GUÍA DE ELEMENTOS BÁSICOS PARAEL MONITOREO Y LA DETECCIÓN DE

PARA IMPLEMENTAR MIP ACORDE A LOS REQUERIMIENTOS BPA

CHANCHITOSBLANCOS Pseudococcus

viburni

CHANCHITOSBLANCOS

2

Autor: David Castro da CostaEditor: Ricardo Adonis P.Diseño: Alejandro Rademacher G.Año: 2010

3

El presente documento es producto del Proyecto cofinanciado por Innova Chile, denominado “Desarrollo de sistemas de control de las principales plagas cuarentenarias [chanchitos blancos (Pseudococcus viburni), polillas (Cydia pomonella y Cydia molesta) y falsa arañita roja de la vid (Brevipalpus chilensis)], en huertos frutales de exportación”, una de cuyas líneas de trabajo fue establecer las bases técnicas para sistemas de control de la plaga cuarentenaria chanchitos blancos Pseudococcus viburni, basado en parámetros biológicos cuantitativos, esto es, uso de información de monitoreo e interpretación, dinámica poblacional en asociación con su hospedero específico y su relación con variables climáticas.

Los principales resultados obtenidos en esta línea de desarrollo se pueden resumir como sigue:

1. Método validado de detección cuantitativo de P. viburni mediante observación visual: Se ha validado un método de detección sistemático y estructurado de la plaga P. viburni mediante un procedimiento de observación visual en huertos, determinando el número de plantas a muestrear, sus estructuras y tiempo requerido para realizar esta labor.

2. Método validado de detección cuantitativo mediante feromona sexual para Pseucococcus viburni. Este es un procedimiento complementario al anterior y es altamente innovativo, ya que la identificación y síntesis de la feromona sexual de la plaga P. viburni se realizó en la Universidad California, Riverside en el año 2005. Mediante este proyecto se logró comprobar y validar su efectividad como herramienta de detección de esta plaga en las condiciones existentes en zonas productoras de nuestro país. Cabe mencionar que la dificultad de detección de esta plaga antes de cosecha es uno de los principales problemas para su manejo.

3. Umbrales de acción de acuerdo a monitoreo, considerando criterios cuarentenarios. Se han determinado los niveles de detección de individuos mediante diferentes técnicas que permiten predecir daños en cosecha y por lo tanto tomar decisiones de control anticipadas.

4. Determinación de hospederos alternativos (malezas y vegetación circundante) para chanchito blanco: Este desarrollo permitió determinar las malezas y vegetación circundante presentes en el huerto, en donde se encuentra la plaga, lo cual tiene un alto impacto en las decisiones de control, permitiendo aplicar los elementos principales del manejo integrado de plagas.

El presente Manual entrega en un formato especialmente preparado para su uso en terreno, las principales aplicaciones prácticas de los aspectos ya mencionados a fin de facilitar la implementación de las etapas de manejo integrado relacionadas con prevención y monitoreo acorde a los requerimientos recientemente establecidos durante este año en la certificación de Buenas Prácticas Agrícolas.

Introducción

4

La presente Guía ha sido elaborada en el marco del proyecto de Innovación Precompetitiva e Interés Público de CORFO denominado “Desarrollo de sistemas de control de las principales plagas cuarentenarias”, se describe los principales resultados sobre Monitoreo de la plaga chanchitos blancos (Hemíptera: Pseudococcidae) en huertos de manzanos, perales, ciruelas y uva de mesa, basados en parámetros biológicos cuantitativos.

Chanchito blanco es una de las plagas de mayor presencia en las plantaciones frutícolas, generando problemas cuarentenarios para algunos mercados.

El propósito de esta Guía es proporcionar orientación de fácil uso para que los productores y su personal de campo puedan implementar el monitoreo de esta especie, en concordancia con los nuevos requisitos establecidos por recientes versiones de protocolos de BPA.

El monitoreo efectivo (efectuado en la época oportuna, examinando las estructuras de la planta que corresponda y analizando los registros) nos permitirá mejorar las formas de control utilizadas.

1. ASPECTOS GENERALES SOBRE CHANCHITO BLANCO 5

2. MÉTODOS PARA EL MONITOREO DE CHANCHITO BLANCO 6

2.1 Detección mediante observación visual de la plaga y enemigos naturales 6

2.2 Detección mediante el uso de trampas con cartón corrugado 7

2.3 Uso de trampas con feromona sexual para captura de machos 9

3. MUESTREO DE MALEZAS QUE SON POTENCIALES HOSPEDEROS ALTERNATIVOS DE LA PLAGA 11

4. PLANILLA DE REGISTRO DE DATOS INTEGRADA 12

5. PRESENCIA E IDENTIFICACIÓN DE ENEMIGOS NATURALES 13

6. CRITERIOS SOBRE DECISIÓN DE CONTROL 13

Antecedentes

Índice

5

La familia Pseudococcidae (Chanchitos blancos), corresponde a especies polífagas, plaga de cultivos agrícolas, ornamentales y forestales. Las hembras son ovaladas, ligeramente convexas, cubiertas de un polvo ceroso blanco. Poseen filamentos marginales lanosos. El par caudal es generalmente más largo y grueso que los laterales. Esta familia, constituye colonias sobre frutos, hojas, madera, así como también en las raíces de numerosas plantas cultivadas y malezas (González 1989).

Las especies de chanchitos blancos presentes en Chile, distribución y hospederos primarios son (Ref. González 1989):

• Planococcus citri: Región de Arica y Parinacota a Región del Bio Bío. Hospederos: Chirimoyo, cítricos, granado, kaki. Especie ovípara. Los huevos son depositados en un laxo saco ovígero

algodonoso. Las larvitas son de color rosado amarillento. Se instalan preferentemente en hojas nuevas pedúnculo floral y frutos.

• Pseudococcus viburni: Región de Arica y Parinacota a Región del Bio Bío. Hospederos: Vid, ciruelo, kaki, nectarino, peral, manzano. En vid inverna como masa de huevos baja la corteza de los árboles. Las

larvitas nacen en agosto.

• Pseudococcus calceolariae: Región de Arica y Parinacota a Región de la Araucanía. Hospederos: Chirimoyo, ciruelo, cítricos, duraznero, kaki, nectarino, palto,

peral y ornamentales. Inverna en estado de huevos, en árboles de hoja caduca. En árboles no

caducifolios, permanece activa.

• Pseudococcus longispinus: Región de Arica y Parinacota a Región de la Araucanía. Hospederos: Citricos, kakis, mango, olivo, palto, vid, ornamentales y

forestales. Las hembras son ovovivíparas. Invernan como ninfas y hembras adultas.

De acuerdo a estadísticas del SAG, en la temporada 2008/09, el 31,2% de los rechazos a nivel nacional, correspondió a chanchitos blancos (Pseudococcidae) afectando a 1.800.000 cajas de fruta.

La importancia cuarentenaria de los chanchitos blancos para diferentes mercados es: (Ref. SAG 2009)

• Pseudococcus viburni: México, Bolivia, Colombia, Corea del Sur, Nueva Zelanda, Panamá,

Japón.

• Pseudococcus calceolariae: Argentina, Azerbaiján, Bolivia, Colombia, Corea del Sur, Costa Rica,

Guatemala, India, Irán, Perú, República Dominicana, Japón.

• Pseudococcus longispinus: Corea del Sur, Japón. Cabe señalar, que para el caso de USA, todos los estados inmaduros que no sean identificados, son cuarentenarios por defecto.

1. Aspectos generales sobre chanchito blanco

6

CICLO DE VIDA DE CHANCHITO BLANCO - Pseudococcus viburni

Huevos Ninfas Hembra

Adultos

Macho

El monitoreo es uno de los pilares del MIP (Manejo Integrado de Plagas) y de cualquier sistema efectivo de control de plagas. A través del monitoreo es posible detectar la presencia de la plaga , su nivel poblacional, sus estados de vida y en qué sitios del huerto se encuentra como foco que puede contaminar al resto del predio.

En el caso específico de Pseudococcus, las herramientas de detección que se describen a continuación permiten detectar la plaga (y son entre ellas complementarias), con el objeto de tomar una razonable decisión de control de la plaga.

Antes de monitorear en terreno, es necesario conocer el ciclo de vida de chanchito blanco, con el objeto de reconocer los distintos estados de desarrollo fácilmente en el campo.

En las imágenes a continuación, se muestra la presencia de chanchitos en diferentes estructuras, frutos, hojas y tronco, objetos de observación.

2. Métodos para el monitoreo del chanchito blanco

2.1. Detección mediante observación visual de la plaga y enemigos naturales

Este método permite detectar hasta un 3% de infestación en el campo, siendo sus principales consideraciones las siguientes:

a) Número mínimo de observaciones: 20 árboles por huerto, seleccionados al azar, de manera que se considere toda la superficie del huerto.

b) Estructura de muestreo: hojas cercanas a frutos, corteza, frutos. Se deben tomar cinco muestras de cada estructura.

c) Objeto de observación: Ninfas, adultos, masa de huevos (ver ciclo de vida). Para el caso de ninfas primer instar, se sugiere procesar la muestra en laboratorio, mediante la técnica de arrastre por lavado, utilizando tamices de 20 y 200 mesh (véase fotos).

d) Materiales: Lupa de mano de 10 a 20X, pinceles, frascos de vidrio tapa rosca, cooler, bolsas de papel para traslado de muestras, etc. Para análisis de mayor precisión usar lupa estereoscópica de 40X.

e) Monitoreo: Durante todo el año.

7

Las imágenes a continuación, muestran el método de arrastre por lavado:

Esta es otra forma de monitoreo, que permite también detectar los estados móviles y oviposturas de la plaga. Se sugiere colocar mínimo una trampa por árbol en 20 árboles por huerto, seleccionados al azar, de manera que se considere toda la superficie del huerto.

a) Hacer una incisión en el tronco, para generar savia.b) Colocar un cartón corrugado de unos 15 cm, en el contorno del tronco

amarrado con alambre, con la parte corrugada hacia adentro.c) Observación de la parte corrugada que se colocó hacia adentro, una

vez por semana.d) Colocar a fines de invierno. Monitorear durante todo el año, en

forma semanal.

2.2. Detección mediante el uso de trampas con cartón corrugado

Chanchito en estado móvil en pedicelo de uva

Ninfas sobre corteza Ninfa de chanchito en envés de hoja

Chanchito adulto en pecíolo de hoja

Masa de huevos

Tamizado de hojas en búsqueda de ninfas y

huevos

Adultos en cavidad calicinar

Masa de huevos

Aplicación de agua jabonosa

Muestreador buscando chanchitos

Adultos en corteza

Observación bajo lupa estereoscópica 40X

8

FIGURA 1: Número de individuos de Pseudococcus sp. y enemigos naturales observados mediante observación visual.

En la Figura 1, se muestra los niveles de capturas de la plaga y de enemigos naturales. Esto determina el peak de su población, lo que ayudará a determinar el momento oportuno de aplicar el método de control que estime conveniente.

FIGURA 2: Número de individuos de Pseudococcus sp. capturados por estadío, mediante el uso de cartón corrugado.

En la Figura 2, se muestra los niveles de capturas de la plaga. Esto determina el peak de su población, lo que ayudará a determinar el momento oportuno de aplicar el método de control que estime conveniente.

En las imágenes a continuación se muestra la ubicación de los cartones corrugados y las capturas:

Promedio de individuos por árbol de Pseudococcus en trampas de cartón corrugado (5 trampas/árbol). Huerto Amalia en Uva de Mesa, Var. Black Seedless; comuna de Paine

Fecha

10

9

8

7

6

5

4

3

2

1

0

Masas de huevosNinfasHembras adultasCapullos de machos

Pro

med

io d

e in

divi

duos

por

árb

oles

06.0

6.20

0620

.06.

2006

04.0

7.20

0618

.07.

2006

01.0

8.20

0616

.08.

2006

22.0

8.20

0629

.08.

2006

05.0

9.20

0615

.09.

2006

22.0

9.20

0626

.09.

2006

03.1

0.20

0610

.10.

2006

17.1

o.20

0626

.10.

2006

30.1

0.20

0607

.11.

2006

14.1

1.20

0621

.11.

2006

28.1

1.20

0605

.12.

2006

12.1

2.20

0621

.12.

2006

27.1

2.20

0603

.01.

2007

11.0

1.20

0718

.01.

2007

25.0

1.20

0701

.02.

2007

08.0

2.20

0722

.02.

2007

08.0

3.20

0715

.03.

2007

22.0

3.20

0729

.03.

2007

05.0

4.20

0713

.04.

2007

19.0

4.20

0726

.04.

2007

Curva de detección de individuos de Pseudococcus sp y enemigos naturales (expresado en promedio de individuos de todas las estructuras observadas, N = 5 parras) mediante Observación

visual en huerto Los Suspiros; Manzanos, comuna de Rancagua.

Fecha

12

10

8

6

4

2

0

Masas de huevosNinfasHembras adultasCapullos de machosIndividuos parasitadosIndividuos depredadores

Nº

tota

l de

indi

vidu

os

18.1

0.20

06

31.1

0.20

06

08.1

1.20

06

15.1

1.20

06

23.1

1.20

06

29.1

1.20

06

06.1

2.20

06

13.1

2.20

06

27.1

2.20

06

04.0

1.20

07

10.0

1.20

07

17.0

1.20

07

24.0

1.20

07

31.0

1.20

07

08.0

2.20

07

14.0

2.20

07

21.0

2.20

07

28.0

2.20

07

07.0

3.20

07

14.0

3.20

07

9

El presente método permite detectar el movimiento poblacional de la plaga y su curva se verá reflejada mediante la capturas de machos voladores, mostrando cuando la plaga presenta la mayor actividad.

a) Número mínimo de trampas por huerto: 3b) Distancia mínima entre trampas: 50 metros.c) Ubicación: 2 metros de altura puesta a 30 cm al interior del árbol.d) Lecturas: Una vez por semana.e) Colocar las trampas a fines de invierno. Monitorear hasta abril-mayo.f) Especies probadas: Pomáceas, carozos y uva de mesa.g) Zonas probadas: Región Metropolitana a la Región del Maule.h) Umbral de infestación: 0,7 machos promedio/trampa semana. (Equivale al Nivel que puede ser detectado en el producto final).i) Evaluación: Remover el piso engomado, y contar bajo lupa

estereoscópica 40X.

Con la planilla de registro de capturas de machos, se podrá construir la curva de la dinámica poblacional del la plaga. Véase ejemplo de capturas de machos en la Figura 3.

Planilla de registro de datos de capturas de adultos machos de Pseudococcus viburni

Fecha Trampa 1 Trampa 2 Trampa 3 Total capturas Promedio / trampa

2.3. Uso de trampas con feromona sexual para captura de machos

Adulto de Pseudococcus viburni

Trampa con feromona para captura de machos

Individuos capturados en piso pegajoso

10

FIGURA 3: Promedio de captura semanal de P. viburni por huerto

En la Figura 3, se observa el nivel poblacional de la plaga, y ayuda a determinar el momento de control más oportuno, de acuerdo a los agroquímicos disponibles, asesorado por un entomólogo.

Promedio semanal de captura de machos de Pseudococcus viburni por huerto.Enero 2005 a abril 2007

Fecha de muestreo

Pro

med

io d

e m

acho

s po

r tra

mpa

16.1

.200

530

.1.2

005

13.2

.200

527

.2.2

005

13.3

.200

527

.3.2

005

10.4

.200

524

.4.2

005

8.5.

2005

22.5

.200

55.

6.20

0519

.6.2

005

3.7.

2005

17.7

.200

531

.7.2

005

14.8

.200

528

.8.2

005

11.9

.200

525

.9.2

005

9.10

.200

523

.10.

2005

6.11

.200

520

.11.

2005

4.12

.200

518

.12.

2005

1.1.

2006

15.1

.200

629

.1.2

006

12.2

.200

626

.2.2

006

12.3

.200

626

.3.2

006

9.4.

2006

23.4

.200

67.

5.20

0621

.5.2

006

4.6.

2006

18.6

.200

62.

7.20

0616

.7.2

006

30.7

.200

613

.8.2

006

27.8

.200

610

.9.2

006

24.9

.200

68.

10.2

006

22.1

0.20

065.

11.2

006

3.12

.200

617

.12.

2006

19.1

1.20

0631

.12.

2006

14.1

.200

628

.1.2

007

11.2

.200

725

.2.2

007

11.3

.200

725

.3.2

007

8.4.

2007

22.4

.200

7

Promedio de machos por huerto14

12

10

8

6

4

2

0

11

El muestreo de malezas claves, permite conocer la presencia de la plaga como también la presencia de enemigos naturales.

a) Plantas a muestrear: Achicoria (Cichorium intybus); Cicuta (Conium maculatum); Galega (Galega officinalis), Hinojo (Foeniculum vulgare); Malva (Malva nicaeensis); Ñilhue (Sonchus sp); Piojillo (Poa Annua); Quinhuilla (Chenopodium album). Entre los árboles hospederos, el acacio (Robinia pseudoacacia) como árboles colindantes puede ser un foco de infestación.

b) Frecuencia de muestreo: Una por semana, durante todo el año.

c) Observación: hojas y raíces.

3. Muestreo de malezas que son potenciales hospederos alternativos de la plaga

Quinhuilla

Hinojo

Achicoria

Galega

Cicuta

Malva

Piojillo Ñilhue

12

En la Planilla de registro integrada a continuación, se expresa la información recogida en el campo de todos los eventos del monitoreo. Esto determinará los niveles de infestación, como también el riesgo de contaminación mediante la presencia de hospederos alternativos y la presencia de enemigos naturales, para diseñar el plan de control, con la asesoría de un entomólogo.

4. Planilla de registro de datos integrada

PLANILLA DE REGISTRO DE DATOS PARA LA DETECCION DE Pseudococcus viburni

Huerto/cuartel/SDP:DETECCIONES

Fecha de muestreo:

MUESTREOVISUAL

(**)

TRAMPA DE

CARTON(**)

TRAMPADE

FEROMONA(**)

ARRASTRE POR

LAVADO

MALEZAS(2)

ENEMIGO NATURAL

(3)Nº

Arbol*

Estado feno-lógico

Estructura vegetal (1)

Estado de desarrollo de la plaga detectada

1

2

3

4

5

6

7

8

9

10

TOTAL

%

PORCENTAJE TOTAL INFESTACIÓN HOSPEDERO FRUTAL equivale a la suma de árboles con detecciones (ya sean encontradas en: visual, cartón corrugado o arrastre por lavado), dividido el total de plantas muestreadas, multiplicado por 100.

Las Malezas monitoreadas con detecciones, indicarán el potencial de riesgo por contaminación hacia el hospedero frutal.La presencia de enemigos naturales, pemite diseñar un plan para usar pesticidas de baja toxicidad para los enemigos naturales.

(1) Estructura vegetal: Tronco, corteza, hojas, ramillas, frutos.(2) Use la Guía para identificar la especie o agregue una nueva.(3) Use la Guía para identificar la especie. Para el caso de parasitoides, indicar el Nº de chanchitos

parasitados.(*) El muestreo debe incluir 20 árboles.(**) Registros por semana.

12345

12345

12345

12345

12345

12345

12345

12345

12345

12345

13

La evaluación de los enemigos naturales, permiten conocer el equilibrio que existe entre ambos. La presencia de enemigos naturales permite seleccionar el agroquímico menos tóxico hacia dicha fauna.

Los enemigos naturales a monitorear más frecuentes son: Criptolaemus montrouzieri (predator), Chrysoperla sp. (predator), Pseudaphicus spp.(parasitoide); Leucopis sp (predator).

Dado que cada mercado tiene un nivel específico de exigencias respecto a las diferentes especies de Pseudococcus sp. y los distintos niveles de muestreo en las inspecciones fitosaniarias, los umbrales de acción estarán determinados en función del mercado de destino al que usted envíe su fruta.

5. Presencia e identificación de enemigos naturales

6. Criterios sobre decisión de control

Chrysoperla sp.Adulto

Criptolaemus montrouzieri (predator)

Adulto

Criptolaemus montrouzieri (predator)

Larva

Criptolaemus montrouzieri (predator)

Larva

Leucopis sp.Adulto

Chrysoperla sp. (predator) Larva

Leucopis sp. (predator) Larva

Momias de chanchitos parasitados por Pseudaphicus spp. (parasitoide)

Chrysoperla sp. (predator) Larva

Acerophagus flavidulus