PARASITOS INTESTINALES Y METODOS COPROPARASITOSCOPICOS

Este tipo de asociación sucede cuando un ser vivo (parásito) se aloja en otro de diferente especie (huésped u hospedero) del cual se alimenta.

El parasitismo abarca desde los virus hasta los artrópodos, pero por costumbre se ha restringido el término parásito para aquellos organismos que pertenecen al reino animal.

Parasitismo:

Desde el punto de vista biológico un parásito se considera más adaptado a su huésped, cuando le produce menor daño.

Los menos adaptados son aquellos que producen lesión o muerte al huésped que los aloja.

Parasitismo:

La transmisión de las enfermedades parasitarias depende de tres factores:

• Fuente de Infección.• Modo de transmisión.• Presencia del hospedero susceptible.

Parasitismo:

La transmisión se lleva a cabo por:• Contacto directo o indirecto• Alimentos.• Agua.• Tierra.• Transmisores vertebrados o artrópodos.

Parasitismo:

El hombre infectado por un parásito puede ser:

• Su único hospedero.• Su hospedero principalmente con otros

animales• Hospedero fortuito.

Parasitismo:

Los parásitos se pueden clasificar de distintas maneras.

Si habitan en el interior o en la parte externa del huésped se dividen en endoparásitos y ectoparásitos. Algunos autores le dan el nombre de infección a la invasión interna y de infestación a la externa, como ocurre con los artrópodos.

Clasificación:

Los parásitos, como todos los seres vivos, están clasificados en grupos.Estos grupos de mayor a menor son: Reino, phylum, clase, orden, familia, género y especie.

En parasitología, Los grupos más importantes que se estudian están comprendidos en el reino Protista, subreino Protozoa, Nematoda, Platyhelminthes y Arthropoda.

Clasificación:

Las parasitosis intestinales son infecciones producidas por parásitos cuyo hábitat natural es el aparato digestivo del hombre.

Algunos de ellos pueden observarse en heces aún estando alojados fuera de la luz intestinal, por ejemplo en el hígado (Fasciola hepatica) o en pulmón (Paragonimus mexicanus).

Qué son las parasitosis intestinales:

Parasitosis IntestinalPor Protozoarios:Clásicos:• Giardia lamblia o duodenalis) • Entamoeba histolytica• Balantidium coliEmergentes:• Isospora belli • Cyclospora cayetanensis • Cryptosporidium parvumEn evaluación: • Pentatrichomonas hominis• Chilomastix mesnili • Blastocystis hominisSistémicos con compromiso intestinal:• Trypanosoma cruzi (Enfermedad de Chagas)

Nematelmintos (nemátodos):• Trichuris trichiura • Strongyloides stercoralis• Uncinarias (A. duodenale y N. americanus) • Enterobius vermicularis (oxiuros) • Ascaris lumbricoidesPlatelmintos:• Taenia solium o T. saginata • Hymenolepis spp.• Diphyllobothrium latum En estadio no definitivo• Echinococcus spp. • Fasciola hepatica Trematodos:• Schistosoma mansoni

Parasitosis Intestinal

Obtención de la muestra fecal

Generalmente la muestra emitida espontáneamente es adecuada para el examen coprológico.

• Debe recogerse en un recipiente (frasco estéril).• No debe mezclarse con orina (principalmente mujeres).• Debe enviarse al laboratorio inmediatamente después de obtenida.• Se puede obtener muestra directamente del intestino, como sucede cuando se efectúan rectoscopias o se hace tacto rectal.

Muestras inadecuadas

• Las que se han mantenido por más de un día a temperatura ambiente;• las que se obtienen después de un estudio radiográfico del tubo digestivo, en el cual se usa bario; • las que presentan abundante cantidad de algunas sustancias terapéuticas como aceites o antidiarreicos con bismuto;• las que provienen de gente que ha tomado antiparasitarios o laxantes (en caso de ser necesario: sulfato de sodio).

Conservación y envío de muestras fecales Refrigeración. Este es el método más sencillo y práctico, por algunas horas o por un día.

Preparaciones selladas. Pueden hacerse con vaselina o barniz de uñas, aplicados en los bordes del cubre-objeto.

Formol. Este mantiene la muestra sin descomposición, disminuye el mal olor y fija los parásitos para estudio posterior.

•Reactivo de PVA (alcohol polivinílico).

•Reactivo de MIF (merthiolate, iodo, formol).

•Es importante determinar la consistencia de las heces fecales y clasificarlas en líquidas, blandas o duras.

•El color anormal tiene significado patológico, por ejemplo: negro en melenas, blanco en acolia.

•Debe observarse si existe moco, sangre, restos alimenticios o helmintos.

• Se mide el pH (7.0 normal), azúcares, sangre oculta,

Examen macroscópico

Examen microscópicoCoproparasitoscópico simple:

• Se toma el tamaño de una “nuez” y se cubre con agua destilada o sol. salina hasta cubrir totalmente.• Se homogeniza controlando la cantidad de heces fecales de tal modo que se pueda leer a través de la preparación; evitar preparaciones muy gruesas o muy delgadas. • Se deja reposar 3-5 min y se toma una gota de la parte líquida y se coloca en el portaobjetos. Puede colocarse una gota de lugol para resaltar algunas estructuras, como núcleos de protozoos y da una coloración café a los huevos y larvas.

•Leucocitos: Estas células en materia fecal, generalmente se encuentran asociadas a moco. •Cristales de Charcot-Leyden: Se originan de productos de desintegración de los eosinófilos.•Restos alimenticios de origen vegetal: los almidones son frecuentes y se observan como gránulos de forma y tamaño irregulares. •Flora bacteriana: siempre está presente de manera normal. •Levaduras: pueden observarse en condicio nes normales, pero aumentan notoriamente cuan do existe desequilibrio de la flora bacteriana. •Células de descamación y cristales: se pueden ver al examen coprológico y no tienen significado especial.

Examen microscópico

Recuento de huevos: helmintos

• Kato-Katz(frotis grueso)

Recuento de huevos: helmintos

• Stoll(Sosa cáustica)

Métodos de concentración:

• Formol-éter(Quistes, huevos y

larvas)

Métodos de concentración:

• Técnica de flotación con sulfato de zinc – Faust Tamizar 1 g de materia fecal con aprox. 10ml de agua o sol. salina. Se centrifuga 1500 rpm por 5 min (repetir al menos 2 veces) Al sedimento se resuspende con 2-3 ml de sulfato de zinc con densidad de 1.18 (si contiene formalina la densidad debe ser de 1.2). Se agrega más sulfato de zinc hasta ¾ del vol. total del tubo. Se centrifuga de nuevo a 1500 rpm por 5 min. Con ayuda de una pipeta o asa de platino se recoge una o dos gotas y se coloca en portaobjetos (se puede añadir lugol). (se puede tomar del sedimento: huevos larvados son pesados y no flotan).

Método de cinta adhesivaó Graham: Oxiuros

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