prevalencia e identificación de hongos en cultivos ... · prevalencia e identificación de hongos...
TRANSCRIPT
UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR
FACULTAD DE CIENCIAS MÉDICAS
CARRERA DE LABORATORIO CLÍNICO E HISTOTECNOLÓGICO
Prevalencia e identificación de hongos en cultivos micóticos de uñas de pies
en pacientes del Hospital Quito N°1 Policía Nacional durante el periodo
septiembre 2016-septiembre 2017
Proyecto de fin de carrera presentado previo a la obtención del Grado Académico de
Licenciada en Laboratorio Clínico e Histotecnológico
Autor: Quisupangui Lema Marcia Ximena
Tutor: Dr. Tapia Calvopiña Milton Patricio
Quito 2018
ii
DERECHOS DE AUTOR
Yo, QUISUPANGUI LEMA MARCIA XIMENA, en calidad de autora del trabajo de
investigación: “Prevalencia e identificación de hongos en cultivos micóticos de uñas de
pies en pacientes del Hospital Quito N°1 Policía Nacional durante el periodo septiembre
2016-septiembre 2017” autorizo a la Universidad Central del Ecuador a hacer uso del
contenido total o parcial que me pertenece, con fines estrictamente académicos o de
investigación.
Los derechos que como autora me corresponden, con excepción de la presente
autorización, seguirán vigentes a mi favor, de conformidad con lo establecido en los
artículos 5, 6, 8; 19 y demás pertinentes de la Ley de Propiedad Intelectual y su
Reglamento.
También, autorizo a la Universidad Central del Ecuador a realizar la digitalización y
publicación de este trabajo de investigación en el repositorio virtual, de conformidad a
lo dispuesto en el Art. 144 de la Ley Orgánica de Educación Superior.
Firma:
QUISUPANGUI LEMA MARCIA XIMENA
C.I.: 172358610-1
iii
APROBACIÓN DEL TRABAJO DE TITULACIÓN POR PARTE DEL TUTOR
Yo, Dr. Milton Patricio Tapia Calvopiña , en calidad de Tutor del Trabajo de Titulación,
modalidad Proyecto de Investigación, elaborado por la señorita QUISUPANGUI
LEMA MARCIA XIMENA; cuyo título es: “Prevalencia e identificación de hongos en
cultivos micóticos de uñas de pies en pacientes del Hospital Quito N°1 Policía Nacional
durante el periodo septiembre 2016-septiembre 2017” previo a la obtención de Grado
de Licenciada en Laboratorio Clínico e Histotecnológico; considero que el mismo reúne
los requisitos y méritos necesarios en el campo metodológico y en el campo
epistemológico, para ser sometido a la evaluación por parte del tribunal examinador que
se designe, por lo que le APRUEBO, a fin de que el trabajo investigativo sea habilitado
para continuar con el proceso de titulación determinado por la Universidad Central del
Ecuador.
En la ciudad de Quito, a los 28 días del mes de marzo del 2018.
Dr. Milton Patricio Tapia Calvopiña
DOCENTE-TUTOR
C.I.:170445980-7
iv
APROBACIÓN DE LA PRESENTACIÓN ORAL/TRIBUNAL
El Tribunal constituido por: Lcda. Eliana Champutiz, Dr. Patricio Muñoz, MSc. Cristina
Toscano. Luego de receptar la presentación oral de trabajo de titulación previo a la
obtención del título de Licenciada en Laboratorio Clínico e Histotecnológico presentado
por la señorita: Quisupangui Lema Marcia Ximena.
Con el título:
“PREVALENCIA E IDENTIFICACIÓN DE HONGOS EN CULTIVOS
MICÓTICOS DE UÑAS DE PIES EN PACIENTES DEL HOSPITAL
QUITO N°1 POLICÍA NACIONAL DURANTE EL PERIODO
SEPTIEMBRE 2016-SEPTIEMBRE 2017”
Emite el siguiente veredicto:
Fecha: 12 de junio de 2018
Para constancia de lo actuado firman:
Nombre Apellido Calificación Firma
Presidente: Lcda. Eliana Champutiz
Vocal 1: Dr. Patricio Muñoz
Vocal 2: MSc. Cristina Toscano
v
DEDICATORIA
A mis padres, mamita por ser mi mejor amiga y papito por siempre brindarme tu apoyo
incondicional, ustedes han sido pilar fundamental durante toda mi vida, mis hermanas
Lisbeth y Evelin quienes siempre han estado a mi pendiente.
Mi esposo Alex, tía Elena, suegros, amigas de mi adolescencia y amigos que formaron
parte de mi vida universitaria.
Especialmente con todo el amor del mundo a mi hija Adriana Monserrath quien desde
que llego a mi vida con su ternura ha alegrado mis días y por quien he aprendido a ser
fuerte y salir adelante. Te amo muñequita.
vi
AGRADECIMIENTO
A Dios por la vida y salud que me ha brindado, a mis padres por todos los valores
inculcados y su apoyo incondicional durante toda mi trayectoria.
A los docentes de mi carrera, quienes supieron formarme profesionalmente.
Al Hospital Quito N°1 Policía Nacional, especialmente al área de Laboratorio Clínico y
a quienes conforman la misma ya que me abrieron las puertas y me vieron formarme
durante toda esta trayectoria universitaria; además me brindaron la autorización y apoyo
para la realización de este presente trabajo.
Al Dr. Milton Tapia quien con mucha dedicación y paciencia me guio durante la
elaboración de mi proyecto de investigación.
vii
CONTENIDODERECHOS DE AUTOR............................................................................................................. ii
APROBACIÓN DEL TRABAJO DE TITULACIÓN POR PARTE DEL TUTOR ................... iii
APROBACIÓN DE LA PRESENTACIÓN ORAL/TRIBUNAL ................................................iv
DEDICATORIA ........................................................................................................................... v
AGRADECIMIENTO...................................................................................................................vi
LISTA DE TABLAS..................................................................................................................... x
LISTA DE FIGURAS ...................................................................................................................xi
LISTA DE ANEXOS ...................................................................................................................xii
RESUMEN..................................................................................................................................xiii
ABSTRACT ................................................................................................................................xiv
INTRODUCCIÓN ........................................................................................................................ 1
CAPÍTULO I................................................................................................................................. 3
1. EL PROBLEMA ................................................................................................................... 3
1.1. PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA...................................................................... 3
1.2. FORMULACIÓN DEL PROBLEMA .......................................................................... 4
1.3. PREGUNTAS DIRECTRICES..................................................................................... 4
1.4. OBJETIVOS ................................................................................................................. 5
1.4.1. Objetivo general .................................................................................................... 5
1.4.2. Objetivos específicos............................................................................................. 5
1.5. JUSTIFICACIÓN E IMPORTANCIA ......................................................................... 6
CAPÍTULO II ............................................................................................................................... 8
2. MARCO TEÓRICO .............................................................................................................. 8
2.1. FUNDAMENTACIÓN TEÓRICA............................................................................... 8
2.1.1. UNIDAD UNGUEAL ........................................................................................... 8
2.1.1.1. Anatomía ....................................................................................................... 8
2.1.1.2. Histología ...................................................................................................... 8
2.1.2. HONGOS .............................................................................................................. 9
2.1.2.1. Definición...................................................................................................... 9
2.1.2.2. Características ............................................................................................... 9
2.1.2.3. Estructura ...................................................................................................... 9
2.1.2.4. Clasificación................................................................................................ 11
2.1.2.5. Reproducción .............................................................................................. 11
2.1.2.5.1. Reproducción teleomórfica (Sexuada) ..................................................... 12
2.1.2.5.2. Reproducción anamórfica (asexuada) ...................................................... 12
viii
2.1.3. MICOSIS............................................................................................................. 13
2.1.3.1. Micosis Superficial...................................................................................... 14
2.1.3.2. Micosis Subcutánea..................................................................................... 15
2.1.3.3. Micosis Sistémica........................................................................................ 15
2.1.3.4. Micosis Oportunistas................................................................................... 15
2.1.4. ONICOMICOSIS ................................................................................................ 16
2.1.4.1. Agente causal .............................................................................................. 16
2.1.4.1.1. Dermatofitos............................................................................................. 16
2.1.4.1.2. Levaduras ................................................................................................. 17
2.1.4.1.3. Hongos miceliales no dermatofitos .......................................................... 17
2.1.4.2. Epidemiologia ............................................................................................. 18
2.1.4.3. Cuadro clínico ............................................................................................. 19
2.1.4.4. Formas clínicas............................................................................................ 19
2.1.4.4.1. OM subungueal distal y lateral (OSDL):.................................................. 20
2.1.4.4.2. OM proximal subungueal (OSP):............................................................. 20
2.1.4.4.3. OM superficial blanca: ............................................................................. 21
2.1.4.4.4. OM con distrofia total: ............................................................................. 21
2.1.4.4.5. OM candidiásica:...................................................................................... 22
2.1.4.5. Tratamiento ................................................................................................. 23
2.1.5. DIAGNÓSTICO DE ONICOMICOSIS ............................................................. 25
2.1.5.1. Diagnóstico Clínico..................................................................................... 25
2.1.5.2. Diagnóstico laboratorial .............................................................................. 25
2.1.5.2.1. Métodos microbiológicos ......................................................................... 26
2.1.5.2.2. Métodos histopatológicos......................................................................... 31
2.1.5.2.3. Métodos inmunológicos ........................................................................... 32
2.1.5.2.4. Métodos moleculares................................................................................ 33
2.2. FUNDAMENTACIÓN LEGAL ................................................................................. 34
CAPITULO III ............................................................................................................................ 36
3. METODOLOGÍA ............................................................................................................... 36
3.1. DISEÑO DE LA INVESTIGACIÓN.......................................................................... 36
3.2. POBLACIÓN Y MUESTRA ...................................................................................... 36
3.2.1. Criterios de inclusión .......................................................................................... 36
3.3. DEFINICIÓN DE VARIABLES ................................................................................ 36
3.4. CARACTERIZACIÓN DE LAS VARIABLES ......................................................... 37
ix
3.5. ASPECTOS BIOETICOS DE LA INVESTIGACION EN SERES HUMANOS ...... 38
3.6. TÉCNICAS E INSTRUMENTOS DE RECOLECCIÓN DE DATOS. ..................... 39
3.7. TÉCNICAS PARA EL PROCESAMIENTO DE DATOS Y ANÁLISIS DERESULTADOS....................................................................................................................... 39
CAPITULO IV............................................................................................................................ 40
4.1. RESULTADOS, ANÁLISIS E INTERPRETACIÓN DE DATOS................................ 40
CAPITULO V ............................................................................................................................. 46
5.1. DISCUSIÓN ................................................................................................................... 46
CAPITULO VI............................................................................................................................ 49
6.1. CONCLUSIONES ............................................................................................................... 49
6.2. RECOMENDACIONES ...................................................................................................... 50
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS ........................................................................................ 52
ANEXOS..................................................................................................................................... 56
x
LISTA DE TABLAS
Tabla 1: Clasificación de las Micosis............................................................................ 13
Tabla 2: Tratamiento para onicomicosis ....................................................................... 23
Tabla 3: Métodos de diagnóstico micológico laboratorial ............................................ 25
Tabla 4: Prevalencia de hongos en cultivos micóticos de uñas de pies en pacientes del
Hospital Quito N ° 1 Policía Nacional durante el periodo septiembre 2016-septiembre
2017. ............................................................................................................................... 40
Tabla 5:Frecuencia del agente etiológico; dermatofitos, mohos y levaduras en
Onicomicosis en uñas de pie .......................................................................................... 41
Tabla 6: Especies que producen Onicomicosis en uñas de los pies .............................. 42
Tabla 7: Rango de edad de los pacientes con Onicomicosis en uñas de pies................ 44
Tabla 8: Género que presenta Onicomicosis en uñas de pies........................................ 45
xi
LISTA DE FIGURAS
Figura 1: Estructura de la unidad ungueal....................................................................... 8
Figura 2: Estructura celular fúngica .............................................................................. 10
Figura 3: Estructura morfológica fúngica ..................................................................... 10
Figura 4: Clasificación de los hongos ........................................................................... 11
Figura 5: Reproducción de los hongos.......................................................................... 12
Figura 6:OM subungueal distal y lateral ....................................................................... 20
Figura 7: OM subungueal proximal .............................................................................. 21
Figura 8: OM superficial blanca ................................................................................... 21
Figura 9: OM con distrofia total.................................................................................... 22
Figura 10: OM candidiásica .......................................................................................... 23
Figura 11: Raspado de uñas .......................................................................................... 27
Figura 12: KOH positivo............................................................................................... 28
Figura 13: Técnica para la identificación de hongos..................................................... 30
Figura 14: Prevalencia de hongos en cultivos micóticos de uñas de pies en pacientes
del Hospital Quito N ° 1 Policía Nacional durante el periodo septiembre 2016-
septiembre 2017.............................................................................................................. 40
Figura 15: Frecuencia del agente etiológico; dermatofitos, mohos y levaduras en
Onicomicosis en uñas de pies......................................................................................... 41
Figura 16: Especies que producen Onicomicosis en uñas de los pies........................... 43
Figura 17: Rango de edad de los pacientes con Onicomicosis en uñas de pies ............ 44
Figura 18: Género que presenta Onicomicosis en uñas de pies. ................................... 45
xii
LISTA DE ANEXOS
Anexo 1:Oficio de aprobación del Hospital ................................................................... 56
Anexo 2: Hoja de recolección de datos.......................................................................... 58
Anexo 3: Cronograma de actividades ............................................................................ 59
Anexo 4: Medios de cultivo para los hongos ................................................................. 60
Anexo 5: Características de los dermatofitos aislados con frecuencia en los laboratorios
clínicos............................................................................................................................ 61
Anexo 6: Agentes etiológicos de micosis ...................................................................... 63
xiii
“Prevalencia e identificación de hongos en cultivos micóticos de uñas de pies en
pacientes del Hospital Quito N°1 Policía Nacional durante el periodo septiembre
2016-septiembre 2017”
Autor: Quisupangui Lema Marcia Ximena
Tutor: Dr. Tapia Calvopiña Milton Patricio
RESUMENIntroducción: Las micosis son infecciones comunes en el ser humano, afectando
principalmente a pelo, piel y uñas. La Onicomicosis es un problema de salud
relacionado a infecciones causada por hongos que afectan a las uñas, siendo los
dermatofitos, levaduras y hongos miceliales no dermatofitos los hongos causantes de la
misma. En la actualidad, la especie Trichophyton es uno de los principales responsables
de causar infección micótica en las uñas de pies. Objetivo: Determinar la prevalencia
de hongos en cultivos micóticos de uñas de pies en pacientes del Hospital Quito N ° 1
Policía Nacional durante el periodo septiembre 2016-septiembre 2017. Metodología: Se
realizó un estudio de tipo descriptivo y de corte transversal. El presente estudio contó
con un total de 267 muestras de pacientes que se realizaron un cultivo micótico de uñas
de pies, cuyo reporte fue recolectado del sistema ENTERPRISE del laboratorio clínico
del Hospital Quito N°1 Policía Nacional, así como de un cuaderno de trabajo del área de
Microbiología. Resultados: Se encontró que 127 pacientes (47,6%) presentaron una
infección micótica en uñas de pies, siendo el sexo femenino mayor afectado; mientras
que el agente etiológico principal causante de la infección fueron los Dermatofitos;
dentro del cual se destacó el hongo Trichophyton verrucosum.
PALABRAS CLAVES:
HONGOS/ CULTIVO/ ONICOMICOSIS/ DERMATOFITOS/ LEVADURAS
xiv
“Prevalence and identification of fungi in mycotic cultures of toenails in patients of
Hospital Quito No. 1 Policía Nacional during the period September 2016-
September 2017”
Author: Marcia Ximena Quisupangui Lema
Tutor: Dr. Milton Tapia
ABSTRACTIntroduction: Mycoses are common infections in humans, mainly affecting hair, skin
and nails. Onychomycosis is a health problem related to infections caused by fungi that
affect the nails, being the dermatophytes, yeasts and mycelial fungi not dermatophytes
the fungi that cause it. Currently, the Trichophyton species is one of the main
responsible for causing fungal infection in the toenails. Objective: To determine the
prevalence of fungi in mycotic cultures of toenails in patients of the Hospital Quito No.
1 Policía Nacional during the period September 2016-September 2017. Methodology:
A descriptive and cross-sectional study was carried out. The present study had a total of
267 samples of patients who underwent a fungal culture of toenails, whose report was
collected from the ENTERPRISE system of the clinical laboratory of Hospital Quito
No. 1 Policía Nacional, as well as a work notebook of the Microbiology area. Results:
Of 267 samples studied, 127 were positive for mycotic culture of toenails, of which a
greater affection toward the female gender was evidenced, affecting mainly the adult
age; while the main etiologic agent causing the infection were Dermatophytes; within
which the fungus Trichophyton verrucosum stood out.
KEYWORDS:
FUNGI / CULTIVATION / ONICOMYCOSIS / DERMATOPHYTES / YEASTS
1
INTRODUCCIÓN
Los hongos son un grupo de organismos presentes en la naturaleza, se calcula que existe
alrededor de 200 000 especies, pero se cree que más de un millón y medio viven en los
medios más variados y sólo alrededor de 400 son patógenos para mamíferos (1).
Algunos de estos organismos producen enfermedades en el ser humano, siendo las más
comunes las micosis superficiales que afectan el pelo, piel y uñas. En ocasiones también
originan enfermedades sistémicas que pueden ser mortales.
Este estudio pretende conocer la prevalencia de infecciones en uñas de pies producidas
por hongos y la identificación de cada uno de estos microorganismos.
En primera instancia se debe conocer que la infección de uñas de pies producidas por
hongos se conoce como Onicomicosis. La Onicomicosis es la alteración producida por
la invasión de hongos patógenos o saprofitos en la estructura ungueal de manos y/o pies
(2). Los agentes productores de Onicomicosis pueden agruparse en tres grandes grupos:
Dermatofitos, levaduras y hongos miceliales no dermatofitos (3).
La onicomicosis se presenta en cualquier etapa de la vida, conviven en el entorno sin
producir molestia alguna; hasta que ciertos factores de riesgo pueden llegar a desarrollar
infección, entre estos tenemos factores ambientales: humedad en el pie como sucede en
los atletas, el calor, calzado inadecuado; otros factores individuales como la diabetes,
edad; ya que con el paso del tiempo se acumula más cantidad de hongos que colonizan
el pie, familiares con antecedentes de onicomicosis, y pacientes inmunodeprimidos (4).
Todo aquello altera la estructura de la uña lo que ocasiona sobre todo el cambio de color
a blanquecino o amarillento, además la textura también cambia presentando surcos en la
2
uña. Si la onicomicosis está más avanzada produce dolor y un olor desagradable y si no
se trata a tiempo la infección se vuelve crónica.
Esta investigación busca la prevalencia de hongos en uñas de pies, enfermedad conocida
como Onicomicosis, mediante la revisión de resultados de cultivos micóticos de
pacientes que se realizaron el respectivo examen en el Laboratorio Clínico del Hospital
Quito Nº 1 Policía Nacional durante septiembre 2016 – septiembre 2017, dichos
resultados se encuentran en el sistema Enterprise, así como en un cuaderno de trabajo
del área de Microbiología del Laboratorio Clínico mencionado.
3
CAPÍTULO I
1. EL PROBLEMA
1.1.PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA
La prevalencia de onicomicosis varía según la población que se estudia y el método de
diagnóstico empleado. Se observa en la práctica laboratorial que las infecciones
micóticas en uñas de pies representan un problema de salud frecuente de consulta
médica especialmente en el Hospital Quito N° 1 Policía Nacional.
La Onicomicosis ocurre debido a que los pies están expuestos a ambientes húmedos y
cálidos favoreciendo a que se desarrolle una infección por hongos, debido a que estos se
alimentan de la queratina que es la proteína principal de las uñas, causando una
sobreproducción de queratina en las uñas lo que hace que se vuelvan más gruesas y que
se separen de su lecho (3).
Se conoce que los principales hongos causantes de infecciones de las uñas de pies son
los dermatofitos y levaduras. Siendo las levaduras el agente causal principal de
infección en uñas de manos mientras que los dermatofitos son causantes principales en
onicomicosis en uñas de pies (5). Según el estudio realizado en La Plata, Argentina.
Nuestro país cuenta con variedad de climas, existiendo diferentes datos de la
prevalencia de onicomicosis en uñas de pies, pero del agente causal más frecuente se ha
observado que son los dermatofitos del género Trichophyton (6).
El conocimiento de las lesiones y el tipo de agente etiológico son necesarios para dar un
tratamiento y disminuir las recurrencias de la infección.
4
1.2.FORMULACIÓN DEL PROBLEMA
¿Cuál es la prevalencia de hongos en cultivos micóticos de uñas de pies en pacientes del
Hospital Quito N ° 1 Policía Nacional durante el periodo septiembre 2016-septiembre
2017?
Esta pregunta tiene como finalidad conocer la prevalencia de microorganismos en
cultivos micóticos de uñas de pies en pacientes del Hospital Quito N°1 Policía Nacional
durante el periodo septiembre 2016-septiembre 2017.
1.3.PREGUNTAS DIRECTRICES
1. ¿Cuál es la frecuencia del agente etiológico; dermatofitos, mohos y levaduras en
onicomicosis en uñas de pies?
2. ¿Cuál es la especie que produce infección micótica en uñas de los pies?
3. ¿Cuál es el rango de edad de los pacientes con onicomicosis en uñas de pies?
4. ¿Cuál género presenta onicomicosis en uñas de pies?
5
1.4.OBJETIVOS
1.4.1. Objetivo general
Determinar la prevalencia de hongos en cultivos micóticos de uñas de pies en pacientes
del Hospital Quito N ° 1 Policía Nacional durante el periodo septiembre 2016-
septiembre 2017.
1.4.2. Objetivos específicos
1. Determinar la frecuencia del agente etiológico; dermatofitos, mohos y levaduras en
onicomicosis en uñas de pies
2. Identificar la especie que produce infección micótica en uñas de los pies.
3. Establecer el rango de edad de los pacientes con onicomicosis en uñas de pies.
4. Analizar por género la presencia de onicomicosis en uñas de pies.
6
1.5.JUSTIFICACIÓN E IMPORTANCIA
La realización de esta investigación tiene por propósito en cultivos micóticos de uñas de
pies, conocer la prevalencia de hongos en pacientes del Hospital Quito N° 1 Policía
Nacional durante el periodo septiembre 2016-septiembre 2017, debido a que la
onicomicosis es un problema de salud que suele presentarse a lo largo de la vida y ser
motivo de consulta médica por las molestias que causa. También debido a la
importancia epidemiológica que se impartirá para contribuir a tomar las medidas
terapéuticas adecuadas y disponibles.
En las últimas décadas, se ha observado una mayor prevalencia de Onicomicosis debido
a varios factores como edad, el uso de terapias inmunosupresoras, exposición a los
agentes fúngicos e incremento en la realización de actividades deportivas asociadas al
uso de calzados inadecuados que producen microtraumatismos (7).
La Onicomicosis es la patología más frecuente en uñas, se estima que afecta del 2 al 18
% de la población mundial. Puede llegar hasta 48% en adultos mayores de 70 años de
edad (8). De los agentes etiológicos: dermatofitos, mohos y levaduras, el principal
causante de la infección a nivel ungueal son los Dermatofitos.
En el estudio realizado en el servicio de Dermatología del Hospital Italiano de Buenos
Aires en el año 2014 se encontró un 92% de prevalencia de onicomicosis en las uñas de
pies, siendo los Dermatofitos el principal causante (4).
También en el Departamento de Microbiología del instituto Medico La Floresta en
Venezuela 2012-2016, se encontró una prevalencia del 27,1 % de Onicomicosis tanto en
manos como en pies, siendo los hongos filamentosos no dermatofitos causantes del 14,
58% de la infección (9).
7
En nuestro país en el estudio realizado desde el año 2013-2015 en pacientes de la
consulta externa del departamento de Dermatología del Hospital San Francisco de la
ciudad de Quito se encontró una prevalencia del 35, 1% de Onicomicosis en uñas de los
pies siendo el principal agente etiológico Trichophyton mentagrophytes (6).
El método convencional de diagnóstico de Onicomicosis a partir de las muestras
clínicas, consiste en la observación rápida de estructuras fúngicas mediante microscopía
directa, luego del tratamiento con KOH (hidróxido de potasio) al 10-20%. Este método
carece de especificidad, por lo que se requiere la confirmación de la especie infectante
mediante la inoculación de la muestra en agar inhibidor (de mohos) o el agar inclinado
de Sabouraud que contiene cicloheximida y cloranfenicol para suprimir la proliferación
de mohos y bacterias y se incuba durante una a tres semanas a temperatura ambiente
(10). La identificación de la especie se realiza en base a las características de la colonia
y la morfología microscópica.
Los cultivos realizados durante el periodo de esta investigación fueron sembrados en el
medio de Agar glucosado de Sabouraud por 3 semanas para luego de este tiempo
realizar su identificación.
Conociendo la prevalencia se puede implementar mecanismos de diagnósticos más
efectivos y rápidos, para evitar el riesgo de lesiones mutilantes (perdida de la uña) o
incluso lesiones permanentes de uñas de pies.
El correcto diagnóstico micológico, así como definir el género del hongo es esencial
para un tratamiento correcto de las Onicomicosis.
8
CAPÍTULO II
2. MARCO TEÓRICO
2.1.FUNDAMENTACIÓN TEÓRICA
2.1.1. UNIDAD UNGUEAL
2.1.1.1.Anatomía
Las uñas son un conjunto de células epidérmicas queratinizadas de consistencia dura
que cubren la superficie dorsal de las partes distales de los dedos. Cada uña está
compuesta por un cuerpo, un extremo libre y una raíz. (Fig. 1)
El cuerpo de la uña presenta células aplanadas queratinizadas con un tipo de
queratina más dura que no se desprenden. El extremo libre es la parte que puede
extenderse más allá del borde distal los dedos y es blanco porque no tiene capilares
subyacentes. La raíz de la uña es la porción que está oculta en el pliegue de la piel
(11).
Figura 1: Estructura de la unidad ungueal
Fuente: Tortora, G; Derrickson, B, 2013
2.1.1.2.Histología
La uña principalmente está formada por una epidermis modificada, la misma que
presenta el estrato basal sobre el que se asientan varios estratos de células epiteliales
9
queratinizados. Posee una transparencia que permite observar la dermis subyacente
que es de color rosado por la cantidad de capilares sanguíneos (12).
La epidermis de cada falange terminal invade la dermis subyacente y forma un surco
ungueal, las células de este se convierten en la matriz ungueal. La proliferación
celular en dicha matriz forma la placa ungueal consistente en queratina dura. El área
semilunar de la base de la uña se llama lúnula. La cutícula blanda se conoce como
eponiquio (13).
2.1.2. HONGOS
2.1.2.1.Definición
Los hongos representan un grupo ubicuo y variado de microorganismos cuya
principal finalidad es degradar materia orgánica (14).
2.1.2.2.Características
Los hongos son organismos eucariontes con núcleos organizados con membrana
nuclear bien definida, se reproducen por esporas sexuales y asexuales. Son aerobios,
heterótrofos y en general no mótiles; sin embargo, existen hongos flagelados
incluidos en las divisiones Chytridiomycota y Oomycota, como Pythium insidiosum
(15).
El crecimiento de hongos varia para cada especie, la mayoría crecen en ambientes
entre 0 y 55 °C, mientras que los hongos patógenos primarios y oportunistas que
afectan al ser humano crecen entre 35 y 40°C.
2.1.2.3.Estructura
Los hongos son microorganismos eucariotas que se distinguen de los otros
eucariotas porque tienen una pared celular rígida formada por quitina y glucano y
10
una membrana celular en la que el ergosterol sustituye al colesterol como principal
componente esterólico (14). (Fig. 2)
Figura 2: Estructura celular fúngica
Fuente: Murray, P, 2014
La estructura fúngica consta de un complejo llamado talo o micelio, el cual está
formado por múltiples filamentos o hifas intercomunicadas o a su vez está conformada
por estructuras unicelulares o levaduras (blastomicetos) (1). (Fig. 3)
Figura 3: Estructura morfológica fúngica
Fuente: Murray, P, 2014 (Modificada de Deacon JW)
11
2.1.2.4.Clasificación
La clasificación de los hongos, phylum o división, clases, familias, géneros y
especies ha tenido diversos cambios taxonómicos; actualmente se basan en las
propiedades morfológicas, reproductivas, fisiológicas y sobre todo de biología
molecular (15). En el siguiente Cuadro 1. Se expone la clasificación según Guarro et
al.
Figura 4: Clasificación de los hongos
Elaborado por: Quisupangui Lema Marcia
2.1.2.5.Reproducción
Los hongos se reproducen por medio de esporas, teniendo así dos tipos de
reproducciones que son sexuada y asexuada.
12
Figura 5: Reproducción de los hongos
Fuente: Murray, P, 2014 (Modificada de Deacon JW)
2.1.2.5.1. Reproducción teleomórfica (Sexuada)
En este tipo de reproducción sexuada se realiza un intercambio de material genético.
(Fig. 5) El término adecuado para referirse a este tipo de reproducción es
teleomórfica y los hongos que la presentan tienen estados o fases teleomórficas (15).
La reproducción sexuada o teleomórfica se lleva a cabo por tres procesos genéticos:
1. Plasmogamia: mediante la unión de dos protoplasmas.
2. Cariogamia: por la fusión de dos núcleos.
3. Meiosis: división celular que da origen a células haploides.
2.1.2.5.2. Reproducción anamórfica (asexuada)
Este tipo de reproducción tiene como objetivo mantener la especie, debido a que se
forman nuevos hongos genéticamente idénticos al progenitor, debido a no realizarse
el intercambio de material genético, sino solamente mitosis (15). (Fig. 5)
La reproducción anamórfica es propia de los hongos mitospóricos porque solo
realizan mitosis, también se presenta en Ascomycetes, Zygomycetes y en algunos
Basidiomycetes.
13
2.1.3. MICOSIS
Las infecciones causadas por hongos microscópicos se llaman micosis y toman su
nombre de la parte del organismo que invaden (onicomicosis) o del hongo que las causa
(coccidioidomicosis) (1).
Así encontramos una clasificación practica de las infecciones por hongos el cual es útil
en el laboratorio de microbiología. (Tabla 1)
Tabla 1: Clasificación de las Micosis
CLASIFICACIÓN DE LASMICOSIS
ENFERMEDAD AGENTEETIOLÓGIC
O
LOCALIZACION
SUPERFICIALES
CUTÁNEAS
Tiña (Pitiriasis)versicolor
Piedra Negra
Piedra Blanca
Tiña Negra
Dermatofitos(Tiñas)
Malassezia sp.
Piedraia hortae
Trichosporonbeigeli
Exophialawerneckii
Microsporum spTrichophyton spEpidermophyton floccosum
Tronco, cuello, cara, brazo
Cuero cabelludo
Barba bigote
Palma de manos y planta depiesCabeza,barba,cuerpo,manos,pies, uñas
SUBCUTÁNEAS
SISTÉMICAS
OPORTUNISTAS
Esporotricosis
Cromomicosis
Micetoma
Paracoccidiomicosis
Coccidiodomicosis
HistoplasmosisCriptococosisCandidosisAspergilosis
Scorothrixschenckii
Cladophilophora camioniiFonsecaea spPhialophoraverrucosumRhinocladiellaaquaspersa
Paraccocidioides brasiliensis
Coccidioidesmitis
HistoplasmaCapsulatumCryptococcusneoformans
Implantación traumática en lapiel o en pulmón por inhalación
Heridas en la piel porpenetración traumática delhongo
Heridas traumáticas en miembrosuperiores e inferiores
Pulmones, cutáneaPulmonesPulmones, cerebroPiel o mucosas
14
MucormicosisNeomocitosis
CandidaalbicansAspergillus spZygomicetesNeumocystisjirovecii
PulmonesPulmonesPulmones
Fuente: Sanchez, A (2008), Recuperado el 13 de mayo del 2018.
http://atlasdemicologia.blogspot.com/2008/11/2-micosis-clasificacin-de-las-micosis.html
Existen varios factores de virulencia de los hongos entre ellos tenemos:
El tamaño del microorganismo
La capacidad del microorganismo para crecer a 37°C en un pH neutro.
Conversión de los hongos dimórficos de la forma filamentosa a la
correspondiente forma levaduriforme o esférula dentro del huésped.
Producción de toxina (16).
2.1.3.1.Micosis Superficial
Son aquellas que se limitan al estrato queratinizado de la piel y o del pelo, sin que exista
ningún tipo de reacción inflamatoria y muy poca evidencia clínica de enfermedad (17).
Son patologías frecuentes en la consulta dermatológica. Según la Organización Mundial
de la Salud (OMS), alrededor del 20-25% de la población mundial padece micosis
superficiales (18).
Las micosis superficiales no son destructivas, pero tienen importancia cosmética. Así
tenemos varias infecciones superficiales como la denominada pitiriasis versicolor, la
cual se caracteriza por alteraciones de la coloración y descamación de la piel. La tiña
negra en cambio hace referencia a diversas infecciones en la cabeza, ingle, barba, pies y
15
uñas. Mientras que la piedra blanca afecta al cabello formando nódulos que engloban el
tallo piloso.
Entre los hongos asociados a estas infecciones superficiales se incluyen en su mayoría
hongos Dermatofitos.
2.1.3.2.Micosis Subcutánea
Las micosis subcutáneas son afecciones producidas por traumatismos en la piel con
material infectado, en donde se desarrolla una lesión en el sitio de inoculación, como en
el caso de la cromoblastomicosis producida por Fonsecaea pedrosoi (19).
El grupo heterogéneo de hongos filamentosos superiores, son causantes de esta micosis,
por poseer hifas pigmentadas forman colonias negras, por lo que se denominan hongos
dematiaceos.
2.1.3.3.Micosis Sistémica
Las micosis sistémicas son producidas por hongos dimorfos, es decir que el
microorganismo puede tener dos formas: mohos (con hifas septadas y conidias) y otra
forma habitualmente de levadura (en tejidos vivos), produciendo infección en huéspedes
con afectación en su sistema inmunológico (20).
Una de las formas de adquirir este tipo de micosis por inhalación, afectando los
pulmones y puede ser asintomática grave o mortal. Las formas diseminadas afectan
meninges, huesos, articulaciones, piel y tejido celular subcutáneo. al adquirir la
infección su recuperación deja inmunidad a un nuevo contagio.
2.1.3.4.Micosis Oportunistas
La micosis oportunista es una enfermedad causada por hongos patógenos que atacan al
individuo cuando cambia el número total de flora normal en la persona con un sistema
inmune anormal, como pérdida de salud debido a un hongo con toxicidad limitada, uso
16
de agentes inmunosupresores debido a un trasplante de órgano, catéter venoso central,
cirugía invasiva para colocar un médico dispositivo, o la administración a largo plazo de
antibióticos de amplio espectro (21).
La mayoría de hongos causantes de micosis oportunistas son termotolerantes con
capacidad de presentar cambios bioquímicos y morfológicos en contacto con personas
con bajas defensas en el sistema inmune.
Los hongos más frecuentes que producen esta micosis son: Cándida, Aspergillus,
Cryptococcus neoformans y zigomicetos; pero en cualquier instancia cualquier hongo
puede transformase en patógeno.
2.1.4. ONICOMICOSIS
El termino onicomicosis se utiliza para referirse a las infecciones de las uñas
ocasionadas por hongos dermatofitos, levaduriformes y hongos miceliales no
dermatofitos (22).
2.1.4.1.Agente causal
Como se menciona anteriormente los agentes que producen onicomicosis incluyen tres
grupos: dermatofitos, levaduras y hongos miceliales no dermatofitos. A continuación,
describiremos cada uno de ellos.
2.1.4.1.1. Dermatofitos
Los dermatofitos son hongos filamentosos, septadas e hialinos, sus hifas penetran el
estrato córneo de la piel y uñas, produciendo proteasas queratinolíticas que les permite
invadir estas células para producir la infección (23).
Los dermatofitos se clasifican en geófilos, zoófilos o antropófilos, con base en su
hábitat usual, que comprende la tierra, los animales o los seres humanos (10). El
17
término dermatofitosis es usado para describir la infección por hongos del género
Microsporum, Trichophyton y Epidermophyton.
Las especies as frecuentes que causan onicomicosis son Trichophyton rubrum,
Trichophyton mentagrophytes y Epidermophyton floccosum (23).
2.1.4.1.2. Levaduras
Las levaduras son hongos unicelulares que siguen en frecuencia a los dermatofitos y son
responsables de 5% a 17% de las onicomicosis en general. La especie más
frecuentemente aislada es Cándida albicans (23).
La Cándida albicans siendo la levadura principal causante de onicomicosis en las manos
de mujeres adultas; en las dos últimas décadas se ha observado un cambio en las
especies, destacando un incremento en Cándida parasitosis, seguida de Cándida albicans
(24).
Se ha observado que cuando afecta a individuos sanos, existe el antecedente de
traumatismos en las uñas y habitualmente, son personas dedicadas a las labores de
jardinería (25).
2.1.4.1.3. Hongos miceliales no dermatofitos
Los hongos miceliales no dermatofitos han sido reconocidos como patógenos en
lesiones ungueales. A nivel mundial es frecuente el aislamiento de géneros como
Acremonium, Scopulariopsis, Fusarium y Aspergillus (26).
Esta clase de hongos son reconocidos saprófitos, encontrándolo en piel sana, en el suelo
y en el ambiente de los laboratorios.
18
En algunos casos puede desarrollarse en uñas previamente dañadas por traumatismos
previos o desvitalizadas por causas circulatorias o enfermedades subyacentes, afectando
a personas jóvenes y uñas intactas (27).
2.1.4.2.Epidemiologia
La onicomicosis es una infección habitual con una prevalencia estimada en base a
estudios poblacionales de un 2 a 8%. El proyecto Aquiles estimó que la prevalencia de
onicomicosis en Europa es de aproximadamente 27 %, mientras que estudios realizados
en Estados Unidos muestran una incidencia del 13,8% (28).
De la misma manera datos de prevalencia en estudios realizados en Perú mostraron una
prevalencia de onicomicosis del 54,3% (29).
Estudios realizados en la ciudad de Buenos Aires en el año 2014 arrojo datos de un 92%
de prevalencia de onicomicosis en las uñas de pies (4).
En nuestro país en la ciudad de Quito, en un estudio realizado en el Hospital San
francisco de Quito se obtuvo una prevalencia del 35,1 % de onicomicosis en uñas de
pies (6).
Dado estos datos podemos observar que la infección por hongos en uñas de pies es un
problema dermatológico que aún tiene una prevalencia alta, esto puede deberse a que
una vez diagnostica la infección no se trata correctamente y este vuelve a desarrollarse,
o a su vez la persona no cuida bien de la higiene de sus pies.
Estos datos también pueden variar varía según la zona geográfica estudiada, debido a
que en climas cálidos y húmedos es más propensa a desarrollar esta infección a que en
climas fríos. También se ha observado que la infección es más frecuente en personas
adultas que en niños.
19
2.1.4.3.Cuadro clínico
La onicomicosis se presenta de manera asintomática, el cual empieza su desarrollo en el
borde libre o distal y va avanzando hacia la base de la uña.
Puede afectar una o varias uñas, a su vez se expresa con alteraciones en la morfología
de la uña empezando por cambios de color y opacidad, aumento del grosor (onicausis),
fragilidad, alteraciones de la superficie (onicomadesis, plisado lateral) terminando hasta
lo más crónico que es la separación de la lámina de su lecho (onicolisis) aumentando la
formación de queratina subungueal (hiperqueratosis subungueal) lo que llega a destruir
la lámina ungueal (30).
Además, la infección puede causar dolor local de grado variable, vergüenza y
aislamiento social en quienes la padecen (31).
En diversas publicaciones, cuando se comparan pacientes con onicomicosis y un grupo
control, arrojan datos estadísticos con una gran diferencia respecto al dolor local, la
salud mental, las interacciones sociales, la percepción de la apariencia física y en sus
limitaciones funcionales, especialmente en actividades que implican mantenerse de pie
durante largos periodos o caminar grandes distancias (32).
2.1.4.4.Formas clínicas
La onicomicosis se clasifica, según la ruta de invasión, en subungueal distal, subungueal
proximal, blanca superficial y distrófica total. En 1998, Elewski propuso que la
infección por Cándida spp. Y sus tres variantes corresponden a otro tipo clínico
(paroniquia, granuloma candidiásico y onicólisis) (33).
20
2.1.4.4.1. OM subungueal distal y lateral (OSDL):
Este tipo de infección es la más frecuente de onicomicosis. La infección por el hongo se
inicia en el hiponiquio y en el borde distal y lateral de la lámina ungueal, siguiendo su
progresión de forma lenta hacia la parte proximal de la uña. (Fig. 6)
Se observa una superficie estriada o deprimida con una mancha blanco-amarillenta,
posteriormente aparece una hiperqueratosis subungueal con engrosamiento de la lámina
y finalmente una distrofia de la uña que se vuelve friable. Frecuentemente es producida
por dermatofitos, especialmente el hongo Trichophyton rubrum (2).
Figura 6:OM subungueal distal y lateral
Fuente: Goumh (2010) Recuperado el 26 enero del 2018
https://sites.google.com/a/goumh.umh.es/quiropodologia---onicomicosis/tipos-de-onicomicosis
2.1.4.4.2. OM proximal subungueal (OSP):
Usualmente menos frecuente, inicia con la invasión del pliegue proximal de la uña, que
pasa a la lámina ungueal y posteriormente migra distalmente afectando la matriz
ungueal. (Fig. 7)
Clásicamente ha sido descrita en pacientes inmunodeprimidos, sobre todo con infección
por el virus de la inmunodeficiencia humana (VIH) y en otras inmunodeficiencias (34).
21
Figura 7: OM subungueal proximal
Fuente: Medisan, (2017), Recuperado el 26 enero del 2018
http://www.dspace.uce.edu.ec/bitstream/25000/15275/1/T-UCE-0006-LC033-2018.pdf
2.1.4.4.3. OM superficial blanca:
Es debida casi siempre a T. mentagrophytes. Es mucho menos frecuente que la OSDL y
afecta a la superficie de la uña, no al lecho ungueal. (Fig. 8) La destrucción total de la
uña es rara en estos casos (35).
Figura 8: OM superficial blanca
Fuente: Worldwide, (2012), Recuperado el 26 de enero del 2018
http://www.life-worldwide.org/esp/fungal-diseases/onychomycosis
2.1.4.4.4. OM con distrofia total:
Representa la fase final de las diferentes formas infección por hongos en uñas, la cual
produce destrucción total de la placa ungueal (36). (Fig. 9)
22
Figura 9: OM con distrofia total
Fuente: Goumh (2010) Recuperado el 26 enero del 2018
https://sites.google.com/a/goumh.umh.es/quiropodologia---onicomicosis/tipos-de-onicomicosis
2.1.4.4.5. OM candidiásica:
La onicomicosis candidiásica se origina por diversos factores, como: diabetes mellitus,
traumatismos (manicura o pedicura) y el exceso de humedad en manos y pies (37).
Incluye cuatro subtipos que son:
a) Paroniquia crónica con distrofia ungueal secundaria: Frecuente en personas
que trabajan con las manos mojadas; la humedad continua afecta a la cutícula de
la uña, que pierde sus propiedades de barrera, facilitando la entrada de
microorganismos en el espacio subcuticular.
b) Infección distal de la uña: Es rara y afecta a pacientes con fenómeno de
Raynaud o con insuficiencia vascular; no suele afectar a las uñas de los pies y
produce poca hiperqueratosis subungueal.
c) Candidiasis mucocutánea crónica: Aparece en pacientes con disminución de
la inmunidad celular y se acompaña siempre de afectación de las mucosas.
d) Candidiasis secundaria: la mayoría de las veces se asocia a psoriasis (38).
23
Figura 10: OM candidiásica
Fuente: Candidiasis web, (2014), Recuperado el 26 de enero del 2018
http://candidiasisweb.com/tipos/cutaneas/paroniquia-candidiasica.php
2.1.4.5.Tratamiento
El tratamiento de la onicomicosis se debe realizar en función de la clínica para poder
optar por un tratamiento local, oral o combinado (39).
Tabla 2: Tratamiento para onicomicosis
Tratamiento previo IndicacionesUñas onicodistróficas: fresado exhaustivoRecortar y eliminar el máximo posible dela lámina afectada
Tratamiento tópico IndicacionesLesiones incipientesLesiones con menos afectación de 2/3 o del50 % de la uñaSin afectación de la matriz unguealTipos- Amorolfina (5%) laca
1-2 v/semana- Ciclopirox (8%) laca
1 mes cada 2 dias3 meses 1 aplicación semanal
- Combinación de urea al 40 % ybifonazol al 1% pomada1 v/día de 7-14 días
Tratamiento oral IndicacionesAfectación > 2 uñasAfectación matriz unguealLesiones con mayor afectación de 2/3 o del50% de la uñaOnicomicosis resistentes a tratamiento tópicoInteracciones
24
Tiene frecuentes interaccionesmedicamentosasContraindicacionesGestación y lactanciaFármacos de primera elección- Itraconazol 50 mg Low Dose
Pauta continua (2 capsulas/día 3-6meses)Mayor eficacia en no dermatofitos ycándidas
- Itrazonazol 100 mg (convencional)Pauta continua 200 mg/12 h, una semanaal mes 3-6 meses
- Terbinafina250 mg/dia 3-6 meses
- Fluconazol150 mg/semana
Fuente: Zalacain, Antonio (2016)
Antes de iniciar un tratamiento de onicomicosis se deben tomar en cuenta varios datos
aspectos como son:
En relación a las lesiones: número de uñas afectadas, espesor del hiperqueratosis
subungueal, profundidad de la onicolisis, si presentó o no dermatofitomas,
antecedentes crónicos de traumatismos y finalmente evaluar la forma clínica en que
se presentó la lesión.
Tratamientos previos y los resultados que produjeron.
En las mujeres en edad fértil pedir prueba de gravidez y advertir a la paciente sobre
los peligros de los antifúngicos sistémicos durante el embarazo.
Interrogar acerca de otros tratamientos que el paciente este recibiendo.
Solicitar siempre controles de laboratorio previos a la iniciación del tratamiento,
incluyendo hemograma.
Evaluar patologías cardiacas (40).
25
2.1.5. DIAGNÓSTICO DE ONICOMICOSIS
2.1.5.1.Diagnóstico Clínico
Efectuar historia clínica completa y exploración física detallada de acuerdo a la
localización.
El diagnóstico de onicomicosis es de acuerdo a:
Topografía: uñas de manos y pies.
Morfología: paquioniquia (engrosamiento), estrías, fragilidad, cambios en
coloración, onicolisis o hiperqueratosis subungueal (41).
2.1.5.2.Diagnóstico laboratorial
La sospecha clínica, los antecedentes detallados y la exploración física exhaustiva; así
como la obtención de muestras adecuadas para el diagnóstico de laboratorio, son unos
elementos fundamentales para optimizar el diagnóstico y el tratamiento de las micosis.
Por tanto, el diagnóstico de las micosis en el laboratorio depende de tres enfoques
básicos:
1. Microbiológico
2. Inmunológico
3. Anatomopatológico
Además se pueden complementar con los métodos moleculares y bioquímicos de
detección e identificación de microorganismos (14).
Tabla 3: Métodos de diagnóstico micológico laboratorial
Métodos de laboratorio para el diagnóstico de las micosis
Métodos microbiológicos convencionalesMicroscopia directa (tinción de Gram, Giemsa y blancocalcoflúor
26
Cultivo
Identificación
Pruebas de sensibilidad
Métodos anatomopatológicosTinciones habituales (H-E)
Tinciones especiales (GMS, PAS, mucicarmín)
Inmunofluorescencia directa
Hibridación in situ
Métodos inmunológicosAnticuerpo
Antígeno
Métodos molecularesDetección directa
Identificación
Tipificación de cepas
Métodos bioquímicosMetabolitos
Componente de la pared celular
Enzimas
Fuente: Murray, Patrick (2014)
2.1.5.2.1. Métodos microbiológicos
El diagnóstico micológico tradicionalmente se enfoca principalmente en la microscopia
y el cultivo. El mejor resultado microbiológico se obtiene cuando la muestra que se
recibe en el laboratorio es recolectada en las mejores condiciones. Se debe considerar
dependiendo de la localización (heridas, expectoración, secreción vaginal, lavado
broncoalveolar, raspados de piel o fanéreos, líquidos de cavidades estériles, etc.) (42).
En la actualidad, son considerados como pruebas standard para el diagnóstico de
onicomicosis la combinación de la microscopia directa con hidróxido de potasio (KOH)
y el cultivo micótico (CM).
27
Sin embargo, ambos exámenes presentan una baja sensibilidad ya que la microscopia
directa es precisa siempre y cuando el analizador este bien entrenado, mientras que el
cultivo micótico también es poco sensible y posee una desventaja en cuanto al tiempo,
ya que se requiere de un periodo de incubación no menor a los 35 días (43).
Recolección y transporte de la muestra (Raspado de uñas)
Para el diagnóstico de onicomicosis se debe realizar mediante un raspado de uñas, esto
se obtiene por medio de un raspado con una hoja de bisturí o portaobjetos del sitio
donde se ha producido la infección, esta muestra es colocada en una caja Petri estéril e
inmediatamente proceder a al análisis.
Figura 11: Raspado de uñas
Fuente: Tomada en el Laboratorio clínico Hospital Policía Nacional
2.1.5.2.1.1.Examen directo (KOH)
El examen directo con microscopía óptica consiste en observar las escamas obtenidas
por raspado en un portaobjetos con KOH al 10 o 20%, dejándolo reposar previamente
unas 2 horas la muestra en la solución; de esta manera nos permite observar estructuras
fúngicas como son las hifas (Fig. 11)
28
Figura 12: KOH positivo
Fuente: Unam, (2014) Recuperado el 12 de febrero del 2018
http://www.facmed.unam.mx/deptos/microbiologia/micologia/.html
Tiene buena sensibilidad y es más específico que el cultivo, con 76.5% de sensibilidad y
86.1% de valor predictivo negativo para el diagnóstico de onicomicosis, en
comparación con 53.2% de sensibilidad y 69% de valor predictivo negativo con el
cultivo. No obstante, requiere destreza para descartar artefactos del laboratorio y genera
falsos negativos en 5 a 15% de casos, además no determinan la especie del agente
causal (44).
2.1.5.2.1.2.Cultivo micótico
Los medios utilizados en microbiología para el área de micología son los medios
específicos, como el de Sabouraud, muy rico en glucosa y cuyo pH bajo (pH 5-5, 6), el
cual dificulta el crecimiento de las bacterias facilitando el crecimiento de los hongos.
Para incrementar este carácter selectivo frente a las bacterias se puede añadir al medio
de Sabouraud diversos antibacterianos (17).
Para evitar contaminaciones las escamas tomadas de las uñas se siembran en tubos de
agar inclinado cuya boca estrecha dificulta la difusión de las esporas cuando se abren.
29
2.1.5.2.1.2.1. Medios de cultivos para hongos
Muchos de los medios de cultivo para hongos son apropiados para el uso en los
laboratorios de microbiología. Siendo el objetivo fundamental optimizar el crecimiento
de los hongos. En los medios de cultivo micológicos, los antimicrobianos se utilizan
tanto para inhibir el crecimiento bacteriano como el de otros hongos ambientales (45).
Así ponemos a conocimiento todos los medios de cultivos para hongos (Ver Anexo 4)
2.1.5.2.1.2.2. Técnica
La técnica para la identificación de hongos de uñas de pies se describe a continuación
en la Fig. 12.
30
Figura 13: Técnica para la identificación de hongos
Fuente: Prats, Guillerm (2006)
2.1.5.2.1.2.3. Consideraciones para la identificación de hongos
Para la identificación de hongos se requiere una combinación de:
La velocidad de crecimiento
Las características morfológicas de las colonias
Las características morfológicas microscópicas, este último nos proporciona en
dato más útil para la identificación del hongo.
2.1.5.2.1.2.4. Identificación de hongos.
El primer paso para identificar una cepa fúngica consiste en la diferenciación de un
hongo levaduriforme de una forma micelial.
La morfología macroscópica de las colonias suele orientar el proceso, ya que los hongos
levaduriformes crean colonias opacas pálidas, mientras que las formas miceliales dan
31
lugar a grandes colonias filamentosas de textura, color y topografía variables. A
continuación, se detalla las características que se toman en cuenta para la identificación
de cada hongo del grupo de los Dermatofitos. (Ver Anexo 5)
El estudio microscópico delimita en mayor medida el proceso y, a menudo, es suficiente
para identificar numerosas especies de hongos, La identificación del género y la especie
requiere estudios microscópicos más detallados para determinar las estructuras
características (14). (Ver Anexo 6)
2.1.5.2.1.2.5. Bioseguridad en el laboratorio de microbiología
Si bien existen riesgos asociados con la manipulación de los hongos procedentes de las
muestras clínicas, se indica que en cuanto a su manipulación es preciso evitar la
contaminación del laboratorio y proteger al personal para que no se infecte.
Todos los cultivos micóticos deben manipularse en un gabinete de bioseguridad clase II
y para descontaminar el ansa con la que se transfiere los cultivos se aconseja el uso de
un mechero. Los cultivos sospechosos de ser patógenos se sellan con cinta adhesiva e
inmediatamente se coloca en la autoclave después de su identificación definitiva (45)
2.1.5.2.2. Métodos histopatológicos
El método diagnóstico hongos en el laboratorio de histopatología se conoce como
histomicología, la cual consiste en la observación de cortes histológicos de uña teñidos
con PAS para documentar la presencia de hongos con altos niveles de sensibilidad y
especificidad (46).
Una desventaja es que al no existir mucho personal capacitado puede obtenerse
resultados falsos positivos, además es una técnica difícil y laboriosa, consume mucho
tiempo y requiere de experiencia. Sin embargo, se considera el estándar de oro que
demuestra de manera absoluta el diagnóstico de onicomicosis.
32
También encontramos dentro de los métodos histopatológicos la técnica de
inmunohistoquímica consiste en exponer muestras de tejido ungueal a anticuerpos
marcados y específicos para los agentes patógenos causales. Se emplean anticuerpos
monoclonales anti-Trichophyton spp. (para identificar dermatofitos), anti-Cándida spp.
(para identificar levaduras) y anti-aspergiláceas (46).
2.1.5.2.3. Métodos inmunológicos
Se han descrito numerosas técnicas para la detección de antígenos fúngicos, algunas de
ellas incluso disponibles comercialmente. Entre ellas tenemos:
Látex para Cryptococcus: este método de aglutinación se utiliza para la detección
del polisacárido capsular de C. neoformans, tanto en suero como en LCR. Posee una
sensibilidad del 95% y una especificidad entre 93 y 100%.
Inmunofluorescencia para Pneumocystis jiroveci (ex carinii): esta técnica utiliza
anticuerpos monoclonales específicos contra determinantes antigénicos de la pared
de los quistes y trofozoitos de P. jiroveci. Con una sensibilidad cercana al 100% y
una especificidad de alrededor de 96% (47).
Antigenemia para búsqueda de Aspergillus spp: recientemente se ha incorporado un
inmunoensayo tipo “sándwich” comercial que utiliza un anticuerpo monoclonal. En
este estudio la sensibilidad fue de 92,6% y la especificidad de 95,4% (47).
Detección de antígenos de Cándida spp: método de aglutinación con partículas de
látex para un antígeno termolábil no bien caracterizado, que en los diferentes
estudios ha mostrado valores desde 25 hasta 100% de sensibilidad (47).
33
2.1.5.2.4. Métodos moleculares
Los métodos moleculares han registrado un gran avance en los últimos el cual ha sido
útil para la identificación rápida y sensible de dermatofitos, lo que contribuyó al mayor
conocimiento de la taxonomía y relaciones filogenéticas de estos hongos.
Hace corto tiempo se aplicaron técnicas de biología molecular para identificar especies
de dermatofitos, como la reacción en cadena de polimerasa (PCR) en tiempo real, o una
combinación de PCR con secuenciación de polimorfismo en la longitud de fragmentos
de restricción (RFLP), la cual se realiza en muestras de biopsia o de queratina (48).
Estas pruebas mencionadas no presentan tasas altas de resultados falsos negativos como
los estudios de rutina y resultan de gran importancia, especialmente desde el punto de
vista médico ya que estaríamos evitando la resistencia microbiana.
34
2.2. FUNDAMENTACIÓN LEGAL
El desarrollo del Proyecto de Investigación de Fin de Carrera, se sustenta en la
Constitución del Ecuador establecida en el año 2008 la cual promueve el desarrollo a la
investigación con el fin de adquirir nuevos conocimientos que sean de beneficio para la
sociedad.
Constitución de la República del Ecuador
Art. 343: El sistema nacional de educación tendrá como finalidad el desarrollo de
capacidades y potencialidades individuales y colectivas de la población, que posibiliten
el aprendizaje, y la generación y utilización de conocimientos, técnicas, saberes, artes y
cultura. El sistema tendrá como centro al sujeto que aprende, y funcionará de manera
flexible y dinámica, incluyente, eficaz y eficiente (49).
Art. 350: El sistema de educación superior tiene como finalidad la formación
académica y profesional con visión científica y humanista; la investigación científica y
tecnológica; la innovación, promoción, desarrollo y difusión de los saberes y las
culturas; la construcción de soluciones para los problemas del país, en relación con los
objetivos del régimen de desarrollo (49).
El estatuto de la Universidad Central del Ecuador también establece normas y
reglamentos que amparan la ejecución del Proyecto de Investigación de Fin de Carrera,
fomentando de esta manera la investigación científica y siendo un requisito para la
obtención del título del estudiante cuando finalice la carrera.
Art. 211: Títulos y grados. La Universidad Central del Ecuador concederá a sus
egresados los títulos y grados correspondientes, mediante el cumplimiento de todos los
requisitos establecidos en la Ley de Educación Superior, su Reglamento General, el
Reglamento de Régimen Académico, el Estatuto y los Reglamentos pertinentes. Los
egresados tendrán un plazo máximo de dos años para titularse, que se contarán desde la
35
fecha de su egresamiento. En caso contrario, deberán actualizar sus conocimientos de
acuerdo con los programas vigentes (50).
Art. 212: El trabajo de graduación o titulación constituye un requisito obligatorio para
la obtención del título o grado para cualquiera de los niveles de formación. Dichos
trabajos pueden ser estructurados de manera independiente o como consecuencia de un
seminario de fin de carrera. Para la obtención del grado académico de licenciado o del
título profesional universitario de pre o postgrado, el estudiante debe realizar y defender
un proyecto de investigación conducente a una propuesta que resolverá un problema o
situación práctica, con características de viabilidad, rentabilidad y originalidad en los
aspectos de aplicación, recursos, tiempos y resultados esperados (50).
36
CAPITULO III
3. METODOLOGÍA
3.1.DISEÑO DE LA INVESTIGACIÓN
El presente estudio es de tipo descriptivo de corte transversal que nos da a conocer la
prevalencia de hongos en cultivos micóticos de uñas de pies en pacientes del Hospital
Quito N ° 1 Policía Nacional durante el periodo septiembre 2016-septiembre 2017.
3.2.POBLACIÓN Y MUESTRA
La población está constituida por 267 que cumplieron con los criterios de inclusión y
sus muestras fueron procesadas en el laboratorio clínico del Hospital Quito N° 1 Policía
Nacional durante el periodo septiembre 2016-septiembre 2017.
No se necesitó calculo muestral para selección de muestra, puesto que se trabajó con
todos los datos de la población.
3.2.1. Criterios de inclusión
- Pacientes con solicitud médica para cultivo micótico de uñas de pies.
- Pacientes que se realizaron un cultivo micótico.
- Muestras con resultados de cultivo micótico.
- Ambos sexos.
- Todas las edades.
3.3.DEFINICIÓN DE VARIABLES
Variable independiente
Hongo
Variable dependiente
Onicomicosis
Variables controladas
Edad
Sexo
37
3.4.CARACTERIZACIÓN DE LAS VARIABLES
VARIABLE DEFINICIÓN DIMENSION INDICADOR ESCALA TCD INSTRUMENTO FUENTE
Onicomicosis Infecciones de las uñasocasionadas por hongosdermatofitos,levaduriformes y hongosmiceliales nodermatofitos (22).
Presencia delesión causada porhongos en uñas depies.
Cultivomicótico
Positivo
Negativo
Análisisdocumental
Ficha de análisisdocumental
Primaria
Agenteetiológico
Los hongos sonorganismos eucariontescon núcleos organizados,cuya membrana nuclearestá bien definida; sonaerobios, heterótrofos yen general no motiles.(1)
Dermatofitos-Microsporum- Trichophyton- EpidermophytonNo dermatofitos-Aspergillus-FusariumLevadura-Cándida
Observaciónmicroscópicade lamorfología delhongo
DermatofitoHifas septadasfilamentosasNo dermatofitosConidióforos noramificadosLevaduras
Células redonda uovaladastransparentes
Análisisdocumental
Ficha de análisisdocumental
Primaria
Edad Tiempo que ha vividouna persona u otro servivo contando desde sunacimiento.
Edad en años
0-20 años21-40 años41- 60 años61-80 años81-100 años
CuantitativoAnálisisdocumental
Ficha de análisisdocumental
Primaria
Sexo Caracteres sexualesprimarios que identificana una persona comohombre o mujer
Femenino
Masculino
Hombre
Mujer
Cuantitativo Análisisdocumental
Ficha de análisisdocumental
Primaria
38
3.5.ASPECTOS BIOETICOS DE LA INVESTIGACION EN SERES
HUMANOS
El presente estudio reconoce que la decisión del Comité de Ética de la Investigación en
seres humanos, al cual someto la presente revisión, está orientada a garantizar en cada
estudio y centro o localidad en que se investigue, la adecuación de los aspectos
metodológicos, éticos u jurídicos de las investigaciones que impliquen intervenciones
en seres humanos, o la utilización de muestras biológicas humanas. Los investigadores
acogemos a este mecanismo formal de control y garantía del correcto desarrollo de la
investigación biomédica y en ciencias de la salud, habilitado legalmente con el
propósito de precautelar los derechos de las personas implicadas en dicho ámbito. Para
ello sometemos a evaluación el protocolo de investigación de nuestra autoría (protocolo
de investigación), desde la perspectiva metodológica, ética y jurídica, tanto en aquellos
casos en los que participen personas o muestras biológicas de origen humano. Esta
evaluación culminará con la emisión de un informe, y que vinculará la decisión de la
autoridad competente encargada de autorizar el desarrollo de la investigación biomédica
o en ciencias de la salud. También se ejercerá un mecanismo de control durante la
ejecución de la misma, y hasta su finalización (51).
Nuestra investigación fundamenta su ámbito ético en una guía selecta de principios
bioéticos universales, adoptados por convenios internacionales que promueven la
libertad de investigación, así como las máximas garantías de respeto a los derechos,
seguridad y bienestar de los sujetos participantes, sobre todo de aquellos grupos
vulnerables (51).
39
3.6. TÉCNICAS E INSTRUMENTOS DE RECOLECCIÓN DE DATOS.
Para revisión del presente trabajo de investigación, su protocolo fue presentado al
Comité de Investigación y Bioética Facultad de Ciencias Médicas de la Universidad
Central del Ecuador, el cual fue satisfactoriamente aprobado.
Previa autorización de las autoridades del Hospital Quito N° 1 Policía Nacional, tanto
del departamento de Investigación como del Comité de Bioética (Anexo 1), se realizó
en el servicio de Laboratorio Clínico, la recolección de datos en el sistema
ENTREPRISE, de pacientes que se realizaron cultivos micóticos de uñas de pies
durante el periodo septiembre 2016-septiembre 2017.
3.7.TÉCNICAS PARA EL PROCESAMIENTO DE DATOS Y ANÁLISIS DE
RESULTADOS
Después de obtener todos los datos recolectados del sistema ENTERPISE en la hoja de
recolección de datos (Anexo 2), se procedió a tabular en una hoja electrónica de
Microsoft Excel teniendo en cuenta las variables planteadas; para lo cual se aplicó
estadística de frecuencia y porcentaje.
Una vez realizado esto se procede a realizar tablas y gráficos estadísticos,
conjuntamente con un análisis de los resultados obtenidos, para más adelante darlo a
conocer en el presente proyecto de investigación.
40
CAPITULO IV
4.1.RESULTADOS, ANÁLISIS E INTERPRETACIÓN DE DATOS
Tabla 4: Prevalencia de hongos en cultivos micóticos de uñas de pies en pacientesdel Hospital Quito N ° 1 Policía Nacional durante el periodo septiembre 2016-
septiembre 2017.
CULTIVOS MICÓTICOS PREVALENCIA %
POSITIVOS 127 47.6%
NEGATIVOS 140 52.4%
TOTAL 267 100%
Fuente: Laboratorio Clínico Hospital Quito Nº 1 Policía Nacional
Elaborado: Quisupangui Lema Marcia Ximena (2018)
Figura 14: Prevalencia de hongos en cultivos micóticos de uñas de pies en pacientesdel Hospital Quito N ° 1 Policía Nacional durante el periodo septiembre 2016-
septiembre 2017.
Fuente: Laboratorio Clínico Hospital Quito Nº 1 Policía Nacional
Elaborado: Quisupangui Lema Marcia Ximena (2018)
Del total de 267 pacientes que se realizaron un cultivo micótico de uñas de pies durante
el periodo septiembre 2016-septiembre2017, se determinó que existieron 47,6% cultivos
positivos, mientras que el 52,4% fueron cultivos negativos.
POSITIVOS47,6%
NEGATIVOS
52,4%
CULTIVOS MICÓTICOS
41
Tabla 5:Frecuencia del agente etiológico; dermatofitos, mohos y levaduras enOnicomicosis en uñas de pie
AGENTE
ETIOLÓGICO
FRECUENCIA %
DERMATOFITOS 60 50%
LEVADURAS 54 45%
MOHOS 6 5%
TOTAL 120 100%
Fuente: Laboratorio Clínico Hospital Quito Nº 1 Policía Nacional
Elaborado: Quisupangui Lema Marcia Ximena (2018)
Figura 15: Frecuencia del agente etiológico; dermatofitos, mohos y levaduras enOnicomicosis en uñas de pies
Fuente: Laboratorio Clínico Hospital Quito Nº 1 Policía Nacional
Elaborado: Quisupangui Lema Marcia Ximena (2018)
50%45%
5%
100%
0%
20%
40%
60%
80%
100%
120%
DERMATOFITOS LEVADURAS MOHOS TOTAL
FRECUENCIA DEL AGENTE ETIOLÓGICO
42
Del total de 127 cultivos micóticos de uñas de pies positivos se obtuvieron 120
hongos dentro la clasificación establecida perteneciendo los 7 restantes a otra
clasificación; con este dato se determinó el agente etiológico existiendo mayor
frecuencia de Onicomicosis producida por Dermatofitos con un 50%, seguido de
Levaduras con un 45% y en menor frecuencia los mohos con un 5%.
Tabla 6: Especies que producen Onicomicosis en uñas de los pies
ESPECIES CAUSANTES DE ONICOMICOSIS
ESPECIE FRECUENCIA %
Trichophyton verrucosum 18 13,4%
Rhodotorula spp 16 11,9%
Cándida spp 13 9,7%
Trichophyton mentagrophytes 11 8,2%
Microsporum ferrugineum 8 6,0%
Trichophyton tonsurans 8 6,0%
Trichophyton schoenleinii 6 4,5%
Cándida albicas 5 3,7%
Trichophyton rubrum 4 3,0%
Aspergillus terreus 1 0,7%
Fuente: Laboratorio Clínico Hospital Quito Nº 1 Policía Nacional
Elaborado: Quisupangui Lema Marcia Ximena (2018)
43
Figura 16: Especies que producen Onicomicosis en uñas de los pies
Fuente: Laboratorio Clínico Hospital Quito Nº 1 Policía Nacional
Elaborado: Quisupangui Lema Marcia Ximena (2018)
Se identificó que el hongo principal causante de Onicomicosis en esta investigación fue
Trichophyton verrucosum con una prevalencia del 13,4%, seguido de Rhodotorula spp
con el 11,9%, Cándida spp con un 9,7%, Trichophyton mentagrophytes 8,2%,
Microsporum ferrugineum y Trichophyton tonsurans con un 6% cada una; siguiéndolo
por Trichophyton schoenleinii con 4,5%, Cándida albicans 3,7%, Trichophyton rubrum
con un 3% y finalmente Aspergillus terreus con un 0,7%.
13,4%11,9%
9,7%8,2%
6,0% 6,0%4,5% 3,7% 3,0%
0,7%
HONGOS MAS FRECUENTES DE INFECCION EN UÑASDE PIES
44
Tabla 7: Rango de edad de los pacientes con Onicomicosis en uñas de pies
EDAD
RANGO FRECUENCIA %
0-20 3 2,4%
21-40 26 20,5%
41-60 49 38,6%
61-80 45 35,4%
81-100 4 3,1%
TOTAL 127 100%
Fuente: Laboratorio Clínico Hospital Quito Nº 1 Policía Nacional
Elaborado: Quisupangui Lema Marcia Ximena (2018)
Figura 17: Rango de edad de los pacientes con Onicomicosis en uñas de pies
Fuente: Laboratorio Clínico Hospital Quito Nº 1 Policía Nacional
Elaborado: Quisupangui Lema Marcia Ximena (2018)
Con los datos obtenidos podemos apreciar que de 127 pacientes que tuvieron cultivos
micóticos positivos el mayor crecimiento de hongos fue en las edades establecidas entre
41-60 años con una prevalencia de 38,6%%, seguida de edades entre 61-80 años con el
0-20 21-40 41-60 61-80 81-100
2,4%
20,5%
38,6% 35,4%
3,1%
FRECUENCIA DE ONICOMICOSIS SEGÚNRANGO DE EDADES
45
35,4%, edades entre 21-40 años 20,5%, de 81-100 años con un 3,1% y finalmente en
menor prevalencia 0-20 años con el 2,4%.
Tabla 8: Género que presenta Onicomicosis en uñas de pies.
GÉNERO
GÉNERO CANTIDAD FRECUENCIA
FEMENINO 66 52%
MASCULINO 61 48%
TOTAL 127 100%
Fuente: Laboratorio Clínico Hospital Quito Nº 1 Policía Nacional
Elaborado: Quisupangui Lema Marcia Ximena (2018)
Figura 18: Género que presenta Onicomicosis en uñas de pies.
Fuente: Laboratorio Clínico Hospital Quito Nº 1 Policía Nacional
Elaborado: Quisupangui Lema Marcia Ximena (2018)
Podemos apreciar que, de un total de 127 cultivos positivos, el género que desarrollo
mayor infección de uñas de pies Onicomicosis fue en género femenino con una
frecuencia del 52 %, mientras que el género masculino tuvo una frecuencia del 48%.
48,0%
100%
FEMENINO MASCULINO TOTAL
GÉNERO
52%
46
CAPITULO V
5.1.DISCUSIÓN
La Onicomicosis, se estima que afecta al 2 a 18 % de la población mundial. Puede llegar
hasta 48% en adultos mayores de 70 años de edad. En las últimas décadas, se ha
observado una mayor prevalencia debido a varios factores.
El objetivo general de nuestra investigación busca determinar la prevalencia de hongos
en cultivos micóticos de uñas de pies en pacientes del Hospital Quito N°1 Policía
Nacional durante el periodo septiembre 2016-septiembre 2017, alcanzando un total de
267 pacientes que acudieron al laboratorio clínico de esta Casa de salud, previa a
solicitud médica con diagnostico presuntivo de Onicomicosis derivada de diferentes
servicios médicos.
En cumplimiento con este objetivo de nuestro estudio, del 100% (267 casos) se
determinó una prevalencia del 47,6% (120 casos) que presentaron positividad para el
crecimiento de hongos en el cultivo micótico muestra que fue tomada de uñas de pies,
lo que concuerda con un estudio de (8) Nazar J, Gerosa P, Díaz O en el que un 51,8%
fueron cultivos positivos y un 48,1% fueron cultivos negativos, en donde la población
estudiada también fue pacientes que presentaban sintomatología de onicomicosis.
En la Tabla N° 2 que se refiere a la frecuencia del agente etiológico; dermatofitos,
mohos y levaduras en Onicomicosis en uñas de pies, se encontró que del 100% (120
casos) dentro de la clasificación establecida la mayor frecuencia le correspondió a los
Dermatofitos con un 50% (60 casos) y en menor frecuencia los mohos con 6 casos que
le corresponde al 5%; lo cual coincide con los hallazgos encontrados por (8) Nazar J,
Gerosa P, Díaz O en donde un 63 % fueron dermatofitos y 2% por mohos. Se puede
asociar a los dermatofitos como principal agente etiológico causante de infecciones de
47
uñas de pies, debido a que esta clase de hongos son geofílicos o terrestres, es decir que
lo encontramos en nuestro medio de convivencia siendo fácil de contagio al exponernos
a áreas contaminadas como toallas, pisos mojados o lugares húmedos.
En cumplimiento del mismo objetivo anterior y con la finalidad de identificar la especie
de hongo predominante en la Onicomicosis de uñas de pies en pacientes atendidos en el
Hospital Quito N° 1 Policía Nacional encontramos que el hongo causante más frecuente
fue el Trichophyton verrucosum con 18 casos que corresponde al 13,4% seguido de
cerca en frecuencia por Rhodotorula spp con el 11,9% (16 casos) y la especie menos
frecuente fue Aspergillus terreus con un solo caso que le corresponde al 0,7%. Estos
hallazgos difieren parcialmente de lo que muestran otros estudios realizados por (52)
Degreef, H. (2008) en los que se encuentra que el Trichophyton rubrum y la Cándida
ocupan los primeros lugares en frecuencia, en nuestro estudio la Cándida spp ocupo el
tercer lugar con 13 casos que corresponde al 9,7% del total. El género Trichophyton se
le puede considerar como el más abundante hospedador ya que habita áreas húmedas,
siendo condiciones de fácil contagio para el ser humano.
En relación a los rangos de edad en las que encontramos mayor crecimiento de hongos
de uñas de pies en pacientes que presentaron cultivo micótico positivo, se encontró que
el mayor porcentaje le correspondió al rango de edad comprendido entre 41-60 años con
49 casos que le corresponde el 38,6%, dato que concuerda con el estudio realizado por
(5) Fasano, M. et al en donde hallo mayor porcentaje en edades entre 34 y 58 años.
Conforme avanza la edad se puede asociar a ser más susceptible contaminarse con
hongos en uñas de pies por el estilo de vida que lleva una persona adulta, es decir que se
lleva más ocupaciones y obligaciones por lo que puede descuidar el aseo y estética de
sus pies.
48
En cuanto a establecer el género en el que se presenta mayor infección micótica de uñas
de pies encontramos que predominó de forma discreta el género femenino con 66 casos
que corresponde al 52% contra 61 casos del género masculino con correspondió al 48%,
esto coincide con hallazgos encontrados por Fasano, M. et al en donde el 64,1% le
correspondió al género femenino y el 35,9 % al género masculino. De la misma forma
el estudio de Fasano se realizó en pacientes con alteraciones ungueales, por lo que
pretendemos que se presentó más en el género femenino debido a la exposición a
calzado ajustado como puede ser el caso de los tacones; además en la investigación
presente se tuvo la oportunidad de escuchar experiencias que creían las pacientes haber
sido el motivo por el cual se contaminaron y esto fue después de haberse realizado un
pedicure.
49
CAPITULO VI
6.1. CONCLUSIONES
De todos los pacientes estudiados se pudo evidenciar que la prevalencia de
hongos en uñas de pies fue de un 47,6% correspondiente a 127 pacientes. Siendo
este dato la prevalencia de Onicomicosis de uñas de pies en pacientes del
Hospital Quito N°1 Policía Nacional durante el periodo septiembre 2016-
septiembre 2017.
El agente etiológico con mayor frecuencia en nuestro estudio correspondió a los
Dermatofitos y el menos frecuente fueron Mohos o No Dermatofitos.
Dentro de esta prevalencia la especie más frecuente fue el Trichophyton
verrucosum seguido por la Rhodotorula spp y el menos frecuente fue el
Aspergillus terreus.
Las Onicomicosis de acuerdo a nuestro estudio se presentó mayor frecuencia en
pacientes cuyos rangos de edad estuvo comprendido entre 41-60 años.
Se concluye que el sexo femenino fue el más afectado por Onicomicosis.
El examen de cultivos micóticos de uñas de pies realizados en el Laboratorio
clínico son de gran utilidad en la identificación del hongo causante de la
Onicomicosis para el posterior tratamiento de la infección.
50
6.2. RECOMENDACIONES
Dado que la prevalencia de onicomicosis en nuestros pacientes estudiados estuvo
alrededor del 50 % se recomienda que cuando los pacientes acudan con patologías
de uñas de pies se realice estudios de laboratorio inmediatos, debido a que una vez
producida la infección tomar un tratamiento requiere de varios meses para combatir
la infección y si no se trata a tiempo conlleva el riesgo de perder la uña.
En razón de que los hongos más frecuentes hallados en la investigación fueron los
dermatofitos y de ellos el Trichophyton verrucosum, se recomienda que una vez
realizado el diagnóstico y tengamos un resultado positivo con un examen directo
(KOH) se realice como mejor prueba el cultivo micótico para la correcta
identificación del hongo.
No existe un real conocimiento por parte de los pacientes en relación a las formas de
contagio o su presentación clínica de infecciones de uñas de pies; por lo cual se
recomienda realizar una campaña entre los pacientes que acuden por diversas causas
al Hospital Quito N° 1 Policía Nacional para que sobre todo conozcan la prevención
de esta infección de uñas de pies que principalmente afecta la estética y la relación
con el entorno social.
Conociendo que producto de nuestro estudio y producto de publicaciones que
sustenta este estudio, la frecuencia de Onicomicosis es mayor de lo que se conoce,
se recomienda que en todas las Unidades Hospitalarias se atienda a pacientes con
problemas de infecciones de uñas y de la misma manera en los servicios de
Laboratorio Clínico de las Unidades Hospitalarias implementen métodos
microbiológicos de análisis micológico.
Finalmente se recomienda que este estudio realizado en el Hospital Quito N° 1
Policía Nacional sea replicado en otros Hospitales de la ciudad con la finalidad de
51
determinar si la frecuencia de infecciones por hongos en uñas de pies
(Onicomicosis) es igual; y tomando en cuenta la variedad de climas que posee
nuestro país también se debería realizar investigaciones para datos epidemiológicos
en las Unidades Hospitales de las diferentes regiones de nuestro país.
52
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
1. Arenas Guzman R. Micología Médica Ilustrada. En. México,D.F: Mc. Graw Hill; 2014. p. 12.
2. Dalmau J, Roé E, Corella F, Garcia X, Puig L. Onicomicosis. Elsevier. 2006; 20(10).
3. Baran R, Piérard G. En Onicomicosis. Barcelona: Elsevier; 2006. p. 13.
4. Rinflerch A, Flores V, Argibay P, Galimberti R. Dermatofitos en onicomicosis de una muestrade la población argentina. Dermatologia CMQ. 2015; 13(2).
5. Fasano M, Kiernan M, Verea M, Pecotche D, Fasano V, Featherston P. Onicomicosis. Arch.Argent. Dermatol. 2014; 64(1).
6. Cantos M. Repositorio Digital UCE. [Online].Acceso 20 de Septiembre de 2017. Disponibleen: http://www.dspace.uce.edu.ec/handle/25000/11352.
7. Kaur R, Kashyap B, Bhala P. Onychomycosis: epidemiology, diagnosis and management.Indian J Med Microbiol. 2008; 26(108-16).
8. Nazar J, Gerosa P, Diaz O. Onicomicosis: epidemiología, agentes causales y evaluación de losmétodos deiagnósticos de laboratorio. Revista Argentina de Microbiología. 2012; 44(21-25).
9. Moreno X, Martínez G, Macero C. Onicomicosis: casuística en el Departamento deMicrobiología del Instituto Médico La Floresta. Caracas-Venezuela (2012-2016). DermtaolVenez. 2016; 54(1).
10. Jawetz , Melnick , Adelberg. En INTERAMERICANA EDITORES SAdCV, editor.Microbiología médica. México D.F. : McGRAW-HILL; 2011. p. 633.
11. Tortora G, Derrickson B. En Principios de Anatomía y Fisiología. Madrid: Editorial MédicaPANAMERICANA; 2013. p. 165.
12. Naranjo A. En Manual de citología e histología humana. Quito: PPL Impresores; 2010. p. 365.
13. Cormack D. En Histología de Ham. México D.F.: HARLA S.A.; 2010. p. 579-580.
14. Murray P. En Microbiología médica. España: Elsevier; 2014. p. 605.
15. Bonifaz A. En Micología Médica Básica. México D.F.: Mc Grew Hill; 2012. p. 10-11.
16. Forbes B, Sahm D, Weissfeld A. En Bailey & Scott Diagnóstico Microbiológico. BuenosAires: Panamericana; 2004. p. 750.
17. Prats G. En Microbiología clínica. España: Panamericana; 2006. p. 86.
18. González M, Peralta M, Mangeaud A, Rodríguez M, Simone D, Rustan M. Estudio de micosissuperficiales en la población de Villa del Prado, provincia de Córdoba, Argentina.Dermatología Argentina. 2016; 21(4).
19. Gaitán I, Del Cid N, Paz A, Cáceres A. Actividad contra hongos causantes de micosissubcutaneas de 12 especies vegetales de uso medicinal en Guatemala. Revista Científica de la
53
Facultad de Ciencias Químicas y Farmacia. 2015; 17(1).
20. Sanchez L, Galarza C, Matos R. Infecciones micóticas sistémicas o profundas:paracoccidioidomicosis. Dermatología Perú. 2010; 20(1).
21. Je-Seop P, Seung-Hak C, Seung-Ki Y, Young-Seok B, Young-Bin Y, Young Kwon K.Epidemiological Characterization of Opportunistic Mycoses between the Years 2006 and 2010in Korea. J.Microbiol. Biotechnol. 2016; 26(1).
22. Relloso S, Arechavala A, Guelfand L, Maldonado I, Walker L, Agorio I, et al. Onicomicosis:estudio multicéntrico clínico, epidemiológico y micológico. Revista Iberoamericana deMicología. 2012; 19(3).
23. Balleste R, Mousqués N, Gezuele E. Onicomicosis. Revisión del tema. Revista MedicaUruguay. 2003; 19(2).
24. Manzano P, Méndez L, Arenas R, Hernández F, Milán B, Torres J. Levaduras causantes deonicomicosis en cuatro centros dermatológicos mexicanos y su sensibilidad antifúngica acompuestos azólicos. Revista Iberonamericana de Micología. 2011; 28(1).
25. Lizardo G, Lizardo A. Presentación inusual de onicomicosis por Cándida albicans. RevistaMédica Honduras. 2012; 80(2).
26. Zuluaga A, Bedout C, Tabares A, Cano L, Restrepo A, Arango M, et al. Comportamiento delos agentes etiológicos de las onicomicosis en un laboratorio de micologia de referencia(Medellín 1994-203). Medicina Cutánea Ibero-Latino-Americana. 2005; 33(6).
27. Cavallera E, Asbati M. Onicomicosis por hongos filamentosos no dermatofitos. DermatologíaVenezolana. 2006; 44(1).
28. Goldsmith L, Katz S, Gilchrest B, Paller A, Leffell D, Wolf K. En Fitzpatrick Dermatologíaen Medicina General.: Panamericana; 2009. p. 188.
29. Bejar V, Villanueva F, Guevara J, González S, Vergaray G, Abanto E, et al. Epidemiología delas dermatomicosis en 30 años de estudio en el Instituto de Medicina Tropical Daniel ACarrión, Universidad Nacional Mayor de San Marcos, Lima, Perú. An Fac med. 2014; 75(2).
30. Sánchez L, Matos R, Kumakawa H. Infecciones micóticas superficiales. DermatologíaPeruana. 2009; 19(3).
31. Szepietowski J, Reich A. Stigmatisation in onychomycosis patients: a population-based study.Mycoses. 2009; 52(4).
32. Cobos D, Fierro L, Arellano I, Bonifaz A. La onicomicosis y su influencia en la calidad devida. Dermatología CMQ. 2016; 14(4).
33. Pérez J, Cárdenas C, Hoyos A. Características clínicas, epidemiológicas y microbiológicas dela onicomicosis en un laboratorio de referencia, Manizales (Caldas), 2009. Asociacióncolombiana de infectología. 2011; 15(3).
54
34. Mallo S, Coto P, Santos J. Onicomicosis blanca subungueal proximal por Fusarium. ActasDermosifiliogr. 2008; 99(1).
35. Larruskain J, Idígoras P, Mendiola J. Onicomicosis: diagnóstico y tratamiento. I T del SistemaNacional de Salud. 2008; 32(3).
36. Mendoza N, Palacios C, Cardona N, Gómez L. Onicomicosis: afección común de difíciltratamiento. Revista Asociación Colombiana Dermatológica. 2012; 20(2).
37. Abad J, Bonifaz A, Ponse R. Onicomicosis por Candida asociada con diabetes mellitus.Dermatología REvista Mexicana. 2007; 51(4).
38. Kacar N, Ergin S, Ergin C. The prevalence, aetiological agents and therapy of onychomycosisin patients with psoriasis: a prospective controlled trial. Clin Exp Dermatol. 2006; 32(1).
39. Zalacain A. En Protocolo de actuacion en el tratamiento de las micosis en el pie. Barcelona:Glosa, S.L.; 2016. p. 18.
40. Negroni R. Tratamiento de las onicomicosis. Revista de patología tropical. 2008; 37(2).
41. Clínica GdP. Diagnóstico y Tratamiento de Tiña y Onicomicosis en el Primer y Tratamientode Tiña y Onicomicosis en el Primer Nivel de ivel de. [Online]; 2009. Acceso 12 deDiciembrede 2017. Disponible en:http://www.imss.gob.mx/profesionales/guiasclinicas/gpc.htm.
42. Guzmán A. Importancia del laboratorio en el diagnóstico de las micosis invasoras. RevistaChilena Infectología. 2004; 21(1).
43. Gatica J, Arceu M, Muños L, Espinoza M, Sazunic I, Honeyman J, et al. Onicomicosis:comparación de tres métodos diagnósticos en pacientes del Archipiélago Juan Fernández.Elsevier. 2017; 32(3).
44. Torres E, Landgrave I, Fernández R, Arenas R. Métodos diagnósticos en onicomicosis. DelKOH a la biología molecular. Dermatología CMQ. 2010; 8(1).
45. Cuenca M, Gadea I, Estrella M, Pemán J, Pontón J, Rodríguez J. Procedimientos enMicrobiología Clínica. Diagnóstico microbiológico de las micosis y estudios de sensibilidad alos antifúngicos. [Online].; 2006.. Acceso 23 de Enero de 2018. Disponible en:https://www.seimc.org/contenidos/documentoscientificos/procedimientosmicrobiologia/seimc-procedimientomicrobiologia21.pdf.
46. Stephen S, Tosti A, Rubin A. Diagnostic applications of nail clippings. Dermatologia Clinica.2015; 33(2).
47. Lablinsan.cl. Manual microgiagnostica segunda parte. Diagnostico de hongos y levaduras.[Online].Acceso 23 de Enero de 2018. Disponible en:http://www.lablinsan.cl/manual/MANUAL_PARTE_2.pdf.
48. Chang A, Wharton J, Tam S, Kovich O, Kamino H. A modified approach to the histologicdiagnosis of onychomycosis. J Am Acad Dermatol. 2007; 57(1).
55
49. Constitución de la República del Ecuador. ; 2008
50. Universidad Central del Ecuador. Estatuto de la Universidad Central del Ecuador. En: Quito;2010
51. Rueda L. Ética e investigación en sujetos humanos. En: Escribar, W., A., Pérez F.M, yVillarroel S., R. Bioética. Editorial Mediterráneo. Santiago de Chile, 2004. De Lecouna. I. LosComités de Ética como mecanismos de protección en investigación biomédica. En: Pamplona;2011
52. Degreef H. Clinical forms of dermatophytosis (ringworn infection). Mycopathologia. 2008;166(5).
56
ANEXOS
Anexo 1:Oficio de aprobación del Hospital
57
58
Anexo 2: Hoja de recolección de datos
UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADORFACULTAD CIENCIAS MEDICAS
CARRERA DE LABORATORIO CLINICOHOJA DE RECOLECCION DE DATOS
TEMA: PREVALENCIA E IDENTIFICACIÓN DE HONGOS ENCULTIVOS MICÓTICOS DE UÑAS DE PIES EN PACIENTES DEL HOSPITAL
QUITO N°1POLICIA NACIONAL DURANTE EL PERIODO SEPTIEMBRE 2016-SEPTIEMBRE
2017
CODIGO HCL GÉNERO EDAD CULTIVO MICROORGANISMO
59
Anexo 3: Cronograma de actividades
2017-2018MES
ACTIVIDAD
OCTUBRE NOVIEMBRE DICIEMBRE ENERO FEBRERO MARZO
Recolección dedatos de pacientes
Aplicación detécnicas
Formulación deestadísticas
Conclusión detrabajoinvestigativo
Corrección delescrito
Impresión delproyecto deinvestigación
Presentación deltrabajo deinvestigación final
60
Anexo 4: Medios de cultivo para los hongos
61
Anexo 5: Características de los dermatofitos aislados con frecuencia en los laboratoriosclínicos
62
63
Anexo 6: Agentes etiológicos de micosis
64