ramÍrez martÍnez, maribel (2006)
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EVALUACIÓN DE MEZCLAS DE SUSTRATOS Y DE RELACIONES K+/Ca2+ EN LA SOLUCIÓN NUTRITIVA EN
LA PRODUCCIÓN HIDROPÓNICA DE TULIPÁN
MARIBEL RAMÍREZ MARTÍNEZ
T E S I S PRESENTADA COMO REQUISITO PARCIAL
PARA OBTENER EL GRADO DE
MAESTRA EN CIENCIAS
MONTECILLO, TEXCOCO, EDO. DE MÉXICO
2006
COLEGIO DE POSTGRADUADOS
INSTITUCIÓN DE ENSEÑANZA E INVESTIGACIÓN EN CIENCIAS AGRÍCOLAS
CAMPUS MONTECILLO
EDAFOLOGÍA
La presente tesis titulada: Evaluación de mezclas de sustratos y relaciones potasio calcio en la solución nutritiva en la producción hidropónica de tulipán, realizada por la alumna Maribel Ramírez Martínez, bajo la dirección
del Consejo Particular indicado, ha sido aprobada por el mismo y aceptada
como requisito parcial para obtener el grado de:
MAESTRA EN CIENCIAS
EDAFOLOGÍA
CONSEJO PARTICULAR:
CONSEJERA: _____________________________________
Dra. Libia Iris Trejo-Téllez
ASESOR: _____________________________________
Dr. Fernando Carlos Gómez Merino
ASESOR: _____________________________________
Dr. Prometeo Sánchez García
ASESORA: _____________________________________
M. C. Yolanda Leticia Fernández Pavía
DEDICATORIA
A Dios una gratitud eterna por haber hecho eco de mis ruegos y forjar en mi la fortaleza,
valor y humildad para enfrentar la vida alcanzando mis metas.
A mis padres Guadalupe y Guillermo, con amor y respeto, mil gracias por su apoyo
moral en todo momento. Ustedes y mis hermanos son el pilar que ha motivado mis
esfuerzos.
A ustedes hermanos Guillermo, Bárbara, Cesar, Sofía de todo corazón. Por todo lo
que significan en mi vida a pesar de los obstáculos del camino.
A mis sobrinos Cesar de Jesús y Catherine, personitas que iluminaron mi esfuerzo con
su ternura, alegría y amor. Espero en un futuro si dios quiere esto sea una motivación
para ustedes.
A usted Dra. Libia, por la dirección, ejecución y culminación de la presente
investigación. Por su calidad moral, profesionalismo, sencillez, amistad y apoyo
brindado.
A ti Juan, por tu amor, comprensión y apoyo incondicional en todo momento, por ser
como eres, por motivar mi vida moral y profesionalmente enseñándome a ser constante y
responsable.
A todos los catedráticos por transmitirnos el conocimiento día con día.
Agradecimientos
A CONACYT por el apoyo otorgado para llevar a cabo mis estudios de
Postgrado.
Al Colegio de Postgraduados agradezco el apoyo y facilidades brindadas en
mi desarrollo profesional.
A la Dra. Libia I. Trejo-Téllez, mi consejera, una gran persona que en todo
momento me brindo su apoyo incondicional para lograr mi objetivo, le agradezco
el compartir conmigo sus conocimientos y estar pendiente de la conducción de
esta investigación y no me queda más que decirle Muchas gracias.
Al Dr. Fernando Gómez Merino, por el apoyo brindado en la presente
investigación, además de las aportaciones sugeridas que contribuyeron para
mejorar el contenido de esta investigación.
Al Dr. Prometeo Sánchez García, por la asesoría, sugerencias y acertadas
aportaciones realizadas en el término de dicho trabajo y por el apoyo profesional
como compañero el área de nutrición.
A la M.C. Yolanda Leticia Fernández Pavía, por las sugerencias y
aportaciones en el presente trabajo, que contribuyeron en la culminación del
presente trabajo.
A todos los integrantes del Consejo, reitero mi sincera gratitud y respeto.
A la Dra. Lourdes Arévalo, M. C. Araceli Gaytán, Dr. Jorge Gutiérrez, por la
asesoría, disponibilidad y apoyo incondicional en el enriquecimiento de este
trabajo.
A Rousse, Sol y Santa, quienes siempre me apoyaron incondicionalmente,
además de compartir conmigo momentos de trabajo y alegría, por su amistad y
consejos para lograr mi meta.
A mis amigos y compañeros, Judith, Nelzon, Danya, Victorino, Fabiola, Edgar,
Susana, Ariadna, Lupita, Laura, Eduardo, José Espinosa y Bethuel gracias por
sus buenos deseos.
Al personal de laboratorio de Nutrición Vegetal y Postcosecha, por las
facilidades y apoyo brindado por su personal.
A docentes del área de Nutrición Vegetal, que de alguna manera
contribuyeron para lograr mi meta.
A todas aquellas personas de otras especialidades por los consejos y buenos
deseos que siempre tuve presentes.
i
CONTENIDO
PáginaÍNDICE DE CUADROS v ÍNDICE DE FIGURAS vii
RESUMEN x
ABSTRACT xi
CAPÍTULO I. INTRODUCCIÓN GENERAL 11.1. EL TULIPÁN (Tulipa gesneriana) 1 1.1.1. Centro de origen y de diversidad genética del tulipán 1 1.1.2. Importancia nacional e internacional del tulipán 1 1.1.3. Características generales del tulipán 2 1.1.4. Manejo agronómico del cultivo de tulipán 3 1.1.5. Requerimientos nutrimentales 51.2. HIDROPONÍA 6 1.2.1. Cultivos hidropónicos 6 1.2.2. Solución nutritiva 81.3. CONCLUSIONES DE LA REVISIÓN DE LITERATURA 91.4. LITERATURA CITADA 10 CAPÍTULO II. EVALUACIÓN DE SUSTRATOS SOBRE EL CRECIMIENTO RADICAL Y DESARROLLO VEGETATIVO DE TULIPÁN (Tulipa gesneriana) 12I. INTRODUCCIÓN 121.1. SUSTRATOS 13 1.1.1. Generalidades 13 1.1.2. Sustratos agrícolas 14 1.1.3. Características de un sustrato 16 1.1.4. Presencia de nutrimentos en un sustrato 16 1.1.5. Propiedades físicas del sustrato 17 1.1.6. Propiedades químicas del sustrato 17II. OBJETIVOS 182.1. Objetivo general 182.2. Objetivos específicos 18III. HIPÓTESIS 183.1. Hipótesis general 183.2. Hipótesis específica 18
ii
PáginaIV. MATERIALES Y MÉTODOS 194.1. Ubicación del experimento y condiciones experimentales 194.2. Material vegetal 194.3. Diseño experimental y tratamientos 194.4. Establecimiento del experimento 20 4.4.1. Preparación de bulbos 20 4.4.2. Siembra 21 4.4.3. Preparación de soluciones nutritivas 214.5. Variables de estudio 22 4.5.1. Inicio de brotación 22 4.5.2. Número de hojas 22 4.5.3. Diámetro de tallo 22 4.5.4. Diámetro de flor 22 4.5.5. Longitud de capullo 22 4.5.6. Altura de planta 22 4.5.7. Biomasa fresca 23 4.5.8. Biomasa seca 23 4.5.9. Análisis químico de tejido vegetal 23 4.5.10. Análisis químico de sustratos 23 4.5.11. Capacidad de retención de humedad de los sustratos 234.6. Análisis estadístico 24V. RESULTADOS Y DISCUSIÓN 255.1. Caracterización de sustratos 25 5.1.1. Análisis químico de sustratos 25 5.1.2. Curva de retención de humedad 275.2. Indicadores de crecimiento 30 5.2.1. Días a la emergencia 30 5.2.2. Altura de planta 30 5.2.3. Diámetro de tallo 34 5.2.4. Número de hojas por planta 35 5.2.5. Biomasa fresca y seca de vástago 36 5.2.6. Biomasa fresca y seca de bulbos 375.3. Indicadores de calidad 39 5.3.1. Altura de tallos florales al corte 39 5.3.2. Diámetro de flor 40 5.3.3. Concentración de macronutrimentos en hojas de tulipán 40 5.3.4. Concentración de micronutrimentos en hojas de tulipán 41 5.3.5. Acumulación de macronutrimentos en hojas de tulipán 43 5.3.6. Acumulación de micronutrimentos en hoja de tulipán 44 5.3.7. Concentración de macronutrimentos en bulbos de tulipán 45 5.3.8. Concentración de micronutrimentos en bulbo de tulipán 46
iii
Página
5.3.9. Acumulación de macronutrimentos en bulbos de tulipán 48 5.3.10. Acumulación de micronutrimentos en bulbos de tulipán 49VI. CONCLUSIONES 51VII. LITERATURA CITADA 52 CAPÍTULO III. EFECTO DE LA RELACIÓN K+/Ca2+ EN LA SOLUCIÓN NUTRITIVA SOBRE EL CRECIMIENTO Y CALIDAD DE TULIPÁN 55I. INTRODUCCIÓN 551.1. IMPORTANCIA FISIOLÓGICA DEL CALCIO 561.2. FUNCIONES DEL CALCIO EN LAS PLANTAS 571.3. IMPORTANCIA DEL CALCIO EN TULIPÁN Y OTROS CULTIVOS 591.4. IMPORTANCIA FISIOLÓGICA DEL POTASIO 621.5. FUNCIONES DEL POTASIO EN PLANTA 631.6. IMPORTANCIA DEL POTASIO EN TULIPÁN Y OTROS CULTIVOS
64
1.7. INTERACCIÓN NUTRIMENTAL 661.7.1. Relación K+/Ca2+ 671.8. POSTCOSECHA DE FLORES 71 1.8.1. Cambios fisiológicos ocurridos en la postcosecha 71 1.8.2. Importancia de los factores inmersos en postcosecha 73 1.8.3. Manejo postcosecha de flores 75 1.8.4. Función de los carbohidratos solubles en la senescencia floral 77 1.8.5. Postcosecha en tulipán 79II. OBJETIVOS 812.1. Objetivo general 812.2. Objetivos específicos 81III. HIPÓTESIS 813.1. Hipótesis general 813.2. Hipótesis específicas 81IV. MATERIALES Y MÉTODOS 824.1. Ubicación del experimento y condiciones experimentales 824.2. Material vegetal 824.3. Tratamientos 824.4. Diseño experimental 834.5. Establecimiento del experimento 83 4.5.1. Preparación de bulbos 83 4.5.2. Siembra 84 4.5.3. Preparación de soluciones nutritivas 84 4.5.4. Aplicación de tratamientos 86
iv
Página
4.6. Variables evaluadas 86 4.6.1. Análisis de contenidos nutrimentales en tejido vegetal 86 4.6.2. Indicadores de la calidad y vida en florero de la flor en tulipán 86 4.6.2.1. Características cualitativas de la calidad 87 4.6.2.2. Características cuantitativas de la calidad 884.7. Análisis estadístico 88V. RESULTADOS Y DISCUSIÓN 895.1. Características cuantitativas de la calidad 89 5.1.1. Altura de planta 89 5.1.2. Diámetro de tallo al corte 90 5.1.3. Longitud de capullo 92 5.1.4. Diámetro de capullo 92 5.1.5. Firmeza de tallo al corte 935.2. Características cualitativas de la calidad 94 5.2.1. Apertura floral 94 5.2.2. Senescencia floral en tulipán 97 5.2.3. Biomasa fresca de tallo 99 5.2.4. Consumo de agua en florero 101 5.2.5. Contenido de azúcares totales 104 5.2.6. Contenido de clorofila 107 5.2.6.1. Clorofila a 107 5.2.6.2. Clorofila b 109 5.2.6.3. Clorofilas totales 110 5.2.7. Vida en florero 1115.3. Extracción nutrimental 113 5.3.1. Extracción nutrimental en hoja 113 5.3.2. Extracción nutrimental en tallos 116 5.3.3. Extracción de nutrimentos en bulbo 117 5.3.4. Factor de concentración K+/Ca2+ 119 5.3.5. Partición de K y Ca en la planta 120VI. CONCLUSIONES 122VII. LITERATURA CITADA 123 APÉNDICES ESTADÍSTICOS 132Apéndice A. 132Apéndice B 143
v
ÍNDICE DE CUADROS
Página
CAPÍTULO I Cuadro 1 Características morfológicas del tulipán 3
CAPÍTULO II
Cuadro 1 Tratamientos evaluados 20Cuadro 2 Fuentes de fertilización de macronutrimentos y cantidades de
éstas para elaborar la solución nutritiva de Steiner al 50% 22Cuadro 3 Resultados de análisis químico de sustratos 26Cuadro 4 Propiedades físicas en la curva de retención de humedad 29Cuadro 5 Número de hojas en tulipán cv. Ile de France cultivado en
distintos sustratos 35Cuadro 6 Biomasa fresca y seca de vástago de tulipán cv Ile de France
cultivado en distintos sustratos a la cosecha (59 días después de la siembra) 36
Cuadro 7 Biomasa fresca y seca de bulbos de tulipán cv Ile de France cultivado en distintos sustratos a la cosecha (59 días después de la siembra) 38
Cuadro 8 Diámetro de flor de tulipán cv Ile de France cultivado en distintos sustratos 40
CAPÍTULO III
Cuadro 1 Tratamientos evaluados en tulipán cv Ile de France 82Cuadro 2 Concentración de la solución nutritiva universal de Steiner 85Cuadro 3 Composición de las soluciones nutritivas a evaluar (molc m-3) 85Cuadro 4 Concentraciones de micronutrimentos 86Cuadro 5 Altura de planta de tulipán cv Ile de France al corte, regado con
soluciones nutritivas con distintas relaciones K+/Ca2+ 89Cuadro 6 Diámetro de capullo de tulipán cv Ile de France, regado con
soluciones nutritivas con distintas relaciones K+/Ca2+ 93Cuadro 7 Etapas de apertura floral en Tulipán (Tulipa gesneriana) cv Ile
de France 95
vi
Página
Cuadro 8 Etapas y características de senescencia en tulipán (Tulipa gesneriana) cv Ile de France 97
Cuadro 9 Peso de tallos frescos durante la vida de florero de tulipán cv Ile de France al corte, regado con soluciones nutritivas con distintas relaciones K+/Ca2+ 100
Cuadro 10 Acumulación de nitrógeno (N), fósforo (P) y hierro (Fe) en hojas de tulipán cv Ile de France, regado con soluciones nutritivas con distintas relaciones K+/Ca2+ 113
Cuadro 11 Acumulación de nitrógeno (N), fósforo (P), potasio (K), calcio (Ca) y magnesio (Mg) en tallos de tulipán cv Ile de France, regado con soluciones nutritivas con distintas relaciones K+/Ca2+
116
Cuadro 12 Acumulación nutrimental en bulbos de tulipán cv Ile de France, regado con soluciones nutritivas con distintas relaciones K+/Ca2+ 118
Cuadro 13 Concentración de K+/Ca2+en la planta en función de la solución nutritiva 119
vii
ÍNDICE DE FIGURAS Página
CAPÍTULO II
Figura 1 Distribución física de los tratamientos en invernadero 20Figura 2 Curvas de retención de humedad de los sustratos evaluados 28Figura 3 Días a brotación de bulbos de tulipán cv Ile de France cultivado
en distintos sustratos 30Figura 4 Altura de plantas de tulipán cv Ile de France cultivado en
distintos sustratos 32Figura 5 Altura de plantas de tulipán cv Ile de France cultivado en
distintos sustratos a los 19 (A), 29 (B), 38 (C), 49 (D) y 59 (E) días después de la siembra de bulbos 33
Figura 6 Diámetro de tallos de tulipán cv Ile de France cultivado en distintos sustratos a la cosecha (59 días después de la siembra de bulbos) 34
Figura 7 Bulbos de tulipán cv Ile de France cultivado en distintos sustratos a la cosecha (59 días después de la siembra) 38
Figura 8 Tallos de tulipán cv Ile de France cultivado en distintos sustratos a la cosecha (59 días después de la siembra) 39
Figura 9 Concentración de macronutrimentos en hoja de tulipán cv Ile de France cultivado en distintos sustratos 41
Figura 10 Concentración de micronutrimentos en hoja de tulipán cv Ile de France cultivado en distintos sustratos 42
Figura 11 Acumulación de macronutrimentos en hoja de tulipán cv Ile de France cultivado en distintos sustratos 43
Figura 12 Acumulación de micronutrimentos en hoja de tulipán cv Ile de France cultivado en distintos sustratos 44
Figura 13 Concentración de macronutrimentos en bulbos de tulipán cv Ile de France cultivado en distintos sustratos 46
Figura 14 Concentración de micronutrimentos en bulbo de tulipán cv Ile de France cultivado en distintos sustratos 47
Figura 15 Acumulación de macronutrimentos en bulbo de tulipán cv Ile de France cultivado en distintos sustratos 48
Figura 16 Acumulación de micronutrimentos en bulbo de tulipán cv Ile de France cultivado en distintos sustratos 49
viii
Página
CAPÍTULO III Figura 1 Distribución física de tratamientos evaluados en tulipán cv Ile
de France 83Figura 2 Diámetro de tallo de tulipán cv Ile de France al corte, regado
con soluciones nutritivas con distintas relaciones K+/Ca2+ 91Figura 3 Longitud de capullo de tulipán cv Ile de France, regado con
soluciones nutritivas con distintas relaciones K+/Ca2+ 92Figura 4 Firmeza de tallo de tulipán cv Ile de France al corte, regado con
soluciones nutritivas con distintas relaciones K+/Ca2+ 94Figura 5 Etapas de apertura floral en tulipán (Tulipa gesneriana) cv Ile
de France 96Figura 6 Estados de senescencia floral en tulipán cv Ile de France 98Figura 7 Biomasa fresca en tallos de tulipán cv Ile de France, días
después de la cosecha regado con soluciones nutritivas con distintas relaciones K+/Ca2+ 99
Figura 8 Consumo de agua en florero de tulipán cv Ile de France, regado con soluciones nutritivas con distintas relaciones K+/Ca2+
102
Figura 9 Curva estándar para determinación de azúcares totales en pétalos de tulipán cv Ile de France 105
Figura 10 Contenido de glucosa en pétalos de tulipán cv Ile de France al corte, regado con soluciones nutritivas con distintas relaciones K+/Ca2+ 106
Figura 11 Contenido de glucosa en pétalos de tulipán cv Ile de France después de 10 días en florero, regado con soluciones nutritivas con distintas relaciones K+/Ca2+ 107
Figura 12 Contenido de clorofila a en hojas de tulipán cv Ile de France al momento del corte (inicial) y después de 10 días en florero (final), regado con soluciones nutritivas con distintas relaciones K+/Ca2+ 108
Figura 13 Contenido de clorofila b en hojas de tulipán cv Ile de France al momento del corte (inicial) y después de 10 días en florero (final), regado con soluciones nutritivas con distintas relaciones K+/Ca2+ 109
Figura 14 Contenido de clorofilas totales en hojas de tulipán cv Ile de France al momento del corte (inicial) y después de 10 días en florero (final), regado con soluciones nutritivas con distintas relaciones K+/Ca2+ 111
ix
Página
Figura 15 Acumulación de potasio (K), calcio (Ca) y magnesio (Mg) en hojas de tulipán cv Ile de France, regado con soluciones nutritivas con distintas relaciones K+/Ca2+ 114
Figura 16 Acumulación de cobre (Cu), zinc (Zn), manganeso (Mn) y boro (B) en hojas de tulipán cv Ile de France, regado con soluciones nutritivas con distintas relaciones K+/Ca2+ 115
Figura 17 Acumulación de hierro (Fe), cobre (Cu), zinc (Zn), manganeso (Mn) y boro (B) en tallos de tulipán cv Ile de France, regado con soluciones nutritivas con distintas relaciones K+/Ca2+ 117
Figura 18 Partición de calcio (Ca) en tulipán cv Ile de France, regado con soluciones nutritivas con distintas relaciones K+/Ca2+ 120
Figura 19 Partición de potasio (K) en tulipán cv Ile de France, regado con soluciones nutritivas con distintas relaciones K+/Ca2+ 121
x
RESUMEN
Esta investigación se llevó a cabo en el Colegio de Postgraduados Campus Montecillo durante el
período Otoño–Invierno 2005 bajo condiciones de invernadero en hidroponía. Se utilizaron bulbos
de tulipán (Tulipa gesneriana) cv. Ile de France sembrados en macetas de 7” de diámetro.
En un primer experimento se evaluaron diferentes sustratos y mezclas de éstos en la producción
de tulipán. Los sustratos utilizados fueron tezontle en dos tamaños de partícula (3 y 5 mm) y las
mezclas comerciales ProMix® y Nutriterra®. Se evaluaron los siguientes tratamientos: 1) Tezontle
3 mm (3T), 2) Tezontle 5 mm (5T), Tezontle 3 mm + ProMix® (3TPX), Tezontle 5 mm + ProMix®
(5TPX), Tezontle 3 mm + Nutriterra® (3TNU), + Tezontle 5 mm + Nutriterra® (5TNU). A los
sustratos individuales se les determinaron las curvas de retención de humedad y contenidos
nutrimentales. Las variables respuesta de la planta fueron días a la emergencia, altura de planta,
diámetro de tallo, diámetro de flor, longitud de capullo, acumulación de biomasa fresca y seca en
vástago y bulbos y acumulación nutrimental. La mezcla de Tezontle en sus dos granulometrías con
el sustrato ProMix® (Tratamientos 3TPX y 5TPX), produjo el mayor crecimiento de vástago y de
raíz. En estos tratamientos se registró además el mayor diámetro de tallo, la mayor acumulación de
biomasa seca y fresca de vástago, así como mayores extracciones nutrimentales en vástago. Por
el contrario, el tratamiento con Tezontle 5 mm mostró la emergencia más tardía y existió un
crecimiento raquítico después de la emergencia.
En un segundo experimento se determinó el efecto de la relación K+/Ca2+ en la solución nutritiva
sobre características cualitativas y cuantitativas de los tallos florales de tulipán, utilizando como
sustrato único Tezontle 3 mm + ProMix® (3TPX) debido a que este produjo el mejor crecimiento y
desarrollo de plantas de tulipán en el primer experimento. Se probaron tres niveles de potasio (5.5,
7.0 y 8.5 mol c m3) y tres niveles de calcio (7.5, 9.0 y 10.5 mol c m3) en la solución nutritiva, en un
experimento factorial completo 32. La combinación de los niveles de los factores antes
mencionados originaron nueve tratamientos. En esta investigación se observó una relación
negativa entre el contenido de azúcares y la senescencia en pétalos. También se observaron
efectos antagónicos entre potasio y calcio. Analizando el factor de concentración de ambos
nutrimentos, se observó que el suministro de niveles bajos de Ca2+ en la solución nutritiva favorece
una mayor absorción de dicho elemento. El mismo efecto se tiene con bajos niveles de K+; dado
que conforme éste incrementa su contenido en la solución nutritiva la absorción en la planta es
menor. La relación K+/Ca2+ en la solución nutritiva que incrementó las características cualitativas y
cuantitativas en tulipán fue la 8.5/9.0 (tratamiento 8); mientras que la relación en la que se
registraron los menores parámetros de calidad y cantidad fue la 5.5/10.5 (tratamiento 3). La
partición de Ca en la planta para es mayor en hojas y tallo, mientras que en potasio las mayores
acumulaciones se detectaron en bulbo.
xi
ABSTRACT
This study was carried out during the Fall-Winter 2005 at Collage of Postgraduates Campus
Montecillo using a soil less culture in greenhouse conditions. Two experimental approaches using
Bulbs of the tulip (Tulipa gesneriana) variety Ile de France were performed. Bulbs were sown in
pots of 7” diameter.
In the first approach we evaluated the effect of different substrates and mixtures of them on the
production of tulips. A red volcanic gravel locally called tezontle with different particle sizes (3 and 5
mm particle size) was used in combination with two other commercial substrates: ProMix® and
Nutriterra®. The resulting mixtures were as follows: 1) Tezontle 3mm (3T), 2) Tezontle 5mm (5T),
Tezontle 3mm + ProMix® (3TPX), Tezontle 5mm + ProMix® (5TPX), Tezontle 3mm + Nutriterra®
(3TNU), + Tezontle 5mm + Nutriterra® (5TNU). The corresponding moisture retention curves and
nutriment content were determined for each individual substrate. The following variables were
measured in plan material: days to emergence, plant height, stem diameter, flower diameter, bud
size, dry and fresh biomass production and nutriment accumulation in biomass. Mixtures of
Tezontle including both particle sizes with ProMix® (treatments 3TPX y 5TPX) resulted in higher
stem and root growth. Furthermore, plants under those treatments showed the longest stem
diameter, the highest dry and fresh stem biomass production and the highest nutrimental
accumulation in stems. Instead, Tezontle 5 mm produced the most delayed emergence of bulbs
and plant growth was very poor.
In the second approach we evaluated the effect of the K+/Ca2+ ratio contained in the nutrient
solution on qualitative and quantitative characteristics of the floral stem of tulip. In this experiment
we only used the mixture Tezontle 3mm + ProMix® (3TPX), as this treatment produced the best
results in the former approach. We tested three potassium levels (5.5, 7.0 and 8.5 mol c m3) and
three calcium levels (7.5, 9.0 and 10.5 mol c m3) in the nutrient solution in a 32 factorial experiment.
The combination of factors (K and Ca) and levels of factors as described resulted in nine
treatments. We observed a negative relation between sugar content and senescence of petals.
Besides, antagonistic effects of K and Ca were evident. However, low Ca supply in the nutrient
solution favors a higher uptake of Ca by the plant; the same response is observed with K when
supplying low levels of it.
Quantitative and qualitative characteristics of tulip were superior when supplying a K+/Ca2+ ratio of
8.5/9.0; whereas those characteristics were negatively affected when the K+/Ca2+ ratio was
5.5/10.5. Nutrimental analyses indicate that Ca partitioning is higher in leaves and stems, while K is
more abundant in bulbs.
Capítulo I
1
CAPÍTULO I. INTRODUCCIÓN GENERAL
1.1. El TULIPÁN (Tulipa gesneriana)
1.1.1. Centro de origen y de diversidad genética del tulipán
El centro de origen del tulipán se localiza en Asia Central, en territorios de las
actuales Siberia, Mongolia y China. Las áreas con mayor diversidad genética
están sin embargo hacia el sur de esta región, en la provincia de Kashemira entre
la India y Afganistán, la región del Cáucaso y Turquía (De Hertogh y Le Nard,
1993). De hecho, las primeras semillas de tulipán llegaron a Europa a finales del
siglo XVI procedentes de Turquía. El nombre "tulipán" proviene de la palabra
"dulban", que significa en turco turbante, haciendo referencia a la similitud entre
ambas formas. El botánico Carolus Clusius inició el cultivo del tulipán en el jardín
botánico de Leiden en Holanda, a partir de semillas y de bulbos enviados desde
Turquía (Manavella et al., 1999).
1.1.2. Importancia nacional e internacional del tulipán
Debido a las particulares exigencias agroecológicas del tulipán, la producción de
sus bulbos está limitada a escasas regiones en el mundo. Holanda es el líder
absoluto de esta actividad debido a sus condiciones climáticas y a un excelente
perfil comercial. No solo cuenta con más del 55% del área cultivada en el mundo
(más de 10,000 ha) sino que es el moderador del intercambio comercial. Sus
competidores en el cultivo del tulipán son: Gran Bretaña, Estados Unidos, Japón,
Polonia y Francia. En el Hemisferio Sur, Australia y Chile son los principales
productores de tulipán, debido al desfase productivo con el Hemisferio Norte,
Australia y Chile producen tulipanes cuando éste se encuentra en receso (Cirielli,
1998). En México, el tulipán es un cultivo no tradicional, pero bien cotizado y con
un amplio mercado nacional.
Capítulo I
2
A nivel nacional, el Estado de México ocupa el primer lugar en la producción
florícola, ya que aporta más del 70 % del valor de producción nacional el cual
representa casi el 25% del total de la derrama agrícola, generando además
225,000 empleos directos e indirectos para producir y comercializar un 83.3 % de
ornamentales para flor de corte, 7.8% de forrajeras ornamentales, 6.2% de flores y
plantas de vivero y un 2.7% de flor de semilla, siendo el mayor exportador del
país hacia Estados Unidos, Canadá, Europa y Asia (Consejo Mexicano de la Flor,
2005). Específicamente en el Estado de México, la región XI es la más importante
zona florícola, destacando Villa Guerrero con una superficie de 3,151 ha (cerca del
63% de la superficie estatal), Tenancingo con 627 ha, Coatepec Harinas con 578
ha, Zumpahuacán con 132 ha, Malinalco con 93 ha e Ixtapan de la Sal con 66 ha.
Se dice que existen más de 50 variedades de flores de corte entre las que
sobresalen crisantemos, gladiolas, rosas, claveles, nardos, tulipanes y Lilium;
asimismo, la producción de follajes también es importante destacando por su uso
el dólar, limonium, espárrago, tujas y pinos, teniendo como principal destino el
mercado nacional (Consejo Mexicano de la Flor, 2005).
1.1.3. Características generales del tulipán El tulipán pertenece a la familia de las Liliáceas. Existen unas 100 especies de
este género, y más de 4000 variedades en el Continente Euroasiático. Las
especies más comunes son Tulipa gesneriana y Tulipa suaveolens. La especie
Tulipa gesneriana es una planta bulbosa de constitución herbácea y vivaz, con un
período de floración corto, el cual se presenta normalmente en primavera y de
bulbos tunicados (Bañon et al., 1993). Las características morfológicas de esta
especie se muestran en el Cuadro 1.
Capítulo I
3
Cuadro 1. Características morfológicas del tulipán (Bañón et al., 1993).
Fenología de la planta
Características
Bulbo
Es el órgano de reserva y multiplicación, formado por un tallo axial, corto y carnoso y cuya parte inferior se denomina placa basal, y una superior o ápice que envuelve a un meristemo recubierto con escamas gruesas, situado en el eje del bulbo que originará el tallo aéreo. Una de las principales características del bulbo son las escamas exteriores secas llamadas "túnicas", cuya función es la defensa contra lesiones mecánicas y la desecación. Las escamas interiores son carnosas, denominadas "láminas", distribuidas en capas contiguas y concéntricas, cuya función es almacenar las sustancias de reserva.
Hojas
Hojas escasas, de color verde a verde grisáceo, algo carnosas, de linear-lanceoladas a anchamente ovadas que carecen de pecíolo y nacen de la parte baja de la planta, decreciendo en tamaño hacia la parte superior del tallo. La lámina foliar es sencilla y entera.
Flor
Son generalmente solitarias, orientadas hacia arriba, ligeramente acampanadas, pudiendo tener tépalos dobles o simples, dispuestos en forma de cáliz y generalmente en número de seis, con una amplia gama de coloridos. Perianto de seis segmentos libres dispuestos en dos verticilos, androceo con seis estambres y estigma trilobado.
Fruto Es una cápsula esférica o elipsoide de tres valvas erectas, conteniendo numerosas semillas planas.
1.1.4. Manejo agronómico del cultivo de tulipán Luz
El factor no se considera restrictivo, ya que para su óptimo desarrollo requiere un
nivel bajo de iluminación. El componente de color azul en las lámparas
fluorescentes de luz blanca es indispensable para lograr una buena formación de
la flor. En zonas con alta incidencia lumínica y temperaturas altas se produce un
adelantamiento de la floración disminuyendo el largo de la vara, lo que se puede
minimizar con el uso de sombreados (Cirielli, 1998; Manavella et al., 1999).
Capítulo I
4
Temperatura
Un periodo de temperatura baja es esencial para completar el ciclo de vida de
muchas especies bulbosas. En los bulbos del tulipán el desarrollo de la flor es
inducido a temperaturas altas (20–25 °C), pero la elongación subsiguiente del tallo
floral y la propia floración dependen de un extenso periodo de bajas temperaturas
(menores a 10 °C) (De Hertogh y Le Nard, 1993). Temperaturas superiores a 16
°C incrementan la posibilidad de infección por Fusarium oxysporum (Bañón et al.,
1993).
Humedad relativa
El tulipán requiere un nivel elevado de humedad relativa, aunque no debe ser
mayor a 85%, para evitar la incidencia de ataques fúngicos como Botrytis tulipae.
Ambientes con baja humedad relativa provocan quemaduras en las hojas y
pérdidas excesivas de agua en la planta, que traen como consecuencia tallos
marchitos y poco rígidos que disminuyen la calidad de la flor (Manavella et al.,
1999; Cirielli et al., 1999).
Suelo
Aunque no es una especie exigente, le son favorables los suelos sueltos, mullidos
y ricos en materia orgánica. El pH ideal se sitúa entre 6.5 y 7.5, con una
profundidad efectiva de 20 cm.
Marco y época de plantación
Primero se recomienda desinfectar los bulbos en una solución de benomilo a una
concentración de 2 g L-1 de agua y captan a una concentración de 1 g L-1 agua,
para prevenir el ataque de Fusarium oxysporum, Rhizoctonia solani, Botrytis
tulipae y Phytium sp. Se debe realizar además una esterilización de suelo. El
cultivo se debe iniciar utilizando bulbos, con un perímetro de 10 a 12 cm. La
siembra tiene lugar en bancales de 25 cm de altura y un metro de ancho, con
pasillos de 40 a 50 cm. Los bulbos se plantan a una distancia de 8 cm entre
bulbos y a 12 cm entre hileras, enterrándolos a unos 10 cm de profundidad,
Capítulo I
5
apretando bien la tierra para que no se formen bolsas de aire en las áreas
próximas al bulbo. En función de las técnicas de preparación y conservación de
bulbos, la plantación de éstos puede realizarse en diferentes momentos,
dependiendo fundamentalmente de las condiciones climáticas.
Riego
Normalmente se riegan hasta el momento de la floración; a partir de entonces, el
riego debe ser moderado, dependiendo del sistema de riego utilizado. La cantidad
de agua aportada puede reducirse una vez que se hayan formado las raíces. El
déficit hídrico puede originar que se formen las hojas antes que las raíces, lo cual
favorece al aborto de los botones florales (Bañon et al., 1993).
1.1.5. Requerimientos nutrimentales El tulipán demanda principalmente potasio, ya que mejora la síntesis y migración
de los carbohidratos hacia el bulbo y favorece la rigidez del tallo floral. Otros
elementos como el calcio permiten que la planta se mantenga turgente. El
nitrógeno provoca un excesivo desarrollo de las hojas disminuyendo la rigidez del
tallo, la que es favorecida por potasio y calcio (Bañón et al., 1993). El fósforo
estimula el crecimiento y evita los inconvenientes de un exceso de nitrógeno. En
fertirrigación se recomienda utilizar nitrato de potasio (13-0-40) y fosfato
monoamónico (12-61-0), a una dosis de 2 g m-2 dos veces a la semana, durante
todo el ciclo de cultivo (Cirielli, 1998). Si se hacen aplicaciones de estiércol debe
evitarse que esté fresco, ya que se incrementa el riesgo de contaminación de
diversos hongos, especialmente Fusarium. Durante el desarrollo del bulbo se
pueden agregar 2 g L-1 de la formulación 14-7-26 a partir de la brotación de la
primera hoja. Al inicio de la formación de botones florales agregar nitrato de
potasio.
Capítulo I
6
1.2. HIDROPONÍA 1.2.1. Cultivos hidropónicos Las técnicas culturales aplicadas en la producción de plantas, han experimentado
cambios notables durante las tres últimas décadas. Unido a estos cambios
tecnológicos, se viene produciendo una sustitución gradual del cultivo tradicional
en el suelo por el cultivo fuera de éste. Se entiende por cultivo sin suelo a aquel
sistema de cultivo en el que la planta desarrolla su sistema radicular en un medio
(sólido o líquido) llevado a cabo en un espacio limitado y aislado, fuera del suelo
(Dimitrios, 2003).
Según Abad, et al (1996), las razones principales para el establecimiento de
cultivos hidropónicos son:
1) La necesidad de transportar las plantas de un lugar a otro.
2) La existencia de factores limitantes para la continuidad de los cultivos
intensivos en el suelo natural, particularmente salinización, enfermedades y
agotamiento de los suelos agrícolas.
3) La fuerte intensificación cultural que facilita el cultivo hidropónico y en
sustrato, al permitir un control riguroso del ambiente radical, especialmente
de los aspectos relacionados con el suministro de agua y nutrimentos.
Derivado de esto se observa que los cultivos hidropónicos tienen numerosas
aplicaciones como técnica de producción comercial. Los cultivos sin suelo
(hidropónicos) ocupan actualmente superficies muy importantes en los países del
Centro y el Norte de Europa. Aunque este sistema de producción implica un alto
costo de inversión y exige un nivel de tecnificación elevado, el retorno de capital
de inversión debido a los rendimientos que se alcanzan y a la disminución en otros
aspectos como control de plagas y enfermedades han permitido una gran difusión
en sistemas intensivos (Cadahia, 2000).
El crecimiento futuro de la hidroponía dependerá mucho del desarrollo y
adaptación de sistemas menos sofisticados de producción que sean competitivos
Capítulo I
7
en costos con respecto a la tecnología sofisticada generada en países
desarrollados (Rodríguez, 2002).
Una considerable disminución de las áreas de tierras agrícolas en países en vías
de desarrollo, hace de la hidroponía una interesante alternativa de producción en
zonas urbanas y semiurbanas. Dentro del contexto de la llamada agricultura
urbana, la hidroponía puede ser muy bien aplicada en las ciudades con
tecnologías más sencillas y de bajo costo, principalmente en zonas de extrema
pobreza, como una manera de incentivar el autoconsumo de hortalizas y de
apoyar el ingreso familiar (Samperio, 2000).
Dentro de las ventajas de la hidroponía se menciona que:
• Permite aprovechar suelos o terrenos no adecuados para la agricultura
tradicional.
• Los rendimientos obtenidos con hidroponía superan tremendamente a la
producción en suelo.
• Existe un menor consumo de agua y fertilizantes. La técnica es muy apropiada
en zonas donde hay escasez de agua dependiendo si el sistema es cerrado o
abierto.
• No contamina el ambiente.
• Existe un crecimiento más rápido y vigoroso de las plantas debido a que en un
sistema hidropónico el agua y los nutrimentos están disponibles en cantidades
óptimas.
• La producción es intensiva, lo que permite tener mayor número de cosechas por
año.
Capítulo I
8
• En la agricultura tradicional tanto la siembra como la cosecha se realizan en una
misma fecha; en hidroponía estas labores se realizan en forma escalonada, lo cual
permite llevar una programación de la producción.
• En la agricultura tradicional es necesario hacer una rotación de cultivos para
evitar una infestación de nemátodos en las raíces. En un cultivo sin suelo no se
presenta este problema y se puede trabajar continuamente como monocultivo
(Rodríguez, 2002).
Entre las desventajas más importantes de un sistema hidropónico están:
• La dependencia de adquirir un proyecto con paquete "llave en mano" puede
desalentar su continuidad, por los elevados costos de inversión inicial.
• El desconocimiento del sistema hidropónico apropiado para producir un
determinado cultivo. Es muy importante tener o recibir una capacitación previa.
• El desconocimiento del manejo agronómico puede reducir significativamente los
rendimientos. El éxito de la producción hidropónica depende más del conocimiento
del manejo agronómico (clima apropiado para el cultivo, siembra, riegos, control
de plagas y enfermedades, etc.) que del conocimiento de la técnica en sí.
• La falta de experiencia en el manejo de las soluciones nutritivas puede alterar su
composición nutrimental y en consecuencia la calidad de las plantas (Rodríguez,
2002; Samperio, 2000; CIHNM, 1997).
1.2.2. Solución nutritiva
La solución nutritiva contiene todos los nutrimentos en forma inorgánica disueltos
en agua. Eventualmente algunos compuestos orgánicos forman parte de la
solución nutritiva, como es el caso de los quelatos de hierro y otros
micronutrimentos (Steiner, 1968).
Capítulo I
9
Cada especie vegetal que se cultiva en hidroponía requiere solución nutritiva con
características muy específicas. Las principales características que influyen en el
crecimiento, desarrollo y calidad de los cultivos y sus productos de importancia
económica son, según Steiner (1968): la relación mutua de los cationes K+, Ca2+, y
Mg2+; la relación mutua entre los aniones NO3-, H2 PO4
- y SO4-2; la concentración
iones representada por el potencial osmótico; y el pH. Este último aspecto es
determinantes en la solución nutritiva. Las plantas pueden sobrevivir en un amplio
intervalo sin sufrir desórdenes fisiológicos aparentes, siempre y cuando todos los
nutrimentos se suministren en forma asimilable. El crecimiento y desarrollo de las
plantas se ven reducidos de modo marcado en condiciones de acidez y alcalinidad
extremas. El pH ejerce sus efectos principales sobre la asimilación de los
nutrimentos, la capacidad de intercambio catiónico y la actividad biológica
(Cadahia, 2000; Baca, 1983).
1.3. CONCLUSIONES DE LA REVISIÓN DE LITERATURA El tulipán es un cultivo no tradicional en nuestro país; sin embargo, es muy
cotizado en el mercado nacional. Las condiciones climáticas y geográficas de
México, lo posicionan como un productor potencial de esta especie, que pueda
exportar en fechas diferentes a las de los países líderes.
La hidroponía representa una herramienta valiosa en la producción de tulipán
dado que facilita el manejo del cultivo, aumenta los niveles de producción, y
emplea volúmenes controlados de agua, entre muchos otros aspectos. Un medio
de cultivo o sustrato debe diseñarse considerando que la mezcla de dos o más
componentes por lo general produce interacciones que hacen que las propiedades
físicas de la mezcla final puedan sustituir su utilización contemplando algunos
materiales cuya disponibilidad en las zonas de producción tengan buen potencial
para su explotación y bajos costos de adquisición.
Capítulo I
10
1.4. LITERATURA CITADA Abad. M, Martínez H, M. D., Martínez G., P. F. y Martínez, C. J. 1993. Evaluación
agronómica de los sustratos de cultivo. Acta Horticulturae 11:141-154.
Abad M, Noguera P, Noguera V, Roig A, Cegarra J, Paredes C, 1997.
Reciclado de residuos orgánicos y su aprovechamiento como sustratos de cultivo.
Actas de Horticultura 19: 92-109.
Baca C., G. A. 1983. Efecto de la solución nutritiva, la frecuencia de los riegos, el
substrato y la densidad de siembra en cultivos hidropónicos al aire libre de pepino,
melón y jitomate. Tesis de doctorado. Centro de Edafología. Colegio de
Postgraduados. Chapingo, México.
Bañon A. S, R. A. Cifuentes, Fernández H. J. A., and González B., G. A. 1993.
Gerbera, Lilium, Tulipán y Rosa. Ediciones Mundi Prensa.
Cadahia, C. L. 2000. Fertirrigación. Cultivos hortícolas y ornamentales. 2a. edición.
Editorial Mundi-Prensa. 475 p.
Cirielli, J. R. 1998. Historia, expansión, morfología y ciclo del tulipán. Convenio INTA-
PCIA. Santa Cruz, Bolivia. 9 p.
Cirielli, J. R., Mora, J. y Díaz, B. 1999. Informe post-cosecha en Tulipanes Río
Gallegos: Convenio INTA-UNPA-CAP. Santa Cruz, Bolivia. 30 p.
CIHNM. 1997. Hidroponía: Un nuevo campo en la agricultura. 2da. edición. Tercer Curso
Taller de Hidroponía. UNALM. Lima, Perú. 112 p. de Hidroponía. UNALM.
Lima,Perú. 112 p.
Consejo Mexicano de la Flor. 2005. Estadísticas de producción florícola en el Estado de
México. Región VI. (Coatepec Harinas).
De Hertogh, A. A. and Le Nard, M.1993. Tulipa. In: De Hertogh, A. A. and Le Nard, M.,
eds. The physiology of flower bulbs. Amsterdam: Elsevier Science Publishers,
617–682.
Dimitrios, S. 2003. Hydroponic: A modern technology supporting the application of
integrated crop management in greenhouse. Food Agriculture and Environment. 1:
80-86.
Manavella, F., Martino, L., Alfieri, P., y Moreno, P. 1999. Producción de bulbos de
tulipán en el norte de Santa Cruz, Bolivia. Convenio INTA-CAP-UNPA. 23pp.
Capítulo I
11
Rodríguez, R. S. 2002. Hidroponía: Agricultura y Bienestar. Universidad Autónoma de
Chihuahua. México. 175 p.
Samperio, G. 2000. Hidroponía Comercial. Editorial Diana. México. 172 p.
Steiner, A. A. 1968. Soilles culture. pp. 324-341. In: Proceedings of the 6th colloquium of
the International Potash Institute. Florence, Italy. Published by: Int. Potash Inst.
Berne, Switzerland.
Capítulo II
12
CAPÍTULO II. EVALUACIÓN DE SUSTRATOS SOBRE EL CRECIMIENTO RADICAL Y DESARROLLO VEGETATIVO DE TULIPÁN
(Tulipa gesneriana)
I. INTRODUCCIÓN Los cambios tecnológicos actuales en la agricultura están sustituyendo de manera
considerable la tecnología tradicional por el cultivo hidropónico y en sustrato (Abad
y Noguera, 1997). Lógicamente, este fenómeno es más pronunciado en los
sectores intensivos de la agricultura, como lo es el caso de la producción florícola
y hortícola, como resultado de la presencia de factores limitantes para la
continuidad de cultivos intensivos en pleno suelo (agentes fitopatógenos,
salinidad, etc.), que obligan a adoptar técnicas alternativas.
En el Estado de México la producción de tulipán se realiza de manera
convencional utilizando el suelo como tal. De ahí, que en mayor proporción la
tierra de monte sola o combinada con otros materiales resulta adecuada en la
producción hortícola, ornamental y forestal (Arias, 1998). Sin embargo, si
consideramos que actualmente se cultivan en México alrededor de 3075 ha de
especies ornamentales esto equivale a 500,000 m3 de sustrato utilizado (tierra de
monte), lo cual implica un impacto ambiental alto por el uso irracional del recurso
suelo (García et al., 2001; Consejo Mexicano de la Flor, 2005). Dicho uso
continuo e intensivo del suelo ocasiona que éste se encuentre fuertemente
degradado y que en consecuencia se deban adoptar soluciones alternas y se
tenga la necesidad de transportar plantas completas a distintos lugares de donde
fueron cultivadas; hecho muy habitual cuando se trata de plantas ornamentales en
las que su lugar de producción puede distar significativamente del lugar de
comercialización o consumo. Una alternativa a la degradación del suelo es la
representada por el empleo de sustratos alternativos en la producción florícola.
El desarrollo de los sustratos tiene su origen en el cultivo de plantas en contenedor
(Burés, 1997; Cadahia, 2000), y el cultivo de plantas en sustrato presenta
diferencias sustanciales respecto al cultivo de plantas en pleno suelo (Abad et al.,
1993). Éstas resultan decisivas en el correcto crecimiento de la planta, ya que se
Capítulo II
13
produce una clara interacción entre las características del contenedor (altura,
diámetro, etc.) y el manejo del sistema planta–sustrato–solución (Cabrera, 1999).
En el caso del cultivo de plantas en contenedor el volumen de sustrato es limitado
y de él las plantas absorben oxígeno, agua y nutrimentos. Por otra parte, en cultivo
intensivo de plantas, en el que las temperaturas están controladas y los niveles de
nutrimentos en el sustrato acostumbran a ser altos, se produce una mayor
absorción de agua y transpiración por la planta, debido a que el tiempo de
apertura de los estomas es superior (Abad et al., 1993; Rodríguez, 2002). Esto
obliga a regar frecuentemente para que en todo momento exista agua fácilmente
disponible en el sistema radicular, lo que sin duda puede provocar problemas por
falta de aireación. Por lo anterior, es conveniente emplear sustratos con una
elevada porosidad (Iskander, 2002).
El objetivo del presente trabajo fue conocer el efecto de algunos sustratos y
mezclas de éstos, sobre el crecimiento de vástago y de raíz de tulipán y
contenidos nutrimentales en éstos; así como indicadores de calidad.
1.1. SUSTRATOS 1.1.1. Generalidades Un sustrato es un sistema en el que crecen las raíces y está conformado por tres
fases: sólida, líquida y gaseosa. Un buen sustrato debe tener más del 85% de
porosidad total. El balance de micro y macroporos es fundamental para la
obtención de plantas de calidad, debido a que los primeros son los responsables
de retener agua y los segundos de la circulación de los gases, del cual el oxígeno
es generalmente el factor limitante para las raíces (Abad y Noguera, 1997). El
sustrato ideal será aquel que proporcione a la planta las mejores condiciones para
su crecimiento, que posea un bajo impacto ambiental y que la relación
beneficio/costo sea adecuada para el sistema productivo. Dado que de manera
práctica, nos es posible que un solo sustrato cumpla con estas condiciones
Capítulo II
14
frecuentemente se tiende a utilizar más de uno, dependiendo del cultivo
establecido (Burés, 1997). El desarrollo de materiales alternativos que pueden ser utilizados como sustratos
es un reto, ya que parte de los resultados obtenidos han sido promisorios pero
muy heterogéneos. Es importante considerar criterios como: la caracterización de
materiales (física, química y biológica) y pruebas de crecimiento vegetal, puesto
que el estudio de sustratos constituye una nueva área del conocimiento en
desarrollo, que exige incluir aspectos fundamentales en la evaluación agronómica
de materiales alternativos (Cabrera, 1999). La mayoría de sustratos usados en la
producción de plantas ornamentales están constituidos por componentes
orgánicos (turba, aserrín, cortezas, polvo de coco, estiércol, paja, cascarilla de
arroz y cacahuate, y vermicompostas, entre otros), e inorgánicos (arena, perlita,
vermiculita, piedra pomez, y otros sustratos de origen mineral) principalmente. De
ahí que cuando se trabaja con mezclas de sustratos, deba considerarse la
utilización de cantidades suficientes de componentes orgánicos (40 %), que
permitan cambios importantes en las propiedades físicas; mientras que en los
componentes inorgánicos las cantidades no deben sobrepasar el 30 % del
volumen total, pues requiere especial atención por contribuir en la densidad
aparente (Ansorena, 1994). Es importante mencionar que la mayoría de sustratos
orgánicos son ácidos y se caracterizan por que contienen baja disponibilidad de
nutrimentos. 1.1.2. Sustratos agrícolas Los sistemas de producción de los cultivos sin suelo tuvieron su gran expansión
en la segunda mitad del Siglo XX en Europa y luego en Estados Unidos. Las
causas que los impulsaron fueron: cultivos con alto valor de rentabilidad,
incremento de la producción en pequeñas superficies, uso de sistemas de control
ambiental a través del uso de invernaderos y la disminución cuantiosa de pérdidas
por patógenos del suelo (Ansorena, 1994). A continuación se enuncian algunas
características de los sustratos evaluados en esta investigación:
Capítulo II
15
• Tezontle: Es una roca de origen volcánico, poroso, ligero, de color rojo o
negro, cuyo diámetro de partículas oscila entre 0.5 y 1.5 cm. Tiene la
ventaja de ser un material inerte, fácil de desinfectar, aislante, bien aireado,
con buena estabilidad y durabilidad. Su única desventaja es la poca
capacidad de retención de humedad.
• Vermicomposta: Se considera un abono orgánico equilibrado y de fácil
manejo, brinda ventajas físicas, químicas y microbiológicas al mezclarse
con otros sustratos utilizados en la agricultura. Además de que incrementa
la capacidad de retención de agua, regula la permeabilidad, mantiene el
fósforo en forma asimilable y también aporta nutrimentos al suelo (Martínez,
1994). Sin embargo, en las vermicompostas el exceso de materia orgánica
favorece que el agua se acumule en cantidades excesivas provocando un
inadecuado intercambio gaseoso por la saturación del espacio poroso y una
insuficiente absorción de nutrimentos, lo que ocasiona debilitamiento de las
raíces haciéndolas más vulnerables a cualquier ataque por patógenos
(Rodríguez, 2002).
• ProMix®: Las mezclas de turba fueron introducidas en la Universidad de
Cornell a inicios de los años 60’s. Esta es considerada un medio ideal por
ella misma si contiene agregados gruesos, puesto que la turba tiene la
capacidad de retener nutrientes, razón por la que no se deben aplicar
sobredosis de fertilizantes. Para asegurar que el exceso de sales de los
nutrimentos remanentes se lixivien del medio será necesario humedecer
esta mezcla de turba completamente en cada riego. Es un material que
presenta una baja conductividad hidráulica a bajos potenciales de agua y es
muy susceptible a la evaporación, lo que origina una baja disponibilidad de
agua bajo condiciones secas (Beardsell et al., 1979; Örlander y Due, 1986).
Para poder acondicionar su uso como un medio de crecimiento se le
combina con diferentes materiales (Menzies y Aitken, 1996; Stringheta et
al., 1996; Di Benedetto et al., 2000).
Capítulo II
16
1.1.3. Características de un sustrato La importancia de un sustrato radica no solo en lo que contiene, sino en sus
propiedades e indicadores. Debe ser suficientemente denso y firme para sostener
en su sitio las plantas, retener humedad para que los riegos no sean tan
frecuentes, poroso para facilitar que drene del exceso de agua, permitiendo así la
entrada de oxígeno a la raíces. Hay que recalcar que ningún medio es
considerado perfecto para todas las plantas y condiciones de crecimiento, puesto
que las diferentes especies varían en sus necesidades.
Dentro de las principales funciones de los sustratos para mantener un buen
crecimiento de las plantas están: proporcionar un anclaje y soporte para la planta,
retener humedad de modo que esté disponible para la planta, además de permitir
el intercambio gaseoso entre las raíces y la atmósfera y finalmente servir como
depósito para los nutrimentos de la planta. Considerando lo anterior, el sustrato
debe ser de bajo peso, porosidad del 20–35 %, buena capacidad de retención de
humedad, ligeramente acido, buena capacidad de intercambio catiónico,
capacidad de mantener un volumen constante húmedo o seco, fácil de
almacenarse por largos períodos sin que se modifiquen sus propiedades físicas y
químicas.
1.1.4. Presencia de nutrimentos en un sustrato Calcio y magnesio son elementos esenciales para un buen crecimiento radicular,
ya que son retenidos (absorbidos) por el sustrato, y no son fácilmente lixiviables,
por lo que quedan disponibles a la planta por largos períodos. El fósforo se
incorpora al sustrato o mezcla en pre-siembra como superfosfato simple o triple
como una recomendación general, ya que son convertidos a formas menos
solubles, razón que los hace menos susceptibles a lixiviación y aumentar el tiempo
de disponibilidad. El potasio es un elemento que en algunos sustratos está
presente o es agregado en forma de sal soluble como KNO3 o K2SO4. Tiene el
inconveniente de no ser absorbido por el sustrato, por lo que se considera
susceptible a la lixiviación. Se recomiendan aplicaciones periódicas durante el
Capítulo II
17
ciclo del cultivo en condiciones de fertirriego (Cabrera, 1999). La calidad de las
plantas ornamentales depende fundamentalmente del tipo de sustrato utilizado
para cultivarlas y particularmente de sus características físicas y químicas, ya que
el desarrollo y funcionamiento de las raíces están directamente ligados a las
condiciones de aireación y contenido de agua; además de intervenir directamente
en el suministro de nutrimentos necesarios para la especie que se desarrolle en él.
1.1.5. Propiedades físicas del sustrato En la utilización de un sustrato se deben contemplar previamente al
establecimiento de un cultivo las características físicas, debido a que si son
inadecuadas difícilmente se podrán corregir sin afectar el desarrollo de la planta
(Ansorena, 1994). Cabe señalar que la porosidad del sustrato y particularmente su
distribución entre la porosidad de aire y retención de humedad son consideradas
las características físicas más importantes para el crecimiento y desarrollo de los
cultivos (Cabrera, 1999).
1.1.6. Propiedades químicas del sustrato Estas propiedades en los sustratos tienen un efecto distinto a las propiedades
físicas puesto que pueden ser modificadas durante el ciclo de producción y
particularmente al utilizarse en fertirrigación intensiva, donde los fertilizantes son
de lenta liberación (Cabrera, 1999). Así mismo, las características químicas de un
sustrato contemplan indicadores que pueden afectar el cultivo una vez
establecido, especialmente la conductividad eléctrica y el valor de pH.
Capítulo II
18
II. OBJETIVOS 2.1. Objetivo general Evaluar el efecto de mezclas de sustratos sobre crecimiento, indicadores de
calidad de la flor, y concentración y acumulación nutrimental en vástago y bulbo de
tulipán.
2.2. Objetivos específicos Determinar el efecto de distintas mezclas de sustratos sobre el crecimiento
y parámetros de calidad del tulipán.
Evaluar la influencia que distintas mezclas de sustratos tienen sobre la
concentración y acumulación nutrimental en vástago y bulbo de tulipán.
III. HIPÓTESIS 3.1. Hipótesis general El sustrato empleado determina el crecimiento y calidad en tulipán, así como la
concentración y acumulación nutrimental en vástago y bulbo de esta especie.
3.2. Hipótesis específica
Los sustratos empleados tienen diferentes efectos sobre el crecimiento y
parámetros de calidad en tulipán.
La concentración y acumulación nutrimental en vástago y bulbo de tulipán
son afectadas por el sustrato empleado en su producción.
Capítulo II
19
IV. MATERIALES Y MÉTODOS
4.1. Ubicación del experimento y condiciones experimentales
La investigación se realizó en el Campus Montecillo del Colegio de
Postgraduados, localizado a 98o 52’ 3“ latitud norte y 2220 msnm dentro del
Municipio de Texcoco, Estado de México en un invernadero tipo cenital de
estructura metálica y plástico blanco lechoso calibre 720. En este invernadero la
iluminación osciló entre 950 y 990 fc en la parte suroeste y sureste de dicho
invernadero, mientras que en la parte central se registraron lecturas de entre 1770
y 1940 fc.
En el período comprendido de noviembre a enero en que se realizó la fase
experimental, se registró la iluminancia presente en horarios de 9:00, 12:00, 15:00
y 18:00 hrs.
4.2. Material vegetal Se sembraron bulbos de tulipán cv. Ile de France en cada uno de los tratamientos,
calibre 12+ y cuyo proveedor comercial en México, D. F es AKIKO, distribuidor
comercial de bulbos, semillas, esquejes, microcortes y plántulas para flor y maceta
(AKIKO, 2005).
4.3. Diseño experimental y tratamientos En este experimento se evaluaron los sustratos siguientes: tezontle (grava
volcánica); ProMix® (mezcla del helecho Sphagnum, perlita y vermiculita), y
Nutriterra® (vermicomposta). Los dos últimos fueron mezclados con tezontle de
dos granulometrías distintas (3 y 5 mm) en la proporción (70:30 de
ProMix®:tezontle y de Nutriterra®:tezontle, respectivamente). El tezontle en sus
dos granulometrías fue evaluado sin mezclarse con otro sustrato.
Los tratamientos evaluados (Cuadro 1) fueron distribuidos en un arreglo
completamente al azar (Figura 1) con ocho repeticiones por tratamiento.
Capítulo II
20
Cuadro 1. Tratamientos evaluados.
Tratamiento Sustrato Proporción (v:v)
3T Tezontle 3 mm 100
5T Tezontle 5 mm 100
3TNU Tezontle 3mm : Nutriterra 70:30
5TNU Tezontle 5mm : Nutriterra 70:30
3TPX Tezontle 3mm : ProMix® 70:30
5TPX Tezontle 5mm : ProMix® 70:30
5TPXR6 5TNUR2 5TR5 3TPXR1 3TR4 3TNUR6 5TR8 5TPXR8 3TNUR5
3TR3 5TR6 3TPXR6 5TPXR7 3TNUR4 3TR1 3TPXR7 5TNUR3 5TR7
5TNUR5 3TPXR4 5TNUR8 3TR7 5TNUR6 5TPXR2 5TNUR7 5TR2 3TPXR2
5TR1 3TR5 5TPXR4 3TNUR15TR4
3TPXR5 3TR8 3TNUR2 5TNUR4
3TPXR8 3TNUR3 3TR2 5TR3 5TPXR1 5TNUR1 5TPXR3 3TPXR3 3TNUR7
5TPXR5 3TNUR8 3TR6
Figura 1. Distribución física de los tratamientos en invernadero.
4.4. Establecimiento del experimento 4.4.1. Preparación de los bulbos Limpieza de bulbos. Esta práctica se realizó antes de la desinfección, quitando la
cubierta cercana a la corona de las raíces, con el propósito de impedir que los
ápices radicales se pudieran quemar por efecto de la solución desinfectante en la
corona, además de favorecer el enraizamiento (Cirielli, 1998).
Desinfección del bulbo. Los bulbos fueron previamente sumergidos en una
solución de Ridomil Bravo (2 g L-1 de agua; ingrediente activo: Metalaxil m +
clorotalonil) y Captan (1 g L-1 agua; ingrediente activo: tioftalamidas) con agua
Capítulo II
21
durante 15 minutos, con la finalidad de prevenir ataques por Fusarium oxysporum,
Rhizoctonia solani, Botrytis y Phytium sp. Posteriormente los bulbos se dejaron
escurrir durante 15 minutos y se procedió a sembrarlos (Manavella et al., 1999).
Riego pre-plantación.- Éste se realizó antes de colocar los bulbos en las
macetas, de tal manera que al momento de la plantación el sustrato estuviera
suficientemente húmedo para facilitar el asentamiento de los bulbos sin apretarlos
y evitar que se rompiera la corona de las raíces.
4.4.2. Siembra Se sembraron 48 bulbos de tulipán calibre 12+ (ocho bulbos por tratamiento),
mismos que se colocaron en macetas de 7” las cuales contenían los sustratos
citados en el Cuadro 1, dejando descubierta la punta del bulbo (Cirielli et al.,
1999). El intervalo de riegos suministrados en la planta durante la etapa inicial de
emergencia fue cada tercer día durante 15 días utilizando solamente agua,
posteriormente se inició la aplicación de solución nutritiva (Cuadro 2), evaluando
en forma visual la humedad retenida en cada uno de los sustratos en estudio
(Bañon et al., 1993).
4.4.3. Preparación de soluciones nutritivas
Se preparó solución nutritiva universal de Steiner al 50 % (Cuadro 2), a partir de
reactivos grado analítico (macronutrimentos) (Steiner, 1984); mientras que las
cantidades de microelementos adicionados fueron las siguientes (mg L-1): 1.6 Mn,
0.11 Cu, 0.865 B y 0.023 Zn (Baca, 1983). El hierro fue abastecido como Fe-EDTA
a una concentración de 5 mg L-1 a partir de una solución concentrada preparada
según el método descrito por Steiner y van Winden (1970). El valor de pH se
ajustó a 5.5 empleando HCl 1N.
Capítulo II
22
Cuadro 2. Fuentes de fertilización de macronutrimentos y cantidades de éstas
para elaborar la solución nutritiva de Steiner al 50%.
Ca(NO3)2 • 4H2O KNO3 KH2PO4 MgSO4 • 7H2O K2SO4
g L-1
0.531 0.151 0.068 0.246 0.130
4.5. Variables de estudio 4.5.1. Inicio de brotación: Se consideró a partir de la fecha de siembra hasta que
inició la emergencia del brote.
4.5.2. Número de hojas: Al momento del corte se registró el número de hojas
existentes por cada tallo en cada uno de los tratamientos.
4.5.3. Diámetro de tallo: Se midió utilizando un Vernier, considerando tres
lecturas por cada tallo (parte basal, media y apical) a los 59 días después de la
siembra.
4.5.4. Diámetro de flor: Se consideró la parte media del capullo, para medir su
diámetro utilizando un Vernier, al momento de la cosecha.
4.5.5. Longitud de capullo: La longitud obtenida en los capullos de cada uno de
los tratamientos se midió a la cosecha con un Vernier, tomando la lectura a partir
de la base del cuello del mismo hasta la parte superior.
4.5.6. Altura de planta: Este dato se obtuvo utilizando cinta métrica, midiendo a
partir de la base del sustrato hasta la altura máxima alcanzada por el tallo al
momento del corte.
Capítulo II
23
4.5.7. Biomasa fresca: Al momento de la cosecha (59 días después de la siembra
de bulbos) se cortaron los tallos florales y también bulbos, para posteriormente
pesarlos en una balanza electrónica (Mod. EK 3052-P, cap. 5 kg/11 lb).
4.5.8. Biomasa seca: Después de la cosecha de tallo y bulbos respectivamente,
ambas partes de la planta se introdujeron en una estufa de secado (circulación
forzada) Modelo EAAF, a una temperatura de 70º C por un período de 3 días
para el caso de tallos; mientras que los bulbos permanecieron 5 días, debido a la
consistencia que éstos presentan y posteriormente se pesaron en una balanza
electrónica (Mod. EK 3052-P, cap. de 5 kg/11 lb).
4.5.9. Análisis químico de tejido vegetal Una vez secas las muestras se molieron en un molino tipo Wiley de acero
inoxidable provisto de un tamiz malla 40. En dicho material se determinó el
contenido de nitrógeno total empleando el método Semimicro-Kjeldahl (Bremner,
1965) y la determinación de P, K, Ca, Mg, Fe, Cu, Zn, Mn y B se realizó en
extractos obtenidos en digestión húmeda y analizados con espectrofotometría de
Inducción con Plasma acoplado (ICP-AES VARIAN™ Liberty II) (Alcántar y
Sandoval, 1999).
4.5.10. Análisis químico de los sustratos El análisis consistió en determinar en cada uno de los sustratos utilizados N, K,
Ca, Mg y Na, conductividad eléctrica (CE) y pH. Para cada determinación se
consideraron tres repeticiones utilizando la metodología del análisis de sustratos
propuesta por Ansorena (1994).
4.5.11. Capacidad de retención de humedad de los sustratos En los sustratos evaluados se determinaron las curvas de retención de humedad
mediante el método de Olla y membrana de presión (Richards, 1947).
Capítulo II
24
4.6. Análisis estadístico
Los resultados se analizaron estadísticamente realizando análisis de varianza y
comparación de medias mediante la prueba de Tukey (p ≤ 0.05 %); empleando el
paquete estadístico SAS (SAS, 1990), de acuerdo al arreglo completamente al
azar empleado en el experimento.
Capítulo II
25
V. RESULTADOS Y DISCUSIÓN
5.1. Caracterización de sustratos
5.1.1 Análisis químico de sustratos Los resultados obtenidos en el análisis químico de los sustratos muestran
variaciones y permiten identificar en forma clara a aquellos con mejor potencial de
producción y calidad comercial (Cuadro 3).
El valor de pH recomendado para los sustratos (cultivo sin suelo) oscila entre 5.4 y
6; no obstante, que éste varía dependiendo del cultivo (Dole y Wilkins, 1999). El
pH del sustrato original puede ser modificado por distintos componentes del medio
de crecimiento, la alcalinidad del agua empleada para el riego en el invernadero, y
también por la acidez o basicidad de los fertilizantes empleados en las soluciones
nutritivas. Los diferentes componentes del sustrato, pueden liberar cantidades
variables de iones hidrógeno que modifican el pH.
Los valores de pH obtenidos en los sustratos evaluados en esta investigación
mostraron un amplio intervalo (mínimo y máximo). De ahí, que en base al análisis
realizado se contemple cual de los materiales utilizados: ProMix® (mezcla del
helecho Sphagnum, perlita y vermiculita), Nutriterra® (vermicomposta) y Tezontle
(3 y 5) se encuentran dentro del margen óptimo para que las plantas puedan
crecer sin restricción por disponibilidad nutrimental.
El valor de pH del tezontle se encuentra cercano a la neutralidad, lo cual es
apropiado para la disponibilidad nutrimental. En ProMix® se registró un valor de
pH de 4.71; mientras que la Nutriterra® tuvo un alto valor de pH, el cual es una
característica de materiales orgánicos, principalmente vermicompostas, y es
atribuido a los procesos de degradación que traen consigo desprendimiento de
amoniaco proveniente del catabolismo de las proteínas (Zamora, 2005).
La conductividad eléctrica (CE), es el indicador de la concentración de sales
totales en un sustrato, y el valor óptimo de éste en sustratos agrícolas según
Ansorena (1994), oscila entre 0.75 y 3.49 dS m-1; puesto que en este intervalo no
Capítulo II
26
se afecta el potencial osmótico que se encuentra relacionado con la concentración
iónica en la fase líquida. La determinación de la conductividad es una medición
indirecta del estatus nutricional del cultivo (Wright et al., 1990).
Cuadro 3. Resultados de análisis químico de sustratos.
CE Conductividad Eléctrica, P (Fósforo), K (Potasio), Ca (Calcio), Mg (Magnesio), Na (Sodio).Zamora (2005). N (Nitrógeno) es reportado según García et al., 2001.
Los sustratos Tezontle y ProMix®, presentan conductividades eléctricas
comprendidas entre el intervalo considerado óptimo. La vermicomposta empleada
presenta una conductividad eléctrica mayor a la óptima, lo que representa
concentración excesiva de sales. Altos contenidos de sales solubles pueden
conducir en algunas especies a la “sequía fisiológica”, que ocurre cuando altas
concentraciones de sales solubles en el medio inhiben la absorción de agua por
las raíces debido a la ósmosis competitiva. Es pertinente mencionar, que en
tulipán no se presentó esta condición, y esta especie el tulipán crece entre 0.8–1.0
dS m-1. Entre otras consecuencias negativas de altas conductividades eléctricas
en el sustrato se encuentran: la necrosis marginal de hojas y pobre crecimiento
radical (Dole y Wilkins, 1999). Mientras que algunas especies ornamentales
pueden mostrar estos efectos adversos por alta CE, algunas otras pueden tolerar
altos niveles como el caso del pensamiento (Viola x wittrockiana Gam.), la cual
Propiedades Método Tezontle Pro Mix® Nutriterra® pH Pasta de saturación 7.35 4.71 8.30
C.E (dS.m-1) Extracto de
saturación
0.15 1.46 12.18
N (%) Semimicro-Kjeldahl 0.61 0.82 0.52
P (mg kg-1) Digestión húmeda 0.31 5.36 0.35
K (mg kg-1) Digestión húmeda 2.74 8.2 31.92
Ca (meq L-1) EDTA 22.0 13.47 3.43
Mg (meq L-1) EDTA 10.09 8.09 1.77
Na (ppm) Flamometría 14.82 11.02
Capítulo II
27
crece en forma óptima a CE entre 1.5 y 4 dS m-1 (van Iersel, 1999) y los rosales
pueden tolerar una conductividad hasta de 3 dS m-1 (Ferrer y Salvador, 1986).
Los resultados obtenidos en el análisis de nutrimentos muestran similitud en los
sustratos para el caso del nitrógeno; en lo que ha fósforo respecta, la
concentración más alta se obtuvo en ProMix®. Por otro lado, es importante
destacar que ambos sustratos de origen orgánico presentan altos contenidos de
sodio soluble (Heiskanen, 1995).
De acuerdo con Etchevers (1989), sustratos como el peat moss-turba, presentan
un pH fuertemente ácido con efectos de salinidad casi nulos (CE), una muy alta
capacidad de intercambio catiónico (CIC), muy ricos en materia orgánica, baja
relación C/N, altos contendidos de N, P, y bajos niveles de K, Ca y Mg. Mientras
que el tezontle se considera un sustrato con pH moderadamente alcalino, con
efectos de salinidad casi nulos (CE), alta CIC, pobre en materia orgánica, nula
relación C/N, y bajos niveles de N, P, y K.
5.1.2. Curva de retención de humedad Dentro de las propiedades físicas de los sustratos, la capacidad de retención de
humedad es una de las más importantes, debido a que influencia en forma
determinante el crecimiento tanto de vástago como de raíz (Aendekerk, 1993).
En la Figura 2 se muestran las curvas de retención de humedad obtenidas en
cada unos de los sustratos evaluados en esta investigación.
Capítulo II
28
Figura 2. Curvas de retención de humedad de los sustratos evaluados. A. Nutriterra®. B. Promix® C. Tezontle 3 mm. D. Tezontle 5 mm
0
20
40
60
80
0 20 40 60 80 100
Succión, cm
Hum
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, %
0
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400
600
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0 20 40 60 80 100
Succión, cm
Hum
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, %
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, %
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Hum
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, %
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0
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Succión, cm
Hum
edad
, %
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0 20 40 60 80 100
Succión, cm
Hum
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, %
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Succión, cm
Hum
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, %
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0 20 40 60 80 100
Succión, cm
Hum
edad
, %
A.
B.
C.
D.
Capítulo II
29
A partir de las curvas de retención de humedad se calcularon los parámetros agua
difícilmente disponible (ADD), agua retenida (AR), agua fácilmente disponible,
capacidad de aireación (CA), espacio poroso total (EPT), y material sólido (MS)
empleando el software Sdemo 2005 (Cuadro 4). Estos resultados muestran que el
tezontle con ambas granulometrías presenta la menor retención de agua y en
consecuencia los menores contenidos tanto de agua difícilmente como fácilmente
disponible. El sustrato Nutriterra® muestra la menor capacidad de aireación.
Cuadro 4. Propiedades físicas en la curva de retención de humedad.
Sustrato ADD AR AFD CA EPT MS EPT+MS
% en volumen
Nutriterra 20.485 7.0 3.773 10.24 41.51 58.49 100
Peat moss 33.196 6.63 23.901 29.21 92.95 7.05 100
Tezontle 3mm 7.764 1.941 2.911 20.38 33.0 67 100
Tezontle 5mm 8.025 1.146 2.292 20.63 32.1 67.9 100
ADD. Agua Difícilmente Disponible, AR. Agua Retenida, AFD. Agua Fácilmente Disponible, CA.
Capacidad de Aireación, EPT. Espacio Poroso Total, MS. Material sólido, EPT+MS. Espacio
poroso total + Material sólido.
Capítulo II
30
5.2. Indicadores de crecimiento 5.2.1. Días a la emergencia La brotación o emergencia de las plantas fue lenta en el tratamiento 5T en
comparación con el resto donde la respuesta fue muy similar, oscilando entre 15 y
16 días después de la siembra; se observó diferencia estadística significativa entre
el tratamiento 5T y el resto (p ≤ 0.05, análisis estadístico en anexo A Cuadro 1A).
La emergencia tardía en tratamiento 5T fue debida a la baja retención de humedad
del tezontle con granulometría de 5 mm, ocasionada por un menor porcentaje de
microporos (Figura 3).
Figura 3. Días a brotación de bulbos de tulipán cv. Ile de France cultivado en
distintos sustratos. Tratamientos: 3T: Tezontle con granulometría de 3 mm; 5T: Tezontle con
granulometría de 5 mm; 3TNU: Tezontle con granulometría de 3 mm:Nutriterra (70:30, v/v); 5TNU:
Tezontle con granulometría de 5 mm:Nutriterra (70:30, v/v); 3TPX: Tezontle con granulometría de 3
mm:Promix® (70:30, v/v); 5TPX: Tezontle con granulometría de 5 mm:Promix® (70:30, v/v).
Medias con letras distintas indican diferencia estadística significativa (p ≤ 0.05). Líneas sobre las barras indican ±SD.
5.2.2. Altura de planta La altura de planta es considerada una variable de respuesta importante en la
investigación de plantas ornamentales, puesto que es determinante en los
indicadores de calidad comercial que el mercado demanda.
0
4
8
12
16
20
24
28
3T 5T 3TNUR 5TNUR 3TPX 5TPX
Tratamientos
Bro
taci
ón,
días
des
pués
de
la s
iem
bra a
b b b bb
0
4
8
12
16
20
24
28
3T 5T 3TNUR 5TNUR 3TPX 5TPX
Tratamientos
Bro
taci
ón,
días
des
pués
de
la s
iem
bra a
b b b bb
Capítulo II
31
En el presente estudio los resultados obtenidos en altura de planta a lo largo del
ciclo productivo fueron muy variados en los tratamientos evaluados (Figura 4), y
muestran diferencias estadísticas significativas (p ≤ 0.05, análisis estadístico en
anexo A Cuadro 2A a 16A). El incremento de altura registrada en estos
muestreos permitió identificar tratamientos que expresaran el potencial productivo
(desarrollo y crecimiento vegetativo) del cultivar Ile de France; y éstos se pueden
clasificar en tres grupos: los que muestran mayor crecimiento (tratamientos 3TPX
y 5TPX); los que observan crecimiento medio (tratamientos 3T, 3TNU y 5TNU); y
el que muestra crecimiento bajo (tratamiento 5T). Este agrupamiento permite
identificar que los tratamientos donde se utilizó ProMix® mezclado tanto con
tezontle de 3 mm como de 5 mm, mostraron las mayores alturas de planta, y a la
cosecha fueron estadísticamente diferentes al resto de los tratamientos. Villanueva
et al. (1998), encontraron una respuesta similar al evaluar la mezcla de Peat moss
con otros materiales en Kalanchoe. Lo anterior permite ampliar el panorama
alternativo del uso de sustratos con ciertas características físicas y químicas,
mismas que favorecieron el crecimiento de vástago registrándose una altura final
de 35 cm. En los bulbos sembrados en tezontle con granulometría de 5 mm sin
mezclarse con otro material, el crecimiento de vástago no observó incremento,
pues los vástagos alcanzaron solo el 33 % de la altura de planta máxima
registrada en el experimento.
Capítulo II
32
Figura 4. Altura de plantas de tulipán cv. Ile de France cultivado en distintos
sustratos. Tratamientos: 3T: Tezontle con granulometría de 3 mm; 5T: Tezontle con
granulometría de 5 mm; 3TNU: Tezontle con granulometría de 3 mm:Nutriterra (70:30, v/v); 5TNU:
Tezontle con granulometría de 5 mm:Nutriterra (70:30, v/v); 3TPX: Tezontle con granulometría de 3
mm: Promix® (70:30, v/v); 5TPX: Tezontle con granulometría de 5 mm:Promix® (70:30, v/v).
En la Figura 5 se observa la dinámica del crecimiento del vástago durante el ciclo
en intervalos de diez días. El crecimiento lento del vástago en el tratamiento 5T se
observa desde las fases iniciales (Figura 5A, 19 días). Se observó que el
tratamiento 5TNU mostró resultados estadísticamente similares a los de los
tratamientos conteniendo ProMix® en las fases iniciales, tendencia que cambió en
forma clara a partir de los 38 dds (Figura 5C). La altura de planta en los
tratamientos 3TNU y 5TNU fue similar a partir de los 38 dds (Figura 5C, D y E).
05
10152025303540
19 22 25 29 32 36 38 46 49 52 57 59
Días después de la siembra
Altu
ra d
e pl
anta
, cm 3T
5T3TNU5TNU3TPX5TPX
Capítulo II
33
Figura 5. Altura de plantas de tulipán cv. Ile de France cultivado en distintos sustratos a los 19 (A.), 29 (B.), 38 (C.), 49 (D.) y 59 (E.) días después de la siembra de bulbos. Tratamientos: 3T: Tezontle con granulometría de 3 mm; 5T: Tezontle con granulometría de 5 mm; 3TNU: Tezontle con granulometría de 3 mm:Nutriterra (70:30, v/v); 5TNU: Tezontle con granulometría de 5 mm:Nutriterra (70:30, v/v); 3TPX: Tezontle con granulometría de 3 mm:Promix® (70:30, v/v); 5TPX: Tezontle con granulometría de 5 mm:Promix® (70:30, v/v). Barras con letras distintas en cada figura indican diferencia estadística significativa (p ≤ 0.05). Líneas sobre las barras indican ±SD.
0
1
2
3
4
5
3T 5T 3TNU 5TNU 3TPX 5TPX
Sustratos
Altu
ra d
e pl
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, cm
0
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3T 5T 3TNU 5TNU 3TPX 5TPX
Sustratos
Altu
ra d
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, cm
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5
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3T 5T 3TNU 5TNU 3TPX 5TPX
Sustratos
Altu
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, cm
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3T 5T 3TNU 5TNU 3TPX 5TPX
Sustratos
Altu
ra d
e pl
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, cm
05
1015202530354045
3T 5T 3TNU 5TNU 3TPX 5TPX
Sustratos
Altu
ra d
e pl
anta
, cm
aab
abab
c
b
aab
bcc
d
c
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c
b
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bb
c
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A.
B.
C.
D.
E.
0
1
2
3
4
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3T 5T 3TNU 5TNU 3TPX 5TPX
Sustratos
Altu
ra d
e pl
anta
, cm
0
2
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3T 5T 3TNU 5TNU 3TPX 5TPX
Sustratos
Altu
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e pl
anta
, cm
0
5
10
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3T 5T 3TNU 5TNU 3TPX 5TPX
Sustratos
Altu
ra d
e pl
anta
, cm
0
5
10
15
20
25
30
35
3T 5T 3TNU 5TNU 3TPX 5TPX
Sustratos
Altu
ra d
e pl
anta
, cm
05
1015202530354045
3T 5T 3TNU 5TNU 3TPX 5TPX
Sustratos
Altu
ra d
e pl
anta
, cm
aab
abab
c
b
aab
bcc
d
c
aa
bb
c
b
aa
bb
c
b
aabb
c
b
A.
B.
C.
D.
E.
Capítulo II
34
5.2.3. Diámetro de tallo Se midió el diámetro inferior, medio y superior de los tallos florales en la cosecha
(59 dds), y en estas determinaciones existieron diferencias estadísticas
significativas entre tratamientos (p ≤ 0.05, análisis estadísticos en Anexo A Cuadros 17A a 19A). En todos los tratamientos se observó que los diámetros de
tallo son mayores en la parte basal (inferior de éstos) y disminuye gradualmente
hacia la parte superior donde en consecuencia los diámetros son inferiores
(Figura 6).
Los tratamientos 3TNU y 5TNU mostraron un diámetro inferior, el cual osciló entre
0.90 y 1 cm de grosor, mientras que los valores más altos fueron obtenidos en los
tratamientos 3T, 3TPX y 5TPX (1.02 a 1.10 cm). En el tratamiento 5T se
registraron diámetros basales promedio de 0.18 cm de grosor de tallo, lo cual es
una respuesta esperada debido a la mínima altura de planta registrada en este
tratamiento (Figura 6).
Figura 6. Diámetro de tallos de tulipán cv. Ile de France cultivado en distintos
sustratos a la cosecha (59 días después de la siembra de bulbos). Tratamientos: 3T:
Tezontle con granulometría de 3 mm; 5T: Tezontle con granulometría de 5 mm; 3TNU: Tezontle
con granulometría de 3 mm:Nutriterra (70:30, v/v); 5TNU: Tezontle con granulometría de 5
mm:Nutriterra (70:30, v/v); 3TPX: Tezontle con granulometría de 3 mm:Promix® (70:30, v/v); 5TPX:
Tezontle con granulometría de 5 mm:Promix® (70:30, v/v).
Barras en cada determinación con letras distintas indican diferencia estadística significativa (p ≤ 0.05).
0
0.2
0.4
0.6
0.8
1
1.2
inferior medio superior
Diámetro
Diá
met
ro d
e ta
llo, c
m 3T5T
3TNU
5TNU3TPX
5TPXbb b
aaa a a
a aa a a
aaa a a
0
0.2
0.4
0.6
0.8
1
1.2
inferior medio superior
Diámetro
Diá
met
ro d
e ta
llo, c
m 3T5T
3TNU
5TNU3TPX
5TPXbb b
aaa a a
a aa a a
aaa a a
Capítulo II
35
Para diámetro medio el comportamiento entre tratamientos tuvo una diferencia
mínima en la mayoría de los casos, dado que los resultados obtenidos oscilaron
entre 0.75 y 0.88 cm. En lo que respecta al tratamiento 5T, éste mostró la misma
tendencia que presentó en el diámetro basal.
En resultados correspondientes a diámetro superior de tallo, el tratamiento 5TPX
mostró 0.70 cm de grosor y fue superior al resto de los tratamientos los cuales
muestran un intervalo de 0.58 a 0.62 cm, con excepción del tratamiento 5T.
5.2.4. Número de hojas por planta En la variable número de hojas por planta existieron diferencias estadística
significativas (p ≤ 0.05) entre los tratamientos (análisis estadístico en Anexo A Cuadro 20A), excepto en el tratamiento 5T (Cuadro 5). El número de hojas
promedio por planta obtenido fue aproximadamente de dos. En esta especie la
cantidad de hojas es una característica de poca importancia, siendo de mayor
relevancia como característica que favorece la estética del tallo floral, la tonalidad
verde de la hoja en postcosecha.
Cuadro 5. Número de hojas en tulipán cv. Ile de France cultivado en distintos
sustratos.
Tratamientos Número de hojas planta-1 3T 1.94 a 5T 0.25 b 3TNU 2.50 a 5TNU 2.06 a 3TPX 2.44 a 5TPX 2.44 a DMS 0.69
Tratamientos: 3T: Tezontle con granulometría de 3 mm; 5T: Tezontle con granulometría de 5 mm; 3TNU: Tezontle con granulometría de 3 mm:Nutriterra (70:30, v/v); 5TNU: Tezontle con granulometría de 5 mm:Nutriterra (70:30, v/v); 3TPX: Tezontle con granulometría de 3 mm:Promix® (70:30, v/v); 5TPX: Tezontle con granulometría de 5 mm:Promix® (70:30, v/v). DMS: Diferencia mínima significativa. Medias con letras distintas indican diferencia estadística significativa (p ≤ 0.05).
Capítulo II
36
5.2.5. Biomasa fresca y seca de vástago Los resultados obtenidos en el peso de biomasa fresca del vástago mostraron
diferencias estadísticamente significativas (p ≤ 0.05, análisis estadístico en Anexo A Cuadro 21A) entre la mayoría de tratamientos (Cuadro 6). En el caso de 3TPX
y 5TPX se registraron los valores más altos con 17.38 y 17.25 g respectivamente.
Estos datos indican el efecto existente del desarrollo radical sobre el crecimiento
del vástago, reflejándose en una biomasa fresca mayor, plantas más vigorosas
con respecto a los tratamientos donde se empleó vermicomposta ya que varió la
biomasa fresca de 8.75 a 10.0 g, mientras que en los tratamientos 3T y 5T el
crecimiento y desarrollo fue menor presentando una biomasa de 11.13 y 5.25 g,
respectivamente.
Cuadro 6. Biomasa fresca y seca de vástago de tulipán cv. Ile de France cultivado
en distintos sustratos a la cosecha (59 días después de la siembra).
Tratamiento Biomasa fresca Biomasa seca g vástago-1 3T 11.12 b 1.40 b 5T 5.25 c 0.74 c 3TNU 8.75 bc 1.04 bc 5TNU 10.00 b 1.19 bc 3TPX 17.38 a 1.96 a 5TPX 17.25 a 1.95 a DMS 4.52 0.48
Tratamientos: 3T: Tezontle con granulometría de 3 mm; 5T: Tezontle con granulometría de 5 mm; 3TNU: Tezontle con granulometría de 3 mm:Nutriterra (70:30, v/v); 5TNU: Tezontle con granulometría de 5 mm:Nutriterra (70:30, v/v); 3TPX: Tezontle con granulometría de 3 mm:Promix® (70:30, v/v); 5TPX: Tezontle con granulometría de 3 mm:Promix® (70:30, v/v). DMS: Diferencia mínima significativa. Medias con letras distintas en cada columna indican diferencia estadística significativa (p ≤ 0.05). Los resultados obtenidos en relación a la materia seca de vástago mostraron
diferencias estadísticas significativas (p ≤ 0.05, análisis estadístico en Anexo A Cuadro 22A) entre tratamientos (Cuadro 6). Se observa en forma clara que los
valores más altos de esta variable fueron obtenidos en los tratamientos que
Capítulo II
37
contenían Promix mezclado con Tezontle de 3 y 5 mm, registrando valores de 1.95
y 1.96 g, respectivamente; seguidos de los tratamientos que contenían
vermicomposta mezclada con tezontle de ambas granulometrías 5TNU (1.19 g),
3TNU (1.04 g). Resultados similares reportan Di Benedetto et al. (2000), al
encontrar un mayor peso seco en diferentes especies florales crecidas en mezclas
de Peat moss con otros materiales (perlita y vermiculita). Por lo tanto la cantidad
de materia seca en vástago muestra bajos pesos (g) en comparación con la
acumulación de materia seca en bulbos.
5.2.6. Biomasa fresca y seca de bulbos En la variable peso de biomasa fresca de bulbos se presentaron diferencias
estadísticas significativas (p ≤ 0.05, análisis estadístico en Anexo A Cuadro 23A),
obteniéndose las medias más altas en los tratamientos 3TPX y 5TPX (Cuadro 7).
Es interesante observar que el peso de los bulbos secos, se encuentra
relacionado de manera inversa con el peso fresco de los mismos y el desarrollo
radicular mostrado (Cuadro 7). Es decir, la mayor biomasa fresca fue registrada
en el tratamiento 5T, el cual mostró el menor desarrollo de raíces (Figura 7) y de
vástago (Figura 8). El análisis estadístico de esta variable no muestra diferencias
estadísticas significativas entre tratamientos (p > 0.05, análisis estadístico en
Anexo A Cuadro 24A).
Se observaron diferencias en los días de brotación (Figuras 3) y en el desarrollo
de la planta en función del sustrato empleado (Figura 4). La brotación dio inicio en
los bulbos establecidos en el tratamiento 5T; sin embargo, después de la aparición
de la primera hoja, el crecimiento de la parte aérea fue inhibido. Esta inhibición del
crecimiento, es probablemente debida a que la granulometría de este material no
permitió una adecuada retención de humedad; adicionalmente, en este tratamiento
se observó un crecimiento escaso de raíces. Para aquellas mezclas en que se
utilizó Promix® (3TPX y 5TPX), los resultados obtenidos fueron favorables,
obteniéndose mayor crecimiento de raíces y de parte aérea. Cabe señalar que
probablemente la mezcla de algunos materiales con turbas favorezcan algunos
indicadores físico-químicos (pH, CE, Capacidad de Aire, Espacio Poroso Total,
Capítulo II
38
Agua Fácilmente Disponible), permitiendo un mayor crecimiento radical.
Adicionalmente, en estos materiales existe una mayor riqueza nutrimental que
permite la abundante formación de raíces (Goncalves y Minami, 1994; Hillel,
1982).
Cuadro 7. Biomasa fresca y seca de bulbos de tulipán cv. Ile de France cultivado
en distintos sustratos a la cosecha (59 días después de la siembra).
Tratamiento Biomasa fresca Biomasa seca g bulbo-1 3T 42.00 ab 11.42 a 5T 34.25 b 11.90 a 3TNU 35.12 b 9.87 a 5TNU 39.25 ab 11.55 a 3TPX 47.63 a 9.30 a 5TPX 45.88 a 9.88 a DMS 10.51 3.57
Tratamientos: 3T: Tezontle con granulometría de 3 mm; 5T: Tezontle con granulometría de 5 mm; 3TNU: Tezontle con granulometría de 3 mm:Nutriterra (70:30, v/v); 5TNU: Tezontle con granulometría de 5 mm:Nutriterra (70:30, v/v); 3TPX: Tezontle con granulometría de 3 mm:Promix® (70:30, v/v); 5TPX: Tezontle con granulometría de 5 mm:Promix® (70:30, v/v). DMS: Diferencia mínima significativa. Medias con letras distintas en cada columna indican diferencia estadística significativa (p ≤ 0.05). Figura 7. Bulbos de tulipán cv. Ile de France cultivado en distintos sustratos a la cosecha (59 días después de la siembra).Tratamientos: 3T: Tezontle con granulometría de 3 mm; 5T: Tezontle con granulometría de 5 mm; 3TNU: Tezontle con granulometría de 3 mm:Nutriterra (70:30, v/v); 5TNU: Tezontle con granulometría de 5 mm:Nutriterra (70:30, v/v); 3TPX: Tezontle con granulometría de 3 mm:Promix® (70:30, v/v); 5TPX: Tezontle con granulometría de 5 mm:Promix® (70:30, v/v).
30 cm
Capítulo II
39
5.3. Indicadores de calidad 5.3.1. Altura de tallos florales al corte En la Figura 8 se muestran las diferencias en altura obtenidas a los 59 días
después de la siembra. Existieron diferencias estadísticas significativas (p ≤ 0.05,
análisis estadístico en Anexo A Cuadro 16A) entre tratamientos, registrándose la
mayor altura en el tratamiento 3TPX (35.44 cm) seguido del 5TPX (34.51 cm)
(Figura 5E), respectivamente. El crecimiento de la planta incrementó en dichas
mezclas, debido a que el sistema radical tuvo un mayor desarrollo en éstas. En
segundo término quedaron las plantas cultivadas en el tratamiento 3T, las cuales
alcanzaron una altura promedio de 26.21 cm, mientras que en aquellas mezclas
que contenían vermicomposta (3TNU y 5TNU) se observó una compactación del
sustrato y por consiguiente un escaso crecimiento de la parte aérea como de la
radical.
Figura 8. Tallos de tulipán cv. Ile de France cultivado en distintos sustratos a la cosecha (59 días después de la siembra).Tratamientos: 3T: Tezontle con granulometría de 3 mm; 5T: Tezontle con granulometría de 5 mm; 3TNU: Tezontle con granulometría de 3 mm:Nutriterra (70:30, v/v); 5TNU: Tezontle con granulometría de 5 mm:Nutriterra (70:30, v/v); 3TPX: Tezontle con granulometría de 3 mm:Promix® (70:30, v/v); 5TPX: Tezontle con granulometría de 5 mm:Promix® (70:30, v/v).
Capítulo II
40
5.3.2. Diámetro de flor En esta variable de respuesta hubo diferencias significativas entre los tratamientos
(p ≤ 0.05, análisis estadístico en Anexo A Cuadro 25A). En el tratamiento 5T la
mayoría de las plantas no crecieron y como consecuencia tampoco presentaron
formación de flores. Los tratamientos 5TPX, 3TPX y 5T mostraron un diámetro de
flor que osciló entre 5.58 y 6.41 cm, mientras que en los tratamientos 3TNU y
5TNU el diámetro registrado fue de 6.42 y 5.58 cm, respectivamente.
Cuadro 8. Diámetro de flor de tulipán cv. Ile de France cultivado en distintos
sustratos.
Tratamiento Diámetro de flor, cm 3T 5.58 a 5T 0.66 b 3TNU 6.42 a 5TNU 5.58 a 3TPX 6.07 a 5TPX 6.41 a DMS 2.37
Tratamientos: 3T: Tezontle con granulometría de 3 mm; 5T: Tezontle con granulometría de 5 mm; 3TNU: Tezontle con granulometría de 3 mm:Nutriterra (70:30, v/v); 5TNU: Tezontle con granulometría de 5 mm:Nutriterra (70:30, v/v); 3TPX: Tezontle con granulometría de 3 mm:Promix® (70:30, v/v); 5TPX: Tezontle con granulometría de 5 mm:Promix® (70:30, v/v). DMS: Diferencia mínima significativa. Medias con letras distintas indican diferencia estadística significativa (p ≤ 0.05). 5.3.3. Concentración de macronutrimentos en hojas de tulipán Los resultados obtenidos en relación a la concentración de macronutrimentos en
hojas de tulipán (Figura 9) mostraron que la concentración de N, no presento
diferencias estadísticas significativas entre tratamientos (p > 0.05, análisis
estadístico en Anexo A Cuadro 26A). Sin embargo, Villanueva et al. (1998),
encontraron la mayor concentración de N en plantas crecidas en Peat moss. Es
importante notar, que a pesar de no encontrar diferencias estadísticas, la mayor
concentración de N fue obtenida en el tratamiento 5T, el cual mostró el menor
crecimiento de vástago, mientras que la menor concentración de éste mismo se
Capítulo II
41
observó en el tratamiento 5TPX, uno de los de mayor altura; en éste último
tratamiento se observa el “efecto de dilución”.
Figura 9. Concentración de macronutrimentos en hoja de tulipán cv. Ile de France
cultivado en distintos sustratos. Tratamientos: 3T: Tezontle con granulometría de 3 mm; 5T:
Tezontle con granulometría de 5 mm; 3TNU: Tezontle con granulometría de 3 mm:Nutriterra
(70:30, v/v); 5TNU: Tezontle con granulometría de 5 mm:Nutriterra (70:30, v/v); 3TPX: Tezontle con
granulometría de 3 mm:Promix® (70:30, v/v); 5TPX: Tezontle con granulometría de 5 mm:Promix®
(70:30, v/v). Barras con letras distintas en cada macronutrimento indican diferencia estadística
significativa (p ≤ 0.05).
5.3.4 Concentración de micronutrimentos en hojas de tulipán Los resultados obtenidos en concentraciones de Fe, Cu, Zn y Mn en tejido foliar
(Figura 10) muestran diferencias estadísticas significativas entre tratamientos (p ≤
0.05, análisis estadístico en Anexo A Cuadros 31A a 34A). Los contenidos de B
fueron estadísticamente iguales en todos los tratamientos (p > 0.05, análisis
estadístico en Anexo A Cuadro 35A). En los tratamientos 3TPX y 5TPX el
contenido de Fe, Mn y Zn presente en hojas de tulipán fue mayor en comparación
a los tratamientos restantes. Para el caso del Fe, las plantas sometidas a los
tratamientos 3TPX y 5TPX contenían 188.95 y 213.55 mg kg-1 MS. Los demás
tratamientos presentaron los contenidos más bajos y con mínima diferencia en
0
10
20
30
40
N P K Ca Mg
Macronutrimentos
Con
cent
raci
ón, g
kg-1
MS
3T
5T
3TNU
5TNU
3TPX
5TPX
aa
a a aa
b abab abab a
bcc
a a aba
b c c c
a ab c cbc a a
0
10
20
30
40
N P K Ca Mg
Macronutrimentos
Con
cent
raci
ón, g
kg-1
MS
3T
5T
3TNU
5TNU
3TPX
5TPX
aa
a a aa
b abab abab a
bcc
a a aba
b c c c
a ab c cbc a a
Capítulo II
42
concentraciones (tratamientos 3T, 3TNU, 5TNU, con 110 mg kg-1 MS, seguidos del
tratamiento 5T con 66 mg kg-1 MS).
Para Mn los tratamientos que mostraron mayor contenido de dicho elemento
fueron el 3TPX y 5TPX con los siguientes valores (0.39 mg kg-1 MS) (0.38 mg kg-1
MS) respectivamente. Mientras que a diferencia de lo anterior, en los demás
tratamientos la diferencia encontrada resultó poco significativa y cuyos obtenidos
incluyen a los tratamientos 3T (0.26 mg kg-1 MS), 5T(0.25 mg kg-1 MS), 5TNU(0.25
mg kg-1 MS), 3TNU(0.22 mg kg-1 MS). El análisis de varianza muestra efecto de
tratamientos en el contenido nutrimental de hojas; lo que indica que el factor
sustrato resulto altamente significativo en los nutrimentos (Fe, B, Zn y Mn).
Figura 10. Concentración de micronutrimentos en hoja de tulipán cv. Ile de France
cultivado en distintos sustratos. Tratamientos:3T: Tezontle con granulometría de 3 mm; 5T:
Tezontle con granulometría de 5 mm; 3TNU: Tezontle con granulometría de 3 mm:Nutriterra
(70:30, v/v); 5TNU: Tezontle con granulometría de 5 mm:Nutriterra (70:30, v/v); 3TPX: Tezontle con
granulometría de 3 mm:Promix® (70:30, v/v); 5TPX: Tezontle con granulometría de 5 mm:Promix®
(70:30, v/v). Barras con letras distintas en cada micronutrimento indican diferencia estadística
significativa (p ≤ 0.05).
0
55
110
165
220
Fe B
Micronutrimentos
Con
cent
raci
ón, m
g kg
-1 M
S
3T
5T3TNU
5TNU3TPX
5TPX
aa
b b
b
b
a aa a
a
a
0
10
20
30
40
50
60
70
Cu Zn Mn
Micronutrimentos
Con
cent
raci
ón, m
g kg
-1 M
S
b bb bb a
aab
dcbc
d dc aa
bbbb
0
55
110
165
220
Fe B
Micronutrimentos
Con
cent
raci
ón, m
g kg
-1 M
S
3T
5T3TNU
5TNU3TPX
5TPX
aa
b b
b
b
a aa a
a
a
0
10
20
30
40
50
60
70
Cu Zn Mn
Micronutrimentos
Con
cent
raci
ón, m
g kg
-1 M
S
b bb bb a
aab
dcbc
d dc aa
bbbb
0
10
20
30
40
50
60
70
Cu Zn Mn
Micronutrimentos
Con
cent
raci
ón, m
g kg
-1 M
S
b bb bb a
aab
dcbc
d dc aa
bbbb
Capítulo II
43
5.3.5 Acumulación de macronutrimentos en hojas de tulipán Al evaluar acumulación nutrimental de macronutrimentos encontrados en hojas de
tulipán (Figura 11), los resultados mostraron diferencias estadísticas significativas
para el caso del N, P, K, Ca y Mg (p ≤ 0.05, análisis estadístico en Anexo A Cuadro 36A a 40A).
Figura 11. Acumulación de macronutrimentos en hoja de tulipán cv. Ile de France
cultivado en distintos sustratos. Tratamientos: 3T: Tezontle con granulometría de 3 mm; 5T:
Tezontle con granulometría de 5 mm; 3TNU: Tezontle con granulometría de 3 mm:Nutriterra
(70:30, v/v); 5TNU: Tezontle con granulometría de 5 mm:Nutriterra (70:30, v/v); 3TPX: Tezontle con
granulometría de 3 mm:Promix® (70:30, v/v); 5TPX: Tezontle con granulometría de 5 mm:Promix®
(70:30, v/v). Barras con letras distintas en cada macronutrimento indican diferencia estadística
significativa (p ≤ 0.05).
0 15 30 45 60 75
N
P
K
Ca
Mg
Mac
ronu
trim
ento
s
Acumulación, mg planta-1
5TPX3TPX5TNU3TNU5T3T
bcddc
dca
ab
bbb
baa
aa
bb
bc
bccbc
aa
bccbc
aa
0 15 30 45 60 75
N
P
K
Ca
Mg
Mac
ronu
trim
ento
s
Acumulación, mg planta-1
5TPX3TPX5TNU3TNU5T3T
bcddc
dca
ab
bbb
baa
aa
bb
bc
bccbc
aa
bccbc
aa
Capítulo II
44
En la acumulación de nutrimentos (Figura 11), se observa la misma tendencia en
función de los sustratos evaluados, observándose las acumulaciones más altas en
los tratamientos conteniendo Promix®, tanto mezclado con tezontle de
granulometría de 3 mm como con tezontle de 5 mm. En todos los casos el
tratamiento 3TPX mostró la mayor acumulación de macronutrimentos en hoja,
seguido del tratamiento 5TPX.
5.3.6 Acumulación de micronutrimentos en hoja de tulipán Las acumulaciones en hoja obtenidas en relación a Fe, Cu, Zn, Mn y B (Figura
12) muestran diferencias estadísticas significativas entre tratamientos (p ≤ 0.05,
análisis estadístico en Anexo A Cuadro 41A a 45A).
Figura 12. Acumulación de micronutrimentos en hoja de tulipán cv. Ile de France cultivado en distintos sustratos. Tratamientos: 3T: Tezontle con granulometría de 3 mm; 5T: Tezontle con granulometría de 5 mm; 3TNU: Tezontle con granulometría de 3 mm:Nutriterra (70:30, v/v); 5TNU: Tezontle con granulometría de 5 mm:Nutriterra (70:30, v/v); 3TPX: Tezontle con granulometría de 3 mm:Promix® (70:30, v/v); 5TPX: Tezontle con granulometría de 5 mm:Promix® (70:30, v/v). Barras con letras distintas en cada micronutrimento indican diferencia estadística significativa (p ≤ 0.05).
0 50 100 150 200 250 300 350 400 450
Fe
Cu
Zn
Mn
B
Mic
ronu
trim
ento
s
Acumulación, µg planta-1
5TPX3TPX5TNU3TNU5T3T
bc
bcbc
aa
abcbcccaba
aaa
a
bb
bcbcbc
aa
bcd
cdbc
aba
0 50 100 150 200 250 300 350 400 450
Fe
Cu
Zn
Mn
B
Mic
ronu
trim
ento
s
Acumulación, µg planta-1
5TPX3TPX5TNU3TNU5T3T
bc
bcbc
aa
abcbcccaba
aaa
a
bb
bcbcbc
aa
bcd
cdbc
aba
Capítulo II
45
En los tratamientos 3TPX y 5TPX el contenido de Fe presente en hojas de tulipán
osciló de (370 a 420 µg planta-1) en comparación con los tratamientos restantes,
encontrando una mínima acumulación de Fe en el tratamiento 5T (50 µg planta-1).
En Cu la acumulación fue mínima para casi todos los tratamientos, que varió entre
10 y 15 µg planta-1. La acumulación de Zn obtenida en menor proporción presenta
valores de 125 µg planta-1 para el 5TPX. Para el caso de Mn las plantas que
mostraron mayor contenido de este elemento fueron aquellas sometidas a los
tratamientos 3TPX y 5TPX (80 a 90 µg Mn planta-1, respectivamente); los demás
tratamientos no presentaron diferencias significativa. La acumulación de B mas
sobresaliente resultó en el tratamiento 5TPX (370 µg planta-1), siendo
estadísticamente diferente a los demás tratamientos.
5.3.7. Concentración de macronutrimentos en bulbos de tulipán Los resultados de la concentración de macronutrimentos encontrados en bulbos
de tulipán se muestran en la Figura 13. La concentración de N en bulbos muestra
diferencia estadística significativa (p ≤ 0.05, análisis estadístico en Anexo Cuadro 46A). La mayor concentración de N se presentó en los tratamientos 5TNU y 5T.
Este último tratamiento presentó el menor desarrollo radical y de vástago, lo que
indica de forma clara que el contenido de N no fue el factor limitante, si no su
traslocación a la parte aérea. A este respecto, los iones nitrato (NO3-) y amonio
(NH4+) son absorbidos indistintamente por los cultivos. Una vez absorbido por las
raíces, el ión NO3- se convierte en NH4
+ como fase previa y así formar parte de los
aminoácidos y proteínas. Por otra parte, el amonio se nitrifica rápidamente en
períodos que coinciden con la alta tasa de absorción de N por lo que el ión NO3-
es consumido por el cultivo. De ahí, que a medida que el agua percolada en el
sustrato aumenta, la absorción de N tiende a disminuir a medida que transcurren
los días desde la siembra (Rodríguez, 2001). De la misma manera se observa la
mayor concentración de P y K en el tratamiento 5T, aunque no se observaron
diferencias significativas en comparación con los demás tratamientos (p > 0.05, en
Anexo Cuadros 47A a 48A).
Capítulo II
46
En lo que respecta a la . de Ca y Mg en bulbo se observan diferencias
estadísticas significativas entre tratamientos (p ≤ 0.05, análisis estadísticos en
Anexo A Cuadro 49 A y 50A); y las concentraciones más bajas de estos
nutrimentos se presentaron en los tratamientos conteniendo como sustrato
Nutriterra®, en combinación con tezontle de 3 y 5 mm. Estos resultados
correlacionan en forma positiva con los contenidos de calcio y magnesio en el
sustrato, que presentó los menores valores de estos nutrimentos (Cuadro 3).
Figura 13. Concentración de macronutrimentos en bulbos de tulipán cv. Ile de
France cultivado en distintos sustratos. Tratamientos: 3T: Tezontle con granulometría de 3
mm; 5T: Tezontle con granulometría de 5 mm; 3TNU: Tezontle con granulometría de 3
mm:Nutriterra (70:30, v/v); 5TNU: Tezontle con granulometría de 5 mm:Nutriterra (70:30, v/v);
3TPX: Tezontle con granulometría de 3 mm:Promix® (70:30, v/v); 5TPX: Tezontle con
granulometría de 5 mm:Promix® (70:30, v/v). Barras con letras distintas en cada macronutrimento
indican diferencia estadística significativa (p ≤ 0.05). 5.3.8 Concentración de micronutrimentos en bulbo de tulipán La concentración de micronutrimentos encontrada en bulbo de tulipán (Figura 14)
se correlaciona positivamente de manera general con la encontrada en hojas
(Figura 12). Los contenidos de Cu y B no muestran diferencias estadísticas entre
tratamientos (p > 0.05, análisis estadístico en Anexo A Cuadros 52A y 55A). Las
concentraciones de Fe, Zn y Mn muestran diferencias estadísticas significativas
0
4
8
12
16
20
N P K Ca Mg
Macronutrimentos
Con
cent
raci
ón, g
kg-1
MS
3T
5T
3TNU
5TNU
3TPX
5TPX
a
b bc bcbc
c
aa a a aa
a
a
a a
a a
aabbc bc ccaababc
abcbc c
0
4
8
12
16
20
N P K Ca Mg
Macronutrimentos
Con
cent
raci
ón, g
kg-1
MS
3T
5T
3TNU
5TNU
3TPX
5TPX
a
b bc bcbc
c
aa a a aa
a
a
a a
a a
aabbc bc ccaababc
abcbc c
Capítulo II
47
entre tratamientos (p ≤ 0.05, análisis estadístico en Anexo A Cuadros 51A, 53A y 54A). Los contenidos de Fe en los tratamientos 5T, 3TNU y 5TNU son menores
en 90, 66 y 78 % respectivamente, que el tratamiento 5TPX que presentó la mayor
concentración de Fe. Las concentraciones de Fe en bulbo de correlacionan de
manera directa con el desarrollo de las raíces (Figura 14). La tendencia mostrada
para Fe es similar a la mostrada en el caso de Zn y Mn.
Figura 14. Concentración de micronutrimentos en bulbo de tulipán cv. Ile de
France cultivado en distintos sustratos. Tratamientos: 3T: Tezontle con granulometría de 3
mm; 5T: Tezontle con granulometría de 5 mm; 3TNU: Tezontle con granulometría de 3
mm:Nutriterra (70:30, v/v); 5TNU: Tezontle con granulometría de 5 mm:Nutriterra (70:30, v/v);
3TPX: Tezontle con granulometría de 3 mm:Promix® (70:30, v/v); 5TPX: Tezontle con
granulometría de 5 mm:Promix® (70:30, v/v). Barras con letras distintas en cada micronutrimento
indican diferencia estadística significativa (p ≤ 0.05).
0
50
100
150
200
250
300
350
Fe B
Micronutrimento
Con
cent
raci
ón, m
g kg
-1 M
S
3T
5T
3TNU
5TNU
3TPX
5TPX
0
5
10
15
20
25
30
Cu Zn Mn
Micronutrimento
Con
cent
raci
ón, m
g kg
-1 M
S
a
abb
c
bc
ca a a a a a
a a a a a a
aab
abcbc cc
aa
bbbb
0
50
100
150
200
250
300
350
Fe B
Micronutrimento
Con
cent
raci
ón, m
g kg
-1 M
S
3T
5T
3TNU
5TNU
3TPX
5TPX
0
5
10
15
20
25
30
Cu Zn Mn
Micronutrimento
Con
cent
raci
ón, m
g kg
-1 M
S
a
abb
c
bc
ca a a a a a
a a a a a a
aab
abcbc cc
aa
bbbb
Capítulo II
48
5.3.9 Acumulación de macronutrimentos en bulbos de tulipán
A excepción de Mg (análisis estadístico en Anexo A Cuadro 60A), los resultados
del análisis de la acumulación de macronutrimentos en bulbos mostraron
diferencias estadísticas significativas entre tratamientos (p ≤ 0.05, en Anexo A Cuadro 56A a 59A).
Figura 15. Acumulación de macronutrimentos en bulbo de tulipán cv. Ile de France
cultivado en distintos sustratos. Tratamientos: 3T: Tezontle con granulometría de 3 mm; 5T:
Tezontle con granulometría de 5 mm; 3TNU: Tezontle con granulometría de 3 mm:Nutriterra
(70:30, v/v); 5TNU: Tezontle con granulometría de 5 mm:Nutriterra (70:30, v/v); 3TPX: Tezontle con
granulometría de 3 mm:Promix® (70:30, v/v); 5TPX: Tezontle con granulometría de 5 mm:Promix®
(70:30, v/v). Barras con letras distintas en cada macronutrimento indican diferencia estadística
significativa (p ≤ 0.05).
0 50 100 150 200 250
N
P
K
Ca
Mg
Mac
ronu
trim
ento
s
Acumulación, mg planta-1
5TPX3TPX5TNU3TNU5T3T
bcb
bca
bcc
ab
bb
bb
bca
bb
cc
aa
abab
cbc
aa
aa
aa
0 50 100 150 200 250
N
P
K
Ca
Mg
Mac
ronu
trim
ento
s
Acumulación, mg planta-1
5TPX3TPX5TNU3TNU5T3T
bcb
bca
bcc
ab
bb
bb
bca
bb
cc
aa
abab
cbc
aa
aa
aa
bulbo-1
Capítulo II
49
La mayor acumulación de N se presentó en el tratamiento 5TNU con 218 mg
planta-1. A diferencia de la acumulación de K, donde el valor más alto se obtuvo en
el tratamiento 5T (150 mg planta-1). Para el caso de P la mayor acumulación (40
mg planta-1) se obtuvo en el tratamiento 5T. La acumulación de Ca y Mg en bulbo
se relaciona en forma positiva con la concentración en bulbo (Figura 13) y con el
contenido de éstos en el sustrato (Cuadro 3). 5.3.10 Acumulación de micronutrimentos en bulbos de tulipán Al analizar la cantidad de micronutrimentos acumulada en bulbos de tulipán
(Figura 16), se observaron diferencias estadísticas entre tratamientos (p ≤ 0.05,
en Anexo A Cuadros 61A a 65A).
Figura 16. Acumulación de micronutrimentos en bulbo de tulipán cv. Ile de France
cultivado en distintos sustratos. Tratamientos: 3T: Tezontle con granulometría de 3 mm; 5T:
Tezontle con granulometría de 5 mm; 3TNU: Tezontle con granulometría de 3 mm:Nutriterra
(70:30, v/v); 5TNU: Tezontle con granulometría de 5 mm:Nutriterra (70:30, v/v); 3TPX: Tezontle con
granulometría de 3 mm:Promix® (70:30, v/v); 5TPX: Tezontle con granulometría de 5 mm:Promix®
(70:30, v/v). Barras con letras distintas en cada micronutrimento indican diferencia estadística
significativa (p ≤ 0.05).
0 500 1000 1500 2000 2500
Fe
Cu
Zn
Mn
B
Mic
ronu
trim
ento
s
Acumulación, µg planta-1
5TPX3TPX5TNU3TNU5T3T
aba
bcc
bc
c
ba
bcbccbc
ab
aab
abc
cbc
abab
aa
bab
a
ab
ab
bb
b
0 500 1000 1500 2000 2500
Fe
Cu
Zn
Mn
B
Mic
ronu
trim
ento
s
Acumulación, µg planta-1
5TPX3TPX5TNU3TNU5T3T
aba
bcc
bc
c
ba
bcbccbc
ab
aab
abc
cbc
abab
aa
bab
a
ab
ab
bb
b
bulbo-1
Capítulo II
50
La mayor acumulación de Fe, Zn y Mn se presentó en los tratamientos
conteniendo Promix® (3TPX y 5TPX), mientras que la menor acumulación de éstos
se registró en los tratamientos con Nutriterra® (3TNU y 5TNU). Para el caso de Zn
los valores más altos fueron de 680 µg bulbo-1 en el tratamiento 5TPX y de 620 µg
bulbo-1 en el tratamiento 3TPX; en el caso de Mn los valores más altos
correspondieron a estos mismos tratamientos (470 a 485 µg bulbo-1, para el
tratamiento 5TPX y para el 3TPX, respectivamente).
La mayor acumulación de B fue de 2480 µg bulbo-1, en el tratamiento 5TN;
mientras que los bulbos de los tratamientos 5TPX y 3T acumularon este elemento
en menor proporción.
Capítulo II
51
VI. CONCLUSIONES
La brotación de bulbos de tulipán en general en todos los sustratos
evaluados oscilo entre 15 y 16 días después de la siembra (dds), con
excepción del tratamiento 5T que se prolongo hasta los 20 días.
La combinación de Promix® con tezontle (ambas granulometrías)
incrementó la altura de la planta, biomasa (fresca y seca) y el crecimiento y
desarrollo radical. Además fue mayor la concentración de Ca, Fe y Mn y la
acumulación de Ca, K, P, N, Mn, Zn y Fe en hoja. En el bulbo solo la
concentración de Fe, Zn y Mn se incrementó.
Con tezontle de 5mm se encontró en menor diámetro de tallo (basal, medio
y apical), número de hojas, biomasa fresca y seca de vástago y diámetro de
flor.
Las partículas de mayor diámetro favorecen aireación, pero carecen de
buena retención de humedad, lo que ocasiona deshidratación del bulbo; y
viceversa, partículas pequeñas impiden un buen desarrollo radicular por
problemas de aireación y saturación de humedad.
El uso de sustratos con alta retención de humedad como la vermicomposta
en producción de tulipán muestran un alto grado de compactación que
impiden el desarrollo de raíces y consecuentemente el vástago.
Un sustrato ideal en condiciones de hidroponía, debe considerar el uso y
manejo adecuado de materiales inertes y orgánicos con características
físico-químicas adecuadas que al mezclarse propicien un crecimiento
adecuado, mismo que se vea reflejado en la calidad de la producción
obtenida.
Capítulo II
52
VII. LITERATURA CITADA
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Capítulo III.
55
CAPÍTULO III. EFECTO DE LA RELACIÓN K+/Ca2+ EN LA SOLUCIÓN NUTRITIVA SOBRE EL CRECIMIENTO Y CALIDAD DE TULIPÁN
I. INTRODUCCIÓN El tulipán (Tulipa gesneriana L.) es una de las flores de corte cultivadas en
superficies pequeñas durante el período otoño-invierno, y muy cotizadas en el
mercado; esta especie pertenece a la familia Liliaceae. Existen alrededor de 3000
variedades, las cuales presentan una amplia gama de colores. Los intervalos
registrados en la vida de la flor varían de 10 días hasta 3 semanas, tiempo en el
cual mantienen también su fragancia. Los extractos de la flor, son utilizados en la
industria de los cosméticos y la medicina.
En el cultivo de esta especie no se han establecido con claridad los requerimientos
nutrimentales, en parte debido a que se considera que el bulbo es capaz de
suministrar la totalidad de éstos, lo anterior no ha sido demostrado plenamente;
como consecuencia de la no existencia de una recomendación de suministro
nutrimental homogénea, hay una amplia variación en rendimiento y calidad de la
flor de esta especie entre los productores florícolas del Estado de México.
Existen elementos considerados como esenciales por que en su ausencia, la
planta no puede completar su ciclo de vida, se encuentran involucrados en
funciones metabólicas o estructurales y cuya deficiencia se asocia a síntomas
específicos. Dentro de los elementos esenciales para las plantas se incluyen al
carbono, hidrógeno, oxígeno, nitrógeno, y azufre (principales constituyentes de la
materia orgánica); fósforo, boro y silicio (esterificados con alcoholes en las
plantas); potasio, sodio, magnesio, calcio, manganeso y cloro (absorbidos como
iones en la solución del suelo); y hierro, cobre, zinc y molibdeno (absorbidos como
iones o quelatos) (Gutiérrez, 1996). Los nutrimentos pueden ser suministrados a la
planta en ausencia de suelo mediante sistemas hidropónicos, los cuales utilizan
soluciones nutritivas balanceadas. La solución nutritiva más usada es la solución
Steiner, también conocida como solución universal, la cual está formulada con
base a las relaciones relativas de los nutrimentos encontrados en las plantas
Capítulo III.
56
(Martínez et al., 1999). Algunos nutrimentos esenciales como lo son calcio y
potasio tienen una función importante en la obtención de tallos florales de tulipán
de excelente calidad y además incrementan la vida en florero. En México la
investigación acerca de las relaciones potasio/calcio óptimas para el cultivo
hidropónico de tulipán es limitada, y en consecuencia la producción nacional
muestra alta heterogeneidad en cuanto a calidad de tallos florales. Por lo anterior,
el objetivo de esta investigación es estudiar el efecto de relaciones potasio/calcio
(K+/Ca+2) en la relación de cationes de la solución nutritiva de Steiner sobre la
calidad y vida de florero en tulipán, así como el estatus nutrimental de la planta
cultivada en hidroponía.
1.1. IMPORTANCIA FISIOLÓGICA DEL CALCIO El calcio, con número atómico 20, es un elemento que pertenece al grupo de los
alcalino–térreos y que en soluciones acuosas se encuentra normalmente en forma
de catión divalente (Ca2+). En células vegetales el Ca2+ se encuentra
principalmente asociado a estructuras en la pared celular o bien almacenado en el
sistema de endomembranas. Los niveles de Ca2+ libre en el citoplasma son muy
bajos, manteniéndose entre 0.2 µM y 0.3 µM (Felle, 1988), debidos a la baja
permeabilidad que presentan las membranas al Ca2+, así como a la presencia de
transportadores específicos que lo almacenan en el retículo endoplasmático,
cloroplastos y vacuola. Esta concentración de Ca2+ tan reducida en el citoplasma,
(aunque para la planta supone un moderado gasto energético) es necesaria por
varias razones: prevenir la precipitación del Ca2+ con los iones fosfato y evitar la
competencia con Mg2+ por sitios de unión en ciertas enzimas, como la ADN
polimerasa. Además, las células eucariotas han aprovechado este control sobre
los niveles de Ca2+ para su uso como mensajero secundario en los sistemas de
traducción de señales, al ser capaces de detectar pequeñas modificaciones en la
concentración de Ca2+ citoplasmático (Rudd y Franklin-Tong, 2001). Considerado
como macronutrimento para las plantas, el contenido en Ca2+ en las mismas, varía
entre el 0.1 y el 5% del peso seco dependiendo de las condiciones de crecimiento,
Capítulo III.
57
especie y órgano. Además, para mantener un crecimiento óptimo, las plantas
monocotiledóneas requieren menos Ca2+ que las dicotiledóneas (Loneragan et al.,
1968; Loneragan y Snowball, 1969). El calcio se transporta a través del xilema,
una vez que los iones de calcio son tomados por las raíces, entonces pasa de
célula a célula hasta entrar el los elementos traqueales del xilema; entonces se
mueven pasivamente dentro del tallo (Morgan, 2000). El transporte de calcio vía
floema, ocurre en muy bajas concentraciones, por ello los tejidos abastecidos por
el floema, como los de los frutos, tienen bajo contenido en calcio. Incluso en
condiciones de deficiencia de calcio, su movilidad a través del floema en sentido
descendente, es escasa. Esta inmovilidad vía floema, en principio se justificó por
una posible precipitación con el fosfato, pero también se propuso que podía
deberse a que las células que rodean al floema, pueden almacenar calcio
mediante mecanismos de bombas iónicas. Debido a que el calcio es transportado
principalmente en el xilema, cualquier factor que influya en la pérdida de agua
afectara la nutrición del calcio. Así, al disminuir la humedad, aumenta la
transpiración y con ello el transporte de calcio hacia las hojas jóvenes, por flujo de
masa (Anónimo, 2000). Dada la escasa movilidad del calcio en la planta, los
síntomas de la deficiencia de calcio, aparecen primero en las hojas jóvenes y en
los ápices de crecimiento, que en poco tiempo toman color pardo, produciéndose
la necrosis (tip burn). Este síntoma se ha observado principalmente en lechuga
aunque también afecta a otros cultivos, en tomate y pimiento se observa una
pudrición apical (blossom-end rot) y en manzana la mancha amarga (bitter pit)
(Morgan, 2000).
1.2. FUNCIONES DEL CALCIO EN LAS PLANTAS a) Estabilización de la pared celular: en la lámina media el Ca2+ se encuentra
unido a los grupos R–COO– de los ácidos poligalacturónicos presentes en las
pectinas, permitiendo la unión de varias cadenas. Además, el Ca2+ inhibe la
acción de poligalacturonidasas que degradan las pectinas (Konno et al., 1984);
Capítulo III.
58
de hecho, en deficiencia de Ca2+ la pared pierde su organización y su
estabilidad, colapsándose los tejidos afectados.
b) Crecimiento celular: en ausencia de Ca2+, toda actividad de crecimiento en la
raíz cesa a las pocas horas. La causa se encuentra en el mecanismo de
estimulación de crecimiento promovido por la acción de las auxinas. La
acidificación de la pared provoca una liberación del Ca2+ unido a las pectinas el
cual pasa al citoplasma, al activar las auxinas los canales de Ca2+ (Felle,
1988).
c) Secreción: la presencia de Ca2+ promueve la formación de vesículas de
secreción y su fusión con la membrana plasmática (Steer, 1988). De este
modo, la acumulación de Ca2+ en determinadas zonas adyacentes a la
membrana celular puede dirigir la actividad secretora a dichas regiones,
estableciéndose una polaridad celular, necesaria para determinados procesos
como el crecimiento del pelo radical o la formación del tubo polínico.
d) Estabilización de la membrana: el Ca2+ estabiliza las membranas biológicas
estableciendo puentes entre los grupos fosfato y carboxilo de los fosfolípidos y
las proteínas de membrana. La deficiencia de Ca2+ provoca un aumento en la
tasa de respiración al producirse una filtración de metabolitos desde la vacuola
hacia el citoplasma, en donde se encuentran las enzimas respiratorias (Kuiper
y Kuiper, 1979).
e) Segundo mensajero en rutas de transducción de señales: Después de
determinados estímulos externos, el Ca2+ puede ser liberarlo al citoplasma.
Esta liberación es heterogénea en la célula, bien sea en localización,
frecuencia y amplitud, dependiendo del estímulo y el estado de la célula,
originándose lo que se ha denominado “firma de calcio” (Rudd y Franklin-Tong,
2001). En el citoplasma, los principales sensores de la señal de Ca2+ son
proteínas que lo unen, como son las calmodulinas y proteínas cinasas
dependientes de calmodulina. Estas proteínas son capaces de estimular las
H+-ATPasas y otras proteína cinasas que culminan en un cambio en la
expresión genética, siempre específica de la “firma de Ca2+”, y que se traduce
Capítulo III.
59
en una respuesta al estímulo. Además ayuda a reducir el nitrato (NO3-), activa
varios sistemas de enzimas y neutraliza los ácidos orgánicos en la planta.
1.3. IMPORTANCIA DEL CALCIO EN TULIPÁN Y OTROS CULTIVOS La deficiencia de calcio en tulipán puede producir tallos frágiles durante el período
de crecimiento, provoca su caída. En la parte superior de los tallos aparecen al
principio con un color verde oscuro con una cierta humedad. Es difícil eliminar la
caída de las hojas cuando la humedad relativa es baja. La enfermedad es más
común en bulbos de mayor calibre, bulbos con raíces insuficientes o bulbos con
zonas enmohecidas (Centro Internacional de Flores de Bulbo, 2000). Vidale
(2001), menciona que la deficiencia de calcio en plantas de tulipán puede provocar
una alteración, fisiológica denominada como “aceite”, la cual consiste en el
rompimiento de la flor. El “vuelco del tulipán” es descrito como un síntoma de
deficiencia de Ca, caracterizado por el doblamiento de pedúnculos a la altura del
cuello de la planta, al formarse la flor (Rees, 1972; Igarashi et al., 1981). Síntomas
visuales y secuenciales así como explicaciones a nivel microscópico del vuelco de
tulipán fueron citadas por Algera (1968). Además de escapos quebradizos o
translúcidos con marcas húmedas generalmente arriba del entrenudo antes o
durante la floración. El vuelco del tallo es asociado con deficiencia de Ca en
bulbos de iris (Doss et al., 1979).
Un desorden fisiológico común en las leguminosas es el hipocotilo translúcido, el
cual se atribuye a una deficiencia de Ca (Helms, 1971; Burstrom, 1964). Otro
síntoma de deficiencia de Ca en tulipán es el aborto de yemas florales (Klougart,
1980) el cual ocurre a menudo en aquellas plantas crecidas en medios ácidos.
Algunos síntomas de deficiencia de B en tulipán son similares a los de la
deficiencia de Ca. Ambos, resultan en vuelco del tulipán; sin embargo, las
deficiencias de B causa grietas transversales en el escapo floral (Igarashi et al.,
1981; Rees, 1972).
Nelson et al. (2003) estudiaron cinco concentraciones de calcio (0, 2.5, 5, 10 y 20
mM), aplicado como Ca(NO3)2 en diferentes cultivares de tulipán. Las plantas con
Capítulo III.
60
0 mM presentaron síntomas de deficiencia de Ca como vuelco del tallo floral,
aborto de yemas florales, pigmentación púrpura y áreas agrietadas sobre las
hojas. Sin embargo el porcentaje de daño (tallos doblados y/o aborto de yemas
florales) no presentó diferencias significativas al aplicar de 2.5 a 20 mM de Ca. El
contenido de calcio por biomasa fresca (mg kg-1) y la concentración total de calcio
en le vástago (mg planta-1) se incrementó con las concentraciones de 2.5 a 10 mM
de calcio; sin embargo, la concentración disminuyó con 20 mM. En el día 26 el
tratamiento testigo y con 20 mM de Ca, las plantas presentaron una tasa de
transpiración más baja en comparación con los tratamientos restantes. La más
baja transpiración con el tratamiento 0 mM de Ca es probablemente el resultado
del efecto fisiológico de la deficiencia de Ca y en el tratamiento de 20 mM se debió
al alto potencial osmótico encontrado en las plantas. El contenido de calcio en la
flor se incrementó con el suministro de 2.5 a 10 mM de Ca, y fue menor en
relación a las hojas, las cuales presentaron un comportamiento diferentes, ya que
en las hojas “viejas” (basales) la concentración fue de 286, 2066, 2062, 2001, y
2058 mg Ca kg-1 MS en las concentraciones de 0, 2.5, 5, 10 y 20 mM de Ca,
respectivamente, mientras que las hojas “jóvenes” (4a hoja) el contenido fue de
165, 1487, 1526, 1331 y 1389 mg Ca kg-1 MS.
En otro estudio, al evaluar el efecto de 0 y 5 mM de Ca, ambas concentraciones
ocasionaron síntomas de deficiencia de Ca, los cuales disminuyeron con la adición
de este elemento. El porcentaje de vuelco de tallos florales y aborto de flores
fueron de 90 y 10% y 40 y 20% con 0 y 5 mM, respectivamente. De igual manera,
la altura de la planta y peso de biomasa seca se incrementó con la adición de Ca.
El contenido de Ca (µg planta-1) sin suministro de calcio fue de 865, superado con
5944 µg planta-1 por el tratamiento con Ca (Nelson y Niedziela, 1998).
Klougart (1980), estudió en tulipán cv. Apeldoorn diferentes concentraciones de
Ca (0, 61, 122 y 224 ppm) y fuentes [Ca(HCO3)2, CaSO4 y Ca(NO3)2], encontrando
el menor porcentaje de floración (5%) cuando no se suministró Ca y el mayor con
122 ppm de Ca (100%). El vuelco del tallo floral fue de 5, 5, 0 y 20% de menor a
mayor concentración. De igual manera la acumulación de Ca (% de MS) en tallo y
hoja se incrementó mediante la aplicación de Ca, siendo 0.04, 0.26, 0.26 y 0.20 en
Capítulo III.
61
tallo y 0.05, 0.62, 0.66 y 0.39 en hoja. Los mejores resultados se encontraron
cuando se utilizó como fuente de Ca al nitrato de calcio.
Miller (1991) y De Hertogh (1989) mencionan que el Ca y Mg son importantes en
la producción forzada de lilies ya que incrementan la calidad de plantas y flores,
además el N aplicado como nitrato de calcio o potasio es necesario para que las
hojas desarrollen un color verde intenso y con más brillo. En el cultivo de rosa se
ha demostrado que la aplicación de calcio en forma de CaCl2 mantiene la
integridad de las membranas en los pétalos, reduce la producción de etileno y
promueve el transporte de solutos y en tallos aumenta la firmeza (Torre et al.,
1999).
Al evaluar tres diferentes niveles de Ca (6, 9 y 12 meq L-1) en la solución nutritiva
de las variedades Amaretto y Darling de gerbera (Gerbera jamesonii) se encontró
que la mayor vida de florero se presentaba al suministrar 12 meq de Ca L-1 (17
días y 16.5 días, en Amaretto y Darling, respectivamente); mientras que
concentraciones de 6 meq de Ca L-1 favorecieron el diámetro de escapos florales.
Un incremento en la firmeza del escapo floral se logró con 9 meq de Ca L-1 ya que
las plantas fueron más resistentes. La firmeza se determinó en la parta apical con
valores promedio de 2.34 ± 0.14 kg fuerza cm-2, en la parte media con valores de
4.49 ± 0.23 kg fuerza cm-2 y en la parte basal con valores de 4.35 ± 0.22 kg fuerza
cm-2. El contenido de Ca en las hojas fue mayor cuando solo se suministro 6 meq
de Ca L-1; sin embargo, dicha concentración en ambas variedades afectó el
crecimiento del escapo, mientras que al comparar el contenido de calcio en
capítulos y escapos de la variedad Amaretto no se encontraron diferencias
estadísticas significativas (Albino, 2004).
Marschner (1995), observó una correlación positiva entre el contenido de Ca y la
tasa de transpiración en vástagos de pimiento rojo. La transpiración se incrementó
con un bajo nivel de humedad relativa, pero fue menor cuando la concentración de
Ca en hojas y frutos aumentó, debido al suministro de este nutrimento en el
sustrato y por lo tanto los rendimientos se incrementaron.
Capítulo III.
62
1.4. IMPORTANCIA FISIOLÓGICA DEL POTASIO El potasio, con número atómico 19, es un elemento que pertenece al grupo de los
metales alcalinos y que en soluciones acuosas se encuentra normalmente en
forma de catión monovalente (K+). El K+ es el más abundante en la célula con
concentraciones de 100 mM o mayores. Concentraciones abundantes de K+ son
necesarias para neutralizar los aniones solubles y macromoleculares del
citoplasma, que tiene pocos cationes orgánicos. De esta manera el K+ contribuye
de manera significativa con el potencial osmótico. El transporte de potasio puede
efectuarse por medio de una ATPasa de la membrana celular, activada por Mg2+.
El ión K+ parece estar implicado en varias funciones fisiológicas como son:
turgencia de las células guardianes de los estomas, movimientos foliares (nastias)
de los pulvínulos y crecimiento celular. El potasio actúa como un cofactor o
activador de muchas enzimas del metabolismo de carbohidratos y proteínas. Una
de las más importantes la piruvato cinasa (PK), es una enzima principal de la
glucólisis y respiración. Los iones K+ son también importantes en la fijación del
ARNm a los ribosomas. En la célula el potasio no se introduce en compuestos
orgánicos. Una concentración adecuada de potasio es importante en la adaptación
de los cultivos al estrés causado por factores bióticos y abióticos, tales como
sequías, salinidad, heladas, ataques de insectos o enfermedades (Kafkafi, 1990;
1997). El K+se encuentra normalmente en un intervalo entre 1 a 4% de la materia
seca (MS), pudiendo alcanzar más del 8% en algunos casos (Lawton y Cook,
1954; Leigh y Wyn-Jones, 1984). La mayoría de los cultivos anuales de grano
requieren K en las primeras fases del crecimiento y la máxima absorción se
presenta durante la etapa vegetativa (Lawton y Cook, 1954; Kafkafi y Xu, 1999).
Su concentración varía ampliamente, no solo entre especies diferentes sino
también entre los diversos órganos de la planta. Una vez que las hojas más viejas
de la planta han alcanzado sus concentraciones específicas de K+, el flujo neto de
K+ desde las raíces satisface solo las cantidades necesarias para el desarrollo y
crecimiento de nuevas raíces. Por lo tanto, el flujo de K+ desde las raíces está
determinado en gran parte por la tasa de crecimiento de la planta (Pitman, 1972).
Se conoce que el potasio es muy móvil dentro de las plantas; moviéndose hacia
Capítulo III.
63
arriba y hacia abajo por el xilema y por el floema en dirección de los tejidos
meristemáticos (Ben-Zioni et al., 1971; Kirkby y Knight, 1977). En el xilema se
observa una desplazamiento rápido debido a la elevada tasa a la que se secreta el
K selectivamente a los vasos del xilema. Entre todos los cationes, el K+ está
presente en máximas cantidades en la savia del floema (Hocking, 1980). Esto
indica que el K se absorbe selectivamente por los vasos cribados y puede
desplazarse fácilmente desde las partes superiores hacia los órganos basales de
la planta, frutos y raíces. 1.5. FUNCIONES DEL POTASIO EN PLANTA a) Activación enzimática. El potasio activa al menos 60 enzimas diferentes que
tienen relación con el crecimiento de la planta. El K+ cambia la forma física de
la molécula enzimática, exponiendo los sitios químicamente activos para la
reacción (cambio conformacional). La cantidad de K+ presente en las células
determina qué cantidad de enzimas pueden ser activadas y los intervalos en
los cuales se pueden producir las reacciones químicas. Por lo tanto, el intervalo
de una reacción dada es controlada por el nivel de K+ que entre a la célula.
b) Actividad estomática. Las plantas dependen de K+ para regular la apertura y
cierre de los estomas a través de los cuales las hojas realizan el intercambio
de CO2 y oxígeno con el medio. Cuando el K+ se mueve entre las células
guarda alrededor de los estomas, las células acumulan agua, produciendo que
los poros se abran y los gases circulen libremente hacia fuera y hacia dentro.
Cuando la cantidad de agua es pequeña, el K+ es expulsado fuera de la célula
guarda. Los poros se cierran fuertemente.
c) Fotosíntesis. La activación de enzimas por K+ y la formación de adenosín
trifosfato (ATP) probablemente juega el papel más importante en la fotosíntesis
que la regulación de estomas. Cuando la luz se combina con el CO2 para
formar azúcar, la energía inicial es el ATP. El balance eléctrico en el sitio de la
producción de ATP es mantenido por el ion K+, si las plantas tienen deficiencia
de K+, el intervalo de la fotosíntesis y el del ATP se reduce y todos los
Capítulo III.
64
procesos dependientes de éste último disminuyen. Como consecuencia, la
respiración de la planta aumenta, lo que genera un menor crecimiento y
desarrollo.
d) Transporte de azúcar. El azúcar producida en la fotosíntesis debe ser
transportada a través del floema a otras partes de la planta para su utilización y
almacenaje. El sistema de transporte de la planta usa energía en forma de
ATP. Si el K+ está en cantidades no óptimas, hay menos ATP disponible y el
sistema de transporte se hace más lento. Un adecuado suministro de K+ ayuda
a mantener todos los procesos de respiración y transporte en un óptimo
funcionamiento.
e) Síntesis de proteínas. La lectura de los códigos genéticos en las células de la
planta produce enzimas y proteínas que rigen todos los procesos de
crecimiento, lo cual sería imposible sin la presencia de K+. Cuando las plantas
son deficientes en potasio, las proteínas no se sintetizan produciendo una
abundancia de nitrógeno disponible.
f) Síntesis de almidón. La enzima responsable de la síntesis de almidón es
activada por el K+. Con deficiencias de K+ la cantidad de almidón disminuye
mientras que los carbohidratos solubles y los compuestos de N se acumulan.
1.6. IMPORTANCIA DEL POTASIO EN TULIPÁN Y OTROS CULTIVOS Como toda planta bulbosa, el tulipán es muy exigente en potasio, ya que favorece
la rigidez del tallo, mejora la síntesis y migración de los glúcidos hacia el bulbo y
mejora la coloración de las flores (Armstrong, 2002). Cuando se presenta una
deficiencia de potasio, se observa una marcada reducción en el tercio basal de las
plantas, en ocasiones puede ir acompañada de necrosis; este síntoma es
especialmente notorio en clavel, rosa y pompón. En clavel el potasio es importante
en el desarrollo de la flor. Los iones de potasio estimulan la expansión celular en
los pétalos, el máximo crecimiento se debe a las auxinas y iones potasio. Flores
tratadas con citocininas retardan la senescencia especialmente cuando se
combina con 100 mM de K+ como KNO3 en comparación con el testigo. El
Capítulo III.
65
tratamiento con etileno reduce los iones K+ en los pétalos aumentando la
senescencia. Además la apertura de botones florales ya que el diámetro en la flor
se incrementa en tratamientos con K+ (Wong et al., 1989).
Treder (2005), estudió el efecto de tres niveles de K+ (0, 0.23 y 0.43 g dm-3) y uno
de Ca2+ (60 mg dm-3) en la fisiología de lilies. Las diferentes concentraciones de K+
no afectaron el número de días a floración, altura de la planta y número de yemas
florales abortadas. Con 0.43 g K dm-3 se encontró el mayor peso de biomasa
fresca (46 g),y el área foliar (442 cm2); sin embargo, con esta dosis las plantas
presentaron un color verde pálido y los tallos presentaron una menor resistencia.
El contenido de N P y K no se afectó por acción del potasio, no así el contenido de
Mg y Ca, los cuales presentaron cambios significativos (Treder, 2005).
En dos cultivares de Alstroemeria (Orchid y Carmen) se evaluó el efecto de 60,
180 y 300 mg de K+ maceta-1, aplicado cada semana como K2SO4. En Orchid el
número de flores por planta (20.2, 21.7 y 23.5) y peso fresco del vástago (976,
1113 y 1122 g) fue mayor con las dosis altas de potasio. En Carmen el
comportamiento fue distinto ya que existieron diferencias en flores por planta
(22.0, 22.8 y 22.0), biomasa fresca del tallo floral (43.1, 45.1 y 46.2 g), flores por
tallo floral (9.1, 9.3 y 9.8) y biomasa fresca del vástago (989, 1173 y 1143 g). El
contenido de K+ en las hojas fue más alto cuando se incrementó la dosis de K+
(Arnold y van den Berg, 1982).
Ulrich y Fong (1969), estudiaron los efectos de la nutrición con potasio sobre el
crecimiento y contenido de cationes (Ca2+ y Mg2+) en hojas de papa y en el
tubérculo, reportando que el peso de la biomasa fresca y seca con un bajo
contenido de K+ fue menor en un 50%. Una concentración alta de K+ disminuyó la
absorción de Ca y Mg por la planta.
En chile (Capsicum annuum) se evaluaron dos dosis de K (200 y 400 kg ha-1),
encontrándose que el color (estimado a través de parámetros HUE y CROMA) del
fruto fue menor al incrementar la fertilización potásica; sin embargo, la firmeza
(Newton) en los frutos se incrementó, siendo de 12.44 y 12.58 para 200 y 400 kg
de K ha-1. Los valores de pH en el fruto a los 21 días de almacenamiento fue de
Capítulo III.
66
4.93 para 200 kg de K ha-1 superando en 0.07 con la mayor dosis de fertilización
(Martínez et al., 2003).
1.7. INTERACCIÓN NUTRIMENTAL La interacción entre nutrimentos en las plantas cultivadas ocurre cuando al
abastecimiento de uno de ellos afecta la absorción y utilización de otros. Este tipo
de interacción es muy común cuando un nutrimento tiene un exceso de
concentración en el medio de cultivo, y puede ocurrir en la superficie de la raíz o
dentro de la planta, existiendo dos categorías principales; en la primera, están los
precipitados o complejos que ocurren entre iones por su capacidad de formar
vínculos químicos; en la segunda es entre iones con propiedades tan similares
que compiten por el sitio de adsorción, absorción, transporte y función en la raíz
de las plantas o dentro de sus tejidos. Estas interacciones son frecuentes entre
elementos similares en tamaño, en carga, en geometría de coordinación y en
configuración electrónica; común entre Ca2+, Mg2+, K+ y Na+ (Fageria, 2001). Se ha
observado que existe un límite a partir del cual, si disminuye la concentración de
Ca2+ en el interior de la célula, también lo hace la concentración de K+. El Ca2+
impide que el K+ y otros iones y moléculas, salgan del interior de las células.
Jacobson et al. (1960), encontraron una mayor concentración de potasio en raíces
de cebada cuando se incorporaba en la solución nutritiva Ca2+. Al reproducir in
vitro la salida de solutos de las membranas celulares con el quelante EDTA (ácido
etileno diamino tetracético), se ha podido comprobar el antagonismo H+/Ca2+. Al
disminuir el pH del medio radical, hasta valores próximos a pH = 3 (10-3 moles
H+ L-1), las raíces permiten la salida de solutos al medio exterior. Al aumentar la
concentración de Ca2+ en el medio extracelular, también lo hace el pH, con lo que
la pared celular de las raíces se refuerza y se evita el efecto descrito. Se ha
observado la existencia de una interacción entre el B y el Ca2+ en diversos
organismos. Así, se ha demostrado que el Ca2+ puede evitar el daño causado por
la deficiencia en B en la estructura del heterocisto (célula diferenciada
contenedora de la enzima nitrogenasa que actúa en la fijación de nitrógeno
Capítulo III.
67
atmosférico en cianofitas) (Bolaños et al., 1994). Por otro lado, de una manera
recíproca también se ha observado que el B puede recuperar la deficiencia de
Ca2+, al igual que el macronutrimento hace en la deficiencia en B, indicando un
papel sinérgico del B y del Ca2+ en cianobacterias (Bonilla et al., 1995). Cuando
existe deficiencia de K se deprime el transporte de fosfatos, nitratos, Ca y Mg. Así
mismo concentraciones elevadas de potasio reducen la absorción de calcio por la
planta y viceversa.
1.7.1. Relación K+/Ca2+ En muchos trabajos se ha encontrado deficiencias de Ca especialmente cuando la
absorción de este elemento es afectada por altos niveles de K (Bar-Tal y
Dressman, 1996). En rosa la presencia de K se inhibe la absorción de Ca (Baas et
al., 1998). Dada la influencia del K en la absorción de Ca, diversos trabajos se han
llevado a cabo usando diferentes relaciones de K+/Ca2+ para determinar la relación
que se tiene con la acumulación de nutrimentos y la calidad de diferentes cultivos
hortícolas.
En rosa se estudió el efecto de K+ (25, 50, 100 y 200 ppm) y Ca2+ (20, 40, 80 y
160 ppm) sobre el crecimiento y absorción de nutrimentos. La tasa de crecimiento
no se afectó por las diferentes dosis de K o Ca aplicadas. Sin embargo, la
absorción de K fue mayor con altas concentraciones, con 200 ppm de K fue de
0.47 g de K 100 g-1 de materia fresca y superó en 1.5 veces a la concentración
que se presentó con 25 ppm de K. La absorción de Ca disminuyó
significativamente siendo 0.16, 0.15, 0.15 y 0.11 g 100 g-1 MF para 25, 50, 100 y
200 ppm de K, respectivamente. La cantidad de Ca en el tratamiento de 80 ppm
fue similar a 160 ppm Ca. Con esta última se encontró una concentración 2 veces
mayor que con 20 ppm de Ca, ya que al incrementarse la dosis de 20 a 160 ppm
la absorción fue de 0.12 y 0.20 g 100 g-1 MF, respectivamente. La cantidad de N y
P no se afectó por los tratamientos aplicados. La absorción de Mg disminuyó
significativamente de 0.06 a 0.03 g 100 g-1 MF cuando la concentración de Ca
Capítulo III.
68
aumentó de 20 a 160 ppm, en cuanto al K no se afectó por el suministro de Ca
siendo de 0.47, 0.50, 0.52 y 0.49 g 100 g-1 MF (Terada et al. 1996).
En otro trabajo se estudiaron tres relaciones de K/Ca: alta (12/1), media (1/1) y
baja (1/5) sobre el crecimiento y valor ornamental en rosal. No se encontraron
síntomas de deficiencia o toxicidad durante el desarrollo del cultivo. En el
crecimiento y desarrollo de la planta, las diferentes relaciones no provocaron
cambios significativos. La altura del vástago no se afectó; sin embargo, la longitud
del pedicelo fue diferente en la alta, media y baja relación siendo de 10.2, 9.6 y 9.9
cm , respectivamente. El peso de la biomasa fresca de la raíz y del vástago
disminuyó cuando fue menor la relación K+/Ca2+, pero la relación vástago/raíz no
se afectó. El contenido de K en las hojas y flores fue similar, mientras que el
contenido de Ca fue considerablemente más bajo en la flor en relación a la hoja.
La concentración de calcio tanto en hoja como en flor fue menor a medida que se
aumentó la relación K/Ca y la de K fue similar en los tres tratamientos. Una alta
conductancia estomática se encontró en hojas del estrato bajo de plantas crecidas
con una alta relación K/Ca, mientras que las del estrato alto no se afectaron. La
relación K/Ca no presentó diferencias significativas en la curvatura del tallo floral;
sin embargo, alteraciones en la hoja (clorosis y necrosis, especialmente en los
bordes) y necrosis en los pétalos, además de una pérdida de color se
incrementaron paralelamente con el aumento de relación K/Ca. Los pétalos con
necrosis contenían un menor porcentaje de Ca y mayor de K (Torre et al., 2001).
En plantas de rosa de maceta, se estudiaron tres relaciones de K/Ca: alta (0.25
mM de Ca y 10.6 mM de K), media (3.54 mM de Ca y 3.99 mM de K) y baja (5.03
mM de Ca y 1.00 mM de K), correspondientes a 42:1, 1:1 y 1:5, respectivamente.
Se determinó altura de planta y diámetro, número de flores, yemas florales con y
sin color visible, peso de la biomasa fresca y seca del vástago y seco de la raíz,
así mismo se calculó el área foliar específica (AFE). Al disminuir la relación K/Ca
se retrasó la floración de 4 a 5 días, el número de flores abiertas fue menor y el
número de yemas visibles con y sin color se incrementó cuando disminuyó la
relación K/Ca. La relación media de K/Ca generó plantas de mayor longitud (31.3
cm) y mayor peso del vástago seco (17.3 g); sin embargo, se presentó el menor
Capítulo III.
69
peso de raíz seca con 3.38 g. La AFE fue de 221, 219 y 200 cm g-1 con alta, media
y alta relación K/Ca, respectivamente. Al disminuir la relación K/Ca de alta a baja
se incrementó la calidad de la flor por 9 días más (46%) y retrasó el tiempo (14
días) en el que todas las flores se marchitaran. El número de yemas florales con
Botrytis fue alto (3.9) en la relación media. La concentración de Ca en las hojas
fue el triple (1.37%) y el doble en flores (0.154%) en la baja concentración con
respecto a la alta, mientras que el K fue menor cuando la relación K/Ca disminuyó
de alta a baja (Mortensen et al., 2001).
En crisantemo se ha encontrado que el crecimiento y desarrollo no se afectó por el
suministro en la solución nutritiva de diferentes concentraciones de Ca y K. Sin
embargo, existe un antagonismo de otros cationes y aniones. Las diferentes
concentración de K afectó la absorción de Ca, mientras que el Ca no afectó la
absorción de K pero si la de Mg. Estas diferencias en la absorción de K y Ca
pueden deberse a la valencia de cada ion (Kegeyama y Konoshi, 1993 y 1995).
En lisianthus (Eustoma grandiflorum), van Labeke et al. (1995) estudiaron durante
dos años (1992 y 1993), el efecto de diferentes relaciones de K/Ca (7.04/7.04,
3.52/7.04, 3.52/10.56, 7.04/3.52 y 10.56/3.52 mval L-1) sobre la calidad de tallo
floral expresado por la longitud del tallo, peso del tallo, número de ramas laterales
en el tallo floral y número de yemas florales. Se encontraron diferencias
significativas en las variables evaluadas por acción de ambos cationes. La mejor
calidad de la flor en ambos experimentos se presentó con la proporción
3.52/10.56. Al aumentar la concentración de K disminuyó el peso del tallo y
número de ramas laterales, particularmente cuando se combinó con una menor
concentración de Ca. Durante 1993 cuando se superó una concentración de K de
7.04 disminuyó el peso del tallo mientras que el número de yemas no presentó
cambios. Los autores concluyen que el mejor intervalo para obtener la mejor
calidad de flor en lisianthus oscila entre 3.5 y 4 mval L-1 para K y 10 a 11 mval L-1
para Ca.
En otro estudio se evaluó la influencia de diferentes concentraciones de K (0, 4 y
16 meq L-1) y Ca (0, 4 y 16 meq L-1) en solución nutritiva evaluadas sobre el
crecimiento y composición nutrimental en plantas de papa (Solanum tuberosum
Capítulo III.
70
L.). Las plantas que recibieron 0 o 16 meq L-1 de K o de Ca presentaron una
reducción en la altura de tallo y número de nudos pero se incrementó el grosor de
la hoja en comparación con el testigo. Plantas a las que no se les suministró K o
Ca presentaron reducción en la longitud del tallo y número de nudos, después de
5 días de que se aplicó el tratamiento. Las plantas que no recibieron Ca
presentaron síntomas de deficiencia después de 5 días de aplicado el tratamiento;
posteriormente existió una reducción del crecimiento, hasta que éste cesó. El
grosor de la hoja en plantas deficientes de Ca fue mayor que en el tratamiento
testigo. La solución con una concentración de 0 meq L-1 de K acumularon una
mayor cantidad de N (7.39%) después de 7 días de aplicado el tratamiento. Sin
embargo, después de 30 días el N disminuyó en 5.38% en comparación con el
tratamiento testigo. En la solución sin Ca se incrementó la acumulación de N en
las hojas superiores en 6.96% después de 3 días de aplicado el tratamiento, en el
día 7 disminuyó a 6.31% y en el 30 a 4.0%. Al incrementar el K o Ca en la solución
de 4 a 16 meq L-1 se presentó un antagonismo en la acumulación de N-total y P en
las hojas superiores después de 7 días de aplicado el tratamiento. Sin embargo, el
incremento en la concentración de K en la solución no afectó el contenido de K en
las hojas superiores pero el Ca disminuyó después de 3 días de aplicado el
tratamiento. Al incrementar la concentración de Ca en la solución se incrementó el
contenido de Ca en las hojas superiores pero el K fue menor después de 21 días
de aplicado el tratamiento (Chil et al., 2001).
Voogt (1988), estudió el efecto de cuatro relaciones K/Ca en tomate (48/43, 61/30,
72/20 y 81/11, expresados en porcentaje), sobre el número, peso y calidad de los
frutos. La cantidad de agua absorbida por el cultivo fue de 429, 542, 555 y 506 L
m-2, para los tratamientos 1, 2, 3 y 4, respectivamente. La producción fue menor
en 25% en la relación alta (81/11), y en 37% en la relación baja (48/43); ambas en
comparación con la relación 72/20, en la cual se presentó el mayor rendimiento
(28,8 kg m-2), debido tanto a un mayor número de frutos por m2 (188) como al
peso individual de fruto (154 g). Los bajos rendimientos en bajas relaciones
K+/Ca2+ son causado por una deficiencia de K y en altas por deficiencia de Ca. El
porcentaje de pudrición apical en fruto fue mayor a medida que la concentración
Capítulo III.
71
de Ca disminuyó. La vida de anaquel se incrementó en un 35% (4 días), contenido
de ácidos 45% (26 mmol L-1) y sólidos solubles 20% (0.9 % Brix) con la alta
relación de K/Ca en comparación con el tratamiento 1 que presentó 11 días, 57
mmol L-1 y 44% Brix, en las variables de vida de anaquel, contenido de ácidos y
sólidos solubles, respectivamente. Los resultados demuestran que el incremento
en la relación K/Ca se afecta el contenido de K y Ca, en los tejidos a mayor K se
tiene una menor concentración de Ca. El contenido de Mg en la hoja no presentó
variaciones; sin embargo, en el pecíolo disminuyó y en fruto aumentó cuando se
incrementa la relación K/Ca. El contenido de K fue más alto en el pecíolo en
relación a las hojas, mientras que el contenido de K no se modificó (aunque se
encontró una menor concentración en los frutos). La acumulación de materia seca
en la hoja y pecíolo es más alta en una baja relación K/Ca y en los frutos ésta es
menor.
1.8. POSTCOSECHA DE FLORES
1.8.1. Cambios fisiológicos ocurridos en la postcosecha En el tiempo comprendido entre la cosecha y la llegada del producto al
consumidor se ha estimado que pueden ocurrir pérdidas del 5 al 50%
dependiendo del producto. En una forma directa o indirecta todas estas pérdidas
están relacionadas a los procesos de senescencia. Watada et al. (1984), definen
este término como “aquellos procesos que siguen a la madurez fisiológica o a la
madurez hortícola y que conducen a la muerte del tejido”. De acuerdo con Halevy
y Mayak (1979) hay dos diferencias fundamentalmente entre las flores cortadas y
otros productos agrícolas y las cuales deben considerarse al hablar de
senescencia y manejo postcosecha. En primer lugar, las flores son estructuras
complejas morfológica y fisiológicamente, ya que están constituidas de varios
componentes como son los pétalos, sépalos, androceo, gineceo, tallo y en muchos
casos inclusive las hojas y todos ellos se encuentran interaccionando. En segundo
lugar, en la mayoría de las flores cortadas se pueden separar dos etapas
Capítulo III.
72
fisiológicas que son, por un lado, el crecimiento del botón floral y por otro lado la
maduración, senescencia y marchitamiento; las técnicas de manejo de estas
estructuras deben de influir sobre ambos aspectos que son antagónicos. El
mejoramiento en las técnicas de manejo y almacenamiento acoplado con el
manejo biológico y genético, en forma conjunta sirven para regular en forma más
precisa para la senescencia resultando en mejor disponibilidad y calidad de los
diferentes productos cosechados (Colinas, 1989).
El tiempo de madurez a senescencia y muerte es mucho menor en pétalos que en
hojas. De acuerdo con Halevy y Mayak (1980), se puede estudiar la senescencia
natural de estas estructuras, sin recurrir a tratamientos de “envejecimiento” como
es común como en el caso de las hojas. Otro aspecto de interés que es diferente
en los pétalos en relación a los estudios de senescencia, es que generalmente
éstos carecen de clorofila, la cual, al igual que los cloroplastos da los primeros
síntomas de senescencia en los órganos donde se encuentran. Sin embargo, en
las flores donde hay plastidios el cambio de cloroplastos verdes (en pétalos
jóvenes) a cromoplastos amarillos se caracteriza por la desaparición gradual de
los tilacoides y la aparición de grupos de túmulos en el estroma. Por otro lado, el
cromoplasto (organelo rodeado por una membrana que almacena carotenoides)
es varias veces más grande que el cloroplasto del cual se originó. Se ha
observado que los cromoplastos durante la senescencia muestran pequeños
dobleces de la membrana. Durante la madurez y senescencia de los pétalos se ha
observado la desaparición de ribosomas aislados y los que se encuentran en
grupos y finalmente de los unidos al retículo endoplásmico. Se ha demostrado un
aumento en la permeabilidad de la membrana durante la senescencia de clavel y
rosa. También se ha observado un aumento en la micro-viscosidad de la
membrana durante el envejecimiento indicando cambios en la proporción de
esteroles y fosfolípidos (Colinas, 1989).
Desde el punto de vista metabólico, en los pétalos en senescencia se observan
aumentos en la respiración y en la hidrólisis de los componentes celulares lo cual
obedece a cambios en las actividades de las enzimas. Por ejemplo, el aumento en
la actividad de las peroxidasas está relacionado aparentemente con el aumento de
Capítulo III.
73
peróxidos y radicales libres, los cuales reaccionan con los constituyentes celulares
y promueven la senescencia y posiblemente también con la producción de etileno.
En algunas flores se ha observado que aumentan las actividades enzimáticas de
enzimas como la ARNasa, ADNasa y las hidrolasas de los polisacáridos de la
pared celular. También disminuyen las macromoléculas como almidón y proteínas.
En cuanto a la respiración, en muchas flores aumenta hasta un máximo cuando
empiezan a abrirse y después hay una disminución gradual cuando la flor madura
y llega a la senescencia. Otro fenómeno común durante el envejecimiento de
muchas flores es la decoloración de los pétalos. Hay dos tipos principales de
pigmentos que contribuyen al color de las flores: carotenoides y antocianinas. Hay
más estudios sobre los cambios en pigmentación debido a las antocianinas. El
comportamiento de los pigmentos varía mucho según las especies florales, en
algunos casos no cambian durante la senescencia, o bien pueden disminuir o
también aumentar. Por otro lado, el pH de la vacuola es el factor más importante
que determina los cambios de color en los pétalos en senescencia (Colinas, 1989).
En cuanto a las hormonas vegetales, la reducción en el nivel interno de citocininas
está asociada con los procesos de senescencia. En claveles se ha reportado la
presencia de giberelinas y auxinas. El ácido giberélico aumenta el tamaño de las
flores y prolonga longevidad de los claveles. También se ha observado que el nivel
de auxinas disminuye en las flores de nochebuena con mayor velocidad que en los
cultivares de vida corta. En cuanto al ácido abscísico, los niveles internos
aumentan durante la senescencia de los pétalos. La aplicación de ácido abscísico
aumenta la senescencia.
1.8.2. Importancia de los factores inmersos en postcosecha Temperatura. Es considerado un factor importante que determina directamente la
calidad de las flores de corte en postcosecha. Ocurren dos vertientes del efecto de
temperatura; primero, las bajas temperaturas tienden a disminuir el efecto de
respiración, el uso de carbohidratos y otros compuestos almacenados en los
tejidos. Esto como consecuencia hace que las flores produzcan menos etileno,
Capítulo III.
74
propiciando un decremento en la sensibilidad de éste en la atmósfera: condiciones
que van a retardar la pérdida de agua y presencia de microorganismos; motivo por
el cual es importante el uso de cadenas frías después de la cosecha. En segundo
término, la presencia de altas temperaturas aceleran la apertura floral y la
senescencia de tallos florales (Cabrera, 2002). De ahí que tulipán como flor de
corte y por cultivarse en zonas templadas se caracteriza por soportar bajas
temperaturas durante el almacenamiento.
Humedad. El tulipán es un cultivo que al igual que otras flores de corte contiene
considerables cantidades de agua; Nowak y Rudnick (1990), mencionan que las
flores pierden del 10 a 15% de peso fresco al marchitarse. Sin embargo, al
incrementar la humedad relativa en áreas de almacenamiento y empaque, uso de
bajas temperaturas y la libre circulación de aire es posible reducir la pérdida de
agua.
Luz. En esta especie es un factor que tiene efectos significativos en manejo
precosecha y postcosecha, debido a que es una flor que usualmente requiere
condiciones de baja intensidad lumínica, mientras que alta intensidad es aplicada
cuando los botones florales aún no inicia el pintado y apertura (Nowak y Rudnick,
1990).
Nutrimentos. Es importante que las flores de corte tengan un aporte de
carbohidratos necesarios, los cuales pueden ser suministrados mediante la adición
de azúcar en dosis correspondientes de agua (Reid, 1992). El Ca2+ y el K+ son
también nutrimentos esenciales importantes en la calidad de flores de corte.
Microorganismos. Las flores de corte son afectadas por la presencia de
microorganismos, ocasionando bloqueo vascular y por consiguiente obstruyendo
el flujo del agua en el interior de los tallos; daño ocasionado principalmente por
poblaciones de bacterias causantes de una disminución en la conductividad del
agua. El aumento en la población de bacterias es acompañado por una sustancia
viscosa amorfa de consistencia pegajosa capaz de obstruir o introducirse en los
Capítulo III.
75
vasos de xilema, dependientes del tamaño de las moléculas que forman estas
sustancias.
1.8.3. Manejo postcosecha de flores Las flores cortadas son partes vegetales vivas que metabolizan activamente y
están sujetas al fenómeno de envejecimiento que ocurre más rápido en
comparación con las flores que permanecen en la planta. Por lo tanto se debe
suministrar los requerimientos que tienen en forma natural con el objetivo de
retardar la senescencia. De acuerdo con Hardenburg et al. (1988) dentro de los
aspectos fundamentales que deben considerarse para una vida prolongada de las
flores cortadas están:
a) El agotamiento de las reservas puede causar la muerte. La respiración causa
la disminución de los nutrimentos acumulados y la rapidez con que
desaparecen determina muchas veces la duración de las flores.
b) El ataque de hongos y bacterias acortan la vida de florero.
c) El marchitamiento causado por la excesiva pérdida de humedad por
transpiración puede limitar el almacenamiento y la difracción de la flor. Las
flores manifiestan marchitez cuando han perdido del 10 al 15% de su peso
original.
d) El rompimiento de los tejidos por un deficiente manejo acorta la vida de
almacenamiento por incrementar la respiración.
e) El control inapropiado de la temperatura.
f) Cambios de color como el desteñido de los claveles o el azulamiento de las
rosas.
g) La acumulación de etileno en el almacenamiento acelera el envejecimiento de
muchas flores y provoca abscisión de pétalos.
h) La calidad inapropiada del agua, tanto por la contaminación y por el alto
contenido de minerales que reducen la duración de las flores.
Por otro lado, también se debe controlar la apertura y el desarrollo de las flores,
así como la estabilidad del color.
Capítulo III.
76
En la nutrición mineral, el sustrato de crecimiento parecen tener poca importancia
sobre la longevidad de la mayoría de las flores; sin embargo, hay algunos casos
específicos donde si tienen influencia. Por ejemplo, las deficiencias de calcio,
potasio y boro disminuyen ligeramente la vida de florero de clavel. Por otro lado,
en crisantemos, una alta concentración de nutrimentos (especialmente nitrógeno)
en la última fase del período de crecimiento disminuye la calidad de
almacenamiento de las flores (Colinas, 1989), concluyendo así que las flores para
ornato (flor de corte) presentan una serie de cambios fisiológicos y morfológicos
una vez que son cosechados, debido a que se elimina totalmente la disponibilidad
de nutrimentos necesarios para llevar a cabo su metabolismo. Por lo tanto, es
necesario controlar la tasa de apertura floral y color aprovechando la capacidad de
la planta (Rogers, 1973).
Cabrera (2002) cita una serie de fenómenos que afectan la vida de florero de
ornamentales de corte tales como: el agotamiento de reservas (nutrimentos
acumulados y carbohidratos); presencia de hongos y bacterias, maduración y
envejecimiento de tallos florales, marchitamiento debido a la pérdida de humedad
por transpiración, control inadecuado de temperaturas postcosecha, deficiente
calidad de agua (alto contenido de minerales) y finalmente la aplicación
inadecuada o inoportuna de programas de fertilización óptimos para la especie
cultivada. Los factores antes mencionados se consideran causantes de reducir la
duración de las flores durante su almacenamiento, mercadeo y vida en florero.
Durante la vida en florero, se ha encontrado que los vasos del xilema son
obstruidos desde la superficie de corte hasta 5 cm sobre el mismo, ocasionando
una baja conductancia hídrica. Algunas especies susceptibles a la presencia de
poblaciones de bacterias y que consecuentemente tienen una duración en florero
reducida son: clavel, crisantemo, gerbera, lilies, rosas y tulipanes (Van Doorn et
al., 1991; Cabrera, 2002).
Capítulo III.
77
1.8.4. Función de los carbohidratos solubles en la senescencia floral La acumulación de azúcares en pétalos de flores sirve como fuente de energía
para llevar a cabo procesos bioquímicos y fisiológicos. También ejercen ciertos
efectos positivos durante la vida de florero como: mantener la estructura
protoplásmica y mitocondrial, el balance hídrico (cierre estomático), regulan la
asimilación de solutos (integridad de membranas); además la sacarosa como tal
es capaz de provocar una acumulación de CO2, el cual puede actuar como
antagonista a la acción de etileno, disminuyendo de esta manera la sensibilidad al
etileno permitiendo cierta resistencia al proceso de senescencia.
Los azúcares solubles se pueden encontrar en tejidos y compartimentos celulares.
Recientemente Sexton et al. (2000) encontraron baja sensibilidad a etileno en
pétalos de tulipán. Los mecanismos de acción de sacarosa en la planta de tulipán
es todavía desconocida. Algunos reportes indican que los niveles de sacarosa
total en pétalos, tiene poca relevancia para la distribución de ésta en el simplasto,
así como su efecto en la vida de florero (van Doorn, 2001). Contrariamente,
Thimann et al. (1977), hipotéticamente mencionan que la carencia de azúcares
causa de manera directa la senescencia en hojas. La disminución de la
fotosíntesis, está asociada con los genes de la planta que aparentemente se
inducen por bajos niveles de azúcares. La senescencia en pétalos también puede
deberse a bajos niveles o exceso de azúcares. La presencia de bajos niveles
puede ser incorporada mediante su aplicación en flores de corte generalmente al
iniciar síntomas visibles de senescencia. La función de los azúcares deficientes en
la planta induce cambios fisiológico-celulares y esto se observa con la muerte de
células durante la senescencia. Thimann et al. (1977), aclaran que la senescencia
ocurre en diferentes etapas de desarrollo de la planta. Menciona que bajos
contenidos de azúcares son la causa directa de la senescencia en hojas, la
disminución de la fotosíntesis es seguida por la senescencia asociada a los genes.
La carencia de azúcares se puede solucionar mediante la aplicación de éstos en
flor de corte generalmente al inicio de la senescencia.
En pétalos se consideran tres modelos alternativos causantes de la senescencia:
Maduración deficiencia y acumulación.
Capítulo III.
78
Puesto que la degradación de polisacáridos, proteínas, lípidos y ácidos nucleicos
son resultado de la movilización de compuestos a base de nitrógeno y azúcares.
Ocurre cuando las moléculas son transportadas de floema a otras partes de la
planta. Las señales de maduración y déficit actúan independientemente. La
movilización y bajos niveles son similares a los encontrados en la estructura
celular, bioquímica y expresión genética. La senescencia en pétalos inicia en las
vacuolas, se presenta una disminución en el retículo endoplásmico y también se
ha observado en algunos de sus estados. Durante la deficiencia y senescencia,
los lípidos son degradados por lipasas y ácidos en presencia de CoA. En células
de raíz, aparentemente inicia la producción adecuada de energía en su
metabolismo. Adicionalmente los azúcares pueden actuar indirectamente dentro
de la sensibilidad a etileno. Algunas veces el efecto es considerado amplio en
algunas especies cuando la senescencia de pétalos es regulada por etileno. En
este grupo el efecto de los azúcares se mantiene estable y de esta manera reduce
la sensibilidad a etileno (van der Meulen–Muisers et al., 2001).
1. La señal de maduración es resultado de la deficiencia expresada por genes
involucrados en la movilización.
2. La acumulación de azúcares es una señal de la senescencia, que puede
actuar dentro de genes que inducen la movilización.
La movilización y bajos niveles de azúcares pueden ser similares en la estructura
celular, bioquímica y expresión genética considerando la apariencia visible de
senescencia en pétalos. Una disminución en retículo endoplasmático es también
observada en una de las etapas o fases. Daños severos en organelos dentro del
citoplasma, van desapareciendo pero el núcleo y la mitocondria se mantienen
igual.
En pétalos senescentes, se ha observado que la sacarosa es capaz de mantener
el transporte de carbohidratos, cuando las amidas translocan el N en floema. Pero
durante el déficit y senescencia, los lípidos son usualmente degradados por
lipasas y otros ácidos degradados por CoA. Los efectos de la aplicación de
azúcares en la senescencia de pétalos, interviene jugando un papel importante en
Capítulo III.
79
la activación de niveles de azúcar. En algunos casos, el efecto de los azúcares
puede reducir la sensibilidad al etileno (Van der Meulen-Muisers et al., 2001).
Los azúcares desempeñan múltiples funciones en varias etapas de vida de la
planta. Primero, se encargan de mantener la respiración, generación de energía y
como intermediarios al utilizarse para la síntesis de macromoléculas y otras
células constituyentes. Segundo, la ribulosa es un azúcar que forma parte de la
estructura del ADN y ARN. Tercero, los polisacáridos mantienen una mayor
estructura en las células de la planta. Cuarto, los azúcares son requeridos para
actuar en el funcionamiento de proteínas y lípidos.
Algera (1936), Ahmed y Khurshid (2004), y Dosser y Larsan (1981) observaron
que la temperatura y el contenido de carbohidratos en tulipán, afectan las
características morfológicas y desarrollo de los bulbos. También se ha observado
que algunos factores genéticos y del ambiente como la luz juegan un papel
importante en el crecimiento y desarrollo de los bulbos.
Wassink (1965), menciona que una variación en la temperatura particularmente
durante la etapa de formación del capullo debe considerarse como etapa crítica en
este cultivo.
1.8.5. Postcosecha en tulipán Tras colocarlas en agua, las varas florales son almacenadas en posición erguida;
se recomienda que la humedad relativa en la cámara frigorífica sea de 90%. Esta
última medida deberá ser adoptada, siempre y cuando no se deposite agua sobre
las flores. Esto es por que las esporas de Botrytis sp. pueden germinar en pétalos
o bien en hojas cubiertas con una película de agua lo que causa el llamado
“tizón”. Si los depósitos de agua no pueden ser eliminados, el nivel de humedad
relativa deberá ser más bajo. Sin embargo, se debe tener en cuenta que una
humedad relativa baja origina que el producto se deshidrate lo que afecta la
calidad de las flores (Centro Internacional de Flores de Bulbo, 2000). El
almacenamiento de los tallos de tulipanes demasiado tiempo en la cámara
frigorífica afectará su calidad. Por lo tanto nunca se deberá mantener las varas
Capítulo III.
80
florales más de 3 días en la cámara frigorífica (Vidale, 2001). Al cosechar la flor se
le corta el suministro de agua, azúcares, hormonas y el etileno (Hoogerwerf y van
Doorn, 1992). Es esencial que después de la cosecha, la temperatura del producto
disminuya entre 1-2 ºC. Cuando se alcance esta temperatura entonces se pueden
hacer los ramos. De esta forma se limita la respiración y con ello, el consumo de
reservas (Paulin, 1997). También se limita la pérdida de humedad por
evaporación, de modo que no se deshidrate y el transporte de reservas hacia la
flor se mantenga sin cambios (Hussein, 1994). Si se colocan los tallos en posición
vertical, se evita que los tallos se doblen durante el almacenaje.
Capítulo III.
81
II. OBJETIVOS 2.1. Objetivo general Estudiar el efecto de las relaciones potasio/calcio (K+/Ca2+) en la solución nutritiva
de Steiner sobre la absorción nutrimental, calidad y vida postcosecha de tulipán.
2.2. Objetivos específicos
• Determinar la influencia de diferentes relaciones K+/Ca2+ en la solución nutritiva
de Steiner sobre los contenidos nutrimentales en tejidos foliares de tulipán.
• Evaluar la influencia de relaciones variables de K+/Ca2+ en la solución nutritiva
de Steiner sobre la calidad y vida postcosecha de tulipán.
III. HIPÓTESIS 3.1. Hipótesis general La relación K+/Ca2+ en la solución nutritiva de Steiner influye en la absorción
nutrimental en tulipán, calidad y vida en florero.
3.2. Hipótesis específicas
• La relación K+/Ca2+ 7/10.5 (en molc m-3) en la solución nutritiva de Steiner
incrementa los contenidos nutrimentales en tejido de plantas de tulipán.
• La relación K+/Ca2+ 7/10.5 (en molc m-3) en la solución nutritiva de Steiner
incrementa la calidad y vida en florero en tulipán.
Capítulo III.
82
IV. MATERIALES Y MÉTODOS
4.1. Ubicación del experimento y condiciones experimentales
La investigación se realizó bajo condiciones de invernadero tipo cenital de
estructura metálica y plástico blanco lechoso (Calibre 720), y en los laboratorios
del Grupo de Nutrición Vegetal en el Colegio de Postgraduados, Campus
Montecillo, ubicado en el Km. 36.5 de la carretera México-Texcoco, Montecillo,
Texcoco, Estado de México.
4.2. Material vegetal Se utilizaron bulbos de tulipán cv. Ile de France, el cual presenta un ciclo de
crecimiento precoz (entre 70 y 90 días) y una altura de planta promedio de 45 cm.
Esta variedad es muy popular por la tonalidad de su flor, rojo intenso y es
conocida también como tulipán del triunfo. Sus flores son las de mayor tamaño en
esta especie y tienen vástagos robustos con hojas compactas.
4.3. Tratamientos En este experimento se evaluaron diferentes relaciones de potasio y calcio
(K+/Ca2+), cada uno de ellos estudiados a tres niveles, cuya combinación origino
nueve tratamientos (Cuadro 1). Cuadro 1. Tratamientos evaluados en tulipán cv. Ile de France.
Potasio (K) Calcio (Ca) Tratamiento molc m-3
1 5.5 7.5 2 5.5 9.0 3 5.5 10.5 4 7.0 7.5 5 7.0 9.0 6 7.0 10.5 7 8.5 7.5 8 8.5 9.0 9 8.5 10.5
Capítulo III.
83
4.4. Diseño experimental El diseño experimental que se utilizó fue factorial completo 32 con diez
repeticiones (R) y una distribución completamente al azar (Figura 1). Las
unidades experimentales fueron macetas de 7 pulgadas (7”).
T4R2 T5R6 T3R3 T7R3 T2R6 T3R1
T3R9 T1R5 T8R5 T3R6 T5R7 T7R5
T2R4 T6R5 T1R4 T9R1 T1R7 T4R4
T9R2 T4R8 T2R2 T1R2 T4R9 T6R4
T5R5 T2R9 T9R8 T6R9 T8R8 T5R10
T1R1 T8R6 T4R3 T3R2 T3R7 T7R2
T9R10 T4R5 T6R6 T7R6 T9R9 T2R7
T8R3 T7R8 T7R1 T4R1 T6R10 T9R5
T6R3 T1R10 T5R2 T8R4 T1R6 T5R4
T8R10 T5R3 T8R7 T5R8 T7R10 T4R10
T3R4 T3R5 T9R3 T2R3 T6R8 T9R4
T7R7 T9R7 T2R10 T1R8 T3R10 T3R8
T1R3 T2R5 T8R2 T7R4 T5R9 T8R1
T4R6 T9R6 T7R9 T8R9 T4R7 T1R9
T5R1 T6R7 T2R1 T6R2 T2R8 T6R1
Figura 1. Distribución física de tratamientos evaluados en tulipán cv. Ile de
France.
4.5. Establecimiento del experimento
4.5.1. Preparación de los bulbos Limpieza de bulbos. Esta práctica se realizó antes de la desinfección, quitando la
cubierta cercana a la corona de las raíces, con el propósito de impedir que los
ápices radicales sufrieran quemaduras por efecto de la solución desinfectante en
la corona, además de favorecer el enraizamiento.
Capítulo III.
84
Desinfección del bulbo. Los bulbos antes de la siembra se sumergieron en una
solución al 0.2% de mancozeb (coordinación de etilenbisditiocarbamato de
manganeso con el ion zinc, fórmula empírica (C4H6N2S4Mn)a • (C4H4N2S4Zn)y)
durante 15 minutos, con la finalidad de prevenir ataques por Fusarium oxysporum,
Rhizoctonia solani, Botrytis y Phytium sp. Posteriormente los bulbos se dejaron
escurrir.
Riego pre-plantación. Éste se realizó antes de colocar los bulbos en las macetas,
de tal manera que al momento de la plantación el sustrato estuviera
suficientemente húmedo para facilitar el asentamiento de los bulbos sin apretarlos
y evitar que se rompiera la corona de las raíces.
4.5.2. Siembra La siembra se realizó el 20 de diciembre 2005 utilizando bulbos de tulipán cv. Ile
de France de 12 cm de diámetro, mismos que se colocaron en macetas de 7”. El
sustrato utilizado fue tezontle de 3 mm mezclado con Promix® (70/30 v/v).
4.5.3. Preparación de soluciones nutritivas Las soluciones nutritivas se prepararon a partir de fertilizantes comerciales y el
valor de pH se ajustó a 5.5 empleando HCl 1N. A partir de la solución nutritiva
universal de Steiner (Cuadro 2), se realizaron las modificaciones correspondientes
en las relaciones K+/Ca2+ que fueron evaluadas en esta investigación (Cuadro 1).
Capítulo III.
85
Cuadro 2. Concentración de la solución nutritiva universal de Steiner (Steiner,
1984).
Ion NO3- H2PO4
- SO4- K+ Ca+2 Mg+2
Concentración
(molc m-3)
12
1.0
7.0
7.0
9.0
4
La composición de las soluciones nutritivas evaluadas se presenta en el
Cuadro 3; en dichas composiciones se mantuvo el potencial osmótico en todos
los tratamientos a – 0.072 MPa.
Cuadro 3. Composición de las soluciones nutritivas a evaluar (molc m-3)1
Tratamiento NO3- H2PO4
- SO4- K+ Ca+2 Mg+2
molc m-3
1 (K1C1) 12.107 1.009 7.062 6.528 8.902 4.748
2 (K1C2) 12.215 1.018 7.126 6.053 9.904 4.402
3 (K1C3) 12.308 1.025 7.178 5.641 10.768 4.102
4 (K2C1) 11.887 0.991 6.934 7.496 8.032 4.284
5 (K2C2) 12.000 1.000 7.000 7.000 9.000 4.000
6 (K2C3) 12.098 1.008 7.058 6.565 9.848 3.751
7 (K3C1) 11.707 0.976 6.830 8.293 7.318 3.902
8 (K3C2) 11.821 0.985 6.896 7.789 8.248 3.665
9 (K3C3) 11.922 0.994 6.954 7.342 9.072 3.456 1Los valores de las concentraciones de K+ y Ca2+ difieren de las concentraciones absolutas propuestas (Cuadro 1), porque se modificaron al realizar el ajuste en el potencial osmótico a un valor de – 0.072 MPa. En las soluciones nutritivas se adicionó una mezcla de micronutrimentos
(Cuadro 4), en la cual el Mn, Cu y Zn se suministraron en forma de sulfatos; el B
como H3BO3; y el Fe como quelato (Fe-EDTA) de acuerdo al método descrito por
Steiner y van Winden (1970).
Capítulo III.
86
Cuadro 4. Concentraciones de micronutrimentos (Baca, 1983).
Micronutrimento Mn Cu B Zn Fe
Concentración
(mg L-1)
1.600
0.110
0.865
0.023
5.000
4.5.4. Aplicación de tratamientos La aplicación de los tratamientos (riego con soluciones nutritivas) inició 15 días
después de la siembra (dds), aplicando 50 mL maceta-1 de los 15 a 30 dds (riego
cada 3 días), 75 mL maceta-1 de los 31 a 45 dds (riego cada 3 días) y 100 mL
maceta-1 de los 46 a 60 dds (riego diario).
4.6. Variables evaluadas 4. 6. 1. Análisis de contenidos nutrimentales en tejido vegetal La evaluación del estatus nutrimental de tulipán se realizó en seis de las diez
repeticiones de cada tratamiento en hoja, tallo, flor y bulbo. El contenido de
nitrógeno total se determinó empleando el método Semimicro-Kjeldahl (Bremner,
1965). La determinación de P, K, Ca, Mg, Fe, Cu, Zn, Mn y B se realizó mediante
digestión húmeda del material seco con una mezcla de ácidos perclórico y nítrico
(Alcántar y Sandoval, 1999). La lectura de los extractos obtenidos después de la
digestión y filtrado se determinaron en el equipo de espectroscopia de emisión
atómica de inducción por plasma ICP-AES VARIAN™ Liberty II.
4.6.2. Indicadores de la calidad y vida en florero de la flor en tulipán Los indicadores de la calidad de la flor de tulipán considerando características
cualitativas y cuantitativas, fueron evaluados en cuatro repeticiones de cada
tratamiento.
Capítulo III.
87
4.6.2.1. Características cualitativas de la calidad Apertura y senescencia floral. El registro de datos se tomó a partir del primer día
en que los tallos florales se depositaron en los frascos correspondientes para cada
tratamiento. Posteriormente se estableció la escala correspondiente al grado de
apertura y senescencia de la flor de tulipán, asignándoles valores conforme
transcurrieron los días hasta la muerte total considerando que temperaturas
mayores a 21 oC aceleran este proceso en su totalidad y como consecuencia,
disminuye la calidad de los tallos florales.
Biomasa fresca de tallos. El porcentaje de pérdida de peso al final se calculó con
el peso inicial menos el peso final.
Consumo de agua. Para determinar el consumo de agua de las flores
cosechadas de cada uno de los tratamientos se utilizaron frascos de vidrio, a los
cuales se les agregaron 250 mL de agua destilada. Posteriormente cada tres días
se midió el gasto de agua por frasco registrándose al final el consumo total
obtenido en cada tallo floral.
Contenido de azúcares totales Se determinaron por el método de descrito por Southgate (1976) empleando
antrona, ácido sulfúrico y alcohol al 80%. La absorbancia fue determinada a una
longitud de onda de 620 nm. Glucosa fue empleada como estándar para elaborar
la curva de calibración.
Contenido de clorofila Se determinó por el método de Harborne (1973), las muestras fueron analizadas
en un espectrofotómetro a 663 y 645 nm. Posteriormente se realizó el cálculo de
clorofilas a, b y totales según las ecuaciones correspondientes para cada una de
éstas.
Capítulo III.
88
Vida en florero. Los tallos florales cortados fueron colocados en floreros, con
duración e intensidad luminosa controladas. Se registraron las fechas de aparición
de síntomas de senescencia, cambios en coloración, excreción de agua, necrosis
del perianto, marchitamiento de la corola, la caída de tétalos y la pérdida en peso
diaria (Hunter et al., 2002). El agua de los floreros fue renovada cada tercer día,
cortando un 1cm de la base del tallo floral.
4.6.2.2. Características cuantitativas de la calidad. Altura de planta. El corte de los tallos se hizo a partir del nivel del sustrato y
posteriormente se midió la longitud de los mismos hasta la base del capullo.
Diámetro de tallo. Fue medido en tres posiciones de éste, en la parte basal,
media y superior, empleando un vernier.
Longitud y diámetro de capullos. Al corte de los tallos florales se midió longitud
y diámetro de los capullos.
Firmeza del tallo. La firmeza de los tallos florales se evaluó al corte tomando
lecturas en la parte basal, media y apical utilizando un texturometro (Force Five,
Modelo FDV-30, Puntal de 1.2 cm de diámetro tipo cincel).
4.7. Análisis estadístico Los datos obtenidos se analizaron con el sistema de análisis estadístico (SAS),
para cada uno de los tratamientos y repeticiones del diseño factorial completo.
Además las medias obtenidas se van a comparar mediante la Prueba de Tukey al
5 % de probabilidad de error.
Capítulo III.
89
V. RESULTADOS Y DISCUSIÓN 5.1. Características cuantitativas de la calidad 5.1.1 Altura de planta La variable altura de planta mostró diferencias estadísticas (p ≤ 0.05) entre los
tratamientos (Cuadro 5); las cuales son causadas por la interacción de los
factores K+ y Ca2+ (análisis estadístico en Apéndice B cuadro 1B).
Cuadro 5. Altura de planta de tulipán cv. Ile de France al corte, regado con
soluciones nutritivas con distintas relaciones K+/Ca2+.
Tratamiento Altura de planta, cm
1 49.93 a
2 42.30 ab
3 46.40 ab
4 46.10 ab
5 41.73 ab
6 46.57 ab
7 39.17 b
8 48.57 ab
9 47.73 ab
DMS 9.487
Tratamientos: 1) 5.5/7.5; 2) 5.5/9.0; 3) 5.5/10.5; 4) 7.0/7.5, 5) 7.0/9.0; 6) 7.0/10.5; 7) 8.5/7.5; 8) 8.5/9.0; 9) 8.5/10.5. DMS: Diferencia mínima significativa. Letras distintas son diferentes estadísticamente (p ≤ 0.05).
La media más altas se registró en el tratamiento 1, seguido del tratamiento 8 (49.9
y 48.5 cm), donde las relaciones de K+/Ca2+ en la solución nutritiva fueron de
5.5:7.5 y 8.5:9.0 molc m3, respectivamente. Entre estos tratamientos (1 y 8) no
existieron diferencias estadísticas significativas.
La menor altura (39.1 cm) se observó en el tratamiento 7 el cual presenta la
mayor relación K+/Ca2+ evaluada en el experimento; es decir, la mayor
concentración de potasio y la menor de calcio. Estos resultados indican que altas
Capítulo III.
90
concentraciones de potasio en la solución nutritiva inhiben la absorción de calcio,
nutrimento requerido para la elongación y división celular (Mengel y Kirkby, 1987).
Gaytán-Acuña y Colinas (2001) al realizar aplicaciones foliares de Ca(NO3)2 (0.4 g
L-1) en nochebuena (Euphorbia pulcherrima), incrementaron la altura de planta en
7%, en comparación con plantas no asperjadas con calcio.
5.1.2. Diámetro de tallo al corte La calidad de los tallos florales en plantas de ornato es afectada por el fenómeno
de curvatura o “steam break”, éste se presenta por diversos factores como: peso
del capítulo, deshidratación del escapo floral, diferencias genéticas y morfológicas,
altura del tallo floral, bajo contenido de lignina y carbohidratos en las células del
escapo e infecciones por bacterias (Wernett et al., 1996). La firmeza de tallo es
otro de los factores que mayor influencia tienen sobre la curvatura de éstos y en
esta investigación fue medido al corte en tres posiciones: basal, medio y apical
(Figura 2).
En la determinación de diámetro basal se obtuvieron diferencias significativas
entre tratamientos (p ≤ 0.05), debidas a la interacción potasio calcio (análisis
estadístico en Apéndice B Cuadro 2B). El tratamiento 1 (relación K+/Ca2+ 5.5/7.5
molc m-3), presentó el mayor diámetro basal (1.03 cm), seguido del tratamiento 8,
lo cual coincide con los resultados obtenidos en altura de planta. Osorio (2005)
reportó para tulipán cv. Ile de France regado con solución nutritiva de Steiner al
100%, 1.16 cm de diámetro basal, valor similar al máximo reportado en esta
investigación. El tratamiento 3 (relación K+/Ca2+ 5.5/10.5 molc m-3) presentó el
menor diámetro basal (0.96 cm).
En diámetro de tallo medio las diferencias estadística entre tratamientos (p ≤ 0.05)
son ocasionadas por la interacción de los factores evaluados, potasio y calcio
(análisis estadístico en Apéndice B Cuadro 3B). Al igual que en el caso del
diámetro basal, el valor más alto de diámetro medio se presentó en el tratamiento
1; mientras que el menor en el tratamiento 3. El resto de los tratamientos mostró
diámetros medios de tallo similares que oscilan entre 0.69 y 0.72 cm.
Capítulo III.
91
0
0.26
0.52
0.78
1.04
Basal Medio Superior
Tallo
Diá
met
ro, c
m
123456789
El diámetro apical también mostró diferencias estadísticas significativas entre
tratamientos (p ≤ 0.05), las cuales se debieron a la concentración de potasio
(análisis estadístico en Apéndice B Cuadro 4B). Se observó que los menores
diámetros apicales se presentaron en los tratamientos con la menor concentración
de potasio; mientras que, el mayor diámetro apical (0.65 cm) fue registrado en el
tratamiento 6 (K+/Ca2+ 7.0/10.5 molc m3); este valor es mayor aproximadamente en
8% al reportado por Osorio (2005) para tulipán del mismo cultivar (0.60 cm),
regados con solución Steiner al 100%.
Figura 2. Diámetro de tallo de tulipán cv. Ile de France al corte, regado con
soluciones nutritivas con distintas relaciones K+/Ca2+. Tratamientos: 1) 5.5/7.5; 2)
5.5/9.0; 3)5.5/10.5; 4) 7.0/7.5, 5) 7.0/9.0; 6)7.0/10.5; 7)8.5/7.5; 8)8.5/9.0; 9)8.5/10.5.
Barras en cada determinación con letras distintas son diferentes estadísticamente (p ≤ 0.05).
De las evaluaciones del diámetro realizadas se sugiere que la que más influencia
tiene sobre la curvatura del tallo es la apical, puesto que esta sección del tallo
soporta el peso de la flor.
Capítulo III.
92
0
1
2
3
4
5
6
1 2 3 4 5 6 7 8 9
Tallo
Long
itud
del c
apul
lo, c
m
a abab abab ab abab b
0
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2
3
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6
1 2 3 4 5 6 7 8 9
Tallo
Long
itud
del c
apul
lo, c
m
a abab abab ab abab b
5.1.3. Longitud de capullo Se detectaron diferencias estadísticas significativas entre tratamientos (p ≤ 0.05)
en la variable longitud de capullo (Figura 3) y ésta es debida al factor calcio
(análisis estadístico en Apéndice B Cuadro 5B).
Las mayores longitudes de capullo se presentaron en los tratamientos 8 y 9 (5.84
y 5.71 cm, respectivamente), con las concentraciones más altas de calcio
evaluadas (9 y 10 molc m-3), y la más alta de potasio (8.5 molc m-3).
La menor longitud de capullo (5.1 cm) se presentó en las plantas correspondientes
al tratamiento 7 (menor concentración de calcio y mayor concentración de potasio
evaluadas).
Figura 3. Longitud de capullo de tulipán cv. Ile de France, regado con soluciones
nutritivas con distintas relaciones K+/Ca2+.Tratamientos: 1) 5.5/7.5; 2) 5.5/9.0; 3)5.5/10.5;
4) 7.0/7.5, 5) 7.0/9.0; 6)7.0/10.5; 7)8.5/7.5; 8)8.5/9.0; 9)8.5/10.5. Barras con letras distintas son
diferentes estadísticamente (p ≤ 0.05).
5.1.4. Diámetro de capullo Al evaluar diámetro de capullo en tulipán cv. Ile de France, no se encontraron
diferencias estadísticas significativas (p > 0.05, análisis estadístico en Apéndice B
Cuadro 6B) entre tratamientos (Cuadro 6). En esta variable no se observaron
tendencias que puedan ser correlacionadas con los factores calcio y potasio
evaluados. A pesar de que no existieron diferencias significativas, el tratamiento 7
Capítulo III.
93
(mayor diámetro) supera en aproximadamente 20% a los tratamientos 1 y 4 que
presentan el menor diámetro de capullo.
Cuadro 6. Diámetro de capullo de tulipán cv. Ile de France, regado con soluciones
nutritivas con distintas relaciones K+/Ca2+.
Tratamiento Diámetro de capullo, cm 1 5.51 a 2 6.58 a 3 6.35 a 4 5.50 a 5 5.68 a 6 5.86 a 7 6.63 a 8 6.23 a 9 5.88 a
DMS 3.29 Tratamientos: 1) 5.5/7.5; 2) 5.5/9.0; 3) 5.5/10.5; 4) 7.0/7.5, 5) 7.0/9.0; 6) 7.0/10.5; 7) 8.5/7.5; 8)8.5/9.0; 9)8.5/10.5. DMS: Diferencia mínima significativa. Letras distintas son diferentes estadísticamente (p ≤ 0.05).
5.1.5. Firmeza de tallo al corte
Se evaluó firmeza del tallo (basal, medio y apical) en tulipán cv. Ile de France
(Figura 4), obteniéndose diferencias estadísticas significativas entre tratamientos
(p ≤ 0.05) en la parte basal y apical por efecto de la interacción potasio-calcio; a
diferencia de la parte media donde se presentaron diferencias significativas entre
los tratamientos (análisis estadístico en Apéndice B Cuadros 7B, 8B y 9B).
Los tallos pertenecientes al tratamiento 8 sobresalen por tener la mayor firmeza en
la parte basal y media. Este tratamiento mostró el segundo valor más alto de
firmeza apical, por lo que se concluye que en esta variable éste fue el que produjo
mejor respuesta.
Es interesante observar que el tratamiento 5, que corresponde a la relación
K+/Ca2+ de la solución nutritiva universal de Steiner, presenta la menor firmeza
basal y media de tallos, lo que indica, que dicha solución no es óptima para el
Capítulo III.
94
0
1
2
3
4
5
Basal Medio Superior
Tallo
Firm
eza,
kg
cm-2
123456789
tulipán. En la firmeza de tallo apical la media más alta se obtuvo en el tratamiento
6, el cual difiere del tratamiento 5 (solución de Steiner) en que se incrementa la
concentración de calcio en 1.5 molc m-3. Se ha demostrado que la aplicación de
calcio como CaCl2 en pétalos de rosa además de mantener la integridad de las
membranas, de reducir la producción de etileno y de promover el transporte de
solutos, aumenta la firmeza del tallo (Albino, 2004).
Figura 4. Firmeza de tallo de tulipán cv. Ile de France al corte, regado con
soluciones nutritivas con distintas relaciones K+/Ca2+. Tratamientos: 1) 5.5/7.5; 2)
5.5/9.0; 3) 5.5/10.5; 4) 7.0/7.5, 5) 7.0/9.0; 6) 7.0/10.5; 7) 8.5/7.5; 8) 8.5/9.0; 9) 8.5/10.5. Barras
en cada determinación con letras distintas son diferentes estadísticamente (p ≤ 0.05).
5.2. Características cualitativas de la calidad
5.2.1. Apertura floral Se observó que los tratamientos 8 y 1 cuyos niveles de K+/Ca2+ son 8.5/9.0 y
5.5/7.5 molc m3, respectivamente, lograron mantener una mayor apertura floral. Al
término del quinto y sexto día después del corte, se observaron diferencias entre
tratamientos de manera paulatina hasta la etapa final de vida en florero de los
tallos. Lo anterior se relaciona con el contenido de azúcares (Figuras 10 y 11)
determinado en pétalos, ya que éstos influyen en el proceso de apertura floral,
Capítulo III.
95
pues al aumentar el potencial osmótico de las células, se tiende a incrementar la
presión de turgencia favoreciendo de esta manera la expansión celular de la flor.
Finalmente la diferenciación entre los días de apertura floral, se determinó
considerando los cambios generados desde que inicia hasta que finaliza, en el
Cuadro 7 se asigna a cada uno de éstos la descripción correspondiente. La
representación gráfica de las etapas de apertura floral es mostrada en la Figura 5.
van Doorn (1997) encontraron que en las flores de lilium la apertura floral tiene la
misma duración que la vida de florero; en tulipán se observa que la senescencia
inicia un día después de que se ha alcanzado la máxima apertura floral. Estos
autores mencionan que durante el transcurso de los días la apariencia floral de los
tallos de lilium cuando se utilizan soluciones de pulso comparativamente con
aquellos incorporados en agua, conservaron por menos tiempo su turgencia,
consistencia, valor decorativo y finalmente un aumento en senescencia.
Cuadro 7. Etapas de apertura floral en Tulipán (Tulipa gesneriana) cv. Ile de
France1.
Etapa Desarrollo de apertura floral
1 Botón floral con 1 – 3% de inicio de apertura floral
2 Botón floral con 4 – 10% de inicio de apertura floral
3 Botón floral con 11 – 25% de inicio de apertura floral
4 Apertura del tercer y cuarto pétalo (sépalo) floral
5 Apertura del quinto y sexto pétalo (sépalo) floral
6 Apertura del botón floral (70%)
7 Apertura total del botón floral (80%)
8 Apertura total del botón floral (90%)
9 Apertura total del botón floral (100%)
10 Disminución de apertura de botón floral (60%)
11 Caída de pétalos (sépalos)
1Datos experimentales obtenidos durante la realización de este estudio
Capítulo III.
96
Figura 5. Etapas de apertura floral en tulipán (Tulipa gesneriana) cv. Ile de
France1. 1Datos experimentales obtenidos durante la realización de este estudio
Capítulo III.
97
Evaluaciones realizadas en el compartimiento de la apertura floral en girasol
durante ocho días en que los tallos florales permanecieron en florero solamente
con agua, demostraron valores de máxima apertura del girasol entre los días 6 y 8;
mientras que para tulipán la máxima apertura floral se registró hasta el día 9 en
florero. Sin embargo, Reid y Evans (1986) mencionan que la apertura floral se
puede controlar en florero manteniendo en equilibrio la temperatura, luz,
relaciones hídricas, carbohidratos y reguladores de crecimiento.
5.2.2. Senescencia floral en tulipán Resultados de la caracterización de etapas de senescencia floral en tulipán cv. Ile
de France registraron sus diferencias a partir del quinto día después del corte (en
florero). De ahí, que para cada una de éstas se asignó la denominación
correspondiente según las características morfológicas que presentó la flor
(Cuadro 8).
Cuadro 8. Etapas y características de senescencia en tulipán (Tulipa gesneriana)
cv. Ile de France1.
Etapa Características 0 Pétalos (seis sépalos) de coloración característica rojo cardenal I Pétalos (seis sépalos) presentan del 5 – 15% de inicio de marchitez en la punta II Pétalos (seis sépalos) presentan del 16 – 25%, ligera marchitez en la punta y
pérdida de turgencia ligera III Pétalos (seis sépalos) presentan del 25 – 50% de marchitez en las puntas de la
flor, pérdida de turgencia moderada e inicia el enrollamiento de sépalos (1 y 2) IV Pétalos (seis sépalos) presentan del 51 -70% de marchitez en tres cuartas partes
del sépalo, enrollamiento medio de sépalos (3 y 4) y ligero cambio de coloración V Pétalos (seis sépalos) presentan del 71 – 90% marchitez total del sépalo,
turgencia casi nula , enrollamiento invertido de sépalos, cambio total a color rojo oscuro ópaco
VI Pétalos (seis sépalos) presentan del 91 – 100% de marchitez total en el capullo, reducción del tamaño de capullo, enrollamiento total de sépalos coloración de tépalos rojo oscuro brillosos, pérdida de peso total y consistencia de tépalos delgada
1 Datos experimentales obtenidos durante la realización de este estudio.
Capítulo III.
98
Figura 6. Estados de senescencia floral en tulipán cv. Ile de France1. Etapas de senescencia: 0. Uno; I. Dos; III. Tres; IV. Cuatro; V. Cinco; y VI. Seis. 1 Datos experimentales obtenidos durante la realización de este estudio.
Capítulo III.
99
5.2.3. Biomasa fresca de tallo La respuesta en ganancia de biomasa fresca de tallos de tulipán cv. Ile de France
obtenida por un período de 10 días después del corte es mostrada en la Figura 7.
Cabe señalar que los primeros 4 días el peso de la biomasa fresca de tallos se
registró diariamente y posteriormente se hizo cada tercer día.
Los tratamientos 5 y 8 mostraron mayor ganancia de peso durante los primeros
seis días; sin embargo, a partir del séptimo día, los tallos del tratamiento 5
redujeron considerablemente el peso de tallos, contrario al tratamiento 8, que
mostró una tendencia ascendente en dicha variable.
Figura 7. Biomasa fresca en tallos de tulipán cv. Ile de France, días después de la
cosecha regado con soluciones nutritivas con distintas relaciones K+/Ca2+.
Tratamientos: 1) 5.5/7.5; 2) 5.5/9.0; 3)5.5/10.5; 4) 7.0/7.5, 5) 7.0/9.0; 6) 7.0/10.5; 7) 8.5/7.5; 8)
8.5/9.0; 9) 8.5/10.5.
En el Cuadro 9 son mostrados los resultados de la comparación de medias del
peso de tallos frescos durante la vida de florero, donde se observa la existencia de
diferencias estadísticas significativas entre tratamientos (p ≤ 0.05, en Apéndice B Cuadros 10B a 19B), con excepción de los resultados del día 6 en florero.
34
37
40
43
46
49
D1 D2 D3 D4 D5 D6 D7 D8 D9 D10
Días despúes de la cosecha
Peso
fres
co d
e ta
llos
flora
les,
(g
)
T1T2T3T4T5T6T7T8T9B
iom
asa
fres
ca d
e ta
llos
flora
les
(g)
Capítulo III.
100
Cuadro 9. Peso de tallos frescos durante la vida de florero de tulipán cv. Ile de France al corte, regado con soluciones
nutritivas con distintas relaciones K+/Ca2+.
Tratamiento Peso de tallos frescos durante la vida de florero
(g)
Día 1 Día 2 Día 3 Día 4 Día 5 Día 6 Día 7 Día 8 Día 9 Día 10 1 40.22 ab 41.23 abc 36.37 b 43.48 ab 44.05 abc 45.67 a 42.63 ab 43.32 ab 41.72 abc 41.85 ab
2 38.69 ab 39.46 abc 39.81 ab 43.90 ab 40.14 bc 42.11 a 41.47 ab 40.22 ab 39.04 bc 39.23 ab
3 35.40 b 36.1 bc 36.96 b 38.09 ab 38.25 c 39.5 a 39.11 b 37.94 b 36.67 c 36.87 b
4 34.85 b 34.41 c 36.13 b 36.36 b 40.25 bc 37.91 a 39.61 ab 38.31 b 37.30 bc 37.10 b
5 43.82 a 44.56 a 45.52 a 46.67 a 48.39 a 47.53 a 45.90 ab 45.81 ab 44.31 abc 44.600 ab
6 36.88 ab 39.97 abc 40.83 ab 42.52 ab 44.39 abc 45.27 a 43.71 ab 42.64 ab 41.59 abc 41.24 ab
7 41.88 ab 42.54 ab 43.41 ab 4442.52 ab 45.1 abc 45.6 a 44.74 ab 42.90 ab 41.61 abc 40.99 ab
8 45.67 ab 43.43 ab 44.51 ab 45.9 ab 46.41 ab 47.86 a 47.49 a 48.17 a 48.94 a 47.99 a
9 43.8 a 43.82 ab 43.85 ab 45.55 ab 46.12 ab 47.56 a 47.39 a 48.0 a 46.05 ab 44.58 ab
DMS 8.16 7.88 8.55 10.10 6.97 8.91 8.12 9.15 8.98 9.15
Tratamientos: 1) 5.5/7.5; 2) 5.5/9.0; 3) 5.5/10.5; 4) 7.0/7.5, 5) 7.0/9.0; 6) 7.0/10.5; 7) 8.5/7.5; 8) 8.5/9.0; 9) 8.5/10.5. DMS: Diferencia mínima significativa. Letras distintas en cada columna son diferentes estadísticamente (p ≤ 0.05).
Capítulo III.
100
Osorio (2005), al evaluar peso de tallos florales de tulipán, encontró que éste
mostraba variación conforme trascurría el tiempo de vida de florero sin emplear
soluciones de pulso, registrándose inicialmente un peso de tallo fresco de 50.6 g y
un peso final de 47.2 g. Se ha encontrado que esta disminución en peso se debe
probablemente a la pudrición del tallo y obstrucción de los haces vasculares,
propiciando de esta manera una interrupción en la absorción de agua afectando
así el peso de los mismos, a diferencia de tallos donde se utilizaron soluciones de
pulso ya que estas tuvieron efectos antisépticos y benéficos en esta especie
(Cabrera, 2002).
Padem et al. (1999), al evaluar biomasa fresca de tallo en berenjena (Solanum
melongena) encontraron que el suministro de soluciones ricas en
macronutrimentos y micronutrimentos incrementan biomasa fresca de tallos (8.2%)
comparativamente con tallos de plantas sin fertilizar. Concluyendo que las altas
concentraciones estimulan crecimiento vegetativo expresado en mayor peso de
tallo fresco.
Cruz (2005), evaluó peso de tallo fresco en Lisianthus (Eustoma grandiflorum Raf.)
encontrando que el suministro de Ca(NO3)2 + KNO3 disminuyó (5%) la pérdida de
peso en tallos, además de incrementar la vida en florero con respecto al testigo.
Resultados similares reportaron Picchioni et al. (2002), al evaluar el efecto de Ca
(10 Mm) en plantas de Lupinus havardii cv. “Texas Sapphire”.
Complementariamente las aplicaciones de K también presentaron respuestas
positivas en los tallos florales manteniendo el balance hídrico y por ende
incrementan vida de florero de algunas plantas ornamentales (Roychowdhury y
Roychowdhury, 1995).
Otros autores mencionan que la disminución del peso de biomasa fresca se debe
a la velocidad con que el tallo floral pierde agua al mismo tiempo que es incapaz
de absorberla, como resultado del proceso de transpiración ya que después del
corte y al incorporarlas en agua se suscitan cambios en el peso debido al balance
en procesos de absorción, retención y perdida de agua (Lara et al., 1994).
Capítulo III.
101
5.2.4. Consumo de agua en florero El consumo de agua en flores de tulipán cv. Ile de France durante un período de 8
días (a partir del corte), presentó diferencias estadísticas significativas entre
tratamientos los días 1, 2, 3, 7 y 8 (p ≤ 0.05); mientras que en los días 4, 5 y 6 no
las presentaron (p > 0.05) (análisis estadístico en Apéndice B Cuadros 20B a
27B). Las diferencias estadísticas en los días 1 y 2 fueron debidas al efecto
individual de potasio y calcio, así como la interacción de éstos (análisis estadístico
en Apéndice B Cuadros 20B y 21B); en los día 3 y 8 fue ocasionada por la
interacción potasio y calcio (análisis estadístico en Apéndice B Cuadro 22B y Cuadro 26B); la diferencia estadística entre tratamientos en el día 7 en florero
fueron debidas al factor potasio y a la interacción de éste con el factor calcio
(análisis estadístico en Apéndice B Cuadro 25B).
Al analizar los resultados, se observa un mayor consumo de agua durante los
primeros 5 días de vida de florero, el cual osciló entre 28.8 y 31.7 mL,
disminuyendo en los últimos 3 días con un consumo entre 24.5 y 28 mL (Figura 8). De manera general, como resultado de los 8 días de ensayo el mayor y menor
consumo de agua se registró en los tratamientos 6 y 3 respectivamente con 238.7
y 191.3 mL en total.
En los primeros cuatro días, se registró el mayor consumo de agua en el
tratamiento 5; el cual tenía la proporción potasio/calcio de la solución nutritiva de
Steiner y mostró menor firmeza de tallo basal y medio.
Para los días 7 y 8 el menor consumo de agua se presentó en el tratamiento 3 con
18.6 y 24 mL, respectivamente.
Es pertinente enfatizar que la variable consumo de agua en florero se correlaciona
en forma positiva con el peso de tallos (apartado 5.2.3 biomasa fresca de tallo).
Capítulo III.
102
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A. E.
B. F.
C. G.
D. H.
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a aab ab abcabcabcbcc
a abab ab abab abb b
Figura 8. Consumo de agua en florero de tulipán cv. Ile de France, regado con
soluciones nutritivas con distintas relaciones K+/Ca2+. Días en florero: A. Uno; B. Dos; C.
Tres; D. Cuatro; E. Cinco; F. Seis; G. Siete y H. Ocho. Tratamientos: 1) 5.5/7.5; 2) 5.5/9.0; 3)
5.5/10.5; 4) 7.0/7.5, 5) 7.0/9.0; 6) 7.0/10.5; 7) 8.5/7.5; 8) 8.5/9.0; 9) 8.5/10.5. En cada gráfico,
barras con letras distintas son diferentes estadísticamente (p ≤ 0.05).
Capítulo III.
103
La capacidad del tallo floral para absorber, transportar y para perder agua,
determinan el balance hídrico. La absorción de agua depende principalmente de la
temperatura, la transpiración de la flor y la composición de la solución. Sin
embargo, una vez que los tallos han sido cortados y depositados en agua,
comúnmente hay un incremento en el peso de la biomasa fresco que
posteriormente disminuye (Mayak, 1976). Considerando que los tubos
conductores (xilema) no sean obstruidos por bacterias y hongos presentes en el
agua o en los contenedores, después de un tiempo el nivel de absorción alcanza
un estatus estable que se correlaciona generalmente con la transpiración
dependiendo de cada especie (van Doorn, 1997). Algunos factores que intervienen
en el desbalance del agua; es la velocidad de ascenso del agua y la pérdida de
ésta debido a la evaporación y transpiración (Mentcarelli et al., 1995).
Algunos investigadores mencionan que la cantidad de agua transpirada durante la
vida de una planta está en función de la eficiencia estomática en las hojas. De ahí
que el tulipán se caracteriza por mantener un período de vida postcosecha corto,
debido a la cantidad de estomas por cm2 presentes. Algunos factores como la
humedad relativa baja tiende a aumentar la cantidad de agua transpirada por
hojas y pétalos.
Considerando que la respiración es un proceso metabólico que ocurre en todas las
plantas, y que generalmente cuando aumenta se asocia directamente con la
senescencia de la flor (Mayak, 1976), en algunas especies la tasa respiratoria se
incrementa cuando empieza la apertura floral, posteriormente hay una disminución
en un intervalo de tiempo corto y en otras ocasiones una menor respiración en la
flor, se debe a un bajo contenido de azúcares, y una variabilidad en la temperatura
la cual es diferente para cada especie (Elgar, 1998).
Osorio (2005), menciona que el consumo de agua diario de tallos florales de
tulipán cv. Ile de France registrado fue de 10.8 mL por día al utilizar solución
Steiner al 100%. Pero al suministrar Steiner al 50%, los efectos en consumo de
agua obtenidos disminuyeron a 8.7 mL por día. Todo lo anterior como resultado de
la composición nutrimental de los tratamientos suministrados a la planta durante
Capítulo III.
104
su crecimiento y desarrollo. Estos resultados de consumo de agua son inferiores a
los registrados en esta investigación.
Estudios realizados con girasol (Helianthus annuus L.) mostraron los siguientes
resultados al evaluar algunas variables fisiológicas en vida de florero; el consumo
de agua fue menor a lo largo del período de vida de florero de la flor (376 mL,
durante 8 días) a diferencia de tallos florales donde se utilizaron soluciones de
pulso. Esto indica que la disminución en el consumo de agua pudo ser originada
por la senescencia considerando la presencia de cambios estructurales que
repercuten en el balance de agua mismos que tienden a disminuir su absorción
(Cabrera, 2002),
5.2.5. Contenido de azúcares totales La ausencia de carbohidratos en las plantas, genera alteraciones en los procesos
metabólicos disminuyendo la actividad enzimática relacionada con el metabolismo
de azúcares y respiración (Journet et al., 1986; Brouquisse et al., 1992), reducción
de nitratos y síntesis de proteínas. De ahí, que cambios similares ocurren en
tejidos u órganos de las plantas durante la senescencia o en situaciones de
postcosecha.
El contenido de azúcares totales fue determinado al corte y al final de la vida de
florero, empleando la curva estándar mostrada en la Figura 9.
Capítulo III.
105
y = 50.485x + 0.0053R2 = 1
0
10
20
30
40
50
60
0 0.2 0.4 0.6 0.8 1 1.2Concentración
Glucosa (mg.ml-1)
Abs
orba
ncia
(nm
)
Figura 9. Curva estándar para determinación de azúcares totales en pétalos de
tulipán cv. Ile de France.
Con respecto al contenido de azúcares totales se encontró una disminución
paulatina de éstos al avanzar los estados de apertura floral en todos los
tratamientos (Figuras 10 y 11). Se ha observado que una disminución en los
azúcares solubles totales acompañado de un incremento de azucares reductores,
se debe a la actividad de la invertasa que resulta de un incremento de presión
osmótica. Por lo que sugieren que la glucosa y fructosa derivada de la sacarosa
actúa en el aumento de la presión osmótica.
Existieron diferencias estadísticas significativas entre tratamientos tanto en el
contenido inicial como en el final. En el contenido inicial de azúcares las
diferencias estadísticas encontradas son causadas por los factores potasio y
calcio, tanto en forma individual como por su interacción (análisis estadístico en
Apéndice B Cuadro 28B); mientras que el contenido final de azúcares fue
influenciado por el factor calcio exclusivamente (análisis estadístico en Apéndice B Cuadro 29B).
Los contenidos de azúcares iniciales fueron más altos en los tratamientos 8 y 6,
mientras que los menores en los tratamientos 3 y 4 (Figura 10).
Capítulo III.
106
0
0.04
0.08
0.12
0.16
0.2
1 2 3 4 5 6 7 8 9
Tratamientos
Glu
cosa
inic
ial,
mg
g-1 P
F
aababcabc
abc bc dcdc
d
0
0.04
0.08
0.12
0.16
0.2
1 2 3 4 5 6 7 8 9
Tratamientos
Glu
cosa
inic
ial,
mg
g-1 P
F
aababcabc
abc bc dcdc
d
Figura 10. Contenido de glucosa en pétalos de tulipán cv. Ile de France al corte,
regado con soluciones nutritivas con distintas relaciones K+/Ca2+. Tratamientos: 1)
5.5/7.5; 2) 5.5/9.0; 3) 5.5/10.5; 4) 7.0/7.5, 5) 7.0/9.0; 6)7.0/10.5; 7) 8.5/7.5; 8) 8.5/9.0; 9)
8.5/10.5. Barras con letras distintas son diferentes estadísticamente (p ≤ 0.05).
En la etapa final de análisis los contenidos encontrados en pétalos disminuyeron
considerablemente (Figura 11). Los tratamientos 3 y 4 mostraron la menor
cantidad de azúcares totales finales, lo cual se relaciona en forma positiva por el
contenido inicial mostrado en éstos.
La disminución de contenido de azúcares entre la fase inicial y la final fue de
aproximadamente 63, 52, 48, 58, 61, 74, 64, 57 y 58% para los tratamientos 1, 2,
3, 4, 5, 6, 7, 8 y 9, respectivamente. Es importante destacar que los tratamientos
con mayor contenido inicial de azúcares (tratamientos 8 y 6) mostraron porcentaje
de disminución de azúcares muy distinto; siendo el tratamiento 6 el que mayor
abatimiento en el contenido de azúcares mostró de todos los tratamientos
evaluados; mientras que el tratamiento 9 tuvo los contenidos finales de azúcares
más altos entre todos los tratamientos.
Capítulo III.
107
0
0.02
0.04
0.06
0.08
0.1
1 2 3 4 5 6 7 8 9
Tratamientos
Glu
cosa
fina
l, m
g g
-1 P
F
a
ab ab ab ababab abb
0
0.02
0.04
0.06
0.08
0.1
1 2 3 4 5 6 7 8 9
Tratamientos
Glu
cosa
fina
l, m
g g
-1 P
F
a
ab ab ab ababab abb
Figura 11. Contenido de glucosa en pétalos de tulipán cv. Ile de France después
de 10 días en florero, regado con soluciones nutritivas con distintas relaciones
K+/Ca2+. Tratamientos: 1) 5.5/7.5; 2) 5.5/9.0; 3)5.5/10.5; 4) 7.0/7.5, 5) 7.0/9.0; 6) 7.0/10.5;
7) 8.5/7.5; 8) 8.5/9.0; 9) 8.5/10.5. Barras con letras distinas son diferentes estadísticamente (p ≤
0.05).
Paulin (1986), mencionan que los carbohidratos se translocan de las hojas a las
flores. En algunas flores, los niveles de azúcares solubles en pétalos son elevados
al momento en que se marchita la flor, lo que indica que las células aun conservan
una cantidad adecuada de reservas en esta etapa (van Doorn, 2001).
Experimentos realizados con Alstroemeria muestran efectos en el contenido de
azúcares solubles total en pétalos entre cultivares, siendo el contenido de 34.71
mg g-1 de biomasa fresca en el cultivar cv. Sangría y de 35.17 mg g-1 de biomasa
fresca en el cv. Yellow King, a los 9 días después de la cosecha.
5.2.6. Contenido de clorofila 5.2.6.1. Clorofila a El contenido de clorofila a en la etapa inicial en hojas de tulipán cv. Ile de
France, mostró diferencias estadísticas significativas (p ≤ 0.05) entre tratamientos,
la cuales fueron originadas por el factor calcio (análisis estadístico en Apéndice B
Cuadro 30B). En lo que respecta a contenido de clorofila a en la fase final (Figura
Capítulo III.
108
12) no existieron diferencias estadísticas significativas entre tratamientos (p >
0.05) (análisis estadístico en Apéndice B Cuadro 31B).
De particular importancia son los resultados de clorofila a inicial obtenidos en los
tratamientos 3 y 4, que presentan los valores más altos de ésta; mientras que en
la evaluación de azúcares tanto iniciales como finales presentaron los menores
valores. Es decir, en este caso existió una relación negativa entre ambas
variables.
En los tratamientos se observa disminución en el contenido de clorofila a en la
fase final; la excepción son los tratamientos 7 y 8, que contrario a los esperado
incrementaron el contenido de clorofila a en aproximadamente 18 y 12%,
respectivamente.
Figura 12. Contenido de clorofila a en hojas de tulipán cv. Ile de France al
momento del corte (inicial) y después de 10 días en florero (final), regado con
soluciones nutritivas con distintas relaciones K+/Ca2+.Tratamientos: 1) 5.5/7.5; 2)
5.5/9.0; 3)5.5/10.5; 4) 7.0/7.5, 5) 7.0/9.0; 6)7.0/10.5; 7) 8.5/7.5; 8) 8.5/9.0; 9) 8.5/10.5. Barras
con letras distintas en cada determinación son diferentes estadísticamente (p ≤ 0.05).
0
1
2
3
4
5
1 2 3 4 5 6 7 8 9
Tratamientos
Clo
rofil
a a,
mg
g-1 P
F
Inicial
Final
aab ababab
abab abba
aa a a
aa a
a
0
1
2
3
4
5
1 2 3 4 5 6 7 8 9
Tratamientos
Clo
rofil
a a,
mg
g-1 P
F
Inicial
Final
aab ababab
abab abba
aa a a
aa a
a
Capítulo III.
109
5.2.6.2. Clorofila b Al evaluar el contenido de clorofila b inicial (Figura 13), no existieron diferencias
estadísticas significativamente (p > 0.05) entre tratamientos (análisis estadístico en
Apéndice B Cuadro 32B). Los tratamientos 3 y 4 con 7.0 y 6.5 mg g-1 de peso en
fresco, respectivamente, presentaron los valores más altos, al igual que en la
determinación de clorofila a inicial. El contenido de clorofila b más bajo
correspondió al tratamiento 7 (4.78 mg g-1 de biomasa fresca), seguido del
tratamiento 5 (5.13 mg g-1 de biomasa fresca) en el cual los niveles de K+/Ca2+
corresponden a los de la solución nutritiva universal de Steiner (7.0/9.0 molc m3).
Figura 13. Contenido de clorofila b en hojas de tulipán cv. Ile de France al
momento del corte (inicial) y después de 10 días en florero (final), regado con
soluciones nutritivas con distintas relaciones K+/Ca2+. Tratamientos: 1) 5.5/7.5; 2)
5.5/9.0; 3)5.5/10.5; 4) 7.0/7.5, 5) 7.0/9.0; 6)7.0/10.5; 7) 8.5/7.5; 8) 8.5/9.0; 9) 8.5/10.5. Barras
con letras distintas en cada determinación son diferentes estadísticamente (p ≤ 0.05).
El contenido de clorofila b final en hojas de tulipán cv. Ile de France (Figura 13),
mostró diferencias estadísticas significativas (p ≤ 0.05) originadas por el factor
potasio (análisis estadístico en Apéndice B Cuadro 33B). Sobresale el
tratamiento 8 con proporción K+/Ca2+ de 8.5/9.0 molc m3, registrando 6.03 mg g-1
0
1
2
3
4
5
6
7
1 2 3 4 5 6 7 8 9
Tratamientos
Clo
rofil
a b,
mg
g-1 P
F
Inicial
Final
a a
aa
a
a
a aaaabab
ab
ab ab ababb
0
1
2
3
4
5
6
7
1 2 3 4 5 6 7 8 9
Tratamientos
Clo
rofil
a b,
mg
g-1 P
F
Inicial
Final
a a
aa
a
a
a aaaabab
ab
ab ab ababb
Capítulo III.
110
de biomasa fresca, mientras que el menor valor se obtuvo en el tratamiento 2
(3.12 mg g-1 de biomasa fresca).
Al igual que en la determinación de clorofila a, se observó en los tratamientos 7 y 8
un incremento en la concentración de clorofila b en la fase final de evaluación.
5.2.6.3. Clorofilas totales Finalmente al analizar los contenidos de clorofila totales iniciales (Figura 14)
presentes en las hojas de dicha planta, se observó que en la etapa inicial no
existieron diferencias estadísticas significativas (p > 0.05) entre tratamientos
(análisis estadístico en Apéndice B Cuadro 34B). Se corrobora con los
contenidos de clorofila a y b antes reportados, que los tratamientos 3 y 4
registraron los valores más altos en dicha determinación; mientras que los
tratamientos 8, 5 y 7 mostraron los valores más bajos. Como ya se comentó
anteriormente, la respuesta que resultó totalmente opuesta a la encontrada en
azúcares. En la determinación de clorofilas totales finales (Figura 14) existieron diferencias
estadísticas significativas entre tratamientos (p ≤ 0.05), debidas al factor potasio
(análisis estadístico en Apéndice B Cuadro 35B). Es claro que en los
tratamientos 7 y 8 se observa la misma tendencia presentada en las
concentraciones finales de clorofilas a y b, las cuales son mayores a las iniciales.
Nuevamente se observa una disminución significativa en la concentración de
clorofilas totales en los tratamientos 3 y 4.
Capítulo III.
111
0
2
4
6
8
10
12
1 2 3 4 5 6 7 8 9
Tratamientos
Clo
rofil
as to
tale
s, m
g g
-1 P
F
Inicial
Final
a a
aa
aa
a aaaab
ab ab
ab ab ababb
0
2
4
6
8
10
12
1 2 3 4 5 6 7 8 9
Tratamientos
Clo
rofil
as to
tale
s, m
g g
-1 P
F
Inicial
Final
a a
aa
aa
a aaaab
ab ab
ab ab ababb
Figura 14. Contenido de clorofilas totales en hojas de tulipán cv. Ile de France al
momento del corte (inicial) y después de 10 días en florero (final), regado con
soluciones nutritivas con distintas relaciones K+/Ca2+. Tratamientos: 1) 5.5/7.5; 2)
5.5/9.0; 3)5.5/10.5; 4) 7.0/7.5, 5) 7.0/9.0; 6)7.0/10.5; 7) 8.5/7.5; 8) 8.5/9.0; 9)8.5/10.5. Barras
con letras distintas en cada determinación son diferentes estadísticamente (p ≤ 0.05).
5.2.7. Vida en florero La vida de florero se registró considerando la duración de los tallos florales de
tulipán cv. Ile de France a partir de la cosecha, tomando como parámetro final de
vida en florero la flores que presentaban del 71–90% marchitez total del sépalo,
turgencia casi nula, enrollamiento invertido de sépalos, cambio total a color rojo
oscuro ópaco (Cuadro 8). Dicha variable mostró variabilidad entre tratamientos,
considerando que el período máximo en florero (mejor respuesta postcosecha) se
detectó en tallos florales de los tratamientos 8 y 5, respectivamente cuya duración
osciló entre 9 y 10 días después del corte, mientras que menores intervalos de
días correspondieron a los tratamientos 2, 3 y 4 con una duración en florero que
osciló entre 5 - 6 días después del corte cuyos niveles de la solución nutritiva se
muestran en Cuadro 1.
Capítulo III.
112
Está variable en postcosecha, determinada generalmente por el tiempo de
abscisión de pétalos que se mantienen turgentes o por el tiempo en que éstos se
marchitan. En muchas especies, el período de tiempo en que éstos se marchitan
es regulado por la presencia de etileno. Se ha encontrado que algunos cultivares
de tulipán, son poco sensibles al etileno; la mayoría de sus pétalos toman una
apariencia traslúcida en el margen, seguido de la pérdida de turgencia y después
una ligera desecación (van Doorn et al., 2000). En algunos cultivares se ha
utilizado etileno para acelerar el tiempo de corte; sin embargo, son pocos los
experimentos realizados con flores de tulipán, tratados con etileno para evaluar el
grado de abscisión ya sea en botón (cerrado) o abierto.
En monocotiledóneas la abscisión de pétalos no ha sido observada; a excepción
de algunos cultivares de tulipán, en los cuales se encontró que generalmente son
poco sensibles a la presencia de etileno (Woltering, 1988).
En estudios previos realizados en tulipán, se distinguen tres categorías de vida en
florero como: flores sensibles a etileno, insensibles a etileno y abscisión de pétalos
sensibles a etileno. Finalmente, la abscisión de pétalos en flores de tulipán
permanece dentro del rango de insensibilidad a etileno.
De acuerdo con lo reportado por Osorio (2005), la vida de florero del cultivar Ile de
France, mostró diferencias significativas en plantas cultivadas en condiciones
protegidas, viéndose favorecidas al utilizar solución Steiner al 100% registrándose
un período de 12.6 días y en 26% más duración con la misma solución, pero en
plantas expuestas al frío. Mientras que plantas que se suministraron con solución
nutritiva de Steiner al 50% el período de vida en florero se mantuvo en 11.3 días
planta-1. Según Takahashi (1984), biomasa fresca es un criterio que se debe tomar
en cuenta para evaluar la vida de florero, ya que las flores cortadas que tienden a
conservar o aumentar su biomasa fresca, por ende tienen una mayor duración.
Capítulo III.
113
5.3. Extracción nutrimental 5.3.1. Extracción nutrimental en hoja Los resultados de la extracción nutrimental en hojas de tulipán correspondientes a
N, P y Fe no mostraron diferencias estadísticas significativas entre tratamientos
(p > 0.05) (Cuadro 10) (análisis estadístico en Apéndice B Cuadros 36B, 37B y 41B). Sin embargo, para N el tratamiento 9 tuvo el mayor valor con 80.19 mg
planta -1. El menor valor registrado en N correspondió al tratamiento 3 (56.67 mg
planta -1). En P la media más alta fue de 8.89 mg planta-1 correspondieron al
tratamiento 1, al suministrar bajos niveles de potasio y calcio (Cuadro 10). En lo
que se refiere a Fe, aunque no se encontraron diferencias estadísticas, los
tratamientos 2 y 6 presentaron las mayores extracciones.
Cuadro 10. Acumulación de nitrógeno (N), fósforo (P) y hierro (Fe) en hojas de
tulipán cv. Ile de France, regado con soluciones nutritivas con
distintas relaciones K+/Ca2+
Tratamiento N P Fe
mg hojas-1 planta-1
1 66.70 a 8.89 a 0.198 a
2 74.97 a 8.72 a 0.243 a
3 56.68 a 6.59 a 0.200 a
4 65.03 a 5.91 a 0.177 a
5 79.23 a 7.90 a 0.230 a
6 73.68 a 8.03 a 0.234 a
7 67.19 a 7.39 a 0.156 a
8 75.44 a 7.89 a 0.218 a
9 80.19 a 7.80 a 0.217 a
DMS 34.05 4.05 0.099
Tratamientos: 1) 5.5/7.5; 2) 5.5/9.0; 3) 5.5/10.5; 4) 7.0/7.5, 5) 7.0/9.0; 6) 7.0/10.5; 7) 8.5/7.5; 8) 8.5/9.0; 9) 8.5/10.5. DMS: Diferencia mínima significativa. Columnas con letras distintas son diferentes estadísticamente (p ≤ 0.05).
Capítulo III.
114
0
2
4
6
8
10
12
K Ca Mg
Nutrimentos
Acu
mul
ació
n nu
trim
enta
l, m
g ho
jas-1
pla
nta-1
1
2
3
4
5
6
7
8
9
abc abc
abc
bc
aab ab
cca a abab abab ab
abb
aabab abab abab
b b
0
2
4
6
8
10
12
K Ca Mg
Nutrimentos
Acu
mul
ació
n nu
trim
enta
l, m
g ho
jas-1
pla
nta-1
1
2
3
4
5
6
7
8
9
abc abc
abc
bc
aab ab
cca a abab abab ab
abb
aabab abab abab
b b
La extracción de K presentó diferencias estadísticas significativas entre
tratamientos (p ≤ 0.05) causadas por el factor potasio y a la interacción de éste
con calcio (análisis estadístico en Apéndice B Cuadro 38B). La mayor
acumulación de potasio se registró en el tratamiento 6 con 3.66 mg planta-1,
seguido del tratamiento 8 con 3.44 mg planta-1. El menor valor correspondió al
tratamiento 2 con 1.76 mg planta-1.
La extracción de Ca en hojas de tulipán mostró diferencias estadísticas
significativas entre tratamientos (p ≤ 0.05) causadas por el factor potasio y por la
interacción potasio calcio (análisis estadístico en Apéndice B Cuadro 39B). La
mayor acumulación del nutrimento en el tratamiento 6 con 10.54 mg planta-1,
mientras que el menor valor fue en tratamiento 2 con 4.55 mg planta -1, lo cual
representa una reducción del 50% en relación al valor más alto.
Para Mg, se encontraron diferencias estadísticas significativas entre tratamientos
(p ≤ 0.05) atribuibles a la interacción de los factores en estudio (análisis estadístico
en Apéndice B Cuadro 40B). Este nutrimento presenta una tendencia similar, a la
mostrada para el nutrimento calcio.
Figura 15. Acumulación de potasio (K), calcio (Ca) y magnesio (Mg) en hojas de
tulipán cv. Ile de France, regado con soluciones nutritivas con distintas relaciones
K+/Ca2+.Tratamientos: 1) 5.5/7.5; 2) 5.5/9.0; 3)5.5/10.5; 4) 7.0/7.5, 5) 7.0/9.0; 6)7.0/10.5;
7)8.5/7.5; 8) 8.5/9.0; 9) 8.5/10.5. Barras en cada nutrimento con letras distintas son diferentes
estadísticamente (p ≤ 0.05).
Capítulo III.
115
0
0.1
0.2
0.3
Cu Zn Mn B
Nutrimentos
Acu
mul
ació
n nu
trim
enta
l, m
g ho
jas-1
pla
nta-1
1
2
3
4
5
6
7
8
9
aababc
abc abcabcabc bc
c
a abab ab ababab abb
a
ababc abc
bc bcbcbcc
a a abababcbcc cc
0
0.1
0.2
0.3
Cu Zn Mn B
Nutrimentos
Acu
mul
ació
n nu
trim
enta
l, m
g ho
jas-1
pla
nta-1
1
2
3
4
5
6
7
8
9
aababc
abc abcabcabc bc
c
a abab ab ababab abb
a
ababc abc
bc bcbcbcc
a a abababcbcc cc
En relación a la extracción obtenida de Cu, Zn, Mn y B (Figura 16, análisis
estadístico en Apéndice B Cuadros 42B a 45B).) se encontraron diferencias
estadísticas significativas entre tratamientos (p ≤ 0.05); para el Cu y el Zn debida a
los factores potasio y calcio en forma individual y a su interacción; mientras que
para el B debida al calcio y a la interacción de éste con potasio Las menores
acumulaciones de estos nutrimentos se registraron en los tratamientos 3 y 4.
De estos micronutrimentos, el que mostró menor acumulación fue el Cu; del cual
se tuvieron los valores más altos en los tratamientos 6 al 9. Para B y Zn las
acumulaciones más altas se registraron en el tratamiento 9; mientras que la de
manganeso en el tratamiento 2.
Figura 16. Acumulación de cobre (Cu), zinc (Zn), manganeso (Mn) y boro (B) en
hojas de tulipán cv. Ile de France, regado con soluciones nutritivas con distintas
relaciones K+/Ca2+. Tratamientos: 1) 5.5/7.5; 2) 5.5/9.0; 3)5.5/10.5; 4) 7.0/7.5, 5) 7.0/9.0;
6) 7.0/10.5; 7) 8.5/7.5; 8) 8.5/9.0; 9)8.5/10.5. Barras en cada nutrimento con letras distintas son
diferentes estadísticamente (p ≤ 0.05).
Capítulo III.
116
5.3.2. Extracción nutrimental en tallos La acumulación de N, P, K, y Mg (Cuadro 11), no mostraron diferencias
estadísticas significativas entre tratamientos (p > 0.05) (análisis estadístico en
Apéndice B Cuadros 46B, 47B, 48B y 50B). En estos macronutrimentos no se
advierte una tendencia clara en respuesta a los tratamientos evaluados.
La acumulación de Ca en tallo mostró diferencia estadística significativa entre
tratamientos (p ≤ 0.05) (análisis estadístico en Apéndice B Cuadro 49B). La
mayor acumulación de calcio en tallo se presenta cuando se tiene el nivel más alto
de éste en la solución nutritiva y el menor contenido de potasio; lo anterior indica,
que el potasio tiene un efecto negativo sobre la acumulación de calcio.
Cuadro 11. Acumulación de nitrógeno (N), fósforo (P), potasio (K), calcio (Ca) y
magnesio (Mg) en tallos de tulipán cv. Ile de France, regado con
soluciones nutritivas con distintas relaciones K+/Ca2+.
Tratamiento N P K Ca Mg
mg tallo-1 1 45.64 a 9.36 a 1.88 a 4.70 ab 5.71 a
2 37.52 a 8.72 a 1.76 a 4.56 ab 5.08 a
3 55.55 a 6.59 a 2.35 a 5.03 a 4.22 a
4 47.43 a 6.31 a 1.61 a 2.65 b 3.53 a
5 54.88 a 8.40 a 2.27 a 4.52 ab 5.59 a
6 60.41 a 8.22 a 2.17 a 4.22 ab 5.24 a
7 43.98 a 6.56 a 1.62 a 3.22 ab 4.15 a
8 54.56 a 7.86 a 1.94 a 3.74 ab 5.20 a
9 47.85 a 7.31 a 1.75 a 3.67 ab 4.76 a
DMS 25.17 3.90 0.96 2.05 2.45
Tratamientos: 1) 5.5/7.5; 2) 5.5/9.0; 3) 5.5/10.5; 4) 7.0/7.5, 5) 7.0/9.0; 6)7.0/10.5; 7)8.5/7.5; 8 )8.5/9.0; 9)8.5/10.5. DMS: Diferencia mínima significativa. Columnas con letras distintas son diferentes estadísticamente (p ≤ 0.05).
Respecto a la acumulación de micronutrimentos en tallos, a diferencia de la
acumulación en hojas se observa, que existieron diferencias estadísticas
significativas entre tratamientos (p ≤ 0.05) (análisis estadístico en Apéndice B
Capítulo III.
117
0
0.05
0.1
0.15
0.2
0.25
0.3
Fe Cu Zn Mn B
Nutrimentos
Acu
mul
ació
n nu
trim
enta
l, m
g ta
llo-1
1
2
3
4
5
6
7
8
9
aabab
abcbc bc
ccc
aab
abc
abc
abc
abc
abcbc ca a aab
abcbcbc bcc
aab abab bb bbb
aabab ab ababab
b b
0
0.05
0.1
0.15
0.2
0.25
0.3
Fe Cu Zn Mn B
Nutrimentos
Acu
mul
ació
n nu
trim
enta
l, m
g ta
llo-1
1
2
3
4
5
6
7
8
9
aabab
abcbc bc
ccc
aab
abc
abc
abc
abc
abcbc ca a aab
abcbcbc bcc
aab abab bb bbb
aabab ab ababab
b b
Cuadro 51B a 55B). Los nutrimentos B, Fe y Zn presentaron mayores valores de
acumulación que el Cu y Mn.
Con excepción de manganeso, en el resto de los micronutrimentos se obtuvo la
mayor acumulación de éstos en tallo en el tratamiento 5 (proporción potasio/calcio
de la solución nutritiva de Steiner). Mientras que sin excepción, la menor
acumulación de micronutrimentos se registró en el tratamiento 3; respuesta
contraria a la mostrada para la acumulación de calcio en tallos (Cuadro 10).
Figura 17. Acumulación de hierro (Fe), cobre (Cu), zinc (Zn), manganeso (Mn) y
boro (B) en tallos de tulipán cv. Ile de France, regado con soluciones nutritivas con
distintas relaciones K+/Ca2+.Tratamientos: 1) 5.5/7.5; 2) 5.5/9.0; 3) 5.5/10.5; 4) 7.0/7.5,
5) 7.0/9.0; 6) 7.0/10.5; 7) 8.5/7.5; 8) 8.5/9.0; 9)8.5/10.5. Barras con letras distintas en cada
micronutrimento son diferentes estadísticamente (p ≤ 0.05).
5.3.3. Extracción de nutrimentos en bulbo De acuerdo a los resultados obtenidos en el Cuadro 12, podemos inferir que la
acumulación de macronutrimentos (N, P, K, Ca y Mg) en bulbo de tulipán no
mostró diferencias estadísticas significativas (p > 0.05) (análisis estadístico en
Apéndice B Cuadros 56B a 60B).
Las acumulaciones más altas se tuvieron como sigue: 152.6 mg de N bulbo-1, 27.7
mg de P bulbo-1, 79.5 mg de K bulbo-1, 14.7 mg de Ca bulbo-1 y 20 mg de Mg
bulbo-1 para los tratamiento 9, 4, 9, 5 y 9, respectivamente. Los menores valores
Capítulo III.
118
en cada nutrimento fueron de 90.9 mg de N bulbo-1, 17.8 mg de P bulbo-1, 51.5 mg
de K bulbo-1, 8.1 mg de Ca bulbo-1 y 12.8 mg de Mg bulbo-1, encontrados en el
tratamiento 3 a excepción de P que se presentó en el 8.
Los datos anteriores permiten identificar que de manera general los niveles
suministrados de K/Ca 5.5/10:5 molc m3 presentan las acumulaciones menores de
macronutrimentos en bulbo.
En la acumulación de micronutrimentos, los resultados de Cu, Zn, Mn y B no
mostraron efectos estadísticamente significativos (p > 0.05) (análisis estadístico en
Apéndice B Cuadros 62B a 65B). Sin embargo, se observa en forma clara que
las mayores acumulaciones de éstos se registran en el tratamiento 5.
De los micronutrimentos, únicamente Fe el mostró diferencias estadísticas entre
tratamientos (p ≤ 0.05, en Apéndice B Cuadro 61A). El Fe mostró la misma
tendencia en bulbo que el resto de los micronutrimentos al acumularse en mayor
medida en el tratamiento 5.
Cuadro 12. Acumulación nutrimental en bulbos de tulipán cv. Ile de France,
regado con soluciones nutritivas con distintas relaciones K+/Ca2+.
N P K Ca Mg Fe Cu Zn Mn B Tratamiento
mg bulbo-1
1 98.7 a 20.3 a 61.4 a 11.5 a 15.9 a 1.75 b 0.06 a 0.30 a 0.14 a 0.69 a
2 143.4 a 24.6 a 60.0 a 10.8 a 17.8 a 1.52 b 0.07 a 0.36 a 0.13 a 0.65 a
3 90.93 a 20.3 a 51.5 a 8.1 a 12.8 a 1.76 b 0.05 a 0.26 a 0.12 a 0.51 a
4 134.5 a 27.7 a 63.6 a 11.6 a 17.4 a 1.58 b 0.07 a 0.34 a 0.16 a 1.08 a
5 99.5 a 24.5 a 66.4 a 14.7 a 20.0 a 4.21 a 0.08 a 0.36 a 0.18 a 0.90 a
6 139.4 a 21.5 a 59.0 a 12.4 a 15.3 a 1.77 b 0.06 a 0.31 a 0.15 a 0.66 a
7 99.17 a 22.6 a 63.6 a 11.1 a 14.6 a 1.77 b 0.06 a 0.28 a 0.13 a 0.61 a
8 129.1 a 17.8 a 67.1 a 9.1 a 14.9 a 2.24 b 0.03 a 0.34 a 0.13 a 0.51 a
9 152.6 a 22.8 a 79.5 a 10.1 a 15.3 a 2.02 b 0.04 a 0.40 a 0.09 a 0.67 a
DMS 114.26 19.25 54.7 10.4 13.8 1.96 0.05 0.28 0.13 0.59
Tratamientos: 1) 5.5/7.5; 2) 5.5/9.0; 3) 5.5/10.5; 4) 7.0/7.5, 5) 7.0/9.0; 6) 7.0/10.5; 7) 8.5/7.5; 8) 8.5/9.0; 9) 8.5/10.5. DMS: Diferencia mínima significativa. Columnas con letras distintas son diferentes estadísticamente (p ≤ 0.05).
Capítulo III.
119
5.3.4. Factor de concentración K+/Ca2+ En el Cuadro 13, se muestran los valores correspondientes al factor de
concentración de K+ y Ca2+ en cada uno de los tratamientos; como resultado de la
acumulación obtenida en planta completa de tulipán durante el período de cultivo
considerando la biomasa seca total (hoja, tallo y bulbo). De ahí, que los
tratamientos con mayor concentración de ambos elementos coinciden con
suministros bajos de éstos en la solución nutritiva; es decir, la planta aumenta su
absorción de potasio y calcio conforme disminuyen los niveles de éstos en la
solución nutritiva y viceversa, a medida que los niveles K+ y Ca2+ incrementan, la
absorción de ambos tiende a disminuir.
En el Cuadro 13 se observa efecto antagónico entre los nutrimentos potasio y
calcio. Altas concentraciones de calcio en la solución nutritiva disminuyen el factor
de acumulación de potasio in planta y de la misma manera, altas concentraciones
de potasio reducen el factor de acumulación de calcio.
Capítulo III.
119
Cuadro13. Concentración de K+/Ca2+en la planta en función de la solución nutritiva.
mg meq L-1
Tratamiento
Tallo
Hoja
Bulbo
Planta entera Factor de
concentración
Ca2+ K+ Ca2+ K+ Ca2+ K+ Ca2+ K+ Ca2+ K+ 1 4.7 1.88 9 3 11.5 61.4 8.40 22.09 6.60 6.51
2 4.56 1.76 4.5 2 10.8 60 6.62 21.25 5.21 5.23
3 5.03 2.35 5 2.5 8.1 51.5 6.04 18.78 5.80 4.83
4 2.65 1.61 6 3 11.6 63.6 6.75 22.73 3.89 6.26
5 4.52 2.27 8.5 3 14.7 66.4 9.24 23.89 4.75 4.89
6 4.22 2.17 10.5 4 12.4 59 9.04 21.72 5.54 4.54
7 3.22 1.62 8 3 11.1 63.6 7.44 22.74 4.29 7.61
8 3.74 1.94 9 3.5 9.1 67.1 7.28 24.18 3.44 5.53
9 3.67 1.75 7.5 3.5 10.1 79.5 7.09 28.25 3.06 5.05
Tratamientos: 1) 5.5/7.5; 2) 5.5/9.0; 3) 5.5/10.5; 4) 7.0/7.5, 5) 7.0/9.0; 6) 7.0/10.5; 7) 8.5/7.5; 8) 8.5/9.0; 9) 8.5/10.5. Factor de concentración: meq L-1en planta/meq L-1en solución nutritiva.
Capítulo III.
120
0
5
10
15
1 2 3 4 5 6 7 8 9
Ca,
mg
0
5
10
15
Ca,
mg
1 2 3 4 5 6 7 8 9
Tratamientos
Hojas
Tallos
Bulbos
0
5
10
15
1 2 3 4 5 6 7 8 9
Ca,
mg
0
5
10
15
Ca,
mg
1 2 3 4 5 6 7 8 9
Tratamientos
Hojas
Tallos
Bulbos
5.3.5. Partición de K y Ca en la planta La partición de Ca obtenida como resultado del análisis nutrimental en hoja, tallo y
bulbo es mostrada en la Figura 18.
Figura 18. Partición de calcio (Ca) en tulipán cv. Ile de France, regado con
soluciones nutritivas con distintas relaciones K+/Ca2+.Tratamientos: 1) 5.5/7.5; 2) 5.5/9.0;
3) 5.5/10.5; 4) 7.0/7.5, 5) 7.0/9.0; 6) 7.0/10.5; 7) 8.5/7.5; 8) 8.5/9.0; 9) 8.5/10.5.
Al analizar la relación existente en la acumulación de calcio bulbo/vástago, se
observa que ésta se presenta en el orden siguiente: 0.81, 1.18, 0.80, 1.37, 1.13,
0.84, 1.007, 0.70 y 0.93 para los tratamientos 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8 y 9,
respectivamente. Es decir la menor relación de acumulación de calcio
bulbo/vástago se presenta en el tratamiento 8, lo que indica que la cantidad de
calcio fue mayor en el vástago que en el bulbo. Es importante destacar que este
tratamiento produjo los contenidos más altos de glucosa inicial en pétalos, mayor
firmeza de tallo basal y media y ocupó el segundo lugar en altura de tallos florales.
Es interesante notar, que las menores relaciones tallo/hoja en contenido de calcio
(0.4) la presentan las flores de las plantas sometidas a los tratamientos 8 y 6; esta
relación menor indica que existió mayor contenido de calcio en hojas que en tallo.
Capítulo III.
121
1 2 3 4 5 6 7 8 9
Tratamientos
Hojas
Tallos
Bulbos0
20
40
60
80
K, m
g
0
2
4
6
1 2 3 4 5 6 7 8 9
K, m
g
1 2 3 4 5 6 7 8 9
Tratamientos
Hojas
Tallos
Bulbos0
20
40
60
80
K, m
g
0
2
4
6
1 2 3 4 5 6 7 8 9
K, m
g
En contraste, las relaciones tallo/hoja mayores (alrededor de 1) son registradas
en los tratamientos 2 y 3.
Por otro lado, la partición de K en la planta de tulipán (Figura 19) muestra que
este nutrimento se acumuló en bulbos. Las relaciones bulbo/vástago no muestran
tendencia alguna que pueda ser atribuida a los tratamientos evaluados; éstas son
las siguientes: 12.14, 17.04, 10.98, 14.20, 12.96, 10.10, 13.61, 12.47 y 15.76 para
los tratamientos 1 a 9, respectivamente.
Al calcular la relación de acumulación de potasio tallo/hojas, se observa que los
tratamientos 2 y 3, presentan valores de 1 (como en el caso del calcio), seguidos
por el tratamiento 5 (0.76), 1 y 6 (0.59), 4 y 8 (0.56) y el 7 (0.53).
Figura 19. Partición de potasio (K) en tulipán cv. Ile de France, regado con
soluciones nutritivas con distintas relaciones K+/Ca2+.Tratamientos: 1) 5.5/7.5; 2) 5.5/9.0;
3) 5.5/10.5; 4) 7.0/7.5, 5) 7.0/9.0; 6) 7.0/10.5; 7) 8.5/7.5; 8) 8.5/9.0; 9) 8.5/10.5.
Capítulo III.
122
VI. CONCLUSIONES
En la presente investigación se obtuvieron las siguientes conclusiones:
• El tulipán mostró respuestas diferenciales a las distintas relaciones K+/Ca2+
en la solución nutritiva; lo cual indica, que los contenidos nutrimentales del
bulbo no son suficientes para abastecer el cultivo.
• Concentraciones bajas de potasio y calcio en la solución nutritiva (5.5/7.5
molc m-3) incrementan la altura de tallos florales en tulipán, pero éstos
presentan menor firmeza, menor contenido de azúcares finales en pétalos y
en consecuencia menor vida en florero.
• Con la relación K+/Ca2+ de la solución nutritiva de Steiner (7/9 molc m-3), no
se obtuvo la mejor calidad de los tallos florales en tulipán.
• Los tratamientos 2, 3 y 4 (relación K+/Ca2+ 5.5/9.0, 5.5/10.5, 7.0/7.5,
respectivamente), fueron los que produjeron flores con menor calidad y con
menor vida en florero.
• El mejor tratamiento de los evaluados fue el 8 (relación K+/Ca2+ 8.5/9.0 molc
m-3), con la mayor altura de tallos florales, firmeza, mayor contenido final de
clorofilas y azúcares totales, y mayor vida en florero.
• La acumulación nutrimental no está relacionada en forma directa con los
parámetros de calidad y la vida en florero evaluadas, puesto que en el
mejor tratamiento (tratamiento 8) no se registraron los valores más altos de
éstas para ninguno de los nutrimentos.
• La partición de la acumulación de calcio in planta mostró influencia sobre
calidad y vida de florero en tulipán. En el tratamiento 8 que presentó
mejores respuestas se observó la menor relación de acumulación de calcio
bulbo/vástago y la menor relación de acumulación de calcio tallo/hoja; lo
anterior implica mayor acumulación de calcio en vástago que en bulbo, y
mayor acumulación de calcio en hojas que en tallo.
Capítulo III.
123
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Apéndice A
132
APÉNDICE A.
ANÁLISIS ESTADÍSTICOS
CAPÍTULO II. EVALUACIÓN DE SUSTRATOS SOBRE EL CRECIMIENTO RADICAL Y DESARROLLO VEGETATIVO DE TULIPÁN (Tulipa gesneriana)
Apéndice A
133
Cuadro 1A. Análisis de varianza de inicio de brotación en bulbos de tulipán cultivados en hidroponía. Fuente DF Suma de
Cuadrados Cuadrado de la
media F- valor Pr > F
Modelo 5 156.1875000 31.2375000 6.43 0.0002 Error 42 204.1250000 4.8601190 Total 47 360.3125000 C.V 13.2
Cuadro 2A. Análisis de varianza en altura de planta de tulipán cultivado en hidroponía (19 dds).
Fuente DF Suma de Cuadrados
Cuadrado de la media
F- valor Pr > F
Modelo 5 53.47459167 10.69491833 14.63 < 0.0001 Error 42 30.69367500 0.73080179 Total 47 84.16826667 C.V 35.9
Cuadro 3A. Análisis de varianza en altura de planta de tulipán cultivado en hidroponía (22 dds).
Fuente DF Suma de Cuadrados
Cuadrado de la media
F- valor Pr > F
Modelo 5 107.4961526 21.4992305 20.81 < 0.0001 Error 42 43.3883594 1.0330562 Total 47 150.8845120 C.V 27.4
Cuadro 4A. Análisis de varianza en altura de planta de tulipán cultivado en hidroponía (25 dds).
Fuente DF Suma de Cuadrados
Cuadrado de la media
F- valor Pr > F
Modelo 5 182.6514938 36.5302988 22.55 < 0.0001 Error 42 68.0421812 1.6200519 Total 47 250.6936750 C.V 21.8
Cuadro5A. Análisis de varianza en altura de planta de tulipán cultivado en hidroponía (29 dds).
Fuente DF Suma de Cuadrados
Cuadrado de la media
F- valor Pr > F
Modelo 5 288.7256589 57.7451318 30.23 < 0.0001 Error 42 80.2341281 1.9103364 Total 47 368.9597870 C.V 18.4
Cuadro 6A. Análisis de varianza en altura de planta de tulipán cultivado en hidroponía (32 dds).
Fuente DF Suma de Cuadrados
Cuadrado de la media
F- valor Pr > F
Modelo 5 386.3775797 77.2755159 31.88 < 0.0001 Error 42 101.8189406 2.4242605 Total 47 488.1965203 C.V 17.7
Cuadro 7A. Análisis de varianza en altura de planta de tulipán cultivado en hidroponía (34 dds).
Fuente DF Suma de Cuadrados
Cuadrado de la media
F- valor Pr > F
Modelo 5 457.5089292 91.5017858 32.9 < 0.0001 Error 42 116.7383875 2.7794854 Total 47 574.2473167 C.V 17.1
Apéndice A
134
Cuadro 8A. Análisis de varianza en altura de planta de tulipán cultivado en hidroponía (36 dds). Fuente DF Suma de
Cuadrados Cuadrado de la
media F- valor Pr > F
Modelo 5 517.9070417 103.5814083 32.07 < 0.0001 Error 42 135.6430000 3.2295952 Total 47 653.5500417 C.V 16.9
Cuadro 9A. Análisis de varianza en altura de planta de tulipán cultivado en hidroponía (38 dds).
Fuente DF Suma de Cuadrados
Cuadrado de la media
F- valor Pr > F
Modelo 5 679.8086667 135.9617333 33.56 < 0.0001 Error 42 170.1749000 4.0517833 Total 47 849.9835667 C.V 17.02
Cuadro. 10A. Análisis de varianza en altura de planta de tulipán cultivado en hidroponía (40 dds).
Fuente DF Suma de Cuadrados
Cuadrado de la media
F- valor Pr > F
Modelo 5 764.3640104 152.8728021 34.16 < 0.0001 Error 42 187.9734375 4.4755580 Total 47 952.3374479 C.V 16.99
Cuadro 11A. Análisis de varianza en altura de planta de tulipán cultivado en hidroponía (43 dds).
Fuente DF Suma de Cuadrados
Cuadrado de la media
F- valor Pr > F
Modelo 5 1112.928385 222.585677 38.66 < 0.0001 Error 42 241.832812 5.757924 Total 47 1354.761198 C.V 16.6
Cuadro 12A. Análisis de varianza en altura de planta de tulipán cultivado en hidroponía (46 dds).
Fuente DF Suma de Cuadrados
Cuadrado de la media
F- valor Pr > F
Modelo 5 1795.465000 359.093000 47.7 < 0.0001 Error 42 317.887500 7.568750 Total 47 2113.352500 C.V 16.3
Cuadro 13A. Análisis de varianza en altura de planta de tulipán cultivado en hidroponía (49 dds).
Fuente DF Suma de Cuadrados
Cuadrado de la media
F- valor Pr > F
Modelo 5 2240.019219 448.003844 55.87 < 0.0001 Error 42 336.781562 8.018609 Total 47 2576.800781 C.V 15.6
Cuadro 14A. Análisis de varianza en altura de planta de tulipán cultivado en hidroponía (52 dds).
Fuente DF Suma de Cuadrados
Cuadrado de la media
F- valor Pr > F
Modelo 5 2685.410000 537.082000 49.33 < 0.0001 Error 42 457.307500 10.888274 Total 47 3142.717500 C.V 15.5
Apéndice A
135
Cuadro 15A. Análisis de varianza en altura de planta de tulipán cultivado en hidroponía (57 dds). Fuente DF Suma de
Cuadrados Cuadrado de la
media F- valor Pr > F
Modelo 5 2814.670417 562.934083 36.73 < 0.0001 Error 42 643.696250 15.326101 Total 47 3458.366667 C.V 16.8
Cuadro 16A. Análisis de varianza en altura de planta de tulipán cultivado en hidroponía (59 dds).
Fuente DF Suma de Cuadrados
Cuadrado de la media
F- valor Pr > F
Modelo 5 3213.158125 642.631625 27.95 < 0.0001 Error 42 965.605000 22.990595 Total 47 4178.763125 C.V 18.3
Cuadro 17A. Análisis de varianza en diámetro de tallo basal de tulipán cultivado en hidroponía.
Fuente DF Suma de Cuadrados
Cuadrado de la media
F- valor Pr > F
Modelo 5 5.21323542 1.04264708 20.05 < 0.0001 Error 42 2.18463125 0.05201503 Total 47 7.39786667 C.V 26.5
Cuadro 18A. Análisis de varianza en diámetro de tallo medio de tulipán cultivado en hidroponía.
Fuente DF Suma de Cuadrados
Cuadrado de la media
F- valor Pr > F
Modelo 5 3.48262292 0.69652458 22.84 < 0.0001 Error 42 1.28061875 0.03049092 Total 47 4.76324167 C.V 25.2
Cuadro 19A. Análisis de varianza en diámetro de tallo apical de tulipán cultivado en hidroponía.
Fuente DF Suma de Cuadrados
Cuadrado de la media
F- valor Pr > F
Modelo 5 2.20207292 0.44041458 23.48 < 0.0001 Error 42 0.78789375 0.01875937 Total 47 2.98996667 C.V 25.2
Cuadro 20A. Análisis de varianza de número de hojas en tulipán cultivado en hidroponía.
Fuente DF Suma de Cuadrados
Cuadrado de la media
F- valor Pr > F
Modelo 5 29.43750000 5.88750000 27.86 < 0.0001 Error 42 8.87500000 0.21130952 Total 47 38.31250000 C.V 23.7
Cuadro 21A. Análisis de varianza de peso fresco de vástago de tulipán cultivado en hidroponía.
Fuente DF Suma de Cuadrados
Cuadrado de la media
F- valor Pr > F
Modelo 5 932.000000 186.400000 20.32 < 0.0001 Error 42 385.250000 9.172619 Total 47 1317.250000 C.V 26.05
Apéndice A
136
Cuadro 22A. Análisis de varianza de peso seco de vástago de tulipán cultivado en hidroponía. Fuente DF Suma de
Cuadrados Cuadrado de la
media F- valor Pr > F
Modelo 5 9.83231719 1.96646344 18.63 < 0.0001 Error 42 4.43227813 0.10553043 Total 47 14.26459531 C.V 23.5
Cuadro 23A. Análisis de varianza de peso fresco de bulbos de tulipán cultivados en hidroponía.
Fuente DF Suma de Cuadrados
Cuadrado de la media
F- valor Pr > F
Modelo 5 1209.687500 241.937500 4.88 0.0013 Error 42 2082.625000 49.586310 Total 47 3292.312500 C.V 17.3
Cuadro 24A. Análisis de varianza de peso seco de bulbos de tulipán cultivados en hidroponía.
Fuente DF Suma de Cuadrados
Cuadrado de la media
F- valor Pr > F
Modelo 5 47.8733812 9.5746762 1.68 0.1613 Error 42 239.8516188 5.7107528 Total 47 287.7250000 C.V 22.4
Cuadro 25A. Análisis de varianza del diámetro de flor,
Fuente DF Suma de Cuadrados
Cuadrado de la media
F- valor Pr > F
Modelo 5 195.6737172 39.1347434 15.49 < 0.0001 Error 42 106.1131781 2.5265042 Total 47 301.7868953 C.V 31.24
Cuadro 26A. Análisis de varianza de la concentración de N en hojas de tulipán cultivado en hidroponía.
Fuente DF Suma de Cuadrados
Cuadrado de la media
F- valor Pr > F
Modelo 5 152.5533333 30.5106667 32.73 < 0.0001 Error 12 11.1866667 0.9322222 Total 17 163.7400000 C.V 7.70
Cuadro 27A. Análisis de varianza de la concentración de P en hojas de tulipán cultivado en hidroponía.
Fuente DF Suma de Cuadrados
Cuadrado de la media
F- valor Pr > F
Modelo 5 899910.004 161982.001 2.11 0.1343 Error 12 921317.447 76776.454 Total 17 1731227.451 C.V 12.4
Cuadro 28A. Análisis de varianza de la concentración de K en hojas de tulipán cultivado en hidroponía.
Fuente DF Suma de Cuadrados
Cuadrado de la media
F- valor Pr > F
Modelo 5 22821841.68 4564368.34 13.42 < 0.0001 Error 12 4081501.59 340125.13 Total 17 26903343.26 C.V 8.13
Apéndice A
137
Cuadro 29A. Análisis de varianza de la concentración de Ca en hojas de tulipán cultivado en hidroponía. Fuente DF Suma de
Cuadrados Cuadrado de la
media F- valor Pr > F
Modelo 5 1903718.516 380743.703 78.90 < 0.0001 Error 12 57908.044 4825.670 Total 17 1961626.560 C.V 7.85
Cuadro 30A. Análisis de varianza de la concentración de Mg en hojas de tulipán cultivado en hidroponía.
Fuente DF Suma de Cuadrados
Cuadrado de la media
F- valor Pr > F
Modelo 5 1007121.224 201424.245 29.53 < 0.0001 Error 12 81852.120 6821.010 Total 17 1088973.344 C.V 6.0
Cuadro 31A. Análisis de varianza de la concentración de Fe en hojas de tulipán cultivado en hidroponía.
Fuente DF Suma de Cuadrados
Cuadrado de la media
F- valor Pr > F
Modelo 5 192162.8664 38432.5733 18.13 < 0.0001 Error 12 25438.2092 2119.8508 Total 17 217601.0756 C.V 27.1
Cuadro 32A. Análisis de varianza de la concentración de Cu en hojas de tulipán cultivado en hidroponía.
Fuente DF Suma de Cuadrados
Cuadrado de la media
F- valor Pr > F
Modelo 5 1.53015494 0.30603099 0.55 0.7330 Error 12 6.62654867 0.55221239 Total 17 8.15670361 C.V 25.7
Cuadro 33A. Análisis de varianza de la concentración de Zn en hojas de tulipán cultivado en hidroponía.
Fuente DF Suma de Cuadrados
Cuadrado de la media
F- valor Pr > F
Modelo 5 213.6366247 42.7273249 8.94 0.0010 Error 12 57.3733933 4.7811161 Total 17 271.0100180 C.V 9.24
Cuadro 34A. Análisis de varianza de la concentración de Mn en hojas de tulipán cultivado en hidroponía.
Fuente DF Suma de Cuadrados
Cuadrado de la media
F- valor Pr > F
Modelo 5 314.4735809 62.8947162 49.59 < 0.0001 Error 12 15.2192287 1.2682691 Total 17 329.6928096 C.V 10.5
Cuadro 35A. Análisis de varianza de la concentración de B en hojas de tulipán cultivado en hidroponía.
Fuente DF Suma de Cuadrados
Cuadrado de la media
F- valor Pr > F
Modelo 5 112.1371100 22.4274220 0.60 0.7032 Error 12 450.6611060 37.5550922 Total 17 562.7982160 C.V 7.03
Apéndice A
138
Cuadro 36A. Análisis de varianza de la acumulación de N en hojas de tulipán cultivado en hidroponía. Fuente DF Suma de
Cuadrados Cuadrado de la
media F- valor Pr > F
Modelo 5 10699.79 2139.95894 16.98 < 0.0001 Error 42 5292.58018 126.01381 Total 47 15992.37485 C.V 23.95
Cuadro 37A. Análisis de varianza de la acumulación de P en hojas de tulipán cultivado en hidroponía.
Fuente DF Suma de Cuadrados
Cuadrado de la media
F- valor Pr > F
Modelo 5 268.5030128 53.7006026 23.54 < 0.0001 Error 42 95.7971679 2.2808850 Total 47 364.3001807 C.V 24.41
Cuadro 38A. Análisis de varianza de la acumulación de K en hojas de tulipán cultivado en hidroponía.
Fuente DF Suma de Cuadrados
Cuadrado de la media
F- valor Pr > F
Modelo 5 4495.930385 899.186077 29.81 < 0.0001 Error 42 1266.833952 30.162713 Total 47 5762.764337 C.V 22.78
Cuadro 39A. Análisis de varianza de la acumulación de Ca en hojas de tulipán cultivado en hidroponía
Fuente DF Suma de Cuadrados
Cuadrado de la media
F- valor Pr > F
Modelo 5 1393.769267 278.753853 89.28 < 0.0001 Error 42 131.133010 3.122215 Total 47 1524.902277 C.V 32.45
Cuadro 40A. Análisis de varianza de la acumulación de Mg en hojas de tulipán cultivado en hidroponía.
Fuente DF Suma de Cuadrados
Cuadrado de la media
F- valor Pr > F
Modelo 5 238.4045560 47.6809112 54.56 < 0.0001 Error 42 36.7038751 0.8739018 Total 47 275.1084311 C.V 27.01
Cuadro 41A. Análisis de varianza de la acumulación de Fe en hojas de tulipán cultivado en hidroponía. Fuente DF Suma de
Cuadrados Cuadrado de la
media F- valor Pr > F
Modelo 5 889377.582 177875.516 59.09 < 0.0001 Error 42 126427.967 3010.190 Total 47 1015805.549 C.V 26.29
Cuadro 42A. Análisis de varianza de la acumulación de Cu en hojas de tulipán cultivado en hidroponía.
Fuente DF Suma de Cuadrados
Cuadrado de la media
F- valor Pr > F
Modelo 5 179.7942128 35.9588426 6.15 0.7330 Error 42 245.3955220 5.8427505 Total 47 425.1897348 C.V 25.40
Apéndice A
139
Cuadro 43A. Análisis de varianza de la acumulación de Zn en hojas de tulipán cultivado en hidroponía. Fuente DF Suma de
Cuadrados Cuadrado de la
media F- valor Pr > F
Modelo 5 64122.13665 12824.42733 38.48 < 0.0001 Error 42 13998.80740 333.30494 Total 47 78120.94405 C.V 25.96
Cuadro 44A. Análisis de varianza de la acumulación de Mn en hojas de tulipán cultivado en hidroponía. Fuente DF Suma de
Cuadrados Cuadrado de la
media F- valor Pr > F
Modelo 5 27292.93939 5458.58788 41.88 0.0010 Error 42 5474.03737 130.33422 Total 47 32766.97675 C.V 25.87
Cuadro 45A. Análisis de varianza de la acumulación de B en hojas de tulipán cultivado en hidroponía. Fuente DF Suma de
Cuadrados Cuadrado de la
media F- valor Pr > F
Modelo 5 314353.4027 62870.6805 21.80 0.7032 Error 42 121150.9184 2884.5457 Total 47 435504.3211 C.V 22.28
Cuadro 46A. Análisis de varianza de la concentración de N en bulbo de tulipán cultivado en hidroponía.
Fuente DF Suma de Cuadrados
Cuadrado de la media
F- valor Pr > F
Modelo 5 152.55 30.510 32.73 < 0.0001 Error 12 11.186 0.9322 Total 17 163.74 C.V 7.70
Cuadro 47A. Análisis de varianza de la concentración de P en bulbo de tulipán cultivado en hidroponía.
Fuente DF Suma de Cuadrados
Cuadrado de la media
F- valor Pr > F
Modelo 5 3.298 0.6596 2.77 0.0685 Error 12 2.854 0.2378 Total 17 6.152 C.V 21.05
Cuadro 48A. Análisis de varianza de la concentración de K en bulbo de tulipán cultivado en hidroponía.
Fuente DF Suma de Cuadrados
Cuadrado de la media
F- valor Pr > F
Modelo 5 124.57 24.934 1.29 0.3310 Error 12 232.11 19.342 Total 17 356.78 C.V 53.44
Cuadro49A. Análisis de varianza de la concentración de Ca en bulbo de tulipán cultivado en hidroponía
Fuente DF Suma de Cuadrados
Cuadrado de la media
F- valor Pr > F
Modelo 5 1.614 0.3228 8.84 0.0010 Error 12 0.438 0.3653 Total 17 2.052 C.V 20.68
Apéndice A
140
Cuadro 50A. Análisis de varianza de la concentración de Mg en bulbo de tulipán cultivado en hidroponía. Fuente DF Suma de
Cuadrados Cuadrado de la
media F- valor Pr > F
Modelo 5 0.8327 0.166 5.11 0.0096 Error 12 0.3907 0.035 Total 17 1.223 C.V 12.79
Cuadro 51A. Análisis de varianza de la concentración de Fe en bulbo de tulipán cultivado en hidroponía.
Fuente DF Suma de Cuadrados
Cuadrado de la media
F- valor Pr > F
Modelo 5 192162.8664 38432.5733 18.13 < 0.0001 Error 42 25438.2092 2119.8508 Total 47 217601.0756 C.V 27.10
Cuadro 52A. Análisis de varianza de la concentración de Cu en bulbo de tulipán cultivado en hidroponía.
Fuente DF Suma de Cuadrados
Cuadrado de la media
F- valor Pr > F
Modelo 5 1.53015494 0.30603099 0.55 0.7330 Error 42 6.62654867 0.55221239 Total 47 8.15670361 C.V 25.73
Cuadro 53A. Análisis de varianza de la concentración de Zn en bulbo de tulipán cultivado en hidroponía.
Fuente DF Suma de Cuadrados
Cuadrado de la media
F- valor Pr > F
Modelo 5 213.6366247 42.7273249 8.94 0.0010 Error 42 57.3733933 4.7811161 Total 47 271.0100180 C.V 9.24
Cuadro 54A. Análisis de varianza de la concentración de Mn en bulbo de tulipán cultivado en hidroponía. Fuente DF Suma de
Cuadrados Cuadrado de la
media F- valor Pr > F
Modelo 5 314.4735809 62.8947162 49.59 < 0.0001 Error 42 15.2192287 1.2682691 Total 47 329.6928096 C.V 10.58
Cuadro 55A. Análisis de varianza de la concentración de B en bulbo de tulipán cultivado en hidroponía.
Fuente DF Suma de Cuadrados
Cuadrado de la media
F- valor Pr > F
Modelo 5 112.1371100 22.4274220 0.60 0.7032 Error 42 450.6611060 37.5550922 Total 47 562.7982160 C.V 7.03
Cuadro 56A. Análisis de varianza de la acumulación de N en bulbo de tulipán cultivado en hidroponía.
Fuente DF Suma de Cuadrados
Cuadrado de la media
F- valor Pr > F
Modelo 5 77253.6895 15450.7379 17.61 < 0.0001 Error 42 36858.5977 877.5857 Total 47 114112.2872 C.V 21.93
Apéndice A
141
Cuadro 57A. Análisis de varianza de la acumulación de P en bulbo de tulipán cultivado en hidroponía. Fuente DF Suma de
Cuadrados Cuadrado de la
media F- valor Pr > F
Modelo 5 2001.29804 400.259 14.28 < 0.0001 Error 42 1177.0773 28.02 Total 47 3178.3753 C.V 21.25
Cuadro 58A. Análisis de varianza de la acumulación de K en bulbo de tulipán cultivado en hidroponía.
Fuente DF Suma de Cuadrados
Cuadrado de la media
F- valor Pr > F
Modelo 5 46847.3503 9369.47 31.34 < 0.0001 Error 42 12554.8109 298.92 Total 47 59402.161 C.V 19.81
Cuadro 59A. Análisis de varianza de la acumulación de Ca en bulbo de tulipán cultivado en hidroponía.
Fuente DF Suma de Cuadrados
Cuadrado de la media
F- valor Pr > F
Modelo 5 308.7378 61.747 10.89 < 0.0001 Error 42 238.037 5.667 Total 47 546.775 C.V 24.65
Cuadro 60A. Análisis de varianza de la acumulación de Mg en bulbo de tulipán cultivado en hidroponía.
Fuente DF Suma de Cuadrados
Cuadrado de la media
F- valor Pr > F
Modelo 5 169.94 33.988 2.76 0.0304 Error 42 517.169 12.313 Total 47 687.110 C.V 23.49
Cuadro 61A. Análisis de varianza de la acumulación de Fe en bulbo de tulipán cultivado en hidroponía.
Fuente DF Suma de Cuadrados
Cuadrado de la media
F- valor Pr > F
Modelo 5 8601150.15 1720230.03 12.96 < 0.0001 Error 42 5575568.35 132751.03 Total 47 14176718.50 C.V 25.98
Cuadro 62A. Análisis de varianza de la acumulación de Cu en bulbo de tulipán cultivado en hidroponía.
Fuente DF Suma de Cuadrados
Cuadrado de la media
F- valor Pr > F
Modelo 5 31570.714 6314.142 22.64 < 0.0001 Error 42 11711.105 278.835 Total 47 43281.819 C.V 21.10
Cuadro 63A. Análisis de varianza de la acumulación de Zn en bulbo de tulipán cultivado en hidroponía.
Fuente DF Suma de Cuadrados
Cuadrado de la media
F- valor Pr > F
Modelo 5 430459.977 86091.995 5.93 0.0003 Error 42 609456.142 14510.861 Total 47 1039916.119 C.V 23.57
Apéndice A
142
Cuadro64A. Análisis de varianza de la acumulación de Mn en bulbo de tulipán cultivado en hidroponía. Fuente DF Suma de
Cuadrados Cuadrado de la
media F- valor Pr > F
Modelo 5 130046.620 26009.324 4.64 0.0018 Error 42 235353.775 5603.661 Total 47 365400.396 C.V 23.78
Cuadro 65A. Análisis de varianza de la acumulación de B en bulbo de tulipán cultivado en hidroponía.
Fuente DF Suma de Cuadrados
Cuadrado de la media
F- valor Pr > F
Modelo 5 4361863.36 872372.67 4.87 0.0013 Error 42 7516694.70 178968.92 Total 47 11878558.06 C.V 22.76
Apéndice B
143
APÉNDICE B.
ANÁLISIS ESTADÍSTICOS
CAPÍTULO III. EFECTO DE LA RELACIÓN K+/Ca2+ EN LA SOLUCIÓN NUTRITIVA SOBRE EL CRECIMIENTO Y CALIDAD DE TULIPÁN
Apéndice B
144
Cuadro 1B. Análisis de varianza de los resultados obtenidos de altura de planta en inicio de tulipán
regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+.
Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 302.3466667 37.7933333 3.44 0.0141 Error 18 197.9400000 10.9966667 Total correcto 26 500.2866667 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.604347 7.306022 3.316122 45.38889 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 9.6955556 4.8477778 0.44 0.6503 Ca 2 34.2066667 17.1033333 1.56 0.2382 K*Ca 4 258.4444444 64.6111111 5.88 0.0033 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 9.6955556 4.8477778 0.44 0.6503 Ca 2 34.2066667 17.1033333 1.56 0.2382 K*Ca 4 258.4444444 64.6111111 5.88 0.0033 Cuadro 2B. Análisis de varianza de los resultados obtenidos en diámetro basal de tallo de tulipán
regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+.
Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 0.02142778 0.00267847 1.89 0.0775 Error 63 0.08935000 0.00141825 Total correcto 71 0.11077778 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.193430 3.787010 0.037660 0.994444 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 0.00061944 0.00030972 0.22 0.8044 Ca 2 0.00221111 0.00110556 0.78 0.4630 K*Ca 4 0.01859722 0.00464931 3.28 0.0166 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 0.00061944 0.00030972 0.22 0.8044 Ca 2 0.00221111 0.00110556 0.78 0.4630 K*Ca 4 0.01859722 0.00464931 3.28 0.0166
Apéndice B
145
Cuadro 3B. Análisis de varianza de los resultados obtenidos en diámetro medio de tallo basal de
tulipán regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+.
Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 0.03844444 0.00480556 3.03 0.0060 Error 63 0.09980000 0.00158413 Total correcto 71 0.13824444 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.278090 5.583941 0.039801 0.712778 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 0.00218611 0.00109306 0.69 0.5053 Ca 2 0.00750278 0.00375139 2.37 0.1019 K*Ca 4 0.02875556 0.00718889 4.54 0.0028 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 0.00218611 0.00109306 0.69 0.5053 Ca 2 0.00750278 0.00375139 2.37 0.1019 K*Ca 4 0.02875556 0.00718889 4.54 0.0028 Cuadro 4B. Análisis de varianza de los resultados obtenidos en diámetro apical de tallo basal de
tulipán regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+.
Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 0.03200000 0.00400000 3.98 0.0007 Error 63 0.06328750 0.00100456 Total correcto 71 0.09528750 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.335826 5.034258 0.031695 0.629583 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 0.02643333 0.01321667 13.16 <.0001 Ca 2 0.00007500 0.00003750 0.04 0.9634 K*Ca 4 0.00549167 0.00137292 1.37 0.2556 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 0.02643333 0.01321667 13.16 <.0001 Ca 2 0.00007500 0.00003750 0.04 0.9634 K*Ca 4 0.00549167 0.00137292 1.37 0.2556
Apéndice B
146
Cuadro 5B. Análisis de varianza de la variable longitud de capullo de tulipán regado con soluciones
nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+.
Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 1.51846667 0.18980833 2.84 0.0316 Error 18 1.20480000 0.06693333 Total correcto 26 2.72326667 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.557590 4.757730 0.258715 5.437778 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 0.47682222 0.23841111 3.56 0.0497 Ca 2 0.42242222 0.21121111 3.16 0.0669 K*Ca 4 0.61922222 0.15480556 2.31 0.0970 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 0.47682222 0.23841111 3.56 0.0497 Ca 2 0.42242222 0.21121111 3.16 0.0669 K*Ca 4 0.61922222 0.15480556 2.31 0.0970 Cuadro 6B. Análisis de varianza de la variable diámetro de capullo de tulipán regado con soluciones
nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+.
Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 4.61160000 0.57645000 0.44 0.8844 Error 18 23.84026667 1.32445926 Total correcto 26 28.45186667 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.162084 19.09951 1.150852 6.025556 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 1.65802222 0.82901111 0.63 0.5460 Ca 2 0.36735556 0.18367778 0.14 0.8714 K*Ca 4 2.58622222 0.64655556 0.49 0.7444 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 1.65802222 0.82901111 0.63 0.5460 Ca 2 0.36735556 0.18367778 0.14 0.8714 K*Ca 4 2.58622222 0.64655556 0.49 0.7444
Apéndice B
147
Cuadro 7B. Análisis de varianza de la variable firmeza de tallo basal en tulipán regado con soluciones
nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+.
Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 6.79968085 0.84996011 2.43 0.0565 Error 18 6.30708646 0.35039369 Total correcto 26 13.10676730 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.518792 13.94577 0.591941 4.244588 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 1.95876556 0.97938278 2.80 0.0877 Ca 2 0.52002029 0.26001014 0.74 0.4901 K*Ca 4 4.32089500 1.08022375 3.08 0.0425 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 1.95876556 0.97938278 2.80 0.0877 Ca 2 0.52002029 0.26001014 0.74 0.4901 K*Ca 4 4.32089500 1.08022375 3.08 0.0425 Cuadro 8B. Análisis de varianza de la variable firmeza de tallo medio en tulipán regado con soluciones
nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+.
Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 1.54406569 0.19300821 2.45 0.0543 Error 18 1.41618094 0.07867672 Total correcto 26 2.96024662 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.521600 18.50450 0.280494 1.515813 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 0.41341744 0.20670872 2.63 0.0997 Ca 2 0.21950087 0.10975043 1.39 0.2734 K*Ca 4 0.91114738 0.22778684 2.90 0.0517 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 0.41341744 0.20670872 2.63 0.0997 Ca 2 0.21950087 0.10975043 1.39 0.2734 K*Ca 4 0.91114738 0.22778684 2.90 0.0517
Apéndice B
148
Cuadro 9B. Análisis de varianza de la variable firmeza de tallo apical en tulipán regado con soluciones
nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+.
Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 0.62876028 0.07859504 2.48 0.0520 Error 18 0.56965370 0.03164743 Total correcto 26 1.19841399 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.524660 15.12453 0.177897 1.176217 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 0.11400908 0.05700454 1.80 0.1936 Ca 2 0.11153781 0.05576891 1.76 0.2000 K*Ca 4 0.40321339 0.10080335 3.19 0.0383 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 0.11400908 0.05700454 1.80 0.1936 Ca 2 0.11153781 0.05576891 1.76 0.2000 K*Ca 4 0.40321339 0.10080335 3.19 0.0383 Cuadro 10B. Análisis de varianza del peso de tallo fresco en el día uno de vida de florero en tulipán
regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+.
Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 393.7135222 49.2141903 4.18 0.0023 Error 27 317.5435750 11.7608731 Total correcto 35 711.2570972 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.553546 8.616555 3.429413 39.80028 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 160.7696889 80.3848444 6.83 0.0040 Ca 2 67.1895056 33.5947528 2.86 0.0749 K*Ca 4 165.7543278 41.4385819 3.52 0.0194 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 160.7696889 80.3848444 6.83 0.0040 Ca 2 67.1895056 33.5947528 2.86 0.0749 K*Ca 4 165.7543278 41.4385819 3.52 0.0194
Apéndice B
149
Cuadro 11B. Análisis de varianza del peso de tallo fresco en el día dos de vida de florero en tulipán
regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+.
Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 394.0165389 49.2520674 4.49 0.0015 Error 27 296.0632250 10.9653046 Total correcto 35 690.0797639 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.570972 8.153511 3.311390 40.61306 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 129.3327389 64.6663694 5.90 0.0075 Ca 2 65.0693556 32.5346778 2.97 0.0684 K*Ca 4 199.6144444 49.9036111 4.55 0.0061 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 129.3327389 64.6663694 5.90 0.0075 Ca 2 65.0693556 32.5346778 2.97 0.0684 K*Ca 4 199.6144444 49.9036111 4.55 0.0061 Cuadro 12B. Análisis de varianza del peso de tallo fresco en el día tres de vida de florero en tulipán regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+. Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 437.1991222 54.6498903 4.23 0.0022 Error 27 348.5703750 12.9100139 Total correcto 35 785.7694972 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.556396 8.802242 3.593051 40.81972 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 231.2615056 115.6307528 8.96 0.0010 Ca 2 130.7135389 65.3567694 5.06 0.0136 K*Ca 4 75.2240778 18.8060194 1.46 0.2428 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 231.2615056 115.6307528 8.96 0.0010 Ca 2 130.7135389 65.3567694 5.06 0.0136 K*Ca 4 75.2240778 18.8060194 1.46 0.2428
Apéndice B
150
Cuadro 13B. Análisis de varianza del peso de tallo fresco en el día cuatro de vida de florero en tulipán regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+. Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 399.6289000 49.9536125 2.77 0.0225 Error 27 486.9195750 18.0340583 Total correcto 35 886.5484750 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.450769 9.878042 4.246653 42.99083 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 96.2618167 48.1309083 2.67 0.0876 Ca 2 114.5066000 57.2533000 3.17 0.0578 K*Ca 4 188.8604833 47.2151208 2.62 0.0572 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 96.2618167 48.1309083 2.67 0.0876 Ca 2 114.5066000 57.2533000 3.17 0.0578 K*Ca 4 188.8604833 47.2151208 2.62 0.0572 Cuadro 14B. Análisis de varianza del peso de tallo fresco en el día cinco de vida de florero en tulipán
regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+.
Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 368.3284000 46.0410500 5.36 0.0004 Error 27 231.8780000 8.5880741 Total correcto 35 600.2064000 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.613670 6.709627 2.930542 43.67667 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 161.7628667 80.8814333 9.42 0.0008 Ca 2 30.9361167 15.4680583 1.80 0.1844 K*Ca 4 175.6294167 43.9073542 5.11 0.0034 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 161.7628667 80.8814333 9.42 0.0008 Ca 2 30.9361167 15.4680583 1.80 0.1844 K*Ca 4 175.6294167 43.9073542 5.11 0.0034
Apéndice B
151
Cuadro 15B. Análisis de varianza del peso de tallo fresco en el día seis de vida de florero en tulipán
regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+.
Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 346.6536222 43.3317028 3.09 0.0132 Error 27 378.7022000 14.0260074 Total correcto 35 725.3558222 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.477908 8.409935 3.745131 44.53222 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 128.2418722 64.1209361 4.57 0.0195 Ca 2 31.4876722 15.7438361 1.12 0.3402 K*Ca 4 186.9240778 46.7310194 3.33 0.0243 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 128.2418722 64.1209361 4.57 0.0195 Ca 2 31.4876722 15.7438361 1.12 0.3402 K*Ca 4 186.9240778 46.7310194 3.33 0.0243 Cuadro 16B. Análisis de varianza del peso de tallo fresco en el día siete de vida de florero en tulipán
regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+.
Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 310.8032389 38.8504049 3.33 0.0088 Error 27 314.8235500 11.6601315 Total correcto 35 625.6267889 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.496787 7.838958 3.414693 43.56056 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 184.0172056 92.0086028 7.89 0.0020 Ca 2 41.9247722 20.9623861 1.80 0.1849 K*Ca 4 84.8612611 21.2153153 1.82 0.1542 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 184.0172056 92.0086028 7.89 0.0020 Ca 2 41.9247722 20.9623861 1.80 0.1849 K*Ca 4 84.8612611 21.2153153 1.82 0.1542
Apéndice B
152
Cuadro 17B. Análisis de varianza del peso de tallo fresco en el día ocho de vida de florero en tulipán
regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+.
Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 462.3518389 57.7939799 3.91 0.0036 Error 27 399.4081250 14.7928935 Total correcto 35 861.7599639 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.536520 8.936864 3.846153 43.03694 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 218.4051722 109.2025861 7.38 0.0028 Ca 2 62.7170889 31.3585444 2.12 0.1396 K*Ca 4 181.2295778 45.3073944 3.06 0.0334 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 218.4051722 109.2025861 7.38 0.0028 Ca 2 62.7170889 31.3585444 2.12 0.1396 K*Ca 4 181.2295778 45.3073944 3.06 0.0334 Cuadro 18B. Análisis de varianza del peso de tallo fresco en el día nueve de vida de florero en tulipán
regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+.
Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 518.2989500 64.7873688 4.55 0.0014 Error 27 384.5913250 14.2441231 Total correcto 35 902.8902750 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.574044 9.004805 3.774139 41.91250 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 258.0744667 129.0372333 9.06 0.0010 Ca 2 94.6246167 47.3123083 3.32 0.0513 K*Ca 4 165.5998667 41.3999667 2.91 0.0403 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 258.0744667 129.0372333 9.06 0.0010 Ca 2 94.6246167 47.3123083 3.32 0.0513 K*Ca 4 165.5998667 41.3999667 2.91 0.0403
Apéndice B
153
Cuadro 19B. Análisis de varianza del peso de tallo fresco en el día diez de vida de florero en tulipán
regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+.
Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 430.1089222 53.7636153 3.64 0.0054 Error 27 399.1805750 14.7844657 Total correcto 35 829.2894972 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.518647 9.241877 3.845057 41.60472 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 169.5917722 84.7958861 5.74 0.0084 Ca 2 103.1959056 51.5979528 3.49 0.0449 K*Ca 4 157.3212444 39.3303111 2.66 0.0543 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 169.5917722 84.7958861 5.74 0.0084 Ca 2 103.1959056 51.5979528 3.49 0.0449 K*Ca 4 157.3212444 39.3303111 2.66 0.0543 Cuadro 20B. Análisis de varianza de consumo de agua en florero en el día uno por tallos de tulipán
regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+.
Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 297.8866667 37.2358333 7.08 0.0003 Error 18 94.6800000 5.2600000 Total correcto 26 392.5666667 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.758818 7.929781 2.293469 28.92222 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 114.7466667 57.3733333 10.91 0.0008 Ca 2 92.5800000 46.2900000 8.80 0.0022 K*Ca 4 90.5600000 22.6400000 4.30 0.0129 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 114.7466667 57.3733333 10.91 0.0008 Ca 2 92.5800000 46.2900000 8.80 0.0022 K*Ca 4 90.5600000 22.6400000 4.30 0.0129
Apéndice B
154
Cuadro 21B. Análisis de varianza de consumo de agua en florero en el día dos por tallos de tulipán regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+ Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 269.8385185 33.7298148 5.86 0.0009 Error 18 103.5600000 5.7533333 Total correcto 26 373.3985185 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.722656 8.330652 2.398611 28.79259 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 94.4229630 47.2114815 8.21 0.0029 Ca 2 101.3474074 50.6737037 8.81 0.0022 K*Ca 4 74.0681481 18.5170370 3.22 0.0370 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 94.4229630 47.2114815 8.21 0.0029 Ca 2 101.3474074 50.6737037 8.81 0.0022 K*Ca 4 74.0681481 18.5170370 3.22 0.0370 Cuadro 22B. Análisis de varianza de consumo de agua en florero en el día tres por tallos de tulipán regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+ Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 147.1607407 18.3950926 4.26 0.0051 Error 18 77.6800000 4.3155556 Total correcto 26 224.8407407 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.654511 6.784755 2.077392 30.61852 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 7.5162963 3.7581481 0.87 0.4355 Ca 2 15.5785185 7.7892593 1.80 0.1930 K*Ca 4 124.0659259 31.0164815 7.19 0.0012 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 7.5162963 3.7581481 0.87 0.4355 Ca 2 15.5785185 7.7892593 1.80 0.1930 K*Ca 4 124.0659259 31.0164815 7.19 0.0012
Apéndice B
155
Cuadro 23B. Análisis de varianza de consumo de agua en florero en el día cuatro por tallos de tulipán regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+ Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 107.1851852 13.3981481 1.36 0.2787 Error 18 177.5000000 9.8611111 Total correcto 26 284.6851852 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.376504 9.893407 3.140241 31.74074 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 12.57407407 6.28703704 0.64 0.5401 Ca 2 23.35185185 11.67592593 1.18 0.3288 K*Ca 4 71.25925926 17.81481481 1.81 0.1716 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 12.57407407 6.28703704 0.64 0.5401 Ca 2 23.35185185 11.67592593 1.18 0.3288 K*Ca 4 71.25925926 17.81481481 1.81 0.1716 Cuadro 24B. Análisis de varianza de consumo de agua en florero en el día cinco por tallos de tulipán regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+ Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 338.4629630 42.3078704 2.41 0.0575 Error 18 315.5000000 17.5277778 Total correcto 26 653.9629630 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.517557 14.17413 4.186619 29.53704 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 118.4629630 59.2314815 3.38 0.0567 Ca 2 165.0185185 82.5092593 4.71 0.0227 K*Ca 4 54.9814815 13.7453704 0.78 0.5502 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 118.4629630 59.2314815 3.38 0.0567 Ca 2 165.0185185 82.5092593 4.71 0.0227 K*Ca 4 54.9814815 13.7453704 0.78 0.5502
Apéndice B
156
Cuadro 25B. Análisis de varianza de consumo de agua en florero en el día seis por tallos de tulipán regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+ Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 104.7407407 13.0925926 1.79 0.1443 Error 18 131.3333333 7.2962963 Total correcto 26 236.0740741 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.443677 10.88529 2.701166 24.81481 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 9.85185185 4.92592593 0.68 0.5215 Ca 2 9.40740741 4.70370370 0.64 0.5365 K*Ca 4 85.48148148 21.37037037 2.93 0.0499 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 9.85185185 4.92592593 0.68 0.5215 Ca 2 9.40740741 4.70370370 0.64 0.5365 K*Ca 4 85.48148148 21.37037037 2.93 0.0499 Cuadro 26B. Análisis de varianza de consumo de agua en florero en el día siete por tallos de tulipán regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+ Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 302.0000000 37.7500000 5.82 0.0009 Error 18 116.6666667 6.4814815 Total correcto 26 418.6666667 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.721338 10.36782 2.545875 24.55556 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 60.6666667 30.3333333 4.68 0.0231 Ca 2 0.0000000 0.0000000 0.00 1.0000 K*Ca 4 241.3333333 60.3333333 9.31 0.0003 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 60.6666667 30.3333333 4.68 0.0231 Ca 2 0.0000000 0.0000000 0.00 1.0000 K*Ca 4 241.3333333 60.3333333 9.31 0.0003
Apéndice B
157
Cuadro 27B. Análisis de varianza de consumo de agua en florero en el día ocho por tallos de tulipán regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+ Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 222.0000000 27.7500000 4.03 0.0067 Error 18 124.0000000 6.8888889 Total correcto 26 346.0000000 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.641618 9.373819 2.624669 28.00000 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 36.2222222 18.1111111 2.63 0.0996 Ca 2 26.0000000 13.0000000 1.89 0.1803 K*Ca 4 159.7777778 39.9444444 5.80 0.0035 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 36.2222222 18.1111111 2.63 0.0996 Ca 2 26.0000000 13.0000000 1.89 0.1803 K*Ca 4 159.7777778 39.9444444 5.80 0.0035 Cuadro 28B. Análisis de varianza del contenido inicial de azúcares totales (al corte) en pétalos de tulipán regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+ Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 0.02874112 0.00359264 10.56 <.0001 Error 18 0.00612500 0.00034028 Total correcto 26 0.03486612 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.824328 12.25840 0.018447 0.150481 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 0.00954496 0.00477248 14.03 0.0002 Ca 2 0.00417881 0.00208940 6.14 0.0093 K*Ca 4 0.01501736 0.00375434 11.03 0.0001 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 0.00954496 0.00477248 14.03 0.0002 Ca 2 0.00417881 0.00208940 6.14 0.0093 K*Ca 4 0.01501736 0.00375434 11.03 0.0001
Apéndice B
158
Cuadro 29B. Análisis de varianza del contenido finales de azúcares totales en pétalos de tulipán regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+ Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 0.00295732 0.00036966 2.85 0.0309 Error 18 0.00233422 0.00012968 Total correcto 26 0.00529154 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.558877 19.33389 0.011388 0.058900 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 0.00082611 0.00041305 3.19 0.0654 Ca 2 0.00197156 0.00098578 7.60 0.0040 K*Ca 4 0.00015965 0.00003991 0.31 0.8690 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 0.00082611 0.00041305 3.19 0.0654 Ca 2 0.00197156 0.00098578 7.60 0.0040 K*Ca 4 0.00015965 0.00003991 0.31 0.8690 Cuadro 30B. Análisis de varianza del contenido inicial de clorofila a en hojas de tulipán regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+ Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 6.04903642 0.75612955 2.83 0.0201 Error 27 7.20216165 0.26674673 Total correcto 35 13.25119807 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.456490 14.87519 0.516475 3.472058 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 0.51657668 0.25828834 0.97 0.3925 Ca 2 3.25559269 1.62779634 6.10 0.0065 K*Ca 4 2.27686705 0.56921676 2.13 0.1040 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 0.68245801 0.34122901 1.28 0.2946 Ca 2 2.89172831 1.44586416 5.42 0.0105 K*Ca 4 2.27686705 0.56921676 2.13 0.1040
Apéndice B
159
Cuadro 31B. Análisis de varianza del contenido final de clorofila a en hojas de tulipán regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+ Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 7.58974105 0.94871763 1.55 0.2094 Error 18 11.02848756 0.61269375 Total correcto 26 18.61822861 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.407651 25.25550 0.782748 3.099315 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 4.50128583 2.25064292 3.67 0.0459 Ca 2 0.57977662 0.28988831 0.47 0.6306 K*Ca 4 2.50867860 0.62716965 1.02 0.4218 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 4.83238971 2.41619485 3.94 0.0380 Ca 2 0.60981190 0.30490595 0.50 0.6161 K*Ca 4 2.50867860 0.62716965 1.02 0.4218 Cuadro 32B. Análisis de varianza del contenido inicial de clorofila b en hojas de tulipán regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+ Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 19.65253121 2.45656640 2.01 0.0831 Error 27 32.92006390 1.21926163 Total correcto 35 52.57259511 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.373817 19.28656 1.104202 5.725239 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 2.98141638 1.49070819 1.22 0.3102 Ca 2 12.38977712 6.19488856 5.08 0.0134 K*Ca 4 4.28133771 1.07033443 0.88 0.4902 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 2.26868268 1.13434134 0.93 0.4067 Ca 2 11.22044039 5.61022019 4.60 0.0191 K*Ca 4 4.28133771 1.07033443 0.88 0.4902
Apéndice B
160
Cuadro 33B. Análisis de varianza del contenido final de clorofila b en hojas de tulipán regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+ Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 33.72192574 4.21524072 3.27 0.0097 Error 27 34.77900444 1.28811128 Total correcto 35 68.50093017 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.492284 24.76527 1.134950 4.582828 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 22.73492510 11.36746255 8.82 0.0011 Ca 2 1.41884183 0.70942092 0.55 0.5829 K*Ca 4 9.56815880 2.39203970 1.86 0.1471 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 23.24684112 11.62342056 9.02 0.0010 Ca 2 1.48325819 0.74162910 0.58 0.5690 K*Ca 4 9.56815880 2.39203970 1.86 0.1471 Cuadro 34B. Análisis de varianza del contenido de clorofilas totales iniciales en hojas de tulipán regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+ Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 44.9156610 5.6144576 2.30 0.0505 Error 27 65.9219464 2.4415536 Total correcto 35 110.8376074 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.405238 16.99511 1.562547 9.194100 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 4.38780802 2.19390401 0.90 0.4190 Ca 2 28.22984107 14.11492053 5.78 0.0081 K*Ca 4 12.29801188 3.07450297 1.26 0.3102 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 3.67886948 1.83943474 0.75 0.4804 Ca 2 25.37780171 12.68890085 5.20 0.0123 K*Ca 4 12.29801188 3.07450297 1.26 0.3102
Apéndice B
161
Cuadro 35B. Análisis de varianza del contenido de clorofilas totales finales en hojas de tulipán regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+ Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 84.9489008 10.6186126 3.32 0.0091 Error 27 86.4560937 3.2020775 Total correcto 35 171.4049946 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.495603 23.18724 1.789435 7.717328 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 58.44564074 29.22282037 9.13 0.0009 Ca 2 3.35806233 1.67903116 0.52 0.5978 K*Ca 4 23.14519777 5.78629944 1.81 0.1566 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 59.88029205 29.94014603 9.35 0.0008 Ca 2 3.41170130 1.70585065 0.53 0.5930 K*Ca 4 23.14519777 5.78629944 1.81 0.1566 Cuadro 36B. Análisis de varianza de extracción nutrimental de N en hojas de tulipán regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+ Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 1406.267866 175.783483 1.24 0.3319 Error 18 2549.439405 141.635522 Total correcto 26 3955.707271 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.355504 16.75931 11.90107 71.01172 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 335.3839569 167.6919785 1.18 0.3288 Ca 2 481.1857175 240.5928587 1.70 0.2110 K*Ca 4 589.6981917 147.4245479 1.04 0.4136 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 335.3839569 167.6919785 1.18 0.3288 Ca 2 481.1857175 240.5928587 1.70 0.2110 K*Ca 4 589.6981917 147.4245479 1.04 0.4136
Apéndice B
162
Cuadro 37B. Análisis de varianza de extracción nutrimental de P en hojas de tulipán regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+ Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 21.42225822 2.67778228 1.34 0.2874 Error 18 36.02184476 2.00121360 Total correcto 26 57.44410299 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.372924 18.42204 1.414643 7.679077 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 2.77430871 1.38715436 0.69 0.5129 Ca 2 3.24874804 1.62437402 0.81 0.4597 K*Ca 4 15.39920146 3.84980037 1.92 0.1501 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 2.77430871 1.38715436 0.69 0.5129 Ca 2 3.24874804 1.62437402 0.81 0.4597 K*Ca 4 15.39920146 3.84980037 1.92 0.1501 Cuadro 38B. Análisis de varianza de extracción nutrimental de K en hojas de tulipán regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+ Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 8.18869733 1.02358717 3.53 0.0125 Error 18 5.22336014 0.29018667 Total correcto 26 13.41205747 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.610547 18.32097 0.538690 2.940291 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 3.62163440 1.81081720 6.24 0.0087 Ca 2 0.90007187 0.45003594 1.55 0.2391 K*Ca 4 3.66699106 0.91674776 3.16 0.0393 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 3.62163440 1.81081720 6.24 0.0087 Ca 2 0.90007187 0.45003594 1.55 0.2391 K*Ca 4 3.66699106 0.91674776 3.16 0.0393
Apéndice B
163
Cuadro 39B. Análisis de varianza de extracción nutrimental de Ca en hojas de tulipán regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+ Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 102.4513817 12.8064227 6.18 0.0007 Error 18 37.3032012 2.0724001 Total correcto 26 139.7545829 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.733081 19.04679 1.439583 7.558142 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 21.22690336 10.61345168 5.12 0.0174 Ca 2 0.29666903 0.14833451 0.07 0.9312 K*Ca 4 80.92780934 20.23195233 9.76 0.0002 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 21.22690336 10.61345168 5.12 0.0174 Ca 2 0.29666903 0.14833451 0.07 0.9312 K*Ca 4 80.92780934 20.23195233 9.76 0.0002 Cuadro 40B. Análisis de varianza de extracción nutrimental de Mg en hojas de tulipán regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+ Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 20.84887951 2.60610994 2.53 0.0483 Error 18 18.51065070 1.02836948 Total correcto 26 39.35953021 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.529703 18.46407 1.014086 5.492210 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 2.43012901 1.21506450 1.18 0.3295 Ca 2 0.64132583 0.32066291 0.31 0.7360 K*Ca 4 17.77742467 4.44435617 4.32 0.0126 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 2.43012901 1.21506450 1.18 0.3295 Ca 2 0.64132583 0.32066291 0.31 0.7360 K*Ca 4 17.77742467 4.44435617 4.32 0.0126
Apéndice B
164
Cuadro 41B. Análisis de varianza de extracción nutrimental de Fe en hojas de tulipán regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+ Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 0.01925512 0.00240689 1.98 0.1090 Error 18 0.02187793 0.00121544 Total correcto 26 0.04113305 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.468118 16.75102 0.034863 0.208126 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 0.00172736 0.00086368 0.71 0.5046 Ca 2 0.01403366 0.00701683 5.77 0.0116 K*Ca 4 0.00349411 0.00087353 0.72 0.5902 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 0.00172736 0.00086368 0.71 0.5046 Ca 2 0.01403366 0.00701683 5.77 0.0116 K*Ca 4 0.00349411 0.00087353 0.72 0.5902 Cuadro 42B. Análisis de varianza de extracción nutrimental de Cu en hojas de tulipán regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+ Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 0.00036144 0.00004518 8.61 <.0001 Error 18 0.00009448 0.00000525 Total correcto 26 0.00045593 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.792762 17.36072 0.002291 0.013197 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 0.00021057 0.00010528 20.06 <.0001 Ca 2 0.00004909 0.00002455 4.68 0.0231 K*Ca 4 0.00010178 0.00002544 4.85 0.0079 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 0.00021057 0.00010528 20.06 <.0001 Ca 2 0.00004909 0.00002455 4.68 0.0231 K*Ca 4 0.00010178 0.00002544 4.85 0.0079
Apéndice B
165
Cuadro 43B. Análisis de varianza de extracción nutrimental de Zn en hojas de tulipán regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+ Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 0.02148081 0.00268510 6.23 0.0006 Error 18 0.00776246 0.00043125 Total correcto 26 0.02924327 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.734556 17.29771 0.020767 0.120054 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 0.00458861 0.00229430 5.32 0.0153 Ca 2 0.00598145 0.00299072 6.94 0.0058 K*Ca 4 0.01091076 0.00272769 6.33 0.0023 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 0.00458861 0.00229430 5.32 0.0153 Ca 2 0.00598145 0.00299072 6.94 0.0058 K*Ca 4 0.01091076 0.00272769 6.33 0.0023 Cuadro 44B. Análisis de varianza de extracción nutrimental de Mn en hojas de tulipán regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+ Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 0.00166651 0.00020831 2.57 0.0461 Error 18 0.00146111 0.00008117 Total correcto 26 0.00312762 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.532837 16.73813 0.009010 0.053827 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 0.00044261 0.00022131 2.73 0.0924 Ca 2 0.00043144 0.00021572 2.66 0.0974 K*Ca 4 0.00079246 0.00019811 2.44 0.0843 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 0.00044261 0.00022131 2.73 0.0924 Ca 2 0.00043144 0.00021572 2.66 0.0974 K*Ca 4 0.00079246 0.00019811 2.44 0.0843
Apéndice B
166
Cuadro 45B. Análisis de varianza de extracción nutrimental de B en hojas de tulipán regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+ Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 0.05753128 0.00719141 4.30 0.0048 Error 18 0.03007703 0.00167095 Total correcto 26 0.08760831 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.656688 17.40805 0.040877 0.234818 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 0.00081781 0.00040890 0.24 0.7855 Ca 2 0.02323202 0.01161601 6.95 0.0058 K*Ca 4 0.03348145 0.00837036 5.01 0.0068 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 0.00081781 0.00040890 0.24 0.7855 Ca 2 0.02323202 0.01161601 6.95 0.0058 K*Ca 4 0.03348145 0.00837036 5.01 0.0068 Cuadro 46B. Análisis de varianza de extracción nutrimental de N en tallos de tulipán regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+ Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 1215.014323 151.876790 1.96 0.1119 Error 18 1392.809379 77.378299 Total correcto 26 2607.823702 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.465911 17.68033 8.796494 49.75299 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 301.3003625 150.6501812 1.95 0.1716 Ca 2 364.9962410 182.4981205 2.36 0.1231 K*Ca 4 548.7177199 137.1794300 1.77 0.1783 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 301.3003625 150.6501812 1.95 0.1716 Ca 2 364.9962410 182.4981205 2.36 0.1231 K*Ca 4 548.7177199 137.1794300 1.77 0.1783
Apéndice B
167
Cuadro 47B. Análisis de varianza de extracción nutrimental de P en tallos de tulipán regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+ Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 27.60427851 3.45053481 1.86 0.1310 Error 18 33.42120022 1.85673335 Total correcto 26 61.02547873 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.452340 17.68555 1.362620 7.704706 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 4.35600280 2.17800140 1.17 0.3320 Ca 2 5.25124118 2.62562059 1.41 0.2689 K*Ca 4 17.99703453 4.49925863 2.42 0.0859 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 4.35600280 2.17800140 1.17 0.3320 Ca 2 5.25124118 2.62562059 1.41 0.2689 K*Ca 4 17.99703453 4.49925863 2.42 0.0859 Cuadro 48B. Análisis de varianza de extracción nutrimental de K en tallos de tulipán regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+ Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 1.81926040 0.22740755 2.04 0.0998 Error 18 2.00742316 0.11152351 Total correcto 26 3.82668355 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.475414 17.31750 0.333951 1.928404 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 0.32806747 0.16403373 1.47 0.2561 Ca 2 0.71879897 0.35939949 3.22 0.0636 K*Ca 4 0.77239395 0.19309849 1.73 0.1870 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 0.32806747 0.16403373 1.47 0.2561 Ca 2 0.71879897 0.35939949 3.22 0.0636 K*Ca 4 0.77239395 0.19309849 1.73 0.1870
Apéndice B
168
Cuadro 49B. Análisis de varianza de extracción nutrimental de Ca en tallos de tulipán regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+ Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 14.29349917 1.78668740 3.47 0.0135 Error 18 9.26593884 0.51477438 Total correcto 26 23.55943801 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.606699 17.78965 0.717478 4.033120 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 7.42341000 3.71170500 7.21 0.0050 Ca 2 3.52601724 1.76300862 3.42 0.0549 K*Ca 4 3.34407193 0.83601798 1.62 0.2115 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 7.42341000 3.71170500 7.21 0.0050 Ca 2 3.52601724 1.76300862 3.42 0.0549 K*Ca 4 3.34407193 0.83601798 1.62 0.2115 Cuadro 50B. Análisis de varianza de extracción nutrimental de Mg en tallos de tulipán regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+ Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 12.77634032 1.59704254 2.18 0.0811 Error 18 13.19505803 0.73305878 Total correcto 26 25.97139835 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.491939 17.72546 0.856189 4.830275 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 0.42089496 0.21044748 0.29 0.7538 Ca 2 3.21115573 1.60557786 2.19 0.1408 K*Ca 4 9.14428963 2.28607241 3.12 0.0410 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 0.42089496 0.21044748 0.29 0.7538 Ca 2 3.21115573 1.60557786 2.19 0.1408 K*Ca 4 9.14428963 2.28607241 3.12 0.0410
Apéndice B
169
Cuadro 51B. Análisis de varianza de extracción nutrimental de Fe en tallos de tulipán regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+ Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 0.00710528 0.00088816 4.44 0.0041 Error 18 0.00360097 0.00020005 Total correcto 26 0.01070624 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.663657 17.64482 0.014144 0.080160 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 0.00207490 0.00103745 5.19 0.0167 Ca 2 0.00184329 0.00092164 4.61 0.0242 K*Ca 4 0.00318709 0.00079677 3.98 0.0174 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 0.00207490 0.00103745 5.19 0.0167 Ca 2 0.00184329 0.00092164 4.61 0.0242 K*Ca 4 0.00318709 0.00079677 3.98 0.0174 Cuadro 52B. Análisis de varianza de extracción nutrimental de Cu en tallos de tulipán regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+ Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 0.00037072 0.00004634 12.10 <.0001 Error 18 0.00006893 0.00000383 Total correcto 26 0.00043965 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.843213 19.39092 0.001957 0.010092 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 0.00021873 0.00010936 28.56 <.0001 Ca 2 0.00005397 0.00002698 7.05 0.0055 K*Ca 4 0.00009803 0.00002451 6.40 0.0022 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 0.00021873 0.00010936 28.56 <.0001 Ca 2 0.00005397 0.00002698 7.05 0.0055 K*Ca 4 0.00009803 0.00002451 6.40 0.0022
Apéndice B
170
Cuadro 53B. Análisis de varianza de extracción nutrimental de Zn en tallos de tulipán regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+ Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 0.00636750 0.00079594 4.04 0.0066 Error 18 0.00354404 0.00019689 Total correcto 26 0.00991154 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.642433 18.00185 0.014032 0.077946 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 0.00042801 0.00021401 1.09 0.3584 Ca 2 0.00182486 0.00091243 4.63 0.0238 K*Ca 4 0.00411463 0.00102866 5.22 0.0057 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 0.00042801 0.00021401 1.09 0.3584 Ca 2 0.00182486 0.00091243 4.63 0.0238 K*Ca 4 0.00411463 0.00102866 5.22 0.0057 Cuadro 54B. Análisis de varianza de extracción nutrimental de Mn en tallos de tulipán regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+ Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 0.00026919 0.00003365 4.75 0.0029 Error 18 0.00012739 0.00000708 Total correcto 26 0.00039658 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.678778 18.13063 0.002660 0.014673 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 0.00012762 0.00006381 9.02 0.0019 Ca 2 0.00005245 0.00002623 3.71 0.0449 K*Ca 4 0.00008912 0.00002228 3.15 0.0398 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 0.00012762 0.00006381 9.02 0.0019 Ca 2 0.00005245 0.00002623 3.71 0.0449 K*Ca 4 0.00008912 0.00002228 3.15 0.0398
Apéndice B
171
Cuadro 55B. Análisis de varianza de extracción nutrimental de B en tallos de tulipán regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+ Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 0.07356345 0.00919543 9.74 <.0001 Error 18 0.01698976 0.00094388 Total correcto 26 0.09055321 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.812378 17.57391 0.030723 0.174819 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 0.00794787 0.00397394 4.21 0.0316 Ca 2 0.02846096 0.01423048 15.08 0.0001 K*Ca 4 0.03715462 0.00928865 9.84 0.0002 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 0.00794787 0.00397394 4.21 0.0316 Ca 2 0.02846096 0.01423048 15.08 0.0001 K*Ca 4 0.03715462 0.00928865 9.84 0.0002 Cuadro 56B. Análisis de varianza de extracción nutrimental de N en bulbos de tulipán regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+ Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 13290.39818 1661.29977 1.04 0.4426 Error 18 28709.54965 1594.97498 Total correcto 26 41999.94783 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.316438 33.05464 39.93714 120.8216 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 1325.52258 662.76129 0.42 0.6662 Ca 2 1420.46415 710.23207 0.45 0.6475 K*Ca 4 10544.41145 2636.10286 1.65 0.2046 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 1325.52258 662.76129 0.42 0.6662 Ca 2 1420.46415 710.23207 0.45 0.6475 K*Ca 4 10544.41145 2636.10286 1.65 0.2046
Apéndice B
172
Cuadro 57B. Análisis de varianza de extracción nutrimental de P en bulbos de tulipán regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+ Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 204.764012 25.595501 0.57 0.7926 Error 18 815.202792 45.289044 Total correcto 26 1019.966804 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.200756 29.95923 6.729714 22.46290 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 61.6941288 30.8470644 0.68 0.5186 Ca 2 17.5245701 8.7622850 0.19 0.8258 K*Ca 4 125.5453130 31.3863282 0.69 0.6064 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 61.6941288 30.8470644 0.68 0.5186 Ca 2 17.5245701 8.7622850 0.19 0.8258 K*Ca 4 125.5453130 31.3863282 0.69 0.6064 Cuadro 58B. Análisis de varianza de extracción nutrimental de K en bulbos de tulipán regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+ Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 1467.247452 183.405931 0.50 0.8388 Error 18 6570.692116 365.038451 Total correcto 26 8037.939567 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.182540 29.74263 19.10598 64.23770 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 699.4073692 349.7036846 0.96 0.4024 Ca 2 11.9179034 5.9589517 0.02 0.9838 K*Ca 4 755.9221789 188.9805447 0.52 0.7238 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 699.4073692 349.7036846 0.96 0.4024 Ca 2 11.9179034 5.9589517 0.02 0.9838 K*Ca 4 755.9221789 188.9805447 0.52 0.7238
Apéndice B
173
Cuadro 59B. Análisis de varianza de extracción nutrimental de Ca en bulbos de tulipán regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+ Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 86.1952205 10.7744026 0.81 0.6000 Error 18 238.3123836 13.2395769 Total correcto 26 324.5076042 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.265618 32.96017 3.638623 11.03945 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 45.01469214 22.50734607 1.70 0.2107 Ca 2 9.80752884 4.90376442 0.37 0.6956 K*Ca 4 31.37299954 7.84324989 0.59 0.6725 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 45.01469214 22.50734607 1.70 0.2107 Ca 2 9.80752884 4.90376442 0.37 0.6956 K*Ca 4 31.37299954 7.84324989 0.59 0.6725 Cuadro 60B. Análisis de varianza de extracción nutrimental de Mg en bulbos de tulipán regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+ Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 98.4514509 12.3064314 0.53 0.8215 Error 18 420.8349808 23.3797212 Total correcto 26 519.2864317 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.189590 30.85459 4.835258 15.67111 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 49.71656480 24.85828240 1.06 0.3661 Ca 2 20.89583423 10.44791712 0.45 0.6465 K*Ca 4 27.83905190 6.95976298 0.30 0.8756 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 49.71656480 24.85828240 1.06 0.3661 Ca 2 20.89583423 10.44791712 0.45 0.6465 K*Ca 4 27.83905190 6.95976298 0.30 0.8756
Apéndice B
174
Cuadro 61B. Análisis de varianza de extracción nutrimental de Fe en bulbos de tulipán regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+ Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 16.57645523 2.07205690 4.41 0.0043 Error 18 8.46323828 0.47017990 Total correcto 26 25.03969351 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.662007 33.10352 0.685697 2.071371 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 3.25300407 1.62650204 3.46 0.0535 Ca 2 4.76726023 2.38363012 5.07 0.0179 K*Ca 4 8.55619092 2.13904773 4.55 0.0103 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 3.25300407 1.62650204 3.46 0.0535 Ca 2 4.76726023 2.38363012 5.07 0.0179 K*Ca 4 8.55619092 2.13904773 4.55 0.0103 Cuadro 62B. Análisis de varianza de extracción nutrimental de Cu en bulbos de tulipán regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+ Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 0.00547479 0.00068435 2.05 0.0988 Error 18 0.00602033 0.00033446 Total correcto 26 0.01149512 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.476271 30.96234 0.018288 0.059066 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 0.00283460 0.00141730 4.24 0.0310 Ca 2 0.00132747 0.00066373 1.98 0.1664 K*Ca 4 0.00131272 0.00032818 0.98 0.4424 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 0.00283460 0.00141730 4.24 0.0310 Ca 2 0.00132747 0.00066373 1.98 0.1664 K*Ca 4 0.00131272 0.00032818 0.98 0.4424
Apéndice B
175
Cuadro 63B. Análisis de varianza de extracción nutrimental de Zn en bulbos de tulipán regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+ Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 0.04652454 0.00581557 0.59 0.7774 Error 18 0.17890711 0.00993928 Total correcto 26 0.22543165 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.206380 30.32225 0.099696 0.328788 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 0.00698992 0.00349496 0.35 0.7083 Ca 2 0.00930061 0.00465031 0.47 0.6337 K*Ca 4 0.03023400 0.00755850 0.76 0.5644 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 0.00698992 0.00349496 0.35 0.7083 Ca 2 0.00930061 0.00465031 0.47 0.6337 K*Ca 4 0.03023400 0.00755850 0.76 0.5644 Cuadro 64B. Análisis de varianza de extracción nutrimental de Mn en bulbos de tulipán regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+ Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 0.01544206 0.00193026 1.00 0.4688 Error 18 0.03473464 0.00192970 Total correcto 26 0.05017669 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.307754 32.78171 0.043928 0.134003 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 0.01024629 0.00512315 2.65 0.0976 Ca 2 0.00392379 0.00196190 1.02 0.3817 K*Ca 4 0.00127197 0.00031799 0.16 0.9535 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 0.01024629 0.00512315 2.65 0.0976 Ca 2 0.00392379 0.00196190 1.02 0.3817 K*Ca 4 0.00127197 0.00031799 0.16 0.9535
Apéndice B
176
Cuadro 65B. Análisis de varianza de extracción nutrimental de B en bulbos de tulipán regado con soluciones nutritivas con distintas proporciones K+/Ca2+ Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F-Valor Pr > F Modelo 8 0.78899814 0.09862477 2.28 0.0701 Error 18 0.77946293 0.04330350 Total correcto 26 1.56846107 R-cuadrado Coef Var Raiz MSE Media 0.503040 29.81473 0.208095 0.697960 Cuadrado de Fuente DF Tipo I SS la media F-Valor Pr > F K 2 0.44239657 0.22119829 5.11 0.0175 Ca 2 0.14163997 0.07081999 1.64 0.2225 K*Ca 4 0.20496159 0.05124040 1.18 0.3515 Cuadrado de Fuente DF Tipo III SS la media F-Valor Pr > F K 2 0.44239657 0.22119829 5.11 0.0175 Ca 2 0.14163997 0.07081999 1.64 0.2225 K*Ca 4 0.20496159 0.05124040 1.18 0.3515