hmf (1)
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ESTANDARIZACIÓN DE UNA METODOLOGIA ANALITICA POR ESPECTROFOTOMETRIA ULTRAVIOLETA PARA LA DETERMINACIÓN DEL
HIDROXIMETILFURFURAL EN MIELES DE ABEJA
STANDARDIZATION OF AN ANALYTICAL METHODOLOGY FOR HYDROXYMETHYLFURFURAL DETERMINATION IN HONEY
BY ULTRAVIOLET SPECTROMETRY
Natalia HINCAPIE V.1*, Mónica J. LÓPEZ S.1, Catalina VICTORIA A.1
RESUMEN
En este trabajo se presentan los resultados del desarrollo y estandarización de una metodología analítica para la determinación del HMF en miel de abeja por la técnica de espectroscopia de absorción ultravioleta, UV. El procedimiento consiste en evidenciar la presencia de este aldehído cíclico con incrementos de temperatura, utilizando un método de corrección de fondo, con medidas de absorbancia a longitudes de onda de 284 nm y 336 nm para la muestra y referencia respectivamente.
Los resultados obtenidos son tratados de manera estadística para hallar la linealidad, reproducibilidad, repetitividad, incertidumbre y sensibilidad del método realizado como parámetro fundamental en un proceso de estandarización.
Palabras clave: Espectrofotometría ultravioleta, miel, hidroximetilfurfural, HMF,
ABSTRACT
This work presents the results of development and standardization of analytical methodology for the determination of HMF in honey by means of ultraviolet absorption spectroscopy (UV). The procedure consists in evidence the presence of this cyclical aldehyde with increases in temperature, using a method of background correction, with measurements of absorbance at wavelengths of 284 and 336 nm for the sample and reference, respectively.
The results are treated statistically to find the linearity, reproducibility, repititividad, uncertainty and sensitivity of the method performed as parameters in a process of standardization .
keywords: spectrophotometry ultraviolet, honey, hydroxymethylfurfural, HMFINTRODUCCION
Desde el punto de vista composicional, la miel de abejas es básicamente una solución
acuosa concentrada de azúcar invertido, que contiene además, una mezcla muy compleja de
1 Estudiantes, Facultad de Química Farmacéutica, Universidad de Antioquia, Ciudad Universitaria, Calle 67 53-108. A.A. 1226, Medellín, Colombia*Autor a quien se debe dirigir la correspondencia: [email protected]
otros hidratos de carbono, diversas enzimas, aminoácidos, ácidos orgánicos, minerales,
sustancias aromáticas, pigmentos, ceras, granos de polen, entre otros. Los azucares son el
componente mayoritario de la miel, representando, el 99-95% de la materia seca. La mayor
parte de estos no se encuentran en el néctar, sino que se forman durante la maduración y
almacenamiento de la miel. Las numerosas propiedades biológicas encontradas en la miel,
la convierten en un producto complementario de la alimentación humana y muy útil en
otros campos que nada tienen que ver con la alimentación. La miel es considerada un
producto natural por excelencia, sin embargo en los últimos años ha sufrido los efectos de
la industrialización y de la producción agrícola. Los elementos objetivos de la calidad de la
miel de abejas son extremadamente simples y se pueden reducir a tres fundamentales como
son:
La higiene: la miel de abejas no debe contener sustancias nocivas, su presencia se debe
fundamentalmente a los tratamientos con sustancias químicas, llevados a cabo durante su
producción.
Genuinidad: la miel de abejas no debe adulterarse.
Frescura: la miel debe mantener sus características naturales intrínsecas, su pérdida se debe
fundamentalmente a las prácticas de manejo en la colmena, los procesos de
industrialización con tratamientos térmicos excesivos y a las condiciones de temperatura y
tiempo de almacenamiento.
La miel comercializada, entre otras características de calidad, deberá tener determinadas
cualidades apreciables a simple vista por el consumidor que la distingan como son:
limpieza, nitidez, fluidez, coloración, homogeneidad y cristalización.
El proceso de industrialización de la miel, aunque es un proceso sencillo, presenta una serie
de inconvenientes que pueden tener una gran repercusión en la calidad de la miel
procesada, por tanto se hace un control exhaustivo de los tiempos y temperaturas de los
tratamientos industriales y del almacenamiento posterior, ya que no siempre estos son
controlados con la rigurosidad necesaria, repercutiendo en la calidad final de las mieles
comercializadas mermando en gran medida las propiedades beneficiosas de estas (1).
El hidroximetilfurfural es un aldehído cíclico (HMF, véase Figura 1) que se origina
espontáneamente a partir de la fructuosa en medio acido (valor medio de pH 3.9) en un
proceso lento. Este proceso es acelerado fundamentalmente por el calor: almacenamientos
de pocos días a 50°C tienen el mismo efecto sobre el aumento de HMF en miel que varios
meses a 20°C. También los calentamientos para la licuefacción o pasteurización de la miel
elevan los niveles de HMF. El HMF no es una sustancia toxica, ni altera la miel a no ser
que se encuentre en cantidad excesiva, lo que provocaría el oscurecimiento de la misma por
interacciones con compuestos aminados y azucares, sufriendo polimerización y
reordenación, tanto en presencia como en ausencia de oxigeno.
Figura 1. Estructura molecular del hidroximetilfurfural.
Fuente: Biblioteca Digital de la Universidad de Chile. Sistemas de Información de
Servicios y Bibliotecas. Disponibe en:
http://mazinger.sisib.uchile.cl/repositorio/ap/ciencias_quimicas_y_farmaceuticas/ap-
fisquim-farm11/c17.2.html.
Entre otros parámetros la formación de HMF esta correlacionado directamente con la
humedad y contenido inicial de HMF en la miel. También la acidez ejerce un efecto
positivo en su formación, comprobándose la existencia de una baja tasa de HMF en mieles
calentadas debido a su más alto pH (4.5-5.0).
El aumento del contenido de HMF de la miel es un proceso paralelo a la degradación de
vitaminas, proteínas y enzimas de este alimento, así como a la perdida de sabor y aroma por
lo que se ha convertido en el mejor parámetro indicador de la frescura de la miel y permite
juzgar sus condiciones de procesado y almacenamiento (2). Una miel natural, recolectada
en calentamiento particular, no contiene más de 5 mg de HMF por Kilogramo, el
recalentamiento, indispensable para la refundición antes del acondicionamiento, por
ejemplo, puede desarrollar algunos miligramos de HMF. Se deben tener en cuenta las
condiciones de comercialización, los tiempos y temperaturas de almacenamiento. En
resumen la presencia de HMF en la miel es siempre reveladora de las degradaciones
térmicas que sufrió el producto y es un indicador muy importante de la calidad y de la
frescura. Así la norma técnica colombiana (NTC) permite un máximo de 40 mg/Kg de
HMF, valores superiores a este indican mieles viejas de baja calidad y/o excesivamente
calentadas o adulteradas (3).
El hidroximetilfurfural de determina por el método propuesto por White basado en utilizar
dos porciones alícuotas de la muestra previamente clarificada mediante la adición de
reactivos Carrez y posterior filtración. Una de ellas, a la que se le adiciona 5 ml de agua
destilada, se lee frente a la otra, a la que se añade igual volumen de solución de bisulfito de
sodio el cual hace desaparecer la absorción debida al hidroximetilfurfural por rotura del
doble enlace conjugado, con lo que otras absorbancias inespecíficas son corregidas (4).
DESARROLLO EXPERIMENTAL
Materia prima
El presente estudio se ha realizado con miel procedente de Carmen de Bolívar la cual es
distribuida por productos alimenticios el Alpolen.
Equipos
Espectrofotómetro Agilent serie 8453 UV-VIS. Mewlett Packard. Rango de longitud de
onda 190-1100nm.
Balanza analítica Sartorius CP2245.
Baño maría Memmert
Material volumétrico
Tubos de ensayo
Embudos
Celdas de cuarzo
Papel filtro Whatman
Reactivos y soluciones
Agua para análisis
Etanol
Solución de ferrocianuro de potasio (Carrez I)
Solución de acetato de zinc (Carrez II)
Solución de bisulfito de sodio
Preparación de las soluciones
Solución Carrez 1: pesar 15 g de Ferrocianuro de potasio, transferir a un balón volumétrico
de 100 ml, aforar con agua destilada.
Solución Carrez II: Pesar 30 g de Acetato de zinc, transferir a balón volumétrico de 100 ml,
aforar con agua destilada.
Solución de Bisulfito de sodio: Pesar 0.20 g de bisulfito de sodio, adicionar 100 ml de agua
destilada.
Determinación del Hidroximetilfurfural
Se pesan 5 gramos de muestra de miel, a los cuales se le agregan 25 mL de agua destilada,
agitando para lograr total disolución de la miel, transferir esta solución a un balón
volumétrico de 50.0 mL. Adicionar luego 0.5 mL de solución Carrez I y mezclar, a
continuación agregar 0.5 mL de solución Carrez II y mezclar. Estas soluciones se utilizan
para eliminar la turbidez. Se pueden agregar gotas de etanol para suprimir la espuma si se
requiere. Aforar con agua hasta completar 50 ml.
Agitar y filtrar el contenido del balón con papel de Whatman. Los primeros 10 ml del
filtrado son eliminados, y el resto se colecta para su respectivo análisis. Se toman dos tubos
de ensayo: Colocar 5 ml del filtrado en cada uno de los dos tubos de ensayo, agregar al
contenido de uno de los tubos de ensayo 5 ml de solución de bisulfito de sodio y al otro
tubo de ensayo agregar 5 ml de agua destilada. El bisulfito de sodio destruye el HMF, por
lo que el contenido del primer tubo se usa como solución de referencia para medir la
absorbancia. El contenido del segundo tubo constituirá la solución de muestra a medir.
Nota: una vez agregado el bisulfito de sodio leer inmediatamente, ya que este fuera de
reducir el HMF puede reducir otras sustancias presentes en la miel.
Colocar las soluciones en celdas de 1 cm y medir la absorbancia a 284 y 336 nm para
muestra y estándar respectivamente, correspondientes a las longitudes de onda del espectro
de luz UV.
Si la absorbancia de la solución de muestra es mayor de 0.6, diluirla con agua y diluir la
solución de referencia con solución de bisulfito de sodio al 0.1% en la misma proporción y
corregir la absorbancia para esa disolución. Por último se determinan los miligramos de
HMF presentes en la muestra. (mg/Kg).
Todo el procedimiento de la metodología se realizó por triplicado sometiendo la muestra a
diferentes temperaturas y los respectivos resultados fueron analizados (4).
Anotaciones al método
Antes de proceder con el desarrollo de la metodología se verifica la idoneidad del
sistema analítico. El material volumétrico y el instrumental empleado se calibran
debidamente.
Para evaluar el incremento del Hidroximetilfurfural con la temperatura, una
cantidad suficiente de muestra se somete a la temperatura que se va a analizar
durante un tiempo de 45 minutos con agitación de la misma cada 10 minutos para
garantizar la transferencia de calor en toda la muestra; esta se enfría y se procede
con la metodología anteriormente descrita.
A la solución de referencia inmediatamente se le adicione la cantidad de bisulfito
establecida por el método realizar la lectura de la absorbancia.
Antes de proceder con la lectura de absorbancia tanto de la muestra como la de la
referencia se deben someter las celdas de cuarzo a un proceso de lavado con una
mezcla sulfocrómica para evitar posibles interferencias y obtención de resultados
negativos.
La metodología utilizada es un método de corrección de fondo, por lo cual no
necesita un blanco para realizar las lecturas de absorbancia; en caso tal que el
equipo necesite éste, se utilizará agua destilada para tal fin.
Para lograr reproducibilidad y repetibilidad en el método se debe tener cuidado con
el manejo del material volumétrico, para que no se vean afectados tales parámetros.
Cálculo para determinar el contenido de HMF en la muestra
Calcular la cantidad de Hidroximetilfurfural (HMF) en la miel con los datos de absorbancia
a 284 nm (A284) y 336 nm (A336), usando la siguiente fórmula: (4)
Factor = 14.97 = (126/16,830) (1000/10) (100/5).
Donde:
126 = peso molecular del HMF
16,830 = absortividad molar (ɛ) del HMF a 284 nm.
1000 = mg/g
10 = centilitros/L
100 = g de miel reportados
5 = peso nominal de la muestra.
Los resultados son expresados en mg/Kg, con una cifra decimal.
RESULTADOS Y DISCUSIÓN
Con la ecuación arriba presentada se calcularon los miligramos de HMF que aparecen en la
tabla 1, que corresponden a los obtenidos por cada analista a diferentes temperaturas.
Los resultados obtenidos del análisis de HMF en miel, son tratados con Excel 2007, para
hallar los parámetros de desviación estándar, coeficiente de variación y la ecuación de la
recta. También se usa Start Grafic Plus 5.1, éste para hacer las comparaciones muestrales,
en procura de obtener las tablas de ANOVA y el gráfico de caja y bigotes. Todos los
análisis son aplicados con un grado de confiabilidad de 95 %.
Se compararon los resultados obtenidos por los tres analistas los cuales se presentan en las
figuras 1, 2 y 3, de allí se sacaron: los coeficientes de correlación (R2), las pendientes de las
curvas (B) y los interceptos (A) y éstos aparecen de manera resumida en la figura 4 y en la
tabla 2 con sus respectivas medias, desviaciones estándar y coeficiente de variación.
Tabla 1. Miligramos de HMF obtenidos por cada uno de los analistas a diferentes temperaturas.
Temperatura Analista 1 Analista 2 Analista 3
25°C
mg HMF mg HMF mg (HMF)
31,838 31,7326 31,8023
31,853 31,8673 31,8772
31,853 31,7925 31,6976
45°C
35,0768 36,6194 36,9748
36,3029 36,1261 36,7803
35,8394 36,8436 36,885
55°C
37,9705 38,2445 38,0385
38,5692 38,5888 38,0984
37,761 38,7235 37,9188
65°C
39,0978 39,5048 39,5899
39,6365 39,1911 39,9786
39,6215 39,0865 39,9637
75°C 42,41 42,6068 42,2636
42,3053 42,3225 42,1141
42,3202 42,3973 42,4729
85°C
45,0312 44,7757 45,1877
44,4925 45,2095 44,9034
45,0462 44,8205 45,1428
Figuras 1 y 2. Resultados obtenidos por los analistas, 1y 2 respectivamente
Figura 1 Figura 2
Figuras 3. Resultados obtenidos por el analista, 3 . Figura 4. Resumen de todos los resultados de los tres analistas, y allí se puede observar que dichos resultados no se encuentran muy dispersos entre sí.
Tabla 2. Magnitudes halladas por cada analista, de los parámetros: coeficiente de correlación (R2), el intercepto (A) y la pendiente (B). Al final (fila de total) se presenta la media (X), la desviación
estándar (S) y el coeficiente de variación (CV) de cada parámetro.
R2 A B
ANALISTA 1
0.982 0.994 0.993 25.75 26.82 26.11 0.219 0.206 0.216
ANALISTA 2
0.990 0.976 0.983 26.56 26.88 26.39 0.211 0.214 0.206
ANALISTA 3
0.989 0.992 0.983 26.43 26.81 26.64 0.215 0.208 0.211
TOTAL X= 0,987; S= 0,00613; CV=0.62% X= 26,43; S= 0,340; CV=1.29% X= 0.212; S= 0,0046; CV= 2,16%
Para comparar dichos estadígrafos, se aplicó el test de ANOVA, planteando las siguientes hipótesis:
1. Hipótesis nula: los tres analistas trabajaron de manera igual2. Hipótesis alternativa: los tres analistas trabajaron de manera diferente
Los resultados del test aparecen (véase tabla 3)
Figura 3
Gráfico X-Y Múltiple
TEMPERATURA EN C
VariablesCURVA 1CURVA 2CURVA 3CURVA 4CURVA 5CURVA 6CURVA 7CURVA 8CURVA 9
25 35 45 55 65 75 8531
34
37
40
43
46
31
34
37
40
43
46 Figura 4
Tabla3. ANOVA para los tres estadígrafos: coeficientes de correlación, pendientes e interceptos de las curvas, donde GL son los grados de libertad y CM son los cuadrados medios.
FuenteSuma de
cuadradosGL CM Cociente F Valor P
ANOVA para comparación de
R2
Entre grupos 0,0000722
20,00003611
0,95 0,4398Intra
grupos 0,00022876
0,00003811
Total0,0003009
8
ANOVA para comparación de
la pendiente
Entre grupos 0,00001756
20,00000878
0,350,7175
Intra grupos 0,00015
60,000025
Total0,00016756
8
ANOVA para comparación del
intercepto
Entre grupos 0,307222
2 0,153611
1,17 0,3729Intra grupos
0,7891336 0,131522
Total 1,09636 8
ANÁLISIS DE LA REPETIBILIDAD Y REPRODUCIBILIDAD
Las ANOVAs que fueron presentadas antes, y particularmente los valores p de las pruebas,
confirman la hipótesis nula de igualdad en los resultados reportados por los tres analistas.
De modo que no hay diferencia estadísticamente significativa entre esos resultados, con un
grado de confiabilidad del 95 %. Con esto se puede decir, que la reproducibilidad del
método es adecuada bajo las condiciones de trabajo realizado y que los resultados
obtenidos siempre serán similares.
La reproducibilidad y repetibilidad fue analizada como función de la dispersión entre los
resultados obtenidos por cada uno de los analistas y de todos ellos a cada temperatura. Para
ello, se aplicó el cálculo de desviación estándar y coeficiente de variación a cada
temperatura en la que se trabajó. (Véase tabla 4.) Y de manera gráfica el CV (Véase la
figura 5.) En la figura 6 se presenta el gráfico de caja y bigotes para los resultados
reportados a 45 0C que es la temperatura a la que se dio la mayor dispersión en los datos.
Tabla 4. Magnitudes de las medias y de algunos valores de dispersión: desviación estándar (S) y coeficiente de variación (CV).
Temperatura en 0C Media S CV25 31,8126 0,062459816 0,19633665
45 36,3831 0,62271469 1,7115472
55 38,2126 0,339660175 0,88887009
65 39,5189 0,33736391 0,85367666
75 42,3569 0,138412147 0,32677566
85 44,9566 0,233210326 0,51874534
Figuras 5. Se grafican las magnitudes de CV a diferentes temperaturas
Figura 6. Caja y bigotes para los resultados reportados a 45 0C.
En la figura 5 se observa que el valor mayor para CV es el obtenido a 45 0C, concordando
con la figura 4 en la que también se puede observar una mayor dispersión a esa
temperatura. Sin embargo el CV no llega al 2% que es el valor límite para este estadígrafo
reportado por algunos autores; incluso otros aceptan hasta un CV de 5 %. Para ampliar el
Gráfico de Caja y Bigotes
T 4535 35,4 35,8 36,2 36,6 37
análisis, en la figura 6 se presenta el gráfico de caja y bigotes a 45 0C, en el cual se observa
una ligera asimetría del lado izquierdo pero ningún dato atípico.
Por esto, se puede decir que el método es reproducible con un CV máximo de 1.71 % a las
condiciones del laboratorio.
ANÁLISIS DE LA LINEALIDAD
Partiendo de que todos los resultados reportados por los tres analistas deben ser tenidos en
cuenta ya que no hay datos atípicos y todos ellos son similares con una confianza de 95%.
Con esto se calcula la relación de linealidad entre concentración de HMF en mg y
temperatura en grados centígrados; encontrándose un R2 = 0.987 ± 0.018 para un grado de
certeza de 95%. La figura 7 presenta las magnitudes de los R2, y como se puede observar
ninguno de ellos tiene un valor estadísticamente diferente a los demás.
Figura 7. Caja y bigotes para las magnitudes de R2
Ecuación de la recta
De la tabla 1, asumiendo que la pendiente, el intercepto y el coeficiente de correlación tienen una distribución normal, teniendo en cuenta que la ecuación de la recta es: y = bx + a; se obtiene para análisis de HMF en miel con la corrección de fondo y la lectura hecha a la longitud de onda y según el procedimiento descrito, la siguiente ecuación:
mg HMF = (0,212±0,0138) * T + 26,43±1.02mgHMF con R2 = 0.987 ± 0.018
Donde la temperatura (T) es en 0C.
CONCLUSIONES
Gráfico de Caja y Bigotes
0,97 0,974 0,978 0,982 0,986 0,99 0,994
R2 todos
Se encontró reproducibilidad adecuada con la que se puede asegurar resultados similares cada vez que se realiza el método. De igual manera, también se considera que la repetibilidad es aceptable, ya que ningún resultado reportado es atípico.
Hay una relación lineal directa (R2= 0.987), entre el incremento de temperatura y la concentración de hidroximetilfurfural presente en la muestra de miel; resultado que lleva a concluir que a mayor temperatura de conservación de la miel, habrá mayor cantidad de ese derivado de degradación.
La temperatura a la que se encontró mayor dispersión entre los datos, manifestado por mayor magnitud en el valor del CV, fue a 45 0C, cuyo valor fue de 1.71 %. Por lo que esa es la incertidumbre del método aplicado bajo las condiciones propias del laboratorio; estando dentro de lo permitido.
AGRADECIMIENTOS
Los autores agradecen a Jhon Fredy Urrego, profesor de laboratorio de análisis de
alimentos y bromatología por su ardua colaboración, a la profesora Rosario Echeverry,
técnica y coordinadora del laboratorio de análisis de alimentos y bromatología por facilitar
los equipos e instalaciones requeridos para el desarrollo de dicha estandarización.
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
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