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Examen físico e inmovilización. Exploración física general. Administración de sustancias

EXAMEN CLÍNICO

-Seguridad del personal y de los animales (secreciones de piel)

(Leves a graves inflamaciones de mucosas)

Rana arborícola cubana (Osteopilus septentrionalis) Familia Bufonidae

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EXAMEN CLÍNICO ( salivación, regurgitación, disnea, convulsiones, muerte. Sustancias alucinógenas “lamer sapos”)

Sapo del desierto de Sonora (Bufo alvarius) Sapo gigante (Bufo marinus)

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EXAMEN CLÍNICO

Rana dardo dorada (Phyllobates terribilis)

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EXAMEN CLÍNICO

Defensa frente a depredadores (sust. pegajosa)

Salamandra gigante japonesa (Andrias japonicus)

Salamandra viscosa (Plethodon glutinosus)

Rana tomate (Dyscophus guineti) Rana toro sudamericana (Leptodactylus pentadactylus)

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EXAMEN CLÍNICO

Defensa frente a depredadores (Sust. mal olor)

Rana visón (Rana septentrionalis)

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EXAMEN CLÍNICO

Compuestos farmacológicamente valiosos (antimicrobianos, analgésicos)

Rana arborícola magnífica (Litoria splendida)

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EXAMEN CLÍNICO

Ranas flecha (Dendrobates sp., Phillobates sp.)

Estado físico del animal: dardos, sust. alucinógenas para ritos, etc.

Expulsión a distancia

Bufo sp. Salamandra salamandra

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EXAMEN CLÍNICO -Guantes de látex humedecidos y sin polvo o lubricantes -Recipiente con agua

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EXAMEN CLÍNICO

-Baño de ojos, gafas de seguridad

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EXAMEN CLÍNICO

-Comportamientos habituales: fingir la muerte, actividad intensa (no estrés), inflarse de aire, expulsar orina, morder, emisión de sonidos, autotomía de la cola, etc.

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EXAMEN CLÍNICO

-Recipientes de vidrio o plástico transparentes: vientre, eritema cutáneo, evaluar órganos (ranas de cristal) -Transiluminación (luz fría): corazón, pulmones, hígado, vena de línea media abdominal, intestino, ovarios. No parásitos, masas en músculos parénquima de órganos. Transiluminación interna.

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EXAMEN CLÍNICO

-Grandes anuros: zona anterior a patas traseras y alrededor de delanteras -Salamandras grandes: por detrás de patas delanteras y por delante de traseras. En salamandras gigantes dos operarios

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EXAMEN CLÍNICO

-Anuros y salamandras medianas: también con una mano para tener

acceso a cavidad oral y cloaca

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EXAMEN CLÍNICO

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EXAMEN CLÍNICO

-Anfibios pequeños: de manera suave, mejor con inmovilización química (Epipedobates pictus)

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EXAMEN CLÍNICO

-Cecilios, Sirenas, Sirenas enanas y Amphiumas: difícil sin sedación

química. Tubos plásticos transparentes, presión con trozos de gomaespuma,… .

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EXAMEN CLÍNICO

-Atención a las mordeduras (Gram negativas): sapo cornudo

(Ceratophrys spp.), rana toro africana (Pyxicephalus adspersus), Cryptobranchus alleganiensis, salamandras gigantes asiáticas

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EXAMEN CLÍNICO

-Larvas de anfibios: con sumo cuidado, mantenimiento de humedad

en la piel (arrugas, punta de la cola curva,…)

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ADMINISTRACIÓN DE SUSTANCIAS 1.-Vía inyectable:

a.-Vía intracelómica: al lado de la línea media, en la región paralumbar

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b.-Vía intravenosa: difícil en pequeños; vena de la línea

media, vena lingual, corazón, vena caudal ventral

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c.-Vía intramuscular: en tamaño suficientemente

grande

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d.-Vía subcutánea: piel muy adherida en salamandras

y cecilios e.-Inyección en sistema linfático: saco linfático dorsal

de anuros

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ADMINISTRACIÓN DE SUSTANCIAS 2.-Vía oral:

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ADMINISTRACIÓN DE SUSTANCIAS

3.-Vía de administración tópica: buena absorción; irritación; colirios alta concentración

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ADMINISTRACIÓN DE SUSTANCIAS 4.-Baños medicinales

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MANTENIMIENTO DE ANFIBIOS NUTRICIÓN

-Anuros antes de la metamorfosis: herbívoros, algunos carnívoros

obligados (ranas flecha) y oportunistas


-Después de la metamorfosis, carnívoros (insectos, peces, otros anfibios,

reptiles, roedores y aves)


-Caudados y Cecilios: larvas y adultos carnívoros


-Animales importados OJO!!!

-Retirar presa viva tras la comida OJO!!!


-Cuidado con la OBESIDAD: cantidad o frecuencia

-Disminuir según crecimiento: cazadores “al acecho” c/2sem, larvas y ranas pequeñas c/día, diurnos 1-2 v/d, nocturnos al final del día o de noche


-Alimentos posibles para terrestres o semiacuáticos:


-Alimentos posibles para anfibios acuáticos: igual +


-Evitar insectos de colores brillantes (toxinas naturales) -Invertebrados silvestres OJO!!! (pesticidas, toxinas) -Piensos para peces o reptiles: cuidado!!! -Roedores: vitamina A muy alta (hiperparatiroidismo nutricional, suplementos de D3)


-Dieta equilibrada????: difícil, alimentos limitados, suplementos

-Lo mejor: la mayor variedad posible -Relación Ca:P: dar dietas comerciales ricas en Ca y bajas en P (OJO!!!), enharinarlos, tiamina en caso de pescado congelado.

Procedimientos y técnicas clínicas de diagnóstico

Introducción

-Desafío

-Traslado a la consulta

-Consideraciones: historia clínica completa, alimentación, parámetros del entorno, estructura social, estado reproductivo, reciente introducción o pérdida de animales, administración de fármacos o productos químicos, etc.


CELIOCENTESIS

-Aspiración de fluidos desde el celoma de animales hinchados (hidrocele, anasarca)

-Causas: insuficiencia cardiovascular, hepática o renal

-Procedimiento: jeringa y aguja de pequeño calibre, decúbito dorsal, en región paralumbar o justo al lado de línea media, desinfección suave

-Análisis de fluidos: densidad, proteínas totales, citología, cultivo, análisis químico, etc.


EXTRACCIÓN DE SANGRE

-Objetivo: recuento de células blancas y rojas, Ht, Fórmula leucocitaria, PT, parásitos hemáticos…

-Anticoagulante: heparina versus EDTA

-Sistema linfático

-Desinfección de zona de punción



Vías principales:

-Plexo venoso lingual: en anuros incluso pequeños

-Vena de la línea media abdominal: en grandes anuros



Vías principales:

-Vena caudal ventral: en salamandras y tritones

-Cardiocentesis: útil en todos los grupos



Interpretación hemograma:

-Mucha variación: técnica, condiciones, estado fisiológico, sexo, estación, patología, mala identificación….

-Muestras seriadas de animales sanos

-Daño de epidermis en manejo: aumento leucocitos

-Glucocorticoides: linfopenia y neutrofilia

-Amputación de cola en tritones vientre de fuego: linfocitosis y disminución de Ht

-Morfología de GR y GB: inclusiones víricas, parásitos, bacterias,… .



Interpretación bioquímica:

-Glucosa: origen, estación, hora, manipulación de la muestra, anestesia, tipo de extracción. Hiperglucemia (50 mg/dl) por manipulación

-Proteinas, Ca, Na: sexo

-Tetania: hipoglucemia, hipocalcemia

-BUN elevado y buena hidratación, sospecha de enfermedad renal


LAVADO CLOACAL

-Catéteres uretrales, intravenosos, de goma,… y jeringa de 3 cc

-Útil si no se han podido recoger heces frescas


LAVADO CLOACAL

-Protozoos, metazoos, bacterias, hongos, células inflamatorias y neoplásicas

-Lavar con solución salina y recoger aspirado para estudio inmediato en microscopio. Luego tinción para citología


MUESTRA PARA CULTIVO DE GÉRMENES

-Lesiones en piel, boca, ojo y cloaca

-Líquido celómico, sangre, orina y heces

-Análisis postmortem: hígado, bazo, riñón y corazón

-Muestras: hisopo de punta fina humedecido en el propio medio de transporte o en solución salina estéril


ELECTROCARDIOGRAFÍA

-Reducido tamaño: fijación de las sondas

-Necesidad de anestesia: forma del electrocardiograma

-Escasos valores de referencia en diferentes enfermedades

-Metabolismo variable según la temperatura

-Recoger datos “normales”



Técnica:

-Aclimatar al animal durante un mínimo de 4 h

-Anotar fecha, hora y temperatura (al menos 21ºC)

-Hacer también ECG en un animal sano

-Nivel de anestesia quirúrgica



Técnica:

-Electrodos de aguja en músculo o subcutáneo, según tamaño: para brazos en el tercio distal del húmero, en EPI en línea media ventral y EPD en el gastrocnemio derecho


ENDOSCOPIA

-Endoscopio rígido hasta estómago o cloaca bajo sedación

-Se pueden retirar cuerpos extraños o realizar biopsias


ANÁLISIS DE HECES

-Muestra fresca, solución salina; flotación


ANÁLISIS DE HECES

-Flagelados, ciliados, opalínidos, nematodos (huevos y larvas)


ANÁLISIS DE HECES

-Citología: coccidios u otra enfermedad gastrointestinal


ANÁLISIS DE HECES

-Glóbulos rojos o células inflamatorias: infección activa, tratamiento inmediato

-Cryptosporidium o similar: tinción específica ácido-alcohol resistente de Ziehl-Neelsen.

-Cultivo poco útil: Salmonella, Aeromonas,…


RASPADOS DE PIEL

-Identificación correcta del germen que ocasiona el problema

-Técnica: raspado suave con el borde de un portaobjetos, de un cubre o con el borde romo de una hoja de bisturí

-Examen de frotis en fresco con solución salina y teñido


LAVADO GÁSTRICO

-En animales de cierto tamaño

-Técnica: tubo pequeño y flexible con gel estéril soluble hasta estómago, 1-2 cc de solución salina con jeringa de 5 cc; a los 30 segundos aspirar y examinar la muestra al microscopio en fresco y con tinción


IMPRONTAS

-Completan un raspado de piel o cuando éste puede lesionar el tejido afectado (lesiones rostrales, prolapsos de cloaca,…)

-Técnica: se toca la lesión con un portaobjetos para teñir posteriormente y analizar. Podrán verse bacterias, hongos, parásitos y células inflamatorias


LAVADO TRAQUEAL

-Pueden evidenciarse neumonías parasitarias, bacterianas o micóticas

-Técnica: en animal anestesiado, catéter uretral a través de glotis hasta tráquea, pequeña cantidad de solución salina estéril y aspiración, frotis en fresco y análisis inmediato; también citología y cultivo en su caso


DIANÓSTICO POR IMAGEN

1.-Radiología:

-Sin inmovilización química: recipiente, bolsa de plástico

-Contención química (MS-222, isoflurano): mejor posición, visión de extremidades



1.-Radiología:

-Dos proyecciones: D-V, L-L, cráneo-caudal, oblicua

-Exposición directa sobre pantalla, tiempos de exposición cortos, mayor distancia focal posible, cierre del foco



1.-Radiología:

-Aparatos para mamografías, placas de mamografía

-Películas radiográficas dentales: sin pantalla, alta velocidad



1.-Radiología:

-Radiografía de contraste: ubicar digestivo, cuerpos extraños,… . Sulfato de bario no compuestos yodados



2.-Ecografía: -Sin inmovilización manual directa o química: recipientes con agua, bolsas de plástico, trozos de espuma (activos), rama (arborícolas)

-Sonda con plástico o con agua, de 7,5 MHz (pequeños) y 5,0 MHz (grandes), mejor 10,0 MHz

-Video o copia impresa (historia clínica)



2.-Ecografía:

-Corazón: punto de referencia inicial, no hay diafragma

-Hígado bilobulado en anuros, alargado en salamandras

-Vesícula biliar anecoica



2.-Ecografía: -Cuerpos grasos hiperecoicos como dedos en anuros, longitudinales en salamandras

-Vejiga urinaria: llena, anecoica

-Hembras grávidas: alternancia anecoica e hiperecoica

-Machos: testículos ovales en la base de los cuerpos grasos

-Ascitis: área anecoica sin fronteras claras



3.-Tomografía computerizada y resonancia magnética:

-Costo, accesibilidad e inmovilización (sedación)

-Radiología y TAC para hueso

-Ecografía y resonancia para tejidos blandos


CALIDAD DEL AGUA

-Anfibios acuáticos; varios animales enfermos a la vez

-NH3, nitritos, pH, alcalinidad y Tª

-Sobresaturación en gases: burbujas en la piel. Difícil de medir

-O2 disuelto en agua: larvas y especies neoténicas. No se puede medir con los kits comerciales


CALIDAD DEL AGUA

-pH neutro: ácido o alcalino (irritación). Kits comerciales. Productos tampón o cambios de agua.

-Dureza: cationes en el agua (Ca, Mg). Baja, deficiencia nutricional (enf. Metabólica ósea); elevada, irritación (cecilias). Kits comerciales


CALIDAD DEL AGUA

-Alcalinidad: capacidad de tamponamiento de un sistema, puede predecir la variabilidad en el pH.

-Amoniaco, nitritos y nitratos: irritante de branquias y piel (moco), disminuye captación de oxígeno, prurito. Kits comerciales: N total (NH4 más alto a pH bajo)

-Nitritos: metahemoglobinemia (enfermedad de la sangre marrón)

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Familia Brachycephalidae (Sapos dorados)

Familia Bufonidae (Sapos típicos)

Familia Centrolenidae (Ranas de cristal)

Familia Dendrobatidae (Ranas flecha)

Familia Discoglossidae (Sapos parteros)

Familia Heleophrynidae (Ranas fantasma)

Familia Hylidae (Ranitas de San Antonio)

Familia Hyperoliidae (Ranas de cañaveral)

Familia Leiopelmatidae (Ranas de Nueva Zelanda)

Familia Leptodactylidae (Ranas de lluvia)

Familia Microhylidae (Ranas de boca estrecha)

Familia Myobatrachidae (Ranitas australianas)

Familia Pelobatidae (Sapos de espuelas)

Familia Pelodytidae (Sapillos peregil)

Familia Pipidae (Ranas sin lengua)

Familia Pseudidae (Ranas arlequín)

Familia Ranidae (Ranas típicas)

Familia Rhacophoridae (Ranas arborícolas del viejo mundo)

Familia Rhinodermatidae (Ranas de Darwin)

Familia Rhinophrynidae (Sapos cavadores mejicanos)

Familia Sooglossidae (Ranas de Seychelles)

Familia Ambystomatidae (Salamandras topo)

Familia Amphiumidae (Anfiumas)

Familia Cryptobranchidae (Salamandras gigantes)

Familia Dicamptodontidae (Salamandras americanas)

Familia Hynobiidae (Salamandras asiáticas)

Familia Plethodontidae (Salamandras apulmonadas)

Familia Proteidae (Salamandras neoténicas)

Familia Salamandridae (Salamandras y tritones)

Familia Sirenidae (Sirenas)

Familia Caeciliidae (Cecílidos comunes)

Familia Ichthyophiidae (Cecílidos pez)

Familia Rhinatrematidae (Cecílidos sudamericanos)

Familia Scolecomorphidae (Cecílidos tropicales)

Familia Typhlonectidae (Cecílidos acuáticos)

Familia Uraeotyphlidae (Cecílidos indios)

examen físico e inmovilización. exploración física ... 22.pdf · e.-inyección en sistema...

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