Protozoos parásitos transmitidos por aguas o alimentos importantes para salud humana

Parásitos Ruta de TransmisiónMicrospora

Enterocytozoon bieneusiEncephalitozoon intestinalisPleistophora spp.

Alimentos, agua Contaminación con esporas

ProtozoaCryptosporidium parvumGiardia duodenalisToxoplasma gondiiBalantidium coliBlastocystis hominis

Alimentos, agua Contaminación con esporas o quistes

MICROSPORIDIOS

Eucariotas, unicelulares

Parásitos intracelulares obligados

Amplia distribución en la naturaleza (invertebrados y vertebrados)

Patógenos oportunistas (inmunodeprimidos, SIDA)

Aumento de su presencia en inmunocompetentes

MICROSPORIDIOS 1200 especies, 143 géneros

8 géneros producen infección en el hombre:

Enterocytozoon (E. bieneusi)

Encephalitozoon (E. intestinalis, E. cuniculi, E. hellem)

Nosema

Vittaforma

Pleistophora

Trachipleistophora

Anncaliia (Originalmente denominada Brachiola)

Microsporidium

+ comunes

Microsporidios en humanosEspecies

Tamaño de espora (µm)

Lugar de Infección

Enterocytozoon bieneusi 1,1-1,6 x 0,7-1,0Intestino delgado, vesícula biliar, hígado, epitelio pancreático,

epitelio bronquial, diseminado

Encephalitozoon hellem 2,0-2,5 x 0-1,5Diseminado (epitelio conjuntivo y corneal, epitelio nasal, mucosa

traqueo-bronquial, tubo renal, mucosa uretral y vesícula urinaria, abscesos prostáticos)

Encephalitozoon cuniculi 2,5-3,2 x 1,2-1,6 Diseminado (epitelio bronquial , lengua, peritonitis)

Encephalitozoon intestinalis 1,2 x 2,2 Intestino delgado, diseminado (hígado)

Nosema connori 4,0-4,5 x 2,0-2,5 Diseminado (Todos los órganos)

Nosema ocularum 3,7 x 1,0 Estroma ocular

Pleistophora spp. 3,2-3,4 x 2,8 Músculo esquelético

Microsporidium ceylonis 3,5 x 1,5 Estroma ocular

Microsporidium africanum 4,5 x 2,5 Estroma ocular

Anncaliia vesicularum (originalmenteBrachiola vesicularum)

2,5 x 2,0 Estroma ocular, músculo esquelético

Vittaforma corneae 3,3 x 1,4 Estroma ocular

Trachiopleistophora antropophtera 3,7 x 2 Cerebro, corazón, riñón

Trachiopleistophora hominis 4 x 2,4 Músculo esquelético, senos nasales

EspeciesDescubrimiento Nº de casos confirmados

Hospedador animalHospedador Año

Immuno-deprimidos

Immuno-competente

Enterocytozoon bieneusi Humano 1985 >1000 <20 Vertebrados

Encephalitozoon hellem Humano 1991 <50 3 Pájaros

Encephalitozoon intestinalis (originalmente Septataintestinalis)

Humano 1993 <200 2 Mamíferos

Encephalitozoon cuniculi Conejo 1923 <20 — Mamíferos

Vittaforma corneae (originalmente Nosemacorneum)

Humano 1990 1 3 Desconocido

Vittaforma-like Humano 2003 22 3 Desconocido

Pleistophora ronneafiei (originalmente Pleistophorasp.)

Humano 1985 1 — Desconocido

Trachipleistophora hominis Humano 1996 1 1 Desconocido

Trachipleistophora anthropophthera Humano 1998 3 — Desconocido

Brachiola algerae (originalmente Nosema algerae) Mosquito 1970 1 1 Mosquito

Brachiola connori (originalmente Nosema connori) Humano 1974 1 — Desconocido

Brachiola vesicularum Humano 1998 1 — Desconocido

Nosema ocularum Humano 1991 — 1 Desconocido

Microsporidium ceylonensis Humano 1973 1 (Desconocido) Desconocido

Microsporidium africanum Humano 1981 1 (Desconocido) Desconocido

Organización Celular

2 tipos de organización:

Forma vegetativa:

Carece de mitocondrias, peroxisomas y centriolos

Forma de resistencia:

Gran resistencia a las condiciones adversas

Viables durante largos períodos en el medio ambiente

Forma de resistencia:

Espora

Exospora

Disco de anclaje

Polaroblasto (anterior)

Saco polar

Polaroblasto (posterior)

Ribosoma

Retículo Endoplasmático

Rugoso

Núcleo

Filamento polar

Vacuola posterior

Ciclo Biológico Fase infectiva:

Ingestión de esporas por un

hospedador

Extrusión del tubo polar

Migración del esporoplasma

Fase de multiplicación vegetativa:

Merogonia o esquizogonia

Se puede producir diseminación

Fase de esporogonia:

Esporogonia

Formación de esporas:

Dispersas en el citoplasma

Vacuolas parasitóforas

Lesiones producida por Glugea anomala

EPIDEMIOLOGÍA

Distribución mundial (países desarrollados y subdesarrollados)

Mayor frecuencia en inmunodeprimidos.

7 - 30% diarreas de origen desconocido en VIH+

Frecuencia alta de anticuerpos en la población: presencia deinfecciones latentes o transitorias

PROFILAXIS Y TRATAMIENTO

No existe un protocolo efectivo de control

Recomendaciones: Evitar riesgo de transmisión persona–persona (ruta: fecal-oral; oral-oral)

Ingestión alimentos contaminados: con heces o alimentos crudos parasitados

Higiene personal

Beber agua embotellada

Precaución con pacientes que padecen microsporidiosis respiratoria

Prevención de infecciones oculares

Reservorios animales: domésticos y salvajes

Albendazol: Microsporidiosis intestinales Microsporidiosis diseminadas

DIAGNÓSTICO

Pequeño tamaño: difícil diagnóstico

Microscopía óptica

Tinciones:

Técnicas de fluorescencia: calco-flúor, uvitex 2B,… Tricrómica de Weber modificada Gram-Chromotrope

DIAGNÓSTICO

DIAGNÓSTICO

Inmunoensayos:

Inmunofluorescencia

Indirecta Directa

ELISA

Técnicas Moleculares

Enterocytozoon bieneusi (microsporidia) in clinical samples from immunocompetentindividuals in Tenerife, Canary Islands, Spain

SummaryMicrosporidia are newly emerging pathogens of humans and animals, with Enterocytozoonbieneusi being the most common causal agent in human microsporidiosis. To determinethe presence of E. bieneusi, 273 clinical samples (40 urine, 156 stools, 37 sputum, 9bronchial aspirates, 5 bronchial washes and 26 pleural fluids) from immunocompetentpatients, mainly suffering diarrhoea or pneumonia, in Tenerife, Canary Islands, Spain wereanalysed using light microscopy after staining with Weber's chromotrope and byPCR/hybridisation with a specific probe designed to increase the sensitivity of theidentification. In this study, detection of E. bieneusi after PCR/hybridisation is reported in18 (11.54%) of 156 stool samples, 1 (2.5%) of 40 urine samples and 6 (16.22%) of 37sputum samples. To our knowledge, these are the first reports of E. bieneusi in thissubtropical region, showing the increased importance of these parasites as emergingpathogens worldwide.