instituto nacional de investigaciones forestales ... · insecticidas para el control del gusano...

INSTITUTO NACIONAL DE INVESTIGACIONES

FORESTALES, AGRICOLAS Y PECUARIAS

CENTRO DE INVESTIGACION REGIONAL DEL NORESTE

CAMPO EXPERIMENTAL EBANO

MANEJO INTEGRADO DE

LAS PLAGAS DEL ALGODONERO

EN LA PLANICIE HUASTECA

FOLLETO TECNICO No. 8 DICIEMBRE DE 2001

SECRETARIA DE AGRICULTURA, GANADERIA,

DESARROLLO RURAL, PESCA Y ALIMENTACION

SECRETARIO Javier Bernardo Usabiaga Arroyo

SUBSECRETARIO DE AGRICULTURA Y GANADERIA

Ing. Víctor Villalobos Arámbula

SUBSECRETARIO DE DESARROLLO RURAL

Ing. Antonio Ruiz García

SUBSECRETARIO DE PLANEACION

Lic. Juan Carlos Cortes García

SUBSECRETARIO DE PESCA

Jerónimo Ramos Sáenz



DIRECTOR GENERAL Dr. Jesús Moncada de la Fuente

COORDINADOR GENERAL DE INVESTIGACION Y DESARROLLO

Dr. Ramón A. Martínez Parra

DIRECTOR GENERAL DE INVESTIGACION AGRICOLA

Dr. Rodrigo Aveldaño Salazar

DIRECTOR GENERAL DE INVESTIGACION PECUARIA

Dr. Carlos A. Vega y Murguía

DIRECTOR GENERAL DE INVESTIGACION FORESTAL

Dr. Hugo Ramírez Maldonado

DIRECTOR GENERAL DE ADMINISTRACION

Dr. David Moreno Rico

CENTRO DE INVESTIGACION REGIONAL NORESTE

DIRECTOR REGIONAL Dr. Luis Angel Rodríguez del Bosque

DIRECTOR DE INVESTIGACION

Dr. Jorge Elizondo Barrón

DIRECTOR DE ADMINISTRACION

C.P. Manuel A. Ortega Vieyra

DIRECTOR DE COORDINACION Y VINCULACION ESTATAL

EN SAN LUIS POTOSI M.C. José Luis Barrón Contreras

JEFE DEL CAMPO EXPERIMENTAL EBANO

M.C. Eduardo Céspedes Torres



CENTRO DE INVESTIGACION REGIONAL DEL

NORESTE

CAMPO EXPERIMENTAL EBANO

MANEJO INTEGRADO DE LAS PLAGAS

DEL ALGODONERO EN LA PLANICIE

HUASTECA

M.C. Enrique Garza Urbina

Investigador del área de Entomología Campo Experimental Ebano

M.C. Antonio P. Terán Vargas

Investigador del área de Entomología Campo Experimental Sur de Tamaulipas

Folleto Técnico Núm. 8

San Luis Potosí, S.L.P., México. Diciembre de 2001

MANEJO INTEGRADO DE LAS PLAGAS DEL

ALGODONERO EN LA PLANICIE HUASTECA No está permitida la reproducción total o parcial de este folleto, ni la transmisión de ninguna forma o por cualquier medio ya sea electrónico, mecánico, por fotocopias, por registro u otros medios, sin permiso previo y por escrito de los titulares del Copyright. Derechos reservados © 2001, Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agrícolas y Pecuarias. Serapio Rendón No. 83 Col. San Rafael Delegación Cuauhtémoc 06470 México, D. F. Tel. (55) 5140 1600 Primera edición Tiraje 500 ejemplares Impreso en México Clave INIFAP/CIRNE A-204 Folleto Técnico Núm. 8. Diciembre de 2001 CAMPO EXPERIMENTAL EBANO Km. 67 Carretera Valles -Tampico Apdo. Postal # 87 Ebano, San Luis Potosí, México. Tel. y Fax (845) 263 3090 La cita correcta de este folleto es: Garza U. E., Terán V. A. P., 2001. Manejo integrado de las plagas del algodonero en la Planicie Huasteca. INIFAP-CIRNE. Campo Experimental Ébano. Folleto Técnico Núm. 8. San Luis Potosí, México. 49 p.

CONTENIDO

INTRODUCCION

PICUDO DEL ALGODONERO Anthonomus grandis Descripción

Huevo

Larva

Pupa

Adulto

DAÑOS

DINAMICA POBLACIONAL

MANEJO DEL PICUDO DEL ALGODONERO

Control cultural

Uso de feromonas

Desvare y barbecho

Defoliación

Fecha de siembra

Control biológico

Control químico

Muestreos y umbral de aplicación

Aplicación de insecticidas

Resistencia a insecticidas

GUSANO TABACALERO Heliothis virescens

Descripción

Huevo

Larva

Pupa

Adulto

DAÑOS


MANEJO DEL GUSANO TABACALERO

Control biotecnológico

Áreas de refugio

Control biológico

Conservación de fauna benéfica

Liberación de fauna benéfica

Control químico

Página

1

2

2

2

2

3

3

5

5

7

7

7

9

9

10

10

17

17

18

18

20

21

21

21

23

23

23

25

25

25

27

29

29

30

31




GUSANO SOLDADO Spodoptera exigua

Descripción

Huevo

Larva

Pupa

Adulto

DAÑOS


MANEJO DEL GUSANO SOLDADO

Control biológico

Control químico




LITERATURA CITADA

31

31

32

32

34

34

34

36

36

36

39

39

39

40

40

40

43

46

INDICE DE FIGURAS

Fig. 1. Larvas del picudo del algodonero

grandis

Fig. 2. Pupas del picudo del algodonero

A. grandis

Fig. 3. Adulto del picudo del algodonero

A. grandis

Fig. 4. Cuadro dañado por oviposición

del picudo del algodonero A. grandis

Fig. 5. Bellota dañada por el picudo

del algodonero A. grandis

Fig. 6. Dinámica poblacional del picudo

del algodonero A. grandis en la Planicie Huasteca

Fig. 7. Trampa con feromona para la

captura de adultos de A. grandis

Fig. 8. Adulto de la avispita Catolaccus grandis

Fig. 9. Larva de C. grandis alimentándose de A. grandis

Fig. 10. Daño de A. grandis y su parasitismo causado por C. grandis en la Planicie Huasteca

Fig. 11. Adulto de chinche Creontiades sp

Fig. 12. Adulto de chinche Dysdercus sp

Fig. 13. Huevecillos del gusano tabacalero

H. virescens

Fig. 14. Larva del gusano tabacalero

Página

4

4

6

6

8

8

11

11

12

13

15

15

22

22

H. virescens

Fig. 15. Pináculo cerdígero del gusano

tabacalero H. virescens

Fig. 16. Adulto del gusano tabacalero

H. virescens

Fig. 17. Cuadro dañado por gusano

tabacalero H. virescens

Fig. 18. Dinámica poblacional del gusano

tabacalero H. virescens en la Planicie Huasteca

Fig. 19. Larvas de gusano tabacalero

H. virescens por metro lineal de plantas en algodones normal y Bollgard en la Planicie Huasteca

Fig. 20. Cuadros dañados por gusano

tabacalero H. virescens por metro lineal de plantas en algodones normal

y Bollgard en la Planicie Huasteca

Fig. 21. Número de insectos benéficos en

10 redazos en lote de manejo

integrado de plagas y lote testigo

en la Planicie Huasteca

Fig. 22. Masa de huevecillos del gusano

soldado S. exigua

Fig. 23. Larvas del gusano soldado S. exigua

Fig. 24. Larva del gusano soldado S. exigua

Fig. 25. Adulto del gusano soldado S. exigua

Fig. 26. Cuadro dañado por gusano soldado

S. exigua

24

24

26

26

28

28

30

35

35

37

37

38

INDICE DE CUADROS

Cuadro 1. Aplicaciones de insecticidas en lote

testigo y lote MIP con liberaciones

de Catolaccus grandis en la Planicie

Huasteca

Cuadro 2. Efectividad de insecticidas sobre

adultos de la chinche Creontiades

sp. en la Planicie Huasteca

Cuadro 3. Efecto residual de insecticidas

sobre adultos de la avispita

Catolaccus grandis en la Planicie

Huasteca

Cuadro 4. Efectividad de insecticidas sobre

adultos del picudo del algodonero

A. grandis de la Planicie Huasteca

Cuadro 5. Dosis Letal Media (DL50) de

insecticidas en adultos del picudo

del algodonero en la Planicie

Huasteca

Cuadro 6. Larvas en cuadros y cuadros

dañados en la evaluación de

insecticidas para el control del

gusano tabacalero H. virescens de

la Planicie Huasteca

Cuadro 7. Proporción de resistencia a

insecticidas del gusano tabacalero

H. virescens de la Planicie Huasteca

Cuadro 8. Larvas chicas de S. exigua por

metro lineal de plantas en la

evaluación de insecticidas en la

Planicie Huasteca

Cuadro 9. Larvas grandes de S. exigua por

metro lineal de plantas en la

Página

14

16

16

19

20

33

34

41

42

evaluación de insecticidas en la

Planicie Huasteca

Cuadro 10. Efectividad de insecticidas

convencionales sobre larvas de S.

exigua de la Planicie Huasteca

Cuadro 11. Proporción de resistencia y de

sinergismo a insecticidas en

gusano soldado S. exigua de la

Planicie Huasteca

44

45

1

MANEJO INTEGRADO DE LAS PLAGAS DEL

ALGODONERO EN LA PLANICIE HUASTECA

Enrique Garza Urbina1

Antonio P. Terán Vargas2

INTRODUCCION

El cultivo del algodonero Gossypium hirsutum

representa una de las actividades agrícolas más importantes para el desarrollo y abastecimiento de materia prima a la industria textil, aceitera y pecuaria, además de generar gran cantidad de empleos y como fuente de divisas por concepto de exportaciones. En la Planicie Huasteca, región que comprende el oriente de San Luis Potosí, norte de Veracruz y sur de Tamaulipas, la superficie establecida con este cultivo ha oscilado de 2 800 a 61 mil hectáreas, con un promedio de 27 mil hectáreas por año durante la década de los noventas, esta fluctuación tan grande se ha debido principalmente a problemas de plagas, las cuales representan uno de los principales factores limitantes de la productividad de este cultivo, por su efecto negativo sobre el rendimiento, calidad de la fibra y semilla; entre éstas destacan por su abundancia y daños el picudo del algodonero Anthonomus grandis Boheman, el gusano tabacalero Heliothis virescens Fabricius y el gusano soldado Spodoptera exigua Hübner.

El control de estas plagas se realiza con aplicaciones de insecticidas, práctica que representa más del 30 por ciento de los costos de producción. Las cuales se caracterizan por la sobredosificación y la utilización de mezclas; por otra parte, la selección de los insecticidas no se realiza con base en una estrategia regional, lo que origina problemas de residuos tóxicos, contaminación ambiental, desequilibrio ecológico y el incremento de la resistencia de las plagas a los insecticidas, lo cual ha

1 M.C. Investigador del Campo Experimental Ebano. CIRNE-

INIFAP. 2 M.C. Investigador del Campo Experimental Sur de

Tamaulipas. CIRNE-INIFAP.

2

ocasionado en otros años y en otras regiones el abandono casi total de las actividades relacionadas con este cultivo.

La presente publicación tiene la finalidad de dar a conocer la estrategia de manejo integrado de las principales plagas del algodonero en la Planicie Huasteca. A continuación se presenta una descripción detallada de cada una de ellas, incluyendo los diferentes métodos de control. PICUDO DEL ALGODONERO Anthonomus grandis

Entre los insectos plaga más importantes en la Planicie Huasteca destaca el picudo del algodonero, ya que está presente todos los años y las pérdidas en rendimiento pueden ser totales si no se controla oportunamente.

Descripción

Huevo. Los huevecillos son ligeramente ovalados con un diámetro aproximado de 0.8 mm, su color varía de transparente a aperlado brillante según el avance de incubación. La hembra oviposita hasta 250 huevos durante toda su vida, para lo cual hace una pequeña perforación con las mandíbulas en cuadros y bellotas, inserta un huevecillo y tapa el orificio con una sustancia pegajosa secretada por las glándulas accesorias. Generalmente deposita un huevecillo por cuadro y al final del ciclo deposita varios en las bellotas. Las oviposturas son fácilmente detectadas por la presencia de una protuberancia que recién depositado el huevecillo es de color blanco lechoso y posteriormente se torna café. Para que la larva emerja, el huevecillo requiere de dos a tres días (Alonzo, 1983).

Larva. Las larvas son blancas, apodas, rechonchas, con el cuerpo rugoso y curveado, la cápsula cefálica y las partes bucales son de color café (Figura 1). Llegan a medir hasta 12 mm de longitud y pasan por cuatro estadios larvales para lo cual requieren de un período de

3

seis a ocho días después del cual se transforman en pupa (Vazquez, 1998).

Pupa. La pupa se encuentra dentro de los cuadros y bellotas en una celda rudimentaria, es de tipo libre, su forma y color varían de acuerdo al desarrollo pero normalmente son de color blanco (Figura 2); este lapso requiere de seis a siete días después del cual emerge el adulto (Alonzo, 1983 y Pacheco, 1985). El período desde que la hembra deposita sus huevecillos hasta que emerge el adulto dura un promedio de 19 días en la Planicie Huasteca.

Adulto. El adulto de esta plaga es un escarabajo que mide de 10 a 12 milímetros de longitud, es de color café rojizo, el cual cambia con la edad de un color cenizo a un pardo obscuro, que obtiene debido a la pérdida parcial de su pelo o escamas de las alas anteriores (elitros), las cuales son duras con líneas paralelas y cubren completamente el abdomen (Figura 3). El segundo par de alas son grisáceas y se encuentran plegadas bajo el primer par. Su pico es delgado y curvo, mide la mitad de la longitud de su cuerpo, al final del cual se encuentran las mandíbulas. En el fémur de las patas anteriores tiene dos dientes o espuelas, el interior es más largo que el exterior; en las patas medias sólo tiene un diente (Pacheco, 1985). Se puede encontrar sobre el follaje de la planta de algodón y más comúnmente en las flores. El adulto se alimenta preferentemente del polen de los cuadros y cuando estos aún no se producen lo realiza sobre los brotes terminales y peciolos de la hoja. Ante la ausencia de plantas de algodonero se alimenta de polen de especies silvestres de la misma familia del algodonero. El macho del picudo es menos activo que la hembra y daña un número menor de fructificaciones, principalmente cuadros. Las hembras adultas provenientes de hospedantes alternas requieren alimentarse sobre plantas de algodonero para reanudar la actividad sexual (Pacheco, 1985).

4

Figura 1. Larvas del picudo del algodonero A. grandis.

Figura 2. Pupas del picudo del algodonero A. grandis.

5

DAÑOS

Los daños son causados por los adultos y las larvas. Las hembras y los machos perforan cuadros y bellotas para alimentarse; los primeros son más preferidos pero al final del ciclo cuando estos escasean perforan bellotas tiernas. Además del daño de alimentación, la hembra deposita sus huevecillos en cuadros de más de un tercio de desarrollo (7 mm de diámetro), las larvas al emerger se alimentan del interior de estos, los cuales abren sus brácteas y toman un color amarillo (Figura 4), se desprenden de la planta en un período de seis a nueve días después de la ovipostura. Las bellotas también son ovipositadas al final del ciclo cuando la producción de cuadros escasea, estas raramente se desprenden de la planta y el daño puede variar desde la pérdida de un cárpelo hasta la bellota completa (Figura 5) (Anónimo, 1983). En la Planicie Huasteca, el daño ocasionado por el picudo a principios de la temporada es menor que el de mediados a finales de la misma. A partir de que se producen los primeros cuadros susceptibles, (36 días después de la siembra), a los 70 días, el picudo daña por cada metro cuadrado uno de cada 26.7 producidos (3.7 %) y de los 70 días al final del ciclo el daño se incrementa a un cuadro dañado por cada 4.7 producidos por m2 (21.3 %), esto significa un incremento del daño de 5.7 veces, de mediados a finales de la temporada. DINAMICA POBLACIONAL

Debido a la ausencia de un invierno definido en la

Planicie Huasteca el picudo se encuentra activo durante todo el año. En trampas con feromona las mayores capturas de picudo se presentan de noviembre a marzo, período durante el cual se realiza la cosecha y se hacen las labores de desvare y barbecho. Durante este lapso se presenta una gran migración de picudos en busca de áreas de refugio y durante los meses de mayo a junio, la actividad es muy

6

Figura 3. Adulto del picudo del algodonero A. grandis.

Figura 4. Cuadro dañado por oviposición del picudo del

algodonero A. grandis.

7

reducida (Figura 6). Una vez que se establece el cultivo, los adultos sobrevivientes migran de las áreas de refugio a los campos de algodón y aún cuando no hay cuadros, se les puede encontrar en las plantas alimentándose de los brotes terminales y peciolos, sin que se lleguen a establecer en el predio.

Una vez que se producen los primeros cuadros susceptibles, el picudo se establece en los lotes de algodón al depositar sus huevecillos en estos y la migración entre predios disminuye, las capturas en las trampas de finales de agosto a mediados de octubre son menores.

La población de picudo y el daño en cada sembradío se desarrolla de acuerdo a la cantidad inicial de insectos y a la situación misma del cultivo, por tal razón, es recomendable retardar su establecimiento en el predio realizando las primeras aplicaciones con umbrales de daño bajos. MANEJO DEL PICUDO DEL ALGODONERO

Control cultural

Uso de feromonas

El macho del picudo del algodonero produce una

feromona compuesta de dos alcoholes y dos aldehidos, la cual actúa como atrayente sexual de hembras durante el desarrollo del cultivo (primavera-verano) y como feromona de agregación atrayendo ambos sexos cuando no hay cultivo (otoño-invierno) (Tumlinson, et al 1969). La misma respuesta se obtiene con la feromona sintética llamada “Grandlure “. El uso de trampas con ésta debe considerarse como parte importante en un manejo integrado de plagas, con el fin de monitorear y reducir poblaciones de este insecto (Hardee, et al. 1972).

8

Figura 5. Bellota dañada por el picudo del algodonero A. grandis.

Figura 6. Dinámica poblacional del picudo del algodonero A. grandis en la Planicie Huasteca.

0

50

100

150

200

250

300

350

400

450

1-En

e-96

5-Fe

b-96

11-M

ar-9

6

15-A

br-9

6

1-M

ay-9

5

12-J

un-9

5

17-J

ul-95

21-A

go-9

5

25-S

ep-9

5

30-O

ct-95

4-Di

c-95

9

Un tipo de trampa sencilla y económica, consiste en una estaca de 1.5 a 2.0 metros de largo, la cual se cubre con pegamento o grasa para la captura de los picudos; la feromona sintética con una dosis mínima de 12 miligramos, que viene en un dispersante tipo “Sandwich”, se fija en la parte superior de la estaca con una tachuela o clavo (Figura 7), la cual se debe renovar cada 25 a 30 días. El trampeo se reaizara durante el periodo comprendido entre el momento de defoliar el cultivo y el inicio de la siembra del siguiente año; las trampas se colocan cada 500 metros en la periferia de los terrenos que tuvieron algodón, presas, arroyos, caminos con arboleda, en áreas enmontadas y en cercas de áreas ganaderas (Salgado, 1993).

Desvare y barbecho

Estas labores son actividades fitosanitarias legisladas y obligatorias, se deben realizar tan pronto se termine de cosechar el cultivo, tienen como objetivo destruir los residuos que quedan en el terreno, eliminar las plantas de algodonero en donde viven y se reproducen insectos plaga, con el fin de exponerlos a diversos agentes bióticos y climáticos adversos.

Defoliación

La aplicación de defoliantes al final del ciclo es una práctica agronómica empleada para eliminar hojas, cuadros y bellotas pequeñas de las que ya no se obtendrá provecho, esta labor se debe realizar para favorecer la cosecha mecánica, acortar el ciclo del cultivo y en consecuencia reducir las aplicaciones de insecticidas; además, eliminar los suministros de alimentación del picudo del algodonero, con lo que se evita la posibilidad de una generación extra de la plaga (Vázquez, 1998).

La defoliación se realiza con la aplicación de Thidiazuron, en dosis de 15 gramos de ingrediente activo por hectárea (g I. A./ha) en forma parcial, cuando el cultivo presenta el 60 por ciento de capullos y el 40 por ciento de bellotas duras, o en defoliación total con el mismo producto,

10

en dosis de 75 g I. A./ha cuando se observe más del 70 por ciento de capullos (Salgado, 1996).

Fecha de siembra

Los agricultores que siembran algodón quedan obligados a cumplir con las fechas de siembra, que comprenden del 15 de junio al 25 de julio para la Planicie Huasteca, según se adelanten o atrasen las lluvias, cuando la siembra se realiza después de este periodo el rendimiento se reduce hasta en un 20 por ciento y se tiene una mayor incidencia de plagas (Salgado y Silguero, 1985).

Control biológico

Esta plaga tiene agentes de control biológico importantes, entre éstos se encuentra una serie de parasitoides de larvas (Chesnut y Cross, 1971) entre los que destaca el ectoparasitoide Catolaccus grandis (Burks) (Hymenoptera: Pteromalidae) (Figura 8), por su alta especificidad sobre esta plaga y sus características intrínsecas que lo hacen un promisorio agente de control mediante la cría masiva y liberación en campo (Morales y King, 1991). Antes de la oviposición, las hembras paralizan a sus víctimas con la inyección de un veneno, para evitar el movimiento de las larvas y el daño a los huevos depositados en la superficie del integumento (Adams et al, 1969).

El control biológico del picudo del algodonero se realiza mediante liberaciones masivas de la avispita Catolaccus grandis, un parásito específico que ataca las larvas y pupas de esta plaga (Figura 9); las liberaciones se deben llevar a cabo durante las primeras siete semanas de fructificación del cultivo, al detectar las primeras infestaciones, para lo cual se deben realizar dos liberaciones semanales de 600 hembras/hectárea/liberación (1,200 hembras por semana), en un mínimo de cuatro puntos por hectárea.

En la Planicie Huasteca se ha implementado el control biológico con este parasitoide en parcelas demostrativas, en las cuales se han logrado parasitismos de

11

Figura 7. Trampa con feromona para la captura de adultos de A. grandis.

Figura 8. Adulto de la avispita Catolaccus grandis.

12

Figura 9. Larva de C. grandis alimentándose de A. grandis. larvas y pupas del picudo del algodonero superiores al 80 por ciento y con daños de cuadros y bellotas muy reducidos, similares a los obtenidos en parcelas “Testigo”, donde se realizaron aplicaciones de insecticidas para su control (Figura 10). Mediante este manejo se redujo el uso de insecticidas en un 70 por ciento (Cuadro 1), lo cual genera una disminución de los costos de producción y de la contaminación ambiental.

Durante el periodo de liberaciones de la avispita es probable que se presenten chinches de los géneros Creontiades y Dysdercus (Figuras 11 y 12), las cuales ocasionan daños en cuadros y bellotas; en caso de detectar una o más chinches por planta se deben aplicar insecticidas para su control (Cuadro 2). Sin embargo, será necesario retrasar la siguiente liberación de Catolaccus grandis de cuatro a cinco días, debido a que la avispita presenta alta susceptibilidad a estos productos, con mortalidades superiores al 80 por ciento en machos y hembras, aún a las 48 horas después de la aplicación (Cuadro 3), lo cual

13

0102030405060708090

100

24/IX

28/IX

01/X

05/X

08/X

12/X

15/X

19/X

22/X

26/X

29/X

03/X

I05

/XI

09/X

I12

/XI

16/X

I23

/XI

Fechas de Muestreo

Po

rcie

nto

% Parasitismo Daño/Lote Testigo Daño/Lote MIP

Aplicación

Figura 10. Daño de A. grandis y su parasitismo causado por C. grandis en la Planicie Huasteca.

14

Cuadro 1. Aplicaciones de insecticidas en lote testigo y lote MIP con liberaciones de Catolaccus. grandis en la Planicie Huasteca.

Lote No. de

Aplicaciones

Insecticidas Dosis

g I. A./ha

Plaga

Testigo 11 Paratión metílico 720 Anthonomus grandis

MIP 1

2

Oxamil

Paratión metílico

226

720

Creontiades y Dysdercus

Anthonomus grandis

15

Figura 11. Adulto de chinche Creontiades sp.

Figura 12. Adulto de chinche Dysdercus sp.

16

Cuadro 2. Efectividad de insecticidas sobre adultos de la chinche Creontiades sp. en la Planicie Huasteca.

Insecticida

Dosis g I. A./ha

Grupo Toxicológico

% Efectividad

Endosulfán Paratión metílico Oxamil Fipronil

525 720 226 40

Oc-cd FC-SM CA-MM

Fenilpirazoles

50.0 87.5 90.4 37.5

Cuadro 3. Efecto residual de insecticidas sobre adultos de la avispita Catolaccus grandis en la Planicie

Huasteca.

% Mortalidad

24 hr DDA 48 hr DDA

Insecticida

Dosis G I. A./ha

Grupo Toxicológico

♀ ♂ ♀ ♂ Endosulfán Paratión metílico Oxamil Fipronil

525 720 226 40

Oc-cd FC-SM CA-MM

Fenilpirazoles

78 100 100 100 100 100 90 100

100 100 100 100 89 100 100 100

DDA: Días después de la aplicación.

17

reduce a un 20% el parasitismo de A. grandis por esta avispita (Figura 10).

En lo que respecta a Beauveria bassiana, un hongo cosmopolita que infecta a más de 700 especies de insectos y ha sido evaluado a nivel de laboratorio contra un gran número de insectos plaga, como el picudo del algodonero, no presentó buena efectividad en su control en las evaluaciones que se realizaron bajo condiciones de campo en la Planicie Huasteca (Cuadro 4).

Control químico

Muestreos y umbral de aplicación Se deben muestrear aleatoriamente un mínimo de 100 cuadros de 1.0 a 1.5 centímetros de longitud y 100 bellotas de un tercio de desarrollo en forma semanal, para revisar daño por oviposición y alimentación. Además, cuantificar el número de adultos presentes en 100 flores elegidas al azar.

Considerando que el daño del picudo al principio de la temporada es menor que el de mediados y finales y con la finalidad de que este no se establezca en los lotes y evitar un daño tardío alto, las aplicaciones de insecticidas se llevaran a cabo cuando se detecten los primeros adultos en el predio y se encuentre de un 2 a 3 por ciento de cuadros dañados por alimentación y oviposición, en la etapa de primeros cuadros susceptibles hasta los 70 días posteriores a la siembra; después de este período, las aplicaciones podrán continuarse con un nivel de daño en cuadros del 5 al 8% o cuando se detecten cinco adultos en 100 flores, hasta que las últimas bellotas a cosechar sean firmes al tacto.

18


Dentro del manejo integrado de plagas, los insecticidas juegan un papel muy importante, sin embargo, el uso indebido de estos productos ocasiona problemas de contaminación ambiental, resistencia de las plagas y residuos tóxicos en las cosechas. Una de las bases para el buen uso y manejo de estos productos es la evaluación biológica, a fin de valorar los beneficios que se deriven de su uso (Mota, et al, 1994).

Debido a que los estudios con esta plaga muestran una pérdida de la efectividad de los insecticidas (Cuadro 4) y un incremento de la resistencia, se sugiere su utilización en ventanas de aplicación, iniciando con azinfós metílico y fipronil en dosis de 350 y 60 g I. A./ha y después de los 70 días de la siembra continuar con paratión metílico en dosis de 720 g I. A./ha; con la finalidad de alargar la vida útil de los insecticidas, mantener la susceptibilidad de la población de picudo, conservar la fauna benéfica natural y de no incrementar los niveles de resistencia.

Cuando se utiliza el control biológico del picudo del algodonero mediante liberaciones masivas de la avispita Catolaccus grandis, el uso de insecticidas para complementarlo, se llevará a cabo de cinco a ocho días después de la última liberación, utilizando paratión metílico en dosis de 720 g I. A./ha.


La población de picudo del algodonero de la Planicie Huasteca alcanzó los valores de Dosis Letal Media (DL50) más altos en 1995, mientras que en 1999 y 2000 se observó una reducción de estos valores (Cuadro 5), debido a la disminución de las aplicaciones de insecticidas por temporada para el control de esta plaga y del gusano

19

Cuadro 4. Efectividad de insecticidas sobre adultos del picudo del algodonero A. grandis de la Planicie Huasteca.

% de Efectividad Insecticida Dosis G I. A./ha

Grupo Toxicológico 1997 1998 1999 2000

Endosulfán Monocrotofós Paratión metílico Azinfós metílico Fosmet Malatión Oxamil Carbarilo Cyflutrin Fipronil Beauveria bassiana

537 900 720 350 500

2000 226

1600 37.5 60

2.3 x 1010 conidias

Oc-cd FA-OM FC-SM FH-SM FH-SM

F-cx CA-MM CC-MM

Pirt Fenilpirazoles

I-Micr.

34.2 ----

83.5 39.7 ----

32.8 50.6 ---- ----

53.4 0.0

73.4 ----

86.0 79.7 ----

78.4 68.3 ---- ---- ----

26.5

42.5 ----

47.4 17.5 ----

41.3 62.0 ---- ----

86.2 ----

47.4 40.2 93.1 74.7 60.8 29.8 59.7 14.4 53.6 70.1 ----

20

Cuadro 5. Dosis letal Media (DL50)* de insecticidas en adultos del picudo del algodonero en la Planicie Huasteca.

DL50 µg/picudo Insecticida

1993 1994 1995 1999 2000

Paratión metílico Azinfos metílico Malatión

3.086

0.027

0.687

0.067 0.219 10.38

0.007 0.120 1.260

0.001 0.013

* 72 hr después de la aplicación.

tabacalero, por el uso del trampeo masivo y del algodón transgénico respectivamente; sin embargo, debido a que la mayoría de estos productos muestran una perdida de efectividad en campo (Cuadro 4), se requiere una estrategia de manejo regional de insecticidas para conservar la susceptibilidad de esta población a los insecticidas convencionales.

GUSANO TABACALERO Heliothis virescens Esta plaga fue la causante de la crisis más severa del cultivo del algodonero en la Planicie Huasteca en la década de los 60, debido a la resistencia que presentó a insecticidas clorados, fosforados y carbamatos, caracterizándose ésta por el abandono total de las actividades algodoneras. A partir de 1980 el cultivo toma un nuevo auge, estimulado por los apoyos oficiales al mismo y por la introducción de los insecticidas piretroides en el mercado, sin embargo, se ha realizado un uso extensivo de estos y actualmente presentan problemas para su control (Téran y Garza, 1999).

21

Descripción

Huevo. Los huevecillos son de forma esférica con la base aplanada, en la parte superior presentan un pequeño abultamiento del cual bajan de 22 a 24 estrías perpendiculares. Son de color blanco aperlado o cremoso que contrasta notablemente con el verde de la planta, toman una coloración amarillenta que después es obscura cuando está cerca la eclosión (Figura 13), lo cual ocurre de 3 a 4 días después de la oviposición. Las palomillas de esta plaga llegan a poner cerca de mil huevecillos, de preferencia en plantas que están formando abundante tejido, principalmente en las yemas terminales y hojas tiernas del tercio superior (Peterson, 1964; Bohmfalk et al., 1982). Algunas veces las palomillas ovipositan en cuadros, brácteas, flores, bellotas y tallos del tercio inferior de la planta, por lo que se dificulta la detección de huevecillos y larvas pequeñas, esto ocurre cuando las plantas tienen poco crecimiento o prevalecen temperaturas altas y baja humedad relativa (Vargas, 1996).

Larva. Las larvas son de colores muy variados, desde verde olivo, café obscuro, hasta rosado o rojizo, llegan a medir cuatro centímetros de longitud. Presentan bandas longitudinales con puntitos negros llamados pináculos cerdigeros (Figura 14). Después del tercer instar pueden ser diferenciadas de las larvas de gusano bellotero Heliothis zea por la presencia de microespinas en los pináculos cerdigeros del octavo segmento abdominal (Figura 15) y la presencia de un área molar en las mandíbulas (Pacheco, 1985, Oliver y Chapin, 1981).

Pasan por seis instares larvarios, las del primero al tercer instar se les encuentra normalmente en la yema terminal de la planta; las de cuarto y quinto instar

22

Figura 13. Huevecillos del gusano tabacalero H. virescens

Figura 14. Larva del gusano tabacalero H. virescens

23

usualmente perforan los cuadros de la parte superior de la planta y las de quinto y sexto perforan las bellotas (Pacheco, 1985).

Pupa. Antes de transformarse en pupas, las larvas reducen su actividad y se les puede encontrar en las flores, después caen al suelo y construyen un túnel al final del cual forman la celda pupal, este estadio dura de 12 a 18 días, después del cual emergen los adultos (Oliver y Chapin, 1981).

Adulto. Es una palomilla que mide 2.0 centímetros de longitud y de 2.5 a 3.7 centímetros de ancho. Las alas anteriores son de color aceituna pálido con tres bandas más obscuras, oblicuas y angostas; la antemedial y postmedial están precedidas de una más clara, la banda media no. Las alas posteriores son blancas con el borde café rojizo (Figura 16). Los adultos después de que emergen se alimentan por un periodo de dos a cinco días de néctar, después copulan e inician la ovipostura de los huevos (Oliver y Chapin, 1981). DAÑOS

Las larvas pequeñas se alimentan de la yema

terminal y cuadros pequeños, las grandes de cuadros, bellotas y polen de flores abiertas; cuando no hay cuadros y no han completado su desarrollo dañan las bellotas, también pueden destruir las partes terminales de la planta, haciendo que esta tenga un crecimiento anormal e improductivo.Las larvas hacen agujeros en la base de los cuadros y bellotas y se alimentan del interior, usualmente el excremento puede verse en la base del cuadro o bellota dañada (Figura 17). Los cuadros se tornan amarillos y caen y las bellotas dañadas se infectan de hongos secundarios y se pudren (U. de California, 1984).

24

Figura 15. Pináculo cerdígero del gusano tabacalero H. virescens.

Figura 16. Adulto del gusano tabacalero H. virescens.

25


El gusano tabacalero generalmente se presenta durante los meses de agosto, septiembre y octubre, manifestándose en cuatro generaciones. La primera se observa a mediados de agosto y generalmente puede ser controlada por la fauna benéfica natural, la cual es abundante, ya que por lo general no se han iniciado las aplicaciones de insecticidas.

La segunda y tercera ocurren durante el mes de septiembre y coinciden con el período de mayor producción de cuadros y bellotas; por último, la cuarta generación se presenta en la primera quincena de octubre, casi al final del ciclo del cultivo dañando cuadros que difícilmente llegan a cosecha (Figura 18).

MANEJO DEL GUSANO TABACALERO

Control biotecnológico

Actualmente se cuenta con variedades de algodón mejoradas genéticamente que contienen el gen Bollgard, el cual protege a la planta durante toda la temporada de cultivo de ataques de gusano tabacalero, bellotero Heliothis virescens, H. zea y gusano rosado Pectinophora gossypiella; estas fueron desarrolladas mediante técnicas de biotecnología, al incorporar el gen de la bacteria Bacillus thuringiensis que produce una proteína de efecto tóxico al insecto. Cuando las larvas se alimentan de cualquier parte de estas plantas, se afecta su sistema digestivo, cesan su alimentación de inmediato y mueren en unos pocos días,

26

0

8

16

24

32

18 23 25 28 1 3 9 12 16 18 23 26 30 2 6 15 20 24 27 30

% DE LARVAS DE TABACALERO EN TERMINALES

Agosto Septiembre Octubre

Figura 17. Cuadro dañado por gusano tabacalero H. virescens.

Figura 18. Dinámica poblacional del gusano tabacalero H.

virescens en la Planicie Huasteca.

27

antes de que sean capaces de ejercer cualquier daño (Monsanto, 1997a).

En la Planicie Huasteca se ha logrado un control excelente del gusano tabacalero con esta tecnología (Figuras 19 y 20), sin necesidad de usar insecticidas durante toda la temporada para su control, en comparación con tres aplicaciones en algodón normal, lo que hace de ésta una herramienta valiosa en programas de manejo integrado de plagas; además, tiene un impacto favorable en el medio ambiente por la reducción en el uso de insecticidas.

Areas de refugio La resistencia de insectos a la bacteria B. thuringiensis no se ha documentado en campos de algodón; sin embargo, existe el potencial de desarrollarse. Con la finalidad de mantener las poblaciones de plagas susceptibles al gen Bollgard se deben dejar áreas de refugio, en las cuales se sembrara algodón sin el gen, no deberá aplicarse ningún producto foliar a base de Bacillus thuringiensis, de tal forma que los insectos se alimenten libremente sin exponerse a la proteína de esta bacteria; los insectos supervivientes, diluyen cualquier posible resistencia que se haya desarrollado en la población que estuvo expuesta a la proteína. Con este fin se manejan dos opciones de siembra, 80:20 y 96:4, es decir 80 y 96% se establecerá con algodón Bollgard y 20 y 4% con algodón normal respectivamente (Monsanto, 1997b).

28

0

0.5

1

1.5

2

2.5

6/VIII

12/VII

I18/

VIII

23/VII

I30/

VIII

7/IX 13/IX

20/IX

27/IX 3/X 11/

X18/

X25/

X

Bollgard Normal

Fechas de Muestreo

La

rva

s/m

etr

o

Aplicaciones

Figura 19. Larvas de gusano tabacalero H. virescens por

metro lineal de plantas en algodones normal y Bollgard en la Planicie Huasteca.

0

2

4

6

8

10

6/VIII

12/VII

I18/

VIII

23/VII

I30/

VIII

7/IX 13/IX

20/IX

27/IX 3/X 11/

X18/

X25/

X

Bollgard Normal

Fechas de Muestreo

Cu

ad

ros d

añ

ad

os/m

etr

o

Figura 20. Cuadros dañados por gusano tabacalero H.

virescens por metro lineal de plantas en algodones normal y Bollgard en la Planicie Huasteca.

29

Control biológico Conservación de fauna benéfica

Frecuentemente la fauna benéfica controla las poblaciones de esta plaga; sin embargo, una vez que se inician las aplicaciones de insecticidas, los enemigos naturales del gusano tabacalero son eliminados (Vargas, 1996). En los programas de manejo integrado de plagas se deben tener las precauciones necesarias para conservar la fauna benéfica que incide de manera natural en la región, ya que la mayoría de los insecticidas afectan las poblaciones de estos insectos, por lo que solamente deberán utilizarse productos con buena efectividad y selectivos en el control de la plaga, cuando los muestreos indiquen que el nivel de infestación puede causar daño económico. La fauna benéfica necesita alimento para su sobrevivencia e incremento, por lo que en caso de infestaciones ligeras de pulgones, larvas y otros insectos no se deberán realizar aplicaciones de insecticidas, para que estas sirvan como fuente de alimento. En la Planicie Huasteca se tiene alta incidencia de estos insectos cuando se realiza una estrategia de manejo integrado de plagas, respecto a lotes con aplicaciones de insecticidas (Figura 21). Entre las más comunes se encuentran : Avispita Lysiphlebus testaceipes, avispita Copidosoma truncatellum, avispas de la familia Braconidae, Ichneumonidae y Vespidae, crisopas Crysopa spp., chinche pirata Orius spp., chinches asesinas Sinea spp., y Zelus spp., catarinitas Cycloneda sp.,Olla sp.,Coleomegilla sp., y Scymnus sp., escarabajos Collops spp., arañas, moscas Syrfidae y mosquita bailarina Drapetis sp.

30

Liberaciones de fauna benéfica Para reducir la incidencia y los daños ocasionados por el gusano tabacalero en algodones normales, es necesario efectuar liberaciones de un mínimo de 20 mil avispitas Trichograma/ha (12 pulgadas cuadradas), con intervalos semanales y de cuatro mil a 12 mil huevecillos de crisopa, al observar los primeros huevecillos de esta plaga y complementar el control mediante un mínimo de cuatro trampas con cebo alimenticio (melaza) por hectárea, para la captura de adultos del gusano tabacalero y soldado, entre otros (Terán,1999 y Garza, 1998). Con este manejo se logra reducir las poblaciones de la primera generación, cuando no se han generalizado las aplicaciones de insecticidas para el control del picudo del algodonero.

0

5

10

15

20

25

II/VIII

III/VIII

IV/VII

II/IX II/IX III/I

XIV/

IX I/X II/X III/X IV/X

LOTE TESTIGO LOTE MIP

Semana de Muestreo

No

. d

e in

secto

s b

en

éfi

co

s

Figura 21. Número de insectos benéficos en 10 redazos en

lote de manejo integrado de plagas y lote testigo en la Planicie Huasteca.

31

Control químico


Los muestreos para gusano tabacalero se deben

realizar de agosto a octubre, se sugiere revisar 200 plantas por cada 50 hectáreas, examinando la terminal, un cuadro de más de un tercio de desarrollo y una bellota de más de 1.5 centímetros de diámetro. Contabilizar huevecillos y larvas en terminal, cuadros y bellotas dañadas y larvas en estos órganos fructíficos. Las aplicaciones deberán realizarse al detectar al menos un 8% de terminales con larvas, ya que en esta etapa es más susceptible a los insecticidas y se encuentran más expuestos a los mismos.


En variedades transgénicas con B. thuringiensis no se deberán realizar aplicaciones de insecticidas contra el gusano tabacalero H. virescens, ni en las áreas de refugio de la opción 96:4. En variedades normales y en las áreas de refugio de la opción 80:20, en caso de alcanzarse los umbrales económicos, se sugiere la utilización de spinosad, thiodicarb y profenofós en dosis de 60, 562.5 y 960 g I. A./ha respectivamente, contra la primera y segunda generación de esta plaga, ya que tienen un moderado o nulo impacto sobre la fauna benéfica. El grupo de los piretroides deberá utilizarse contra las dos últimas generaciones para evitar problemas de resistencia, se sugiere: zetacipermetrina, lambda cyhalotrina, alfacipermetrina, betacyflutrina y deltametrina en dosis de 40, 28, 40, 18.7 y 12.5 g.I.A./ha respectivamente, ya que son los mejores productos para el control de esta plaga en la región (Cuadro 6).

32


La población de gusano tabacalero de la Planicie Huasteca alcanzó la proporción de resistencia más alta a insecticidas en 1995, principalmente en el grupo de los piretroides; mientras que en 1997 y 1998 se observó una disminución de la misma con valores muy similares a los observados en 1991 (Cuadro 7). Esta reducción de la resistencia del gusano tabacalero a insecticidas es debido a la disminución de las aplicaciones de insecticidas para su control, por la introducción del algodón transgénico con Bacillus thuringiensis; sin embargo, ante la necesidad del establecimiento de un área de refugio del 20% para el algodón transgénico sembrada con algodón convencional y de realizar aplicaciones de insecticidas para el control del gusano tabacalero, se requiere una estrategia de manejo regional de insecticidas que tenga como objetivo mantener la susceptibilidad de la población de gusano tabacalero a insecticidas convencionales. GUSANO SOLDADO Spodoptera exigua

El gusano soldado es considerado como una plaga de muchos cultivos en las regiones tropicales y subtropicales, además de encontrarse en diferentes plantas silvestres (Metcalf y Metcalf, 1992). En México se le encontraba esporádicamente en el algodonero, sin embargo, en 1992 y 1993 emergió como una de las principales plagas de este cultivo en el norte de este país (Obando y Blanco, 1997).

En la Planicie Huasteca más de 10,000 hectáreas de algodón fueron severamente afectadas por esta plaga en 1994, además de ocasionar fuertes daños en chile y cebolla. En los últimos años ha sido una de las principales plagas en chile, jitomate algodón y cebolla (Terán et al, 1997).

33

Cuadro 6. Larvas en cuadros y cuadros dañados en la evaluación de insecticidas para el control del gusano tabacalero H. virescens de la Planicie Huasteca.

Insecticida Dosis g I. A./ha

Grupo Toxicológico

Larvas en Cuadro Cuadros Dañados

Cyflutrin Betacyflutrin Betacyflutrin Betacyflutrin + P. metílico Alfacipermetrina Lambda cyhalotrina Thiodicarb Spinosad Clorpirifós Zetacipermetrina Deltametrina Profenofós Testigo absoluto

50 18.7 25.0

18.7+500 40 28

562.5 60 720 40

12.5 960

Pirt Pirt Pirt

Pirt +FC-SM Pirt Pirt

C-Misc -

FH-SE Pirt Pirt.

FC-OE

0.5 B 2.00 AB 1.0 AB 1.25 AB 0.25 B 0.50 B 0.50 B 0.50 B 1.50 AB 0.50 B 0.50 B 0.50 B 3.25 A

2.25 AB 3.25 AB 2.75 AB 1.75 AB 1.75 AB 1.25 B 1.50 AB 0.75 B 2.50 AB 0.75 B 2.25 AB 2.0 AB 5.25 A

34

Cuadro 7. Proporción de resistencia a insecticidas del gusano tabacalero H. virescens de la Planicie Huasteca.

Proporción de resistencia* Insecticida

1991 1994 1995 1997 1998 Profenofos Metomilo Cipermetrina Deltametrina

4.7 2.7 5.2 9.5

3.3 --

38.7 21.5

5.4 1.5

68.2 19.7

1.7 1.3

19.5 12.2

2.5 2.0 6.0 7.5

* DL50 de una población susceptible/DL50 de una población

colectada en campo.

Descripción

Huevo. La palomilla de esta plaga oviposita en masas irregulares de unos 80 huevecillos de color verde olivo, los cuales son cubiertos con una capa de escamas parduscas aterciopeladas que se desprenden de su abdomen (Figura 22). Una hembra deposita de 500 a 600 huevecillos, preferentemente en el envés de las hojas, en un período de tres a 10 días. Estos incuban en un período de dos a tres días, después de los cuales emergen las larvas (Oliver y Chapin, 1981).

Larva. Las larvas recién emergidas se alimentan en el envés de las hojas, las cuales se encuentran en grupos, cubiertas por una pequeña tela de seda (Figura 23); posteriormente se dispersan y se alimentan por un período de 10 a 12 días; pasan por cinco instares larvarios, alcanzando a medir hasta 3 centímetros de longitud. Las larvas pequeñas son de color verde claro con la cabeza negra; las grandes, de color verde obscuro en diversas tonalidades, con líneas subdorsales más o menos obscuras marcadas en cada uno de los segmentos abdominales; usualmente hay cinco líneas blancas angostas interrumpidas en

35

Figura 22. Masa de huevecillos del gusano soldado S. exigua.

Figura 23. Larvas del gusano soldado S. exigua.

36

cada lado del dorso y una línea gris obscura, una línea blanca continua subdorsal y otra junto a los espiráculos. Cerca de los espiráculos se encuentran manchas blancas o amarillo brillante. El vientre es verde brillante y moteado con líneas blancas irregulares (Figura 24) (Bohmfalk et al., 1982).

Pupa. La larva se entierra en el suelo a una profundidad de un centímetro, donde forma una celda con partículas de suelo para transformarse en pupa, permanece en este estado por un período de siete días para después emerger el adulto y dar comienzo a una nueva generación (Oliver y Chapin, 1981).

Adulto. El adulto es una palomilla de color café grisáceo y brillante, mide 2.5 centímetros con las alas extendidas. Las alas anteriores son color café grisáceo, con líneas indistintas de marcas café obscuro y escamas blancas, y con una mancha redonda color crema con el centro anaranjado. Las alas posteriores son blancas, las venas y el margen es café (Figura 25). Durante el día generalmente se encuentra en reposo y protegido en la planta de algodón y otras plantas hospedantes, su mayor actividad la tiene durante la tarde e inicio de la noche (Oliver y Chapin, 1981). DAÑOS

El ataque puede presentarse en cualquier etapa del

cultivo. Las larvas defolian las plantas al alimentarse del follaje y durante la época de fructificación dañan cuadros y bellotas pequeñas (Figura 26). Los cuadros dañados se desprenden de la planta y en las bellotas penetran organismos secundarios que causan pudriciones (Pacheco, 1985). Las larvas jóvenes se alimentan agrupadas cerca de la ovipostura en hojas y brácteas, las cuales quedan esqueletonizadas. Las más grandes se alimentan de hojas, cuadros, flores y bellotas, lo cual afecta el rendimiento. El daño en cuadros y bellotas difiere del causado por el gusano tabacalero en que las hojas y bracteas de alrededor también se encuentran

37

Figura 24. Larva del gusano soldado S. exigua

Figura 25. Adulto del gusano soldado S. exigua

38

Figura 26. Cuadro dañado por gusano soldado S. exigua.

dañadas. El daño a terminales causa un ramificado excesivo y retrasa la fructificación.

El daño al follaje raramente es importante, solo cuando un gran número de larvas atacan plantas pequeñas. Las plantas pueden soportar hasta un 50% de defoliación sin afectar el rendimiento durante la etapa vegetativa, sin embargo, en el período de fructificación una defoliación del 20 al 25% puede ocasionar pérdidas considerables.

39


Los primeros adultos de gusano soldado generalmente se obsevan en el cultivo del algodonero a finales de agosto; pueden presentarse hasta tres generaciones, de las cuales la segunda y tercera son las más importantes ya que se presentan a mediados de septiembre y durante la primera quincena de octubre, época en la cual el cultivo se encuentra en su máxima producción de órganos fructíferos, posteriormente emigra a otros cultivos, principalmente chile, jitomate y cebolla. MANEJO DEL GUSANO SOLDADO

Control biológico En las evaluaciones del virus de la poliedrosis nuclear de Autografa californica + Spodoptera sunia, se ha observado un control excelente sobre larvas de primero a tercer instar del gusano soldado S. exigua de la Planicie Huasteca, con efectividades superiores al 90%, en dosis de 1.2 x 10 10 cuerpos poliedricos de inclusión por hectárea. Este insecticida biológico es muy específico para el control de larvas y no afecta a otros organismos, por lo que es compatible con programas de manejo integrado de plagas. Los insecticidas biológicos a base de la bacteria B. thuringiensis no han mostrado buena efectividad en el control de esta plaga en la región (Cuadros 8 y 9), al igual que los algodones transgénicos a base de esta bacteria. Por otra parte, se han observado epizootias naturales por el hongo Nomurea rileyi durante el mes de octubre, cuando prevalecen condiciones de humedad relativa mayor al 70% y temperaturas menores a 20 o C.

40

Control químico


Las infestaciones del gusano soldado se presentan en manchones, por lo que es necesario realizar un muestreo cuidadoso para determinar donde y como controlar, este debe llevarse a cabo siguiendo el método para el gusano tabacalero. La aplicación de los insecticidas para el control de este insecto debe realizarse poco después que las larvas comienzan a dispersarse en la planta, ya que cuando se encuentran agrupadas por lo general se localizan en el envés de las hojas y protegidas, lo que dificulta que el insecticida entre en contacto con esta plaga. Las aplicaciones deben realizarse cuando en los muestreos se encuentre de 3 a 5% de cuadros dañados y se observen larvas en los cuadros y bellotas. Para asegurar una mayor cobertura se recomienda que en las aplicaciones aéreas se utilicen 30 ó más litros de agua por hectárea, y preferentemente se haga uso de un dispersante a la dosis que recomienda el fabricante.


Debido a los altos niveles de resistencia que ha desarrollado esta plaga en la región, causado principalmente por mecanismos no metabólicos, el manejo de la resistencia y el control de esta plaga con insecticidas convencionales es muy difícil, por lo que es necesario el uso de productos de diferentes grupos toxicológicos y de diferente modo de acción, como es el caso de Tebufenozide (regulador del crecimiento), Hexaflumurón (inhibidor de la quitina), Spinosad (activador de los receptores nicotínicos de la acetilcolina), Clorfenapyr (impide la fosforilación oxidativa en las mitocondrias) y Methoxyfenozide (simulador de ecdisona), los cuales representan una alternativa para el control de esta plaga en dosis de 80, 25, 60, 144 y 40 g I. A./ha, con resultados muy promisorios (Cuadros 8 y 9), además, es importante mencionar que estos productos pueden ser usados efectivamente en programas de manejo de la resistencia a

41

Cuadro 8. Larvas chicas de S. exigua por metro lineal de plantas en la evaluación de insecticidas en la Planicie Huasteca.

Insecticida Dosis

G I. A./ha

ADA 3

DDA 5

DDA 7

DDA 11

DDA 16

DDA Tebufenozide Methoxyfenozide Hexaflumurón Spinosad Clorfenapyr Clorpirifós Diflubenzurón B. thuringiensis Diclorvos + Triclorfón Testigo absoluto

80 40 25 36 144 720 62.5 2000

550+1600 -

17.1 b 25.7 ab 24.6 ab 54.3 a 38.1 ab 36.0 ab 34.3 ab 36.5 ab 43.0 ab 36.6 ab

3.1 b 2.2 b 18.8 ab 1.7 b 2.5 b 24.0 ab 11.3 ab 34.6 ab 14.7 ab 45.7 a

5.8 bc 1.0 c 10.3 bc 1.0 c 0.3 c 29.3 a 8.7 bc 19.7 ab 10.5 bc 34.7 a

1.2 d 0.6 d 6.8 cd 0.6 d 0.8 d 17.7 bc 3.6 cd 30.0 b 5.1 cd 51.8 a

2.7 b 0.6 b 4.7 b 0.2 b 2.6 b 1.7 b 3.8 b 5.1 b 11.2 a 10.7 a

0.8 b 0.1 b 12.2 a 0.0 b 0.0 b 0.6 b 2.0 b 4.2 b 3.0 b 12.6 a

ADA: Antes de la aplicación DDA: Días después de la aplicación

Valores con la misma letra son estadísticamente iguales (Tukey 0.05)

42

Cuadro 9. Larvas grandes de Spodoptera exigua por metro lineal de plantas en la evaluación de insecticidas en la Planicie Huasteca.

Insecticida Dosis

g I. A./ha

ADA 3

DDA 5

DDA 7

DDA 11

DDA 16

DDA Tebufenozide Methoxyfenozide Hexaflumurón Spinosad Clorfenapyr Clorpirifós Diflubenzurón B. thuringiensis Diclorvos + Triclorfón Testigo absoluto

80 40 25 36

144 720 62.5 2000

550+1600 -

17.1 b 25.7 ab 24.6 ab 54.3 a 38.1 ab 36.0 ab 34.3 ab 36.5 ab 43.0 ab 36.6 ab

2.3 cd 0.3 d 10.8 bc 0.8 d 0.5 d 4.3 cd 20.6 a 15.5 ab 23.5 a 15.0 a

2.5 c 0.10 c 1.8 c 0.3 c 2.2 c 6.2 bc 5.2 bc 20.1 a 21.6 a 14.2 b

0.8 c 0.0 c 4.2 c 0.1 c 1.8 c 4.2 c 8.2 bc 9.1 bc 27.8 a 16.5 b

3.7 cd 0.5 d 3.8 cd 0.2 d 3.3 cd 4.7 cd 4.2 cd 11.5 ab 7.7 bc 14.3 a

0.1 b 0.0 b 1.5 ab 0.2 b 0.1 b 1.8 ab 1.5 ab 4.3 a 2.8 ab 4.6 a

ADA: Antes de la aplicación DDA: Días después de la aplicación

Valores con la misma letra son estadísticamente iguales (Tukey 0.05)

43

insecticidas (MRI) y de manejo integrado de plagas (MIP), debido a su modo de acción, selectividad y bajo impacto ambiental.


Una característica de esta plaga en la región ha sido la

dificultad para su control debido a la falta de efectividad de los insecticidas convencionales (Cuadro 10), lo que muestra claros síntomas de resistencia; esto coincide con valores de proporción de resistencia (PR) en estudios de laboratorio de 32 750 X para endosulfán, 19 000 X para clorpirifós, 444 X para azinfós metílico, 640 X para metomil, 8 107 X para permetrina y más de 2 millones de X para deltametrina. Al mezclar los insecticidas con sinergistas para determinar la proporción de sinergismo (PS), se observa la importancia de los mecanismos metabólicos en la resistencia de esta plaga a los insecticidas convencionales; sin embargo, se muestra una fuerte tendencia a mecanismos no metabólicos, los cuales se consideran de mayor importancia, ya que no se lograron suprimir los altos niveles de resistencia (Cuadro 11).

44

Cuadro 10. Efectividad de insecticidas convencionales sobre larvas de gusano soldado S. exigua de la Planicie Huasteca.

Insecticida

Grupo Toxicológico

Dosis g I. A./ha

% Efectividad

Clorpirifós Thiodicarb Sulprofós Profenofós Metomilo Betacyflutrin Fenpropatrin Endosulfán Paratión metílico Azinfós metílico Acefate Cipermetrina Ciflutrina Permetrina Deltametrina Esfenvalerato Cihalotrina

FH-SE C- Misc. FC-SE FC-OE CA-MM

Pirt Pirt

Oc-cd FC-SM FH-SM FA-OM

Pirt Pirt Pirt Pirt Pirt Pirt

720 562.5 1080 1080 240

18.75 187.5 537 720 350

1125 80

37.5 200 10

49.5 28

59.2 16.5 14.7 13.3 10.0 6.6 3.6 3.4 3.4 0.0 0.0 0.0 0.0 0.0 0.0 0.0 0.0

45

Cuadro 11. Proporción de resistencia y de sinergismo a insecticidas en gusano soldado Spodoptera exigua de la Planicie Huasteca.

Insecticida

Población

DL 50

(µg/µl)

PR*

PS**

Endosulfán + But. Pip.

EEUU(SS) Planicie Huasteca Planicie Huasteca

0.00004 1.31 0.69

- 32750 X 17250 X

-

1.90 X Clorpirifós + but. Pip. + DEF

EEUU(SS) Planicie Huasteca Planicie Huasteca Planicie Huasteca

0.00002 0.38 0.10 0.10

- 19000 X 5000 X 5000 X

-

3.8 X 3.8 X

Azinfós metílico + but. Pip. + DEF


0.002 0.888 0.11 0.26

- 444 X 55 X

130 X

-

8.0 X 3.4 X

Metomil + but. Pip.

EEUU(SS) Planicie Huasteca Planicie Huasteca

0.001 0.64 0.08

- 640 X 80 X

-

8.0 X permetrina + but. Pip. + DEF


0.00028 2.27 0.22 0.79

- 8107 X 785 X 2821 X

-

10.3 X 2.8 X

Deltametrina + but. Pip. + DEF


0.0000007 0.17

0.004 0.03

- 2428571 X

57142 X 42857 X

-

42.5 X 5.6 X

46

LITERATURA CITADA

Adams, C. H., W. . Cross y H. C. Mitchell. 1969. Biology of Bracon

mellitor, a parasite of the boll weevil. J. Econ. Entomol. 62: 889-896.

Alonso, E. J. 1983. Manual fitosanitario de los principales cultivos

de la región lagunera. Ed. Unidad de capacitación y divulgación. SARH. Lerdo Dgo. P. 11-13.

Anónimo, 1983. Manual de entrenamiento para picudo del

algodonero. Trad. M. H. Valdez. Ed. SARH. Sanidad vegetal. Baja California, México. 13 p.

Bohmfalk, G. T, R. R: Friseie, W. L. Sterling, R. B. Metler and A. E.

Kutson. 1982. Identification Biology and Sampling of Cotton insects. Bull. 933. pp 31-32.

Chesnut, T. L. y W. H. Cross. 1971. Arthropod parasites of boll

weevil Anthonomus grandis. Comparisons of their importance in the United States over a period of thirty eight years. Ann. Entomol. Soc. Amer. 64: 549-557.

Garza, U. E. 1999. Estudio y manejo de las plagas del algodonero

en la Planicie Huasteca. En: Informe 1996-1999. Fundación Produce de San Luis Potosí, A. C. p. 30.

Hardee, D. D., G. H. Mckibben, R. C. Gueldner, E. B. Mitchell, J.

H. Tumlinson y W. H. Cross. 1972. Boll weevils in nature respond to grandlure, a synthetic pheromone. J. Econ. Entomol. 65 (1): 97-100.

Metcalf, R. L. y R. A. Metcalf. 1992. Destructive and useful insects,

5th ed. McGraw-Hill, New York.

47

Monsanto, 1997a. Bollgard. Sistema de autodefensa del algodón contra el ataque de gusanos lepidópteros. Folleto Divulgativo s/n. Monsanto Comercial, S. A. de C. V. 14 p.

Monsanto, 1997b. Como preservar el valor de las tecnologías de

Bollgard para el algodón. Folleto Divulgativo s/n. Monsanto Comercial, S. A. de C. V. 7 p.

Morales, J. A. y E. G. King. 1991. Evaluation of Catolaccus grandis

(Burks) as a biological control agent against the cotton boll weevil. En: Proceedings Beltwide Cotton Conferences. National Cotton Council of America, Memphis, TN. Vol. 2. p. 724.

Mota, S. D., H. Sánchez A. y A. Lagunes T. 1994. Aprobación en

estudios de efectividad biológica de plaguicidas. Colegio de Postgraduados. Montecillo, México. 253 p.

Obando, R. A. y C. A. Blanco M. 1997. Confirm as a useful

alternative for IPM against the beet armyworm in cotton in northern México. En: Proceedings beltwide cotton conferences. National cotton council. New Orleans, LA. p.1032.

Oliver, A. D. And J. B. Chapin. 1981. Biology and illustrated key for

the identification of twenty species of economically important noctuid pest. Bull. No. 733. Louisiana State University and Agricultural and Mechanical Collage. 26 p.

Peterson, A. 1984. Egg types among months of the noctuidae

(Lepidoptera). Florida Entomol. 47(2): 71-91. Pacheco, M. C. 1985. Plagas de los cultivos agrícolas en Sonora y

Baja California. 1ª. Ed. Edit. CIANO. Cd. Obregón Son.

48

Salgado, S. E. y J. F. Silguero. 1985. Guía para cultivar algodonero de temporal en las huastecas. Folleto para productores No. 1. 2ª Edición. SARH. INIA. CIAHUAS. Campo Agrícola Experimental de las Huastecas. Tampico, Tam. México. 12 p.

Salgado, S. E. 1993. Uso de trampas con feromona para control

del picudo del algodonero. Desplegable para productores No. 1. SAGAR. INIFAP. CIRNE. Campo Experimental Sur de Tamaulipas. Tampico,Tamaulipas. México. 2 p.

Salgado, S. E. 1996. Nuevas tecnologías para producir algodón en

el sur de Tamaulipas. Folleto Técnico No. 11 SAGAR. INIFAP. CIRNE. Campo Experimental Sur de Tamaulipas. México. 24 p.

Terán, V. A. P., J. L. Martínez C. Y J. Vargas C. 1997. Response

of the beet armyworm to insecticides in México. En: Proceedings beltwide cotton conferences. National cotton council. New Orleans, LA. pp. 1227-1228.

Terán, V. A. P. 1999. Estrategia de manejo regional de insecticidas

para el control de plagas del algodonero en la Planicie Huasteca en el ciclo P-V 1999. Desplegable para productores No. 9. Tampico, Tam. 2 p.

Terán, V. A. P. y E. Garza U. 1999. Niveles de resistencia a

insecticidas en gusano tabacalero Heliothis virescens (Fabricius) de la Planicie Huasteca. Memorias del XXXIV Congreso Nacional de Entomología. Aguascalientes, Ags. México. pp. 228-233.

Tumlinson, J. H., D. D. Hardee, R. C. Gueldner, A. C. Thompson y

P. A. Hedin. 1969. Sex pheromones produced by male boll weevil: Isolation, identification and synthesis. Science. Vol. 166. No. 3908: 1010-1012.

49

University of California. 1984. Integrated pest management for cotton in the western region of the United States. University of California, division of agriculture and natural resources. Publication 3305. 144 p.

Vargas, C. J. 1996. Plagas primarias y secundarias del

algodonero, muestreo y control químico. En: Memoria del curso regional de actualización fitosanitaria en el control de plagas del algodonero. SAGAR. DGSV. Universidad Autónoma de Tamaulipas. Cd. Mante, Tamaulipas, México. p. 54-66.

Vázquez, N. J. M. 1998. Breve historia del picudo del algodonero

en México y de los métodos empleados para su control. Vedalia. 5 (1): 61-70.

Financiamiento:

FUNDACION PRODUCE DE SAN LUIS POTOSI, A.C.

FUENTE DE LA INFORMACION

La información de esta publicación fue generada por los

proyectos de investigación: 1335 ESTUDIO Y MANEJO DE LAS PLAGAS DEL


Y ZONA MEDIA DE SAN LUIS POTOSI

891 ESTUDIO Y MANEJO DE PLAGAS DEL


En el proceso editorial de esta publicación participó el

siguiente personal:

Comité Editorial del

Campo Experimental Ebano

M.C. Eduardo Céspedes Torres M.C. Eduardo Aguirre Alvarez M.C. Enrique Garza Urbina M.C. Alberto González Jiménez M.C. Roberto del Angel Sánchez

Revisión Técnica: M.C. José Luis Barrón Contreras

M.C. Asunción Méndez Rodríguez

Edición: M.C. Humberto Gámez Torres Formación: M.C. Enrique Garza Urbina Fotografías: M.C. Enrique Garza Urbina

M. C. Antonio P. Terán Vargas Jack Kelly Clark Agrevo de México, S.A. de C.V. Rafael V. Navarro A. B.S. King y J. L. Saunders

SAGARPA-INIFAP-CIRNE

Campo Experimental Ébano

Km 67 Carretera Valles-Tampico Apartado Postal # 87, Ébano, S.L.P.

Teléfono y Fax: (845) 263 3090

GOBIERNO DEL ESTADO DE SAN LUIS POTOSI

GOBERNADOR CONSTITUCIONAL

Lic. Fernando Silva Nieto

SECRETARIO DE DESARROLLO AGROPECUARIO

Y RECURSOS HIDRAULICOS

Ing. José Manuel Rosillo Izquierdo

DELEGACION ESTATAL DE LA SAGARPA

DELEGADO EN SAN LUIS POTOSI

Ing. Héctor Rodríguez Castro

SUBDELEGADO AGROPECUARIO

Ing. Francisco Ramírez y Ramírez

FUNDACION PRODUCE DE SAN LUIS POTOSI, A. C.

PRESIDENTE

Ing. Antonio Juan Chemás García

SECRETARIO

M. C. José Luis Barrón Contreras

TESORERO

Ing. Carlos T. Velázquez Osuna

Ing. Horacio A. Sánchez Pedroza

GERENTE

PRESIDENTE DEL CONSEJO CONSULTIVO REGIONAL

DE LA PLANICIE HUASTECA

Ing. Francisco Flores Constante

LA INFORMACIÓN DE ESTA PUBLICACIÓN

Y SU IMPRESIÓN FUERON FINANCIADAS

POR: FUNDACIÓN PRODUCE DE SAN LUIS POTOSÍ, A.C.

FPSLP

FUNDACIÓN PRODUCE DE SAN LUIS POTOSÍ, A.C.

AV. SANTOS DEGOLLADO No. 1015 altos

COL. CUAUHTEMOC, C.P. 78270

TEL. / FAX (444) 813- 3972 / 811-0185

SAN LUIS POTOSÍ, S.L.P.

[email protected]

FPSLP

COORDINACIÓN REGIONAL ZONA HUASTECA

CARR. NACIONAL SUR No. 202, Local 5, esq. 2ª. Av.

FRACC. LOMAS ORIENTE, C.P. 79090

TEL. / FAX (481) 382-4228

CD. VALLES, S.L.P.

[email protected]

1 Portada.pdf2 Hojas varias.pdf3 Texto.pdf4 Hojas varias.pdf5 Contraportada.pdf

instituto nacional de investigaciones forestales ... · insecticidas para el control del gusano...

Documents