frecuencia de apariciÓn de la bacteria helicobacter …
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13 de Junio del 2018
CFGS
“LABORATORIO
CLÍNICO Y
BIOMÉDICO”
IES ISLA DE LA
DEVA,
PIEDRAS
BLANCAS
FRECUENCIA DE APARICIÓN DE LA BACTERIA
HELICOBACTER PYLORI EN POBLACIÓN
ASTURIANA DIAGNOSTICADA MEDIANTE
INMUNOCROMATOGRAFÍA
Autoras: Genma Pérez Fernández
María Piedralba Lombardero
1
ÍNDICE
1. Resumen/ Abstract…………………………………páginas 2-3
2. Introducción y justificación…………………........página 4
3. Objetivo……………………………………………….página 10
4. Material y métodos.…………………………...……página 11
4.1 Uso, composición y fundamentos del test.…….....página 11
4.2 Pasos para la realización del test...........................página 13
4.3 Interpretación de los resultados……………………página 15
5. Resultados….…………………………….…………página 16
6. Discusión…………………………………………….página 23
7. Conclusión…………………………………………..página 23
8. Bibliografía…………………………………………..página 24-25
9. Cita…………………………………………………….página 26
2
FRECUENCIA DE APARICIÓN DE LA BACTERIA HELICOBACTER PYLORI EN POBLACIÓN ASTURIANA DIAGNOSTICADA MEDIANTE INMUNOCROMATOGRAFÍA
Autoras: Genma Pérez Fernández
María Piedralba Lombardero
1. RESUMEN
Helicobacter pylori es una bacteria que habita en el epitelio gástrico humano,
causando así inflamación de la mucosa gástrica, que puede progresar a
gastritis, úlceras pépticas y/o adenocarcinomas gástricos y linfomas gástricos.
Se considera que es una infección muy frecuente, pues afecta a más de la
mitad de la población mundial, siendo asintomática o solo causando dolor. Se
sospecha que puede ser transmitida por contacto directo, con implicación de la
vía oral, aunque no se conoce con exactitud su mecanismo de transmisión.
El objeto de este proyecto consiste en buscar la presencia de la bacteria
Helicobacter pylori en diferentes grupos de población asturiana, diferenciados
por rangos de edad y sexo y así estudiar la prevalencia de los infectados.
Dentro de las posibles técnicas existentes para realizar el diagnóstico, en este
caso, hemos escogido la inmunocromatografía en sangre periférica o suero.
Palabras clave: Helicobacter pylori, infección, inmunocromatografía,
sangre, gastritis, úlcera.
3
ABSTRACT
Helicobacter pylori is a bacterium which inhabits in the human gastric
epithelium, causing the inflammation of the gastric mucosa, which can progress
to gastritis, peptic ulcers and/or both gastric adenocarcinomas and gastric
lymphomas.
It is considered a very frequent infection, since it affects more than half of the
whole world population, being asymptomatic or only causing pain. It’s
suspected that it can be transmitted by direct contact with involvement of the
oral route. However, its specific way of transmission is not known yet.
This essay’s purpose is looking for the Helicobacter pylori bacterium presence
in different Asturian population groups, being differentiated by age and sex
ranges, and study the prevalence of the infected ones. About the techniques to
make the diagnosis, we have chosen immunochromatography in peripheral
blood or serum.
Keywords: Helicobacter pylori, infection, immunochromatography, blood,
gastritis, ulcer.
4
2. INTRODUCCIÓN Y JUSTIFICACIÓN
Se conoce la existencia de organismos en la mucosa gástrica desde hace
muchos años, pero empiezan a tener importancia en 1970. (1) En 1983,
Marshall y Warren reportaron la presencia, en tejido gástrico, de bacilos curvos
de forma espiral y cubiertos con una vaina que fueron encontrados
anteriormente a este año, lo que impactó a muchos investigadores ya que se
creía que las bacterias eran destruidas en el medio ácido del estómago antes
de que fueran capaces de colonizar la mucosa gástrica y establecerse allí. (2)
Al principio, se describió como un organismo similar al Campylobacter, aunque
posteriormente, no ajustándose a estas características de nomenclatura, se
describió como Campylobacter pylori. Las diferencias aún existentes con el
género ya preexistente, hicieron que se cambiara su nombre al nuevo género:
Helicobacter pylori. (3)
El Helicobacter pylori (también llamado H. pylori o HP) es un bacilo
multiflagelado y Gram negativo, que encontramos en la capa mucosa del
estómago, protegido parcialmente por ácido clorhídrico. (4)
La vía de transmisión de este bacilo no se conoce con exactitud, pero se
sospecha que guarda relación con las vías fecal-oral, oral-oral y gastro-oral (2),
afectando así al 50% de la población mundial, aunque en ocasiones su
presencia puede ser asintomática (4). La vía fecal-oral es la más vigente por el
descubrimiento de su presencia en aguas destinadas para el consumo y en
alimentos contaminados, también se cree que las moscas comunes y las
cucarachas transmiten esta bacteria tras encontrar el H. pylori en las heces de
estos insectos. Esta teoría es muy plausible porque ocurre igualmente en otras
enfermedades gastrointestinales como la salmonelosis o el cólera. La vía oral-
oral es contemplada como posible gracias a conseguir aislar el ADN de esta
bacteria en la placa dental y la saliva mediante PCR. La vía gastro-oral es
vigente gracias a los vómitos que puede ocasionar esta bacteria, sobre todo en
niños, además se considera la posibilidad de contagio a través del manejo y
desinfección inadecuada de gastroscopios. (2)
5
Inicialmente este microorganismo fue observado en pacientes con gastritis,
pero una vez realizado un estudio más exhaustivo se encontró en pacientes
con úlceras pépticas y/o adenocarcinomas gástricos y linfomas gástricos.
La gastritis es una afección inflamatoria de la mucosa gástrica, ocasionada por
factores exógenos y endógenos, creando síntomas como dolor abdominal,
vómitos, náuseas, acidez estomacal...
La gastritis producida por H. pylori incluye dos periodos: el primero consiste en
la llegada e introducción del bacilo en la mucosa gástrica donde se fija y se
multiplica. Una vez dentro de la mucosa, libera sustancias tóxicas que
estimulan la respuesta inmunitaria local produciendo un incremento de la IgA.
Durante esta etapa es habitual observar la invasión de H. pylori en las células
epiteliales. En el segundo periodo se muestra un incremento de la respuesta
inflamatoria, gracias a la gran variedad de mediadores químicos creados por
linfocitos, neutrófilos, macrófagos, células mastoides y células no inmunes. (5)
Fig. 1: Llegada e introducción del bacilo en la mucosa gástrica. Fuente: https://culturacientifica.com/2016/06/08/h-pylori-crea-tuneles-la-
mucosa-del-estomago/
6
Otra patología que desencadena es la úlcera gástrica. Esta dolencia se
caracteriza por la creación de una llaga causada por el daño a las paredes por
la destrucción de la mucosa. El síntoma más común es acidez de estómago.
Las complicaciones más comunes de la úlcera son las hemorragias y
perforaciones. (6)
El H. pylori también puede ocasionar adenoma gástrico junto con otros factores
(7). Este tipo de cáncer se puede agravar hasta un linfoma no Hodgkin, que se
caracteriza por la afección de células malignas en el sistema linfático; sus
síntomas son ganglios linfáticos hinchados, fiebre, sudores nocturnos, pérdida
de peso y fatiga. (8)
Fig. 2: Úlcera gástrica provocada por HP.
Fuente: http://www.fisioterapiaparatodos.com/estomago/ulcera-gastrica-
ulcera-estomago/
7
Fig. 3: Linfoma no Hodgkin.
Fuente:https://www.cancer.gov/espanol/tipos/linfoma/paciente/tratamiento-lnh-adultos-pdq
La determinación de esta bacteria al principio se hacía con muestras de la
mucosa gástrica obtenidas mediante endoscopia para la obtención de ácido
gástrico, siendo una prueba invasiva. Con estas muestras se realizaban
pruebas histológicas y cultivos.
Más tarde, estas pruebas fueron sustituidas por la prueba de ureasa rápida, la
reacción de la polimerasa en cadena (PCR) y la tipificación molecular (PCR-
RFLP). Pero estas pruebas ocasionaban varios problemas: el primero era la
incomodidad del paciente y su difícil obtención, el segundo y más importante es
que podían aparecer falsos negativos, porque la muestra analizada sólo
correspondía a una parte del órgano afectado. Para resolver este problema en
1988 Evans creó el ELISA, basado en las proteínas de alto peso molecular de
8
este microorganismo. El impedimento de esta prueba es que la validez de los
anticuerpos es de seis meses.
Las pruebas realizadas generalmente hoy en día para detectar esta bacteria
son la Inmunocromatografía y la Prueba del aliento, porque ambas se realizan
rápidamente.
Actualmente la prueba estándar es la prueba del aliento que mide la urea
marcada con 13C o 14C. Esta prueba se realiza administrando al paciente una
dosis de urea marcada, si el paciente se encuentra infectado la bacteria
convierte esa urea en ureasa dando positivo. En el caso de no tenerla la urea
no se transforma en ureasa, dado que el cuerpo humano no produce esa
sustancia.
La prueba de inmunocromatografía es una técnica cualitativa fundamentada en
la segregación de moléculas en una matriz para la detección de antígenos o
anticuerpos. La prueba se puede realizar con diferentes muestras, pueden ser
de heces total, suero o plasma. La inmunocromatografía para la detección de
antígenos busca los antígenos producidos por el cuerpo depositando la
muestra sobre una tira con anticuerpos para que se forme el complejo
antígeno-anticuerpo, mientras que la inmunocromatografía para detección de
anticuerpos, lo que contiene la tira son los antígenos y en la muestra se
encuentran los anticuerpos. A pesar de las diferencias la finalidad es la misma:
que se forme el complejo antígeno-anticuerpo. (9)
Otra técnica también utilizada cuando no se sabe con exactitud que bacteria
está atacando a la mucosa, porque los resultados no están claros, es la
Espectrofotometría de Masas MALDI-TOF, que acorta la identificación del
microorganismo. Esta técnica se realiza hoy en día en el Hospital Universitario
Central de Asturias.
9
El procedimiento de trabajo de esta técnica es el siguiente: se realiza una
biopsia que posteriormente se siembra en los agares: TG, chocolate, sangre,
Levine y Brucella, a este último al incubar debe incubar en anaerobiosis.
Al sembrar, se hace primero en una parte de la placa en masa dejando
incrustado un trozo de biopsia, después, por agotamiento de siembra. Una vez
incubado, si crece colonia se selecciona el tipo de colonia más abundante
normalmente, aunque depende de lo que se esté buscando, y se coloca en una
placa de Maldi-Tof. Después, se echa una gota de matriz y se coloca la placa
en un Espectrofotómetro de masas. Posteriormente, el espectrofotómetro
sellará la placa al vacío y con un láser rompe el material proteico de la colonia.
Por último, este material pasará por un sensor creando una gráfica que el
equipo comparará con su base de datos dando el género y subgénero de la
bacteria. (10)
Fig. 5: Placa Maldi-Tof
Fig. 4: Partes y funcionamiento
El tratamiento habitual de este bacilo es la suministración de bismuto y tres
antibióticos: nitroimidazol, amoxicilina y claritromicina junto con un inhibidor de
la bomba de protones. Las resistencias frente a estos pueden ser:
1. Naturales o primarias, que se define como la imposibilidad intrínseca del
antibacteriano para erradicar la infección, debida al efecto barrera que
realiza la capa mucosa del estómago.
10
2. Resistencia adquirida, es la que aparece frente a antibióticos a los que la
bacteria era inicialmente susceptible, debida, por ejemplo, a mutaciones
genéticas.
3. Resistencia farmacológica, aplicable concretamente a cepas de H.
pylori que muestran susceptibilidad a un antibiótico in vitro y sin embargo
son resistentes in vivo, siendo la causa principal de esta resistencia la
dificultad del antibiótico de llegar al foco de la infección a
concentraciones suficientes para alcanzar un efecto antibacteriano. (11)
El claro incremento, en las últimas décadas, de la resistencia a otros
antibióticos clave en los tratamientos erradicadores unido a la ausencia de
antibióticos alternativos eficaces, ha dificultado la implantación de tratamientos
erradicadores efectivos. Pese a que lo ideal sería estudiar en concreto la
susceptibilidad a los antibióticos de la cepa de H. pylori de cada paciente
infectado, esto no se ha llevado a cabo ya que conlleva una serie de
desventajas frente a la administración empírica de tratamientos por protocolo,
como por ejemplo, incrementación de costes, el requerimiento de la realización
de endoscopias, la existencia de una pobre correlación entre los datos in vitro e
in vivo, etc. (12)
Se ha decidido hacer este proyecto para conocer la frecuencia de aparición de
la bacteria en los asturianos contrastando con la prevalencia del resto del
mundo y también con la intención de conocer más información acerca de esta
bacteria tan común que convive con muchos de nosotros.
3. OBJETIVO
El objetivo principal de este estudio es conocer el número de personas que
conviven con la bacteria H. pylori, con o sin síntomas, y estudiar así la
prevalencia entre los distintos grupos de edad diferenciados también por sexos
de la población asturiana.
11
4. MATERIAL Y MÉTODOS
Para la realización de este proyecto se han necesitado 48 test de H. pylori para
las 48 muestras obtenidas aleatoriamente y su posterior estudio, así como 48
lancetas automáticas para la obtención de las gotas de sangre necesarias,
alcohol y gasas estériles.
El método utilizado para la detección de Helicobacter pylori es la
“Inmunocromatografía en sangre total”.
El kit usado es HLP-K20 de Diagnostik Nord, un ensayo topográfico adulto en
monocapa para la detección cualitativa de la bacteria mencionada
anteriormente, a una temperatura entre 15 y 30°C, la temperatura nunca puede
ser inferior a 15 °C.
4.1. USO, COMPOSICIÓN Y FUNDAMENTOS DEL TEST
La prueba de casete Diagnostik Nord H. Pylori se usa para detectar anticuerpos
contra esta bacteria a partir de sangre, suero o plasma.
Este ensayo permite la detección de infecciones por H. pylori mediante una
reacción colorimétrica producida por un inmunoanálisis de tipo sándwich. Para
este propósito, la membrana de nitrocelulosa se cubrió con antígeno de H.
pylori en la región de prueba (T). Entonces, el anti-H reaccionará con la
muestra diluida.
El Anticuerpo Pylori lleva un conjugado coloreado que va colocado en la
membrana que hay en el casete, de manera que cuando depositamos la
muestra con el tampón, esta fluye por capilaridad hasta llegar a la zona de
detección, donde se puede visualizar el resultado. Cuando hay presentes
anticuerpos específicos de H. pylori en la muestra, se forma un
inmunocomplejo de tipo sándwich de anticuerpo específico, y el antígeno de H.
pylori y el conjugado coloreado forman una línea coloreada en la región de
prueba de la membrana. La muestra sigue fluyendo por capilaridad hasta la
región de control (C), de manera que el conjugado sobrante será capturado por
12
un anticuerpo anticonjugado formando así la línea coloreada en la región de
control.
La presencia de la línea de control coloreada sirve como una verificación
funcional del casete de prueba pues apunta que el procedimiento fue correcto y
que la muestra fluyó adecuadamente a través de la membrana. Una línea
coloreada en la región de prueba (T) indica un resultado positivo mientras que
la ausencia de esta línea en la región de prueba, por el contrario, indica un
resultado negativo. (13)
Fig. 2: Kit comercial de la marca Diagnostik Nord (Alere) para la
detección de Helicobacter pylori.
Fuente: Protocolo kit H. pylori, Diagnostik Nord (Alere).
13
4.2. PASOS PARA LA REALIZACIÓN DEL TEST
El procedimiento de obtención de la muestra es sencillo; para comenzar se
desinfecta la yema del dedo con una gasa estéril y alcohol de 96º y se realiza
la punción capilar con una lanceta automática. Se desecha la primera gota de
sangre y se deposita una gota en la zona indicada para ello, es decir, en la
abertura del casete encima de la tira reactiva. Para la realización del test es
necesario, y muy importante, añadir tres gotas del tampón de desarrollo que
viene preparado con el Kit, ya que la muestra sola no es capaz de fluir por
capilaridad a través de la membrana de nitrocelulosa. Para la obtención de los
resultados, son necesarios entre 5 y 10 minutos, por lo que la interpretación se
realiza a los 10 minutos para una mayor fiabilidad.
Fig. 3: Obtención de la muestra mediante punción en la yema del dedo
con lanceta automática.
Fuente:http://lasangreesvi.blogspot.com/p/puncion-capilar-fundamento-
teorico-es_17.html
14
Fig. 4: Casete para la detección de Helicobacter pylori con sus partes
señaladas.
Fuente: Protocolo kit H. pylori, Diagnostik Nord (Alere).
Fig. 5: Instrucciones para la realización del test, así como tiempo de
espera oportuno y temperatura adecuada.
Fuente: Protocolo kit H. pylori, Diagnostik Nord (Alere).
15
4.3. INTERPRETACIÓN DE LOS RESULTADOS
El casete consta de dos líneas, una de control y otra que realiza el test, por lo
tanto, hay cuatro posibles interpretaciones:
1. La primera es que al pasar los 10 minutos sólo aparezca la primera línea, es
decir, la línea de control, que nos informa de un resultado negativo.
2. La segunda posibilidad es que nos encontremos con dos líneas coloreadas,
que sería indicativo de la presencia de Helicobacter pylori.
3. La tercera posibilidad es que solo aparezca la línea del test
4. Y la cuarta es que no aparezca ninguna de las rayas, en cualquiera de los
dos últimos casos la prueba quedará invalidada y será imprescindible repetirla.
Fig. 6: Interpretación de los posibles resultados del test de Helicobacter
pylori.
Fuente: Protocolo kit H. pylori, Diagnostik Nord (Alere).
16
5. RESULTADOS
Para que la muestra sea representativa hemos realizado la toma de muestra
para la detección del H. pylori sobre 48 individuos que dividimos por edades en
cuatro rangos: menores de 20 años, de 20 a 35, de 36 a 50 y mayores de 50.
Cada rango, a su vez, lo fraccionamos en hombres y mujeres, contando con un
total de 6 muestras por rango de edad para cada sexo.
A continuación, presentamos los resultados obtenidos mediante una tabla en la
que podemos observar en color verde los diferentes rangos de edades, que
hemos dividido en cuatro: menores de 20 años, de 20 a 35, de 36 a 50 y
mayores de 50. Hemos utilizado el color rosa para representar a las mujeres y
el color azul para los hombres.
Para la presentación de los resultados se ha realizado un cuadro representativo
con la prevalencia de Helicobacter pylori en Asturias, en el cuadro podemos ver
en verde los rangos de edades en los que está dividido, el color rosa nos
muestra las mujeres y el azul los hombres. A su vez, cada sexo se encuentra
dividido por la aparición o ausencia de la bacteria H. pylori.
Tabla 1: Resultados obtenidos tras la realización de las pruebas.
Fuente: Elaboración propia.
<20 20-35 36-50 51 o más
M H M H M H M H
pos neg pos neg pos neg pos neg pos neg pos neg pos neg pos neg
1 5 1 5 2 4 2 4 0 6 3 3 2 4 2 4
17
Resultado negativo
Fig. 10
Fuente: Elaboración propia.
Resultado positivo
Fig. 11
Fuente: Elaboración propia.
Se puede observar una equidad en los resultados entre mujeres y hombres de
todos los rangos de edad, siempre con un claro predominio de los valores
negativos, con la única excepción de las personas entre 36 y 50 años, en el
que se observa un total predominio de los valores negativos para las mujeres e
igualdad entre positivos y negativos para los hombres.
Podemos visualizar los resultados obtenidos de la presencia/ausencia de la
bacteria Helicobacter pylori a través del siguiente gráfico de barras, en el cual
hemos representado a los hombres con presencia de la bacteria en azul
oscuro, utilizando, a su vez, el color azul claro para representar a los hombres
con ausencia de esta. Para las mujeres con presencia de la bacteria se ha
utilizado el color rosa oscuro y las mujeres no infectadas se representan en
color rosa claro.
18
Fig. 7: presencia de la bacteria H. pylori en población asturiana.
Fuente: Elaboración propia.
La frecuencia absoluta (fa) de positivos contabiliza el total de individuos de la
muestra que padecen la infección, que en nuestro caso son 13. Para calcular la
frecuencia relativa (fr), dividimos la frecuencia absoluta entre el total de
individuos de la muestra (N), es decir, 13/48, obteniendo así un resultado de
0.27, que al multiplicarlo por 100 para obtener el porcentaje nos da un 27%, por
lo tanto, la prevalencia de positivos es del 27%. Para calcular los resultados de
las frecuencias negativas se realiza el mismo procedimiento; teniendo en
cuenta que hay 35 casos de resultados negativos, la frecuencia absoluta de los
negativos es 35, dividido por el total de muestras (N) conseguimos la
frecuencia relativa que es 0.73, que al multiplicar por 100 nos da un porcentaje
de un 73% de negativos.
Después de valorar y calcular estos resultados, mostramos un gráfico que
representa la prevalencia:
0
1
2
3
4
5
6
<2020-35
36-50>50
Hombres +
Hombres -
Mujeres +
Mujeres -
19
Figura 8: Prevalencia de positivos y negativos en ambos sexos.
Fuente: Elaboración propia.
Fig. 7: balance de positivos y negativos entre mujeres asturianas de
diferentes edades.
Fuente: Elaboración propia.
Prevalencia H. pylori
Positivos (%)
Negativos (%)
20
Fig. 8: balance de positivos y negativos entre hombres asturianos de
diferentes edades.
Fuente: Elaboración propia.
Haciendo lo mismo con los positivos por sexos, la frecuencia absoluta (fa) para
las mujeres es de 5 casos en total y para los hombres de 8, lo que implica que
la frecuencia relativa (fr) para las mujeres sea de 0.208, ya que dividimos el
número de casos (5) entre el total de muestras femeninas (24) que multiplicado
por 100 nos da un 20.8%, y para los hombres un poco mayor: 0.334, que se
obtiene dividiendo 8 (número de casos positivos) entre 24 (total de muestras
masculinas); para obtener la prevalencia de positivos multiplicamos esa
frecuencia por 100 y obtenemos el porcentaje que es de un 33.4%.
Teniendo en cuenta estos resultados podemos calcular la prevalencia de los
negativos de una forma sencilla: al total de muestras (N) que sería el 100%
tanto para las muestras femeninas como para las masculinas, le restamos el
20.8% para las mujeres y el 33.4% para los hombres, obteniendo así una unos
porcentajes negativos del 79.2% para las muestras femeninas y un 66.6% para
las masculinas aproximadamente.
21
Podemos, a partir de estos datos, calcular también las prevalencias por rangos
de edad:
Los menores de 20 años, tanto hombres como mujeres, cuentan con un caso
positivo de seis posibles, por lo tanto los cálculos son los siguientes:
- Frecuencia absoluta de positivos: 1
- Frecuencia relativa de positivos: 0.17%
- Porcentaje: 17%
Para los negativos, los cálculos serían:
- Frecuencia absoluta de negativos: 5
- Frecuencia relativa de negativos: 0.83
- Porcentaje: 83%
Los individuos entre 20 y 35 años, tanto hombres como mujeres de nuevo,
cuentan con dos casos positivos de seis posibles, por lo tanto los cálculos son:
- Frecuencia absoluta de positivos: 2
- Frecuencia relativa de positivos: 0.334
- Porcentaje: 33.4%
Para los valores negativos, tendremos:
- Frecuencia absoluta de negativos: 4
- Frecuencia relativa de negativos: 0.666
- Porcentaje: 66.6%
En las personas con edades comprendidas entre 36 y 50 años hay una clara
diferencia de resultados entre mujeres y hombres; las mujeres no cuentan con
ningún caso positivo mientras que los hombres cuentan con tres, entonces la
prevalencia de positivos para las mujeres será nula (0%) y la de negativos del
100%, mientras que para los hombres los cálculos, para valores positivos y
negativos, son:
- Frecuencia absoluta: 3
- Frecuencia relativa: 0.5
- Porcentaje: 50%
22
En el rango de mayores de 50 años de edad hemos obtenido los mismos
resultados para hombres y para mujeres, contando con 2 casos con presencia
de la bacteria frente a 4 sin ella, realizando los cálculos son los siguientes:
- Frecuencia absoluta de positivos: 2
- Frecuencia relativa: 0.334
- Porcentaje: 33.4%
Para los valores negativos; tendremos:
- Frecuencia absoluta de negativos: 4
- Frecuencia relativa de negativos: 0.666
- Porcentaje: 66.6%
Fig. 9: Prevalencia en % para ambos sexos y todos los rangos de edad.
Fuente: Elaboración propia.
23
6. DISCUSIÓN
Respecto al objetivo de nuestro proyecto, la prevalencia no ha sido la esperada
debido a diversos factores como pueden ser: que la muestra tomada fue
escasa; el rango de edades y el sexo son muy parecidos y por razones
totalmente ajenas a la técnica que hemos realizado y a las muestras que
hemos obtenido, ya que las muestras han sido elegidas totalmente al azar sin
conocer ninguna característica de los individuos que las componen. Debido a lo
anterior y para futuros proyectos, se propone realizar la toma de muestra entre
población de edad muy diferenciada así como ampliar el número de muestras
tomadas. Así, se deberían conseguir resultados más representativos.
Por otro lado, también queremos destacar que no ha sido posible calcular la
incidencia ya que nuestra técnica de detección no nos lo permite pues mide los
Anticuerpos en sangre periférica o suero pero no nos proporciona información
sobre el tiempo que llevan formados esos anticuerpos; para ello deberíamos
usar otras técnicas como, por ejemplo, la búsqueda de antígeno en heces, la
realización de biopsia o el test del aliento.
7. CONCLUSIONES
Finalmente, y de acuerdo al objetivo que nos hemos propuesto conseguir,
hemos comprobado que el 73% de la población, en nuestro proyecto, es
negativa frente a la presencia de la bacteria H. pylori, un porcentaje bastante
mayor al de las estadísticas ya existentes que creemos que está relacionado
con lo mencionado en el apartado anterior, mientras que el 27% ha dado
resultados positivos. Teniendo en cuenta estos datos, podemos afirmar que en
todos los rangos de edad hay una equidad de resultados positivos y negativos
entre ambos sexos excepto en el rango de edades comprendidas entre 36 y 50
años en el que hemos obtenido un total predominio de negativos para el sexo
femenino frente a una equidad entre positivos y negativos para el sexo
masculino y tampoco hay diferencias significativas relacionadas con el sexo y
la edad.
24
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9. CITA
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