouteria rostrata

Page 68: REGIONES BIÓTICAS DELIMITADAS UTILIZANDO COMO UNIDAD …

33

Kingdom Phylum Clase Orden Familia Genero Epiteto especifico

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Magnoliales Annonaceae Pseudoxandra polyphleba

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Fabales Fabaceae Taralea oppositifolia

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Myrtales Melastomataceae Tibouchina lepidota

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Magnoliales Annonaceae Unonopsis spectabilis

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Magnoliales Annonaceae Unonopsis floribunda

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Magnoliales Annonaceae Unonopsis guatterioides

Plantae Tracheophyta Magnoliopsida Lamiales Verbenaceae Verbena litoralis