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“EVALUACIÓN DEL EFECTO DE LA APLICACIÓN DE Trichoderma

harzianum y Trichoderma viride PARA EL CONTROL DE

MARCHITEZ EN MORA DE CASTILLA (Rubus glaucus Benth) EN

EL CANTÓN PILLARO, PROVINCIA DE TUNGURAHUA.”

CLAUDIA MARÍA ANDRADE MONTALVO

TESIS

PRESENTADA COMO REQUISITO PARCIAL PARA

OBTENER EL TÍTULO DE INGENIERA AGRÓNOMA

ESCUELA SUPERIOR POLITÉCNICA DE CHIMBORAZO

FACULTAD DE RECURSOS NATURALES

ESCUELA DE INGENIERÍA AGRONÓMICA

RIOBAMBA – ECUADOR

2012

EL TRIBUNAL DE TESIS CERTIFICA, que el trabajo de investigación titulado

“EVALUACIÓN DEL EFECTO DE LA APLICACIÓN DE Trichoderma harzianum

y Trichoderma viride PARA EL CONTROL DE MARCHITEZ EN MORA DE

CASTILLA (Rubus glaucus Benth) EN EL CANTÓN PILLARO, PROVINCIA DE

TUNGURAHUA.”, De responsabilidad de la Srta. Egresada Claudia María Andrade

Montalvo, ha sido prolijamente revisada quedando autorizada su presentación.

TRIBUNAL DE TESIS

ING. NORMA ERAZO

DIRECTOR

ING. JUAN LEÓN

MIEMBRO

ESCUELA SUPERIOR POLITÉCNICA DE CHIMBORAZO

FACULTAD DE RECURSOS NATURALES

ESCUELA DE INGENIERÍA AGRONÓMICA

RIOBAMBA – ECUADOR

2012

DEDICATORIA

En el presente trabajo , está sintetizado mi entusiasmo, y mi especial gratitud para los seres

más queridos de mi vida, Quienes, con su sacrificio; su protección moral y espiritual han

guiado mi mente y mi corazón para cumplir con una etapa más en mi existencia, con la

cual se hará realidad no solo mis sueños sino también el de mis Padres (+); para ellos mis

promesas y anhelos de seguir adelante, pensando en ese ideal al que dirijo mis pasos para

ser útil a los míos y a mis semejantes.

Claudia María

AGRADECIMIENTO

Presento mi agradecimiento desde la intimidad de mi alma para el creador del universo y

dueño de mi vida, motor que enriquece mi espíritu, Dios.

A mis adorados padres Carlos Raúl (+) y Carmen Amada (+) por su ejemplo de lucha y

honestidad, Soy optimista de alcanzar la realidad de mis anhelos, porque en cada instante

recordaré los sabios consejos de mis padres que pusieron en mi la decisión de ver las cosas

siempre por el lado bueno, dejando a un lado el temor de la duda y la desconfianza.

Gracias, con todo mi espíritu elevaré al cielo mi oración para que el ser supremo premie a

mis maestros de vida por todo cuanto Soy.

Al tesoro de mi vida, mis hermanitas Myriam Catalina, Anita Patricia y Emilita José por

su amoroso apoyo incondicional, por su confianza, quienes han compartido mis alegrías y

tristezas, triunfos y fracasos y que hoy están junto a mí para celebrar esta meta propuesta ,

a mi cuñado Emilito por su paciencia y generosidad.

A la inspiración más dulce de mis sueños, mi gran amor Fabián Alejandro, por no dejarme

desfallecer en los momentos más difíciles de mi vida, porque día a día me motivó a

culminar este sueño,… por ellos y para ellos.

Al Instituto Nacional de Investigaciones Agropecuaria INIAP especialmente al Ing. Aníbal

Martínez Codirector de la investigación quien me abrió las puertas para el desarrollo de mi

Proyecto de Titulación. A los Ingenieros Rosendo Jácome y Germán Ayala les agradezco

también por sus siempre atentas y rápidas respuestas a las diferentes inquietudes surgidas,

por su cariño y apoyo incondicional l. Al Dr. Wilson Vásquez Líder nacional del programa

de Fruticultura, por sus valiosas sugerencias y acertados aportes durante el desarrollo de

este trabajo.

A la Escuela Superior Politécnica de Chimborazo por haberme brindado el conocimiento

de manera especial a mi Directora de Tesis, Ing. Norma Erazo por su generosidad al

brindarme la oportunidad de recurrir a su capacidad y experiencia científica en un marco

de confianza, afecto y amistad, fundamentales para la concreción de este trabajo. Al Ing.

Juan León Miembro de la investigación por su tiempo, colaboración y conocimientos

durante el desarrollo de este trabajo. Al Ing. Federico Rosero docente de Fruticultura que

en los años de estudio ha sabido guiarme con sus sabios consejos por el camino del saber,

cultivando valores y principios que me han ido formando integralmente.

Y, por supuesto, el agradecimiento más profundo y sentido para mi mejor amiga y

hermana Martita Espín a mis amigos que han compartido conmigo los “ires y venires” en

el plano personal durante esta etapa, que sin su apoyo , colaboración e inspiración habría

sido imposible llevar a cabo este trabajo a Fernanda, Mercy I., Ruth, Soraya T, Rosita,

Ximena, Blanquita., Gerardo N., Pierrick V., Francois F., Carlos Luis C., Myriam M. ,

Margarita, Tere W, Chío, Marcia.

A la alegría de mis días mis sobrinos y primitos: Andre, Francis, Adrián, Allan, Sofí, Fáti,

Elenita, William, Byron, Ramiro.

A los señores agricultores de campos frutícolas de la provincia de Tungurahua por

colaborar con el presente trabajo.

TABLA DE CONTENIDO

CAPÍTULO PAG.

LISTA DE CUADROS i

LISTA DE GRÁFICOS iv

LISTA DE ANEXOS vi

I. TÍTULO 1

II. INTRODUCCIÓN 1

III. REVISIÓN DE LITERATURA 3

IV. MATERIALES Y METODOS 21

V. RESULTADOS Y DISCUSIÓN 33

VI. CONCLUSIONES 80

VII. RECOMENDACIONES 81

VIII. ABSTRACTO 82

IX. SUMMARY 83

X. BIBLIOGRAFÍA 84

XI. ANEXOS 88

i

LISTA DE CUADROS

Nº CONTENIDO Página

1 TRATAMIENTOS EN ESTUDIO. 24

2 ANÁLISIS DE VARIANZA (ADEVA). 25

3 ESCALA DE INCIDENCIA DE LA MARCHITEZ. 27

4 ESCALA DE SEVERIDAD DE LA MARCHITEZ. 27

5 PORCENTAJE DE MORTALIDAD DE PLANTAS. 33

6 SEVERIDAD DE LA MARCHITEZ. 34

7 INCIDENCIA DE LA MARCHITEZ. 36

8 ANÁLISIS DE VARIANZA PARA EL VIGOR DE LA PLANTA. 37

9 PRUEBA DE TUKEY AL 5% PARA EL VIGOR DE LA

PLANTA (FACTOR B).

37

10 ANÁLISIS DE VARIANZA PARA EL VIGOR DE LA PLANTA

A LOS 6 MESES.

39

11 PRUEBA DE TUKEY AL 5% PARA EL VIGOR DE LA

PLANTA (FACTOR A).

39

12 ANÁLISIS DE VARIANZA PARA EL NÚMERO DE RAMAS

PRIMARIAS.

41

13 PRUEBA DE TUKEY AL 5% PARA NÚMERO DE RAMAS

PRIMARIAS (FACTOR B).

42


PRIMARIAS A LOS 6 MESES.

43


SECUNDARIAS.

44


SECUNDARIAS (FACTOR B).

44


SECUNDARIAS.

46

ii



SECUNDARIAS (FACTOR B).

46


TERCIARIAS.

48

20 PRUEBA DE TUKEY AL 5% PARA LA INTERACCIÓN EN EL

NÚMERO DE RAMAS TERCIARIAS (A x B).

49


TERCIARIAS.

50

22 PRUEBA DE TUKEY AL 5% PARA LA INTERACCIÓN EN EL


51

23 ANÁLISIS DE VARIANZA PARA EL INICIO DE LA

FLORACIÓN.

52

24 ANÁLISIS DE VARIANZA PARA NÚMERO DE YEMAS. 53

25 PRUEBA DE TUKEY AL 5% PARA EL NÚMERO DE YEMAS 54

26 ANÁLISIS DE VARIANZA PARA EL NÚMERO DE FLORES

ABIERTAS.

55

27 ANÁLISIS DE VARIANZA PARA LOS FRUTOS CUAJADOS. 56

28 ANÁLISIS DE VARIANZA PARA LOS FRUTOS

DESARROLLADOS.

56

29 ANÁLISIS DE VARIANZA PARA LOS FRUTOS MADUROS. 57

30 ANÁLISIS DE VARIANZA PARA EL DIÁMETRO DEL

FRUTO.

58

31 PRUEBA DE TUKEY AL 5% PARA EL DIÁMETRO DEL

FRUTO.

58

32 ANÁLISIS DE VARIANZA PARA LA LONGITUD DEL

FRUTO.

60

60

33 PRUEBA DE TUKEY AL 5% PARA LA LONGITUD DEL

FRUTO.

60

iii



PRODUCTIVAS.

62

35 PRUEBA DE TUKEY AL 5% PARA EL NÚMERO DE RAMAS

PRODUCTIVAS.

62


PRODUCTIVAS.

63


VEGETATIVAS.

65


VEGETATIVAS.

65

39 ANÁLISIS DE VARIANZA PARA LA LONGITUD DE LA

RAMA MUESTRA.

67

40 ANÁLISIS DE VARIANZA PARA LA LONGITUD DE LA

RAMA MUESTRA.

68

41 PRUEBA DE TUKEY AL 5% PARA LA LONGITUD DE LA

RAMA MUESTRA.

68


PRODUCTIVAS.

69

43 ANÁLISIS DE VARIANZA PARA EL PESO EN Kg. 71

44 PRUEBA DE TUKEY AL 5% PARA EL PESO EN Kg. 71

45 PRUEBA DE TUKEY AL 5% PARA EL PESO EN Kg. 72

46 ANÁLISIS DE VARIANZA PARA EL RENDIMIENTO EN

Kg/PLANTA.

74

47 PRUEBA DE TUKEY AL 5% PARA EL RENDIMIENTO EN

Kg/PLANTA.

76

48 BENEFICIO NETO 77

49 ANÁLISIS DE DOMINANCIA PARA LOS TRATAMIENTOS. 78

50 ANÁLISIS MARGINAL DE LOS TRATAMIENTOS NO

DOMINADOS

79

iv

LISTA DE GRÁFICOS.


1 PORCENTAJE DE MORTALIDAD. 34

2 INCIDENCIA DE LA MARCHITEZ EN MORA DE CASTILLA

(Rubus glaucus Bent).

35

3 VIGOR DE LAS PLANTAS REFERENTE A LA EDAD DE LA

PLANTA (FACTOR B).

38

4 VIGOR DE LAS PLANTAS REFERENTE A LOS FUNGICIDAS

DE ORDEN BIOLÓGICO (FACTOR A).

40

5 NÚMERO DE RAMAS PRIMARIAS REFERENTE A LA EDAD

DE LA PLANTA (FACTOR B).

42

6 NÚMERO DE RAMAS SECUNDARIAS REFERENTE A LA

EDAD DE LA PLANTA (FACTOR B).

45

7 NÚMERO DE RAMAS SECUNDARIAS REFERENTE A LA

EDAD DE LA PLANTA (FACTOR B).

47

8 NÚMERO DE RAMAS TERCIARIAS EN LA INTERACCIÓN (A

x B).

49

9 NÚMERO DE RAMAS TERCIARIAS EN LA INTERACCIÓN (A

x B) A LOS 6 MESES.

51

10 NÚMERO DE YEMAS EN LOS FUNGICIDAS DE ORDEN

BIOLÓGICO (FACTOR A).

54

11 DIÁMETRO DEL FRUTO EN RELACIÓN A LOS FUNGICIDAS


59

12 LONGITUD DEL FRUTO EN RELACIÓN A LOS FUNGICIDAS


61

13 NÚMERO DE RAMAS PRODUCTIVAS EN EL FACTOR A. 63

14 RAMAS PRODUCTIVAS EN EL FACTOR B. 64

15 NÚMERO DE RAMAS VEGETATIVAS EN EL FACTOR A. 66

v


16 NÚMERO DE RAMAS PRODUCTIVAS EN EL FACTOR A. 69

17 LONGITUD DE LA RAMA MUESTRA EN EL FACTOR B. 70

18 PESO EN Kg. EN EL FACTOR A. 72

19 LONGITUD DE LA RAMA MUESTRA EN EL FACTOR B. 73

20 RENDIMIENTO EN Kg/PLANTA EN LA INTERACCIÓN (A x

B).

75

vi

LISTA DE ANEXOS


1 ESQUEMA DE DISTRIBUCIÓN DEL ENSAYO. 88

2 PORCENTAJE DE LA MORTALIDAD DE PLANTAS. 89

3 INCIDENCIA DE LA MARCHITEZ DE LA ENFERMEDAD. 89

4 SEVERIDAD DE LA MARCHITEZ. 90

5 VIGOR DE LA PLANTA. 91

6 NÚMERO DE RAMAS PRIMARIAS, SECUNDARIAS Y

TERCIARIAS. 92

7 INICIO DE LA FLORACIÓN. 95

8 NÚMERO DE YEMAS. 95

9 NÚMERO DE FLORES ABIERTAS. 96

10 FRUTO CUAJADO. 96

11 FRUTOS DESARROLLADOS. 97

12 FRUTOS MADUROS. 97

13 TAMAÑO DEL FRUTO. 98

14 NÚMERO DE RAMAS PRODUCTIVAS Y VEGETATIVAS. 99

15 LONGITUD DE LA RAMA MUESTRA. 100

16 PESO. 101

17 RENDIMIENTO EN KILOGRAMOS / PLANTA. 101

18 MANEJO FITOSANITARIO 102

19 MANEJO NUTRICIONAL 103

I. EVALUACIÓN DEL EFECTO DE LA APLICACIÓN DE Trichoderma

harzianum y Trichoderma viride PARA EL CONTROL DE MARCHITEZ EN

MORA DE CASTILLA (Rubus glaucus Bent) EN EL CANTÓN PILLARO,

PROVINCIA DE TUNGURAHUA.

II. INTRODUCCIÓN.

Mediante la investigación, se quiere aumentar de los rendimientos de este cultivo que se ha

visto afectado seriamente por la marchitez, un problema para los agricultores de esta zona,

quienes cuentan con los ingresos de la mora de castilla como un pilar fundamental de su

economía.

El desconocimiento en cuanto a técnicas de manejo para el control de plagas y

enfermedades es otro de los problemas frecuentes que afecta la producción de Mora de

Castilla, así la marchitez es una enfermedad que provoca los bajos rendimientos,

reduciendo la vida útil de éstos cultivos, debido a que nuestros agricultores realizan sus

prácticas agrícolas de forma tradicional sacando las plantas enfermas o aplicando gran

cantidad de fungicidas. (Michel, 2001). El control biológico busca aparte del control,

lograr la seguridad alimentaria al adquirir productos libres de compuestos tóxicos y llevar

una vida sana. Para esto es necesario conocer a los agentes benéficos esto obliga a realizar

esfuerzos para desarrollar cada vez más técnicas a base de organismos antagonistas que

actúan contra patógenos del suelo.

El uso de Trichoderma como agente de biocontrol representa una alternativa viable a ser

evaluada dadas sus características de ser eficaz contra fitopatógenos foliares y del suelo en

algunos cultivos. Las especies de trichoderma muestran gran capacidad para el control de

fitopatógenos ejerciendo un efecto antagónico debido a su ubicuidad, a su facilidad para

ser aisladas y cultivadas, a su rápido crecimiento en un gran número de sustratos ya que no

atacan a plantas superiores El hongo trichoderma actúa por medio de la competencia por

sustrato, la producción de sustancia fungotóxicas, la inducción de resistencia por medio de

fitoalexinas, y el micoparasitismo. (Papavizas et al. 1982. citado por Ezziyyani, 2004).

2

Por lo antes mencionado, esta tesis representa una opción al control químico en el manejo

integrado de la enfermedad, es por eso que se plantea el siguiente problema: Cual es la

eficacia de de Trichoderma harzianum y Trichoderma viride para el control de Marchitez

de la Mora de Castilla (Rubus glaucus Benth) en el cantón Pillaro, Provincia de

Tungurahua.

Por lo antes mencionado se planteó el presente ensayo con la finalidad de determinar y

evaluación del efecto de la aplicación de trichoderma harzianum y trichoderma viride para

el control de marchitez en mora de castilla (rubus glaucus bent) en el cantón Píllaro,

provincia de Tungurahua para que puedan constituirse en alternativas productivas y

económicas para los agricultores del sector, para lo cual se planteó los objetivos siguientes:

1. General

Evaluar el efecto de la aplicación de Trichoderma harzianum y Trichoderma viride para el

control de marchitez en mora de castilla (Rubus glaucus Benht) en el cantón Píllaro,

provincia de Tungurahua.

2. Específicos

a. Determinar la eficacia de Trichoderma harzianum. y Trichoderma viride para el

control de marchitez en mora de castilla (Rubus glaucus Benth).

b. Realizar un análisis económico determinando la relación beneficio/costo.

III. REVISIÓN DE LITERATURA.

A. CONTROL BIOLOGICO.

1. Definición.

Zerba (2007), manifiesta que el termino Control Biológico se refiere por un lado, al

control natural que consiste en la regulación del número de plantas y animales por medio

de enemigos naturales (parásitos, predadores y patógenos); por otro lado, al control

aplicado de plagas; técnica que incluye la manipulación de esos agentes naturales por el

hombre para reducir las pérdidas en agricultura, forestación o productos comerciales. El

control biológico aplicado generalmente se implementa de tres formas diferentes o

combinaciones de las mismas:

Conservativo: consiste en alterar las prácticas culturales en los cultivos para favorecer el

desarrollo de los agentes de control biológico natural y sus efectos.

Aumentativo: los agentes de control biológico se producen en forma masiva en el

laboratorio y se aplican en forma inoculativa para destruir las plagas.

Clásico: es la fase de aplicación compuesta por el descubrimiento, importación, y

establecimiento de enemigos naturales exóticos.

El control biológico está libre de los efectos secundarios indeseables asociados a los

tóxicos de amplio espectro y es uno de los métodos de mejor relación entre costo y

efectividad, cuando es aplicado por especialistas bajo principios establecidos, el control

biológico es seguro y no tiene efectos adversos sobre el ecosistema. (Cate 1994, citado por

Zerba 2007).

4

2. Mecanismos mediante los cuales los antagonistas ejercen su acción.

Haciendo referencia a la utilización de microorganismos antagonistas para el control de

enfermedades, entendiéndose por antagonistas, aquellos organismos que interfieren en la

supervivencia o desarrollo de los patógenos. No es fácil determinar con precisión los

mecanismos que intervienen en las interacciones entre los antagonistas y los patógenos

sobre la planta o en las heridas. En general los antagonistas no tienen un único modo de

acción y la multiplicidad de modos de acción es una característica a seleccionar en un

antagonista. Se han descrito varios mecanismos de acción de los antagonistas para

controlar el desarrollo de patógenos sobre fruta. Ellos son: antibiosis, competencia por

espacio o por nutrientes, interacciones directas con el patógeno (micoparasitismo, lisis

enzimática), e inducción de resistencia (Cook and Baker 1983).

a. Antibiosis.

Se refiere a la producción por parte de un microorganismo de sustancias tóxicas para otros

microorganismos, las cuales actúan en bajas concentraciones (menores a 10 ppm.). La

antibiosis es el mecanismo de antagonismo entre microorganismos más estudiado.

b. Competencia.

Se puede definir competencia como el desigual comportamiento de dos o más organismos

ante un mismo requerimiento, siempre y cuando la utilización del mismo por uno de los

organismos reduzca la cantidad disponible para los demás. Un factor esencial para que

exista competencia es que haya "escasez" de un elemento, si hay exceso no hay

competencia. La competencia más común es por nutrientes, oxígeno o espacio.

c. Interacción directa con el patógeno.

Existen dos tipos de interacciones directas entre los antagonistas y los patógenos. Ellas son

el parasitismo y la predación.

5

- Parasitismo que se refiere al hecho de que un microorganismo parasite a otro. Puede ser

definido como una simbiosis antagónica entre organismos. El parasitismo consiste en la

utilización del patógeno como alimento por su antagonista. Generalmente se ven

implicadas enzimas extracelulares tales como quitinasas, celulasas, b-1-3-glucanasas y

proteasas que lisan o digieren las paredes de los hongos. (Melgarejo 1989, Ulloa 1996).

- Predación que es cuando el antagonista se alimenta de materia orgánica entre la cual

ocasionalmente se encuentra el patógeno. No ha sido un mecanismo de acción muy

importante en el desarrollo de agentes de biocontrol. Los reportes más conocidos citan la

presencia de amebas en suelos supresores de enfermedades las cuales se alimentan de las

hifas (cuerpos) de hongos patógenos entre otras fuentes de alimento (Campbell 1989).

B. TRICHODERMA

1. Definición.

El Trichoderma es un tipo de hongo anaerobio facultativo actualmente la clasificación

taxonómica lo ubica dentro del Dominio Eucarya, Reino Fungui, división Mycota, Sub

división Eucomycota, Clase Deuteromicetes, Orden Moniliales, Familia Monilia, Género

Trichoderma, su fase perfecta, estado (telomorfo), lo ubica en la Clase Ascomycetes, Serie

Pyrenomycetes, Orden Hipocreales, género Hipocrea. Tiene cono sinónimo el género

Tolypocladium (Villegas 2000).

Se encuentra de manera natural en un número importante de suelos agrícolas y otros tipos

de medios, se caracterizan por no poseer, o no presentar un estado sexual determinado. De

este microorganismo existen más de 30 especies, todas con efectos benéficos para la

agricultura y otras ramas. Este hongo se encuentra ampliamente distribuido en el mundo, y

se presenta en diferentes de zonas y hábitat, especialmente en aquellos que contienen

materia orgánica o desechos vegetales en descomposición, así mismo en residuos de

cultivos, especialmente en aquellos que son atacados por otros hongos. Su desarrollo se ve

favorecido por la presencia de altas densidades de raíces, las cuales son colonizadas

rápidamente por estos microorganismos. Esta capacidad de adaptación a diversas

6

condiciones medioambientales y sustratos confiere a Trichoderma la posibilidad de ser

utilizado en diferentes suelos, cultivos, climas y procesos tecnológicos.

Trichoderma tiene diversas ventajas como agente de control biológico, pues posee un

rápido crecimiento y desarrollo, también produce una gran cantidad de enzimas, inducibles

con la presencia de hongos fitopatógenos. Puede desarrollarse en una amplia gama de

sustratos, lo cual facilita su producción masiva para uso en la agricultura. Su gran

tolerancia a condiciones ambientales extremas y hábitat, donde los hongos son causantes

de diversas enfermedades, le permiten ser eficiente agente de biocontrol; de igual forma

pueden sobrevivir en medios con contenidos significativos de pesticidas y otros químicos.

Además su gran variabilidad se constituye en un reservorio de posibilidades de control

biológico bajo diferentes sistemas de producción y cultivos.

Trichoderma, toma nutrientes de los hongos (a los cuales degrada) y de materiales

orgánicos ayudando a su descomposición, por lo cual las incorporaciones de materia

orgánica y compostaje lo favorecen; también requiere de humedad para poder germinar, la

velocidad de crecimiento de este organismo es bastante alta, por esto es capaz establecerse

en el suelo y controlar enfermedades.

El Trichoderma probablemente sea el hongo beneficioso, más versátil y polifacético que

abunda en los suelos. No se conoce que dicho microorganismo sea patógeno de ninguna

planta; sin embargo, es capaz de parasitar, controlar y destruir muchos hongos, nemátodos

y otros fitopatógenos, que atacan y destruyen muchos cultivos; debido a ello, muchos

investigadores le llaman el hongo hiperparásito. Ello convierte al Trichoderma en un

microorganismo de imprescindible presencia en los suelos y cultivos, y de un incalculable

valor agrícola.

a. Principales beneficios agrícolas del Trichoderma.

Se conocen muchas funciones beneficiosas que realiza este hongo en la agricultura,

especialmente en el campo de la sanidad vegetal. A modo de resumen se han demostrado

las siguientes:

7

1) Estimulador del crecimiento de las plantas.

Se ha comprobado que el Trichoderma produce sustancias estimuladoras del crecimiento y

desarrollo de las plantas. Estas sustancias actúan como catalizadores o aceleradores de los

tejidos meristemáticos primarios (los que tienen potencial de formar nuevas raíces) en las

partes jóvenes de éstas, acelerando su reproducción celular, logrando que las plantas

alcancen un desarrollo más rápido que aquellas plantas que no hayan sido tratadas con

dicho microorganismo.

2) Protección de semillas contra el ataque de hongos patógenos.

Muchos productores al recoger la cosecha, guardan semillas para la próxima siembra, y no

les dan la suficiente cobertura de conservación, para que éstas conserven su potencial

germinativo y productivo. Esto trae como consecuencia que varias especies de hongos

patógenos ataquen dichas semillas con relativa facilidad, logrando una significativa

pérdida de sus cualidades botánicas y productivas. Se ha demostrado que una protección

con el Trichoderma garantiza la próxima cosecha, ya que este hongo coloniza las semillas

botánicas protegiendo las futuras plántulas en la fase post-emergente de patógenos

fúngicos. Cepas de Trichoderma son capaces de colonizar la superficie de la raíz y de la

rizósfera a partir de la semillas tratadas y de las plantas adultas existentes en el suelo,

protegiendo a las mismas de enfermedades fungosas. Así las semillas reciben una

cobertura protectora cuyo efecto se muestra cuando la misma es plantada en el sustrato

correspondiente. Las semillas agrícolas, tratadas con Trichoderma protegen eficientemente

las plántulas en el semillero sin necesidad de tratamiento del suelo previo a la siembra.

El empleo de Trichoderma por medio de las semillas es probablemente la forma más

económica y extensiva para introducir el biocontrol en la producción, el método

sencillamente consiste en tratar las semillas con una suspensión acuosa de esporas o en

forma de polvo, con o sin necesidad de adherente.

8

3) Protección directa a suelos y diferentes cultivos.

El manejo de las plantas mediante la rotación de cultivos favorece a Trichoderma a librar

el suelo de los propágulos del fitopatógeno (las estructuras de resistencia que el patógeno

deja en el suelo con el fin de que cuando vuelvas a sembrar te vuelva a infectar la cosecha),

vulnerables durante su latencia en ausencia del hospedante, por esta razón la utilización del

biopreparado en los cultivos a rotar en las áreas altamente infectadas será una forma a

contribuir en la reducción de la población del patógeno en un menor plazo de tiempo.

Además la preparación adecuada del terreno, la mejor fecha de plantación, fertilización y

riego actúan a favor de la combinación Planta-Trichoderma asociadas. La aplicación del

Trichoderma, directa al suelo ofrece incluso una protección mayor a los cultivos. Cuando

Trichoderma es utilizado para el control de hongos del suelo, pueden mezclarse con

materia orgánica (estiércol, casting y biotierra) y otras enmiendas utilizadas como

biofertilizantes, tal como se hace con inoculantes bacterianos usados como fertilizantes

ecológicos. Se comprobó también que la cachaza y la turba son soportes y vehículos

eficientes para Trichoderma donde puede permanecer viable por más de 30 días en

condiciones ambientales sin que se altere la concentración inicial del inóculo.

Aunque la aplicación del biopreparado al suelo puede ser directa, la introducción de una

enmienda orgánica en los canteros previa a la siembra favorecerá el establecimiento del

bioagente y el desarrollo posterior de las plantas.

4) Control sobre diferentes microorganismos fitopatógenos .

El Trichoderma, posee aislamientos con poderes antibióticos, los cuales actúan contra

varios microorganismos fitopatógenos. Se comporta como saprofito en la rizosfera, siendo

capaz de destruir residuos de plantas infectadas por patógenos. Se considera que su acción

es antagonista, siendo capaz de sacar el mejor provecho por su alta adaptación al medio y

por competir por el sustrato y por espacio.

Es bien conocida la definición de la enfermedad como resultado de una interacción entre la

planta - hospedante y el patógeno, y organismos antagónicos que limitan la actividad del

9

patógeno y/o elevan la resistencia de la planta. La importancia del hombre en esta relación

radica en saber manejar las especificidades de cada uno para lograr que prevalezca la

interacción a favor de la planta y el antagonista. Esto no es posible sin conocimientos de la

etiología( comportamiento) de la enfermedad que se desea controlar, el hábito del hongo

fitopatógeno, su forma de propagarse y permanecer en el campo. Trichoderma siendo un

microorganismo competitivo ofrece una protección biológica a la planta, destruye el

inóculo patógeno presente y contribuye a prevenir su formación. Trichoderma, posee

aislamientos con poderes antibióticos, los cuales actúan contra varios microorganismos

fitopatógenos. Se comporta como saprofito en la rizósfera, siendo capaz de destruir

residuos de plantas infectadas por patógenos. Se considera que su acción es antagonista,

siendo capaz de sacar el mejor provecho por su alta adaptación al medio y por competir por

el sustrato y por espacio. Trichoderma, actúa por medio de una combinación de

competencia por nutrientes, producción de metabolitos antifúngicos y enzimas hidrolíticas

y mico parasitismo.

5) El Trichoderma como alternativa para el ahorro de fertilizantes químicos y

pesticidas.

Investigaciones recientes han demostrado que la aplicación del Trichoderma en el cultivo

del maíz y cuyas raíces han sido colonizadas por dicho microorganismo, requieren menos

fertilizante nitrogenado, que el maíz no tratado; lo cual implica un ahorro del 35 al 40% de

fertilizante. El empleo del Trichoderma puede beneficiar a los productores agrícolas en sus

propósitos de lograr cosechas más sanas y con mayor productividad. Está comprobado el

efecto que hace el Trichoderma en la solubilización de los fosfatos insolubles del suelo,

facilitando su asimilación por los cultivos. Trichoderma forma asociaciones con

Micorrizas, aumentando de manera significativa la rizósfera del suelo, permitiéndole a las

plantas hacer una mayor extracción de nutrientes y con un alto grado de asimilación. Se ha

demostrado también que el Trichoderma es compatible con el biofertilizante a base de

Azotobacter chroococcum, una bacteria que fija Nitrógeno en el suelo; por lo que se

establecen relaciones de ayuda mutua, con el consiguiente beneficio para la nutrición de

los cultivos. Está demostrado que el Trichoderma también es empleado como bioagente

para el control de diferentes fitopatógenos, por lo que ha contribuido a sustituir en muchas

10

cultivos las aplicaciones de pesticidas químicos, que son más caros y más dañinos a la

salud de las personas y de los animales. Ello ha posibilitado la producción de alimentos

más sanos y ecológicos, potenciando de manera significativa una Agricultura Orgánica y

más en correspondencia con las actuales necesidades de los consumidores.

2. Especies.

a. Trichoderma harzianum.

Según LEON, M (2009), Trichoderma harzianum es un hongo mico-parasítico. Este

hongo crece y se ramifica en típicas hifas que pueden oscilar entre 3 a 12 µm de

diámetro, según las condiciones del sitio en donde se esté reproduciendo. La

esporulación asexual ocurre en conidios unicelulares de color verde generalmente tienen

3 a 6 µm de diámetro.

1) Clasificación Taxonómica:

- Familia: Fungi

- División: Ascomycota

- Subdivisión: Pezizomycotina

- Clase: Sordariomycetes

- Orden: Hypocreales

- Familia: Hypocreaceae

- Genero: Trichoderma

- Especie: harzianum

FISHER,G (1990), Trichoderma harzianum es eficaz contra diversos organismos; tanto en

el suelo contra pudriciones de raíces como Armillaria, Rhizoctonia, Pythium,

Phytophtora, Fusarium , enfermedades que se presentan en numerosas especies tanto

anuales como perennes; o bien, contra enfermedades de órganos aéreos como Botritis

o Stereum. Se han estudiado cuatro modos de acción de esta especie de hongo: la

11

competencia por nutrimentos, la antibiosis, el micoparasitismo y la estimulación de

defensas de la planta.

PUMISACHO, E (2002), manifiesta que el Trichoderma harzianum es un hongo

antagonista de patógenos vegetales, y se encuentra presente en la mayoría de los suelos.

Su crecimiento se ve favorecido por la presencia de raíces de plantas, a las cuales

coloniza rápidamente. Algunas cepas, son capaces de colonizar y crecer en las r aíces

a medida que éstas se desarrollan. Su aplicación, una vez formulado el producto, es

fácil, pues puede añadirse directamente a las semillas o al suelo, semilleros,

trasplantes, bandejas y plantas de maceta, empleando cualquier método convencional.

Como mecanismo de acción el Trichoderma al ser aplicado a las raíces, forma una

capa protectora, haciendo una simbiosis, el hongo se alimenta de los exudados de las

raíces y las raíces son protegidas por el hongo y al mismo tiempo reduce o elimina las

fuentes de alimento del patógeno. El Trichoderma actúa como una barrera para prevenir

la entrada de patógenos a las raíces. Tienen una acción de hiperparasitismo, que es la

acción del microorganismo que parasita a otro organismo de su misma naturaleza, es

decir, lo utiliza como alimento y los destruye. Compite por espacio y nutrimentos con

los hongos patógenos.

2) Ventajas de Trichoderma harzianum.

- Protege las raíces de enfermedades causadas por Pythium, Rhizoctonia y Fusarium y

permite el crecimiento de raíces más fuertes y por lo tanto, sistemas radiculares más

sanos.

- Aumenta la capacidad de captura de nutrientes y de humedad, así como

mejora rendimientos en condiciones de estrés hídrico.

- No requiere equipamiento especial para su aplicación.

- Compatible con inoculantes de leguminosas y posibilidad de aplicar a semillas que

han sufrido un tratamiento fungicida químico.

12

- Disminuyen y en algunos casos eliminan la necesidad de tratar con fungicidas

químicos, reduciendo los costos y reduciendo el uso de fertilizantes, pues las plantas

tienen más raíces y los utilizan mejor.

b. Trichoderma viride.

SILVA, L (2003), manifiesta que es un organismo antagonista de hongos presentes en el

suelo y es altamente efectiva para el control de las semillas y el suelo de

enfermedades transmitidas por mayoría de los cultivos de importancia económica,

especialmente legumbres y semillas oleaginosas.

Este hongo cuando se aplica junto con las semillas, coloniza las mismas, se

multiplica; y no sólo mata a los pató genos presentes en la superficie de la semilla,

sino que también brinda protección al suelo de agentes patógenos. El tratamiento de

semillas con Trichoderma viride ha registrado mayor germinación en una serie de estudios

y fue a la par Captan.

1) Clasificación taxonómica.

- Familia: Fungi

- División: Ascomycota

- Clase: Sordariomycetes

- Subclase: Hypocreomycetidae

- Orden: Hypocreales

- Familia: Hypocreaceae

- Genero: Trichoderma

- Especies: viride

13

2) Ventajas de Trichoderma viride

Controla enfermedades causada por Rhizoctonia solani y Fusarium spp. es un arma

muy importante contra las enfermedades como la pudrición de raíz, las enfermedades de

plántulas, pudrición carbonosa, marchitamiento, amortiguación frente, collar de

pudrición, etc.

C. CULTIVO DE MORA.

1. Origen y distribución.

La mora es originaria de las estribaciones de la cordillera de los Andes en Ecuador y

Colombia; también se encuentran en las zonas altas de Panamá, Costa Rica, Honduras,

Guatemala, México existen especies de mora en todo el mundo excepto en las zonas

desérticas.

2. Clasificación taxonómica

Rosero F. (2005) afirma que la planta de mora de castilla pertenece al reino vegetal, a la

Clase: Dicotyledoneae, Orden: Rosales, Familia: Rosaseae, Género: Rubus y Especie:

glaucus Benth.

3. Descripción botánica.

Es una planta de vegetación perenne, arbustiva semi-erecta, conformada por varios tallos

espinosos que pueden crecer hasta tres metros. Las hojas tienen tres foliolos, ovoides de 3

a 5 centímetros de largo con espinas ganchudas. Los tallos son espinosos con un diámetro

entre 1 a 2 centímetros y de 3 a 4 metros de longitud, se clasifican en tallos primarios, del

cual se desprenden ramas primarias, secundarias, y terciarias. Tanto los tallos como las

hojas están cubiertos por un polvo blanquecino. Los pecíolos también tienen espinas de

color blanco y son de forma cilíndrica. En la base de la planta se encuentra la corona de

donde se forman los tallos la cual está conformada por una gran cantidad de raíces

14

superficiales. El sistema radicular es profundo, puede llegar a profundizar más de un metro

dependiendo del suelo y el subsuelo. Martinez, A (2007.)

4. Requerimientos Climáticos.

a. Clima.

Rosero (2005). La mora se adapta a una amplia faja climática; es posible cultivar desde

1500 a 3200 m.s.n.m. de acuerdo a esta altitud las temperaturas serían de 6 a 22°C. En la

práctica, las temperaturas que favorecen al cultivo son entre 10 y 14°C. La mora es

susceptible a heladas.

En cuanto a precipitación requiere entre 1200 y 1500 m.m. anuales, una humedad relativa

del 80% abundante luminosidad, los días nublados y sombrosos a más de no favorecen la

polinización propician enfermedades como la botrytis.

b. Suelo.

Rosero (2005). Es exigente en suelos, prefiere los suelos con alto contenidos de material

orgánico, bien drenados pero al mismo tiempo deben ser capaces de retener el agua. los

suelos de tipo franco son los recomendados. El pH varía entre 5,2, siendo 5,7 el óptimo.

El suelo recomendado debe mantener una relación de Ca: Mg: K: 2:2:1 ya que junto con el

Boro son responsables de una mayor o menor resistencia a las enfermedades.

5. Requerimientos Nutricionales

Plantación, en cada hoyo aplicar de 2Kg (1 palada) de abono orgánico descompuesto

enriquecido con microorganismos antagónicos y eficientes (trichoderma), 100 g de 18-46-

00 y 100g de sulpomag, mezclar con el suelo y plantar. Si realiza subsolado del suelo, el

abono orgánico (20 t/ha) y mineral recomendado se deben esparcir en franjas de 1.5 m de

ancho por hileras de plantación.

15

Para el mantenimiento, se recomienda el nivel 360-60-300 Kg /ha/año de N-P y K,

respectivamente, Al suelo manualmente = Épocas = Postcosecha 100% P, 30 N, luego de

la poda = 40% de N 40% de K, en desarrollo de frutos = 40 de N, 60 % de K por dos

veces, y si se realiza con fertirrigación es necesario cinco días seguidos (8Kg/ha/día) con

descansos de dos a tres días, con los nutrientes de acuerdo a sus necesidades. Martinez, A

(2007).

6. Labores culturales.

a. Control de malezas.

(Martinez,A, 2007). Esta labor se puede realizar en forma química (utilizando herbicidas

aplicando bomba de mochila con campana) o manual, en el área de goteo con azadillas. En

lo posible se trata de eliminar las malezas que se ubiquen dentro de la zona de goteo si no

que también las que se encuentran en los callejones intermedios, pues la mayoría actúa

como hospederos de plagas y enfermedades.

b. Poda.

(Martinez, A, 2007). Esta labor es muy importante en la mora, ya que de ella dependen en

gran medida tanto el manejo sanitario como la productividad del cultivo. Se diferencian

algunos tipos de poda:

1) De formación: Esta poda tiene como función la de formar la planta; se realiza

eliminando todos los tallos y ramas secas, torcidas, entre cruzadas.

En las plantas recién trasplantadas, la parte del tallo que venía de la planta madre debe

eliminarse en el momento en que los chupones o tallos principales hayan emergido a los 30

días y dejando ramas principales nuevas.

2) De mantenimiento y/o producción: Se lleva a cabo eliminando las ramas que ya han

producido así como las ramas secas improductivas, torcidas, quebradas, dejando tan

16

solo las nuevas, las cuales se distribuyen uniformemente para la recepción de la luz

solar; esto también facilita la recolección y el control de plagas y enfermedades.

Cuando se realizan buenas prácticas de poda, complementadas con las de fertilización y

controles fitosanitarios, siempre existirán nuevas ramas que jugarán el papel de reemplazo

de las viejas y de las improductivas, contribuyendo con la productividad del cultivo.

3) La poda de producción consiste en eliminar o cortar las ramas secundarias, terciarias

y cuaternarias, que ya han producido a dos yemas (tocón o gancho) la misma que

emite otras ramas de producción, Cabe indicar que en la mora de castilla las ramas

que mas producen son las secundarias y terciarias, seguidas por las cuaternarias, y las

primarias, por lo cual es necesario tener más ramas secundarias y terciarias,

4) Despuntes de Ramas Infértiles.- Las ramas infértiles o denominados chupones que

pueden ser ramas primarias o secundarias (en la mayoría del caso), es necesario

despuntar para que se transformen en ramas productoras, ya que el momento de

despuntar estas ramas emiten en su mayoría de su longitud ramas laterales

productivas en cada una de sus yemas.

La Mora de Castilla produce en las ramas nuevas que pueden ser ramas secundarias,

terciarias o cuaternarias por lo cual es necesario tomar muy en cuenta las podas indicadas.

7. Sistema de conducción

Rosero, F (2010) indica que debido a que el hábito de crecimiento de la mora es de tipo

rastrero, es necesario orientar su crecimiento empleando los sistemas de conducción para

su tutoreo que favorezcan la aireación y permita ejecutar las labores de mantenimiento del

cultivo (fumigaciones, riegos, deshierbas, cosecha, etc.).

17

a. Espaldera sencilla de alambre.

Es el sistema que más utilizan los agricultores, se construye utilizando postes de madera de

2,4 metros de largo y un diámetro que oscila entre 10 y 12 centímetros. Los postes se

ubican siguiendo la dirección de la hilera de las plantas y la distancia entre ellos es de

aproximadamente 5 metros.

Esto equivale a que entre ellos queden 3 plantas, según las distancias de siembra utilizadas.

Los postes deben inmunizarse. También se pueden utilizar postes de cemento, lo que

permite aumentar la distancia entre ellos, sin exceder los 6 metros. El paso siguiente es la

colocación de 3 cuerdas de alambre liso No. 10, de tal forma que la primera quede ubicada

aproximadamente a 80 - 90 centímetros del suelo y las dos siguientes a 50 centímetros la

una de la otra. Las cuerdas no pueden quedar destempladas, porque no cumplirán con su

objetivo de sostén. A medida que la planta crece, las ramas se ubican cuidadosamente

sobre los hilos, cuidando de quedar bien distribuidas; según la fertilidad del suelo, se dejan

entre 6 a 9 ramas primarias por planta.

b. Espaldera de doble alambre.

Con este sistema las plantas se colocan entre dos espalderas, es decir, a cada lado de la

planta se encuentran hilos de alambre. Estos alambres se sostienen por palos. Este sistema

es más costoso que el anterior, pero tiene la ventaja de permitir que exista un mayor

número de ramas por planta, en la medida en que brinda mayor firmeza en el

sostenimiento de la planta.

c. Chiquero o marco.

Este método es muy común en pequeños cultivos, debido a que se construye con materiales

que generalmente existen en las fincas. La forma es de cuadrado o triángulo y se construye

colocando 3 ó 4 postes equidistantes a un metro de la planta, con 1,4 metros de altura.

18

8. Controles Fitosanitarios.

a. Principales plagas.

1) Ácaros.- Estas pequeñas arañitas ocasionan su daño al chupar los líquidos vitales de

las hojas. Los síntomas del daño pueden notarse sobre los frutos, los cuales toman un

color rojo óxido. Las hojas se tornan pálidas y arrugadas. Cuando se presentan

ataques fuertes, las hojas suelen cubrirse con telarañas. (Martinez, A, 2007)

2) Pulgones (Aphis sp.) nombre común de cualquiera de los miembros de un gran

grupo de insectos denominados áfidos. Son insectos que atacan a las hojas tiernas de

la mora, chupan la savia y son transmisores de virus.

3) Araña roja (Tetranychus sp.) Esta araña se localiza en el envés de la hoja, causando

la formación de manchas pardas y amarillentas que en muchos casos puede

confundirse con una deficiencia foliar, se diferencia de esta en que las manchas no

son regulares sino que aparecen indistintamente a un lado o a otro de la nervadura

central por donde a transitado el insecto provocando el daño en la hoja, el fruto

adquiere un color rojo oxidado.

4) Cutzo.- Es una plaga del suelo que se encuentra en las zonas húmedas, la

característica de esta larva es masticar las raíces de diferentes cultivos, produciendo

daños muy severos dando una apariencia como lepra a todo lo atacado, tratándose de

larvas que se encuentran bajo la superficie del suelo el principal daño a la planta lo

realizan a su sistema radicular tanto a raíces primarias, secundarías, terciarias; el

daño físico que provocan puede ser la puerta de entrada para el ataque de diferentes

patógenos (virus, hongos, bacterias etc.), dentro de este ataque uno de los principales

es el Verticillium sp.

19

b. Principales enfermedades.

1) Pudrición de fruto (Botrytis sp).

Síntomas: Ataca a las yemas al inicio de su aparecímiento, produciendo un necrozamiento

y se caen las yemas, luego pasa al fruto, donde produce una pudrición del mismo con un

moho blanco.

2) Mildiu Polvoso (Oidium sp, Sphaeroteca sp.

Síntomas: Ataca a las Yemas Frutos, pero especialmente ataca a las hojas, pudiendo

distinguirse este ataque por el arrugamiento que se produce en el haz de la hoja

acompañada de una mancha clorótica en este sitio; en el envés se observa en cambio un

polvo blanco. Si los ataques son severos, pueden provocar deformaciones en el fruto.

3) Marchites (Verticillium sp).

Síntomas: Este hongo es vascular, ocasiona un amarillamiento de las hojas que se caen

posteriormente. La enfermedad se manifiesta en el tallo por manchas negras y un color

azul característico.

Esta enfermedad es una de las más importantes en el cultivo de la mora de castilla,

empieza su síntoma de doblamiento de las puntas terminales del cultivo y empieza a

secarse en forma descendente, hasta la muerte total de la planta.

4) Mildiu Velloso (Peronospora sp).

Síntomas: Los síntomas pueden confundirse con los del mildiu polvoso, pero el daño que

ocasiona es más severo que el de Oidium.

La presencia de cuarteamientos en el tallo es una manera de reconocer a este hongo. Es una

enfermedad que las ramas nuevas empiezan a secarse debido a que producen un

20

estrangulamiento en la mitad de las mismas, por lo que hay que podar para su desarrollo.

Para el control racional de plagas y enfermedades se recomienda el siguiente calendario

considerando los estados fenológicos de la planta.

IV. MATERIALES Y MÉTODOS.

A. CARACTERISTICAS DEL LUGAR.

1. Localización.

Para la investigación se seleccionó el Cantón Píllaro, la provincia de Tungurahua donde el

cultivo es de importancia económica y se estableció el experimento en el huerto de mora

de castilla con problemas de marchitez en la granja integral del Consejo Provincial.

2. Ubicación geográfica1.

Altitud: 2779 msnm

Latitud: 01°10´33,6”

Longitud: 78°33´32,6”

3. Condiciones climatológicas2

Temperatura media anual: 14°C

Humedad relativa: 70%

Precipitación media anual: 500mm

4. Clasificación ecológica3.

Según (Holdridge, 1982); la zona del experimento corresponde a la formación ecológica

estepa espinosa – Montano Bajo (ee-MB).

1Fuente: Andrade C, (2011), datos tomados por GPS.

2Fuente: Andrade C, (2011), datos tomados por equipos meteorológicos.

3Fuente: Holdrige, (1982).

22

5. Características del suelo.

a. Físicas4

Tipo de suelo: Franco arenoso

Textura: Arenosos

Topografía: Irregular

B. MATERIALES.

1. Materiales de campo.

Huertos de mora de castilla ya implantados 3 años antes de la realización de este ensayo

con presencia de marchitez de sus plantas, bomba de mochila, etiquetas, fertilizantes,

pesticidas, azadones, baldes, alcohol, cinta métrica, libro de campo, materia orgánica,

cámara fotográfica.

2. Materiales de oficina.

Se utilizaron: Computador, papelería en general, impresoras, lápiz

C. METODOLOGÍA.

1. Tratamientos en estudio.

a. Materiales de experimentación.

Para la presente investigación se utilizó un huerto de mora de castilla que presentaba

síntomas y signos de marchitez, en el cual teníamos la presencia de plantas de edad adulta

con tres a años de implantación a las cuales se las denominó plantas viejas, mientras a las

4 Fuente: Andrade ,C (2011), datos tomados en campo.

23

plantas que se tuvo que implementar para el desarrollo del ensayo se las denominó plantas

jóvenes.

b. Factores en estudio.

Factor A Sistema de

siembra

Características

A1:

A2:

A3:

Trichoderma

harzianum

Trichoderma

viride

Sin

Trichoderma

Protege las raíces de enfermedades causadas por Hongos del

suelo y permite el crecimiento de raíces más fuertes y por lo

tanto, sistemas radiculares más sanos. Aumenta la capacidad

de captura de nutrientes y de humedad, así como mejora

rendimientos en condiciones de estrés hídrico. No requiere

equipamiento especial para su aplicación. Compatible con

inoculantes de leguminosas y posibilidad de aplicar a semillas

que han sufrido un tratamiento fungicida químico.

Disminuyen y en algunos casos eliminan la necesidad de tratar

con fungicidas químicos, reduciendo los costos y reduciendo

el uso de fertilizantes, pues las plantas tienen más raíces y las

utilizan mejor. (www.iabiotec.com)

Además del poder controlador de hongos patógenos, el

Trichoderma viride, produce bioestimulantes que suministra a

las plantas biológicamente, haciendo que estas sean más

eficiente en su labor natural y expresen su potencial genético

que conlleve a una buena producción del cultivo.

(www.biocultivos.com.co)

Testigo absoluto

24

Factor B Plantas Características

B1:

B2:

Plantas

establecidas

que presentan

síntomas de

marchitez con

menos del 50

% de infección.

Planta Nueva

De acuerdo a la escala de 0% a 100%: donde 0% es planta

completamente sana y 100% planta muerta.

Las planta implantas de apenas 5 meses a las cuales las

denominamos plantas jóvenes, las cuales no fueron tratadas

con ningún fungicida para ver el efecto de los trichodermas en

este tipo de plantas.

Fuente: Andrade, C. 2012

c. Unidad de observación.

Los tratamientos estuvieron constituidos por la combinación de los fungicidas biológicos

en dos grupos de plantas, como se observa en el Cuadro 1.

CUADRO 1. TRATAMIENTOS EN ESTUDIO.

Tratamiento Código Descripción

T 1 A1B1 Trichoderma viride en plantas viejas

T 2 A1B2 Trichoderma viride en plantas nuevas

T 3 A2B1 Trichoderma harzianum en plantas viejas

T4 A2B2 Trichoderma harzianum en plantas nuevas

T5 A3B1 Sin Trichoderma en plantas viejas

T6 A3B2 Sin Trichoderma en plantas nuevas

Fuente: ANDRADE, C. 2012

25

2. Tipo de diseño experimental

Se realizó un diseño de bloques completos al azar con seis tratamientos y tres repeticiones.

a. Análisis Estadístico.

En el cuadro 2 se presenta el esquema del análisis de varianza que se utilizó en el ensayo.

CUADRO 2. ANÁLISIS DE VARIANZA (ADEVA).

Fuente: ANDRADE, C. 2011

b. Análisis funcional

- Para la separación de medias se aplicó la prueba de Tukey al 5% en las interacciones

A x B que presentaron diferencias estadísticas significativas.

- Se determinó el coeficiente de variación.

3. Especificaciones del campo experimental

Número de tratamientos 6

Número de repeticiones 3

Número de unidades experimentales 18

Fuente de Variación Fórmula G L

Repeticiones (r-1) 2

Fungicidas de orden biológico (Factor A) (s-1) 2

Edad de las plantas (Factor B) (v-1) 1

Interacción (A x B) (s-1)*(v-1) 2

Error s(v-1)*(r-1) 12

Total (tr-1) 17

26

Forma de la parcela Rectangular

Distancia de plantación 3 m x 2,5 m

Número de tratamientos 2

Número de repeticiones 6

Número total de plantas del ensayo 18

D. MÉTODOS DE EVALUACIÓN Y DATOS REGISTRADOS.

1. Porcentaje de la mortalidad de plantas.

Para el cálculo del porcentaje de incidencia (PI) se aplico la siguiente fórmula.

P.I.= NPI x 100

NTP

Donde:

PI → Es la cuantificación porcentual del número de plantas infectadas.

NPI → Número de plantas infectadas.

NTP → Número total de plantas

El porcentaje de incidencia para los tratamientos debe ser menor al 50%.

2. Incidencia de la marchitez de la enfermedad.

Se impuso una escala de 1 al 2; en la cual: 1 son plantas que estuvieron afectadas por la

marchitez y 2 fueron las plantas que no presentan síntomas y signos de la enfermedad

(Cuadro 3)

27

CUADRO 3. ESCALA DE INCIDENCIA DE LA MARCHITEZ.

Escala Observación

1 Presencia de la marchitez

2 Ausencia de la marchitez

Elaboración: Andrade, C. 2012

3. Severidad de la marchitez.

Este dato se registro a los 4 y 6 meses con la siguiente escala.

CUADRO 4. ESCALA DE SEVERIDAD DE LA MARCHITEZ.

Escala Observación

1 20 % Dañado

2 21 % al 40 % Dañado

3 41 % al 60 % Dañado

4 61 % al 80 % Dañado

5 100 % Dañado


4. Vigor de la planta.

Esta variable se la tomó en base a la observación de las plantas en cuanto a su tamaño,

color, número de tallos, diámetro, forma de las hojas entre otras, para lo cual se evaluó con

una escala de 1 a 5, donde 1 fueron las plantas que se mostraban débiles y 5 las plantas con

buena apariencia. Esta variable se evaluó a los cuatro y seis meses.

5. Número de ramas primarias, secundarias y terciarias.

Para establecer el número de ramas primarias, se contó las provenientes de la base de la

planta. Su evaluación se realizó a los cuatro y seis meses.

28

Las ramas secundarias fueron aquellas que brotaron en las ramas primarias, a su vez las

ramas terciarias fueron aquellas que salían de las ramas secundarias; las cuales fueron

evaluadas al mismo tiempo que las ramas primarias.

6. Inicio de la floración.

Se contó los días desde la emisión de las yemas hasta el inicio de la floración, para lo cual

se tomaron dos ramas muestras por planta, contabilizando los días a la floración.

7. Número de yemas.

Se contabilizó desde la primera yema del meristemo de la rama muestra en forma

descendente cada 8 días.

8. Número de flores abiertas.

Se contabilizó desde la primera flor que aparezca en forma descendente.

9. Fruto cuajado.

Para contabilizar el número de frutos cuajados, se llevó un registro del número de yemas

por rama que posteriormente pasaron a ser flores, hasta ser frutos, se llevó el registro hasta

la aparición del último fruto cuajado, labor que se realizó todos los días.

10. Fruto desarrollado.

Se contabilizaron los frutos que llegaron a la sorosis (cuando el fruto se vuelve carnoso)

11. Frutos maduros.

Se contabilizó los frutos que lleguen ha estado de madurez en cada rama muestra.

29

12. Tamaño del fruto.

Para la determinación de esta variable se tomo 5 frutos muestra por cada rama evaluada,

los cuales fueron medidos tanto en longitud, diámetro y peso.

13. Número de ramas productivas y vegetativas.

Se contabilizó el número de ramas productivas y vegetativas que emitió la planta.

14. Longitud de la rama muestra.

Se procedió a la observación de la rama muestra, cuando esta se encontró en estado de

yema se procedió a la evaluación de esta variable, tomando desde la base de está hasta la

punta con una cinta métrica.

15. Peso.

Se procedió a la cosecha de los frutos existentes en cada tratamiento, los cuales fueron

pesados, para su respectivo análisis.

16. Rendimiento en Kg/planta.

Para obtener el rendimiento se contabilizó el total de centros de producción sanos, el

número de frutos sanos de cada centro de producción y el peso del fruto, el rendimiento se

expresó en Kg/ planta.

17. Análisis Económico.

Se realizó el análisis económico según Perrin al et 1976.

30

E. MANEJO DEL ENSAYO.

Para la investigación se seleccionó el Cantón Píllaro, zona productora de mora de la

provincia de Tungurahua y se estableció el cultivo de mora de castilla con problemas de

marchitez en la granja integral del Consejo Provincial.

Se realizó un diagnóstico inicial mediante la socialización con los productores del huerto

seleccionado con el propósito de conocer el historial de manejo del cultivo, como edad de

las plantas, manejo agronómico y sanitario, riego; etc. Se determinó el porcentaje inicial de

plantas enfermas y se realizo una descripción de los síntomas que presentaron las plantas

como coloración de tallos, hojas, estado de tallo hojas, frutos.

Se tomaron muestras de suelo y partes vegetativas de plantas con síntomas de marchitez

para análisis de laboratorio en el Departamento Nacional de Producción Vegetal de la

Estación Experimental Santa Catalina para determinar el agente causal que provoca la

marchitez.

Se realizo la selección de plantas con síntomas de marchitez, las cuales debieron tener

menos del 50 % de infección (de acuerdo a la escala de 0% a 100%: donde 0% es planta

completamente sana y 100% planta muerta); y las plantas que se va a extraer para

reemplazar con una nueva planta con más de 50% de marchitez.

La poda fitosanitaria de las plantas, consiste en eliminar todo el material afectado por la

marchitez o eliminación total de la planta afectada, según el tratamiento. En las plantas

viejas con marchitez seleccionadas se realizo una poda de renovación donde se dejó las

ramas más sanas hasta que aparezcan nuevas ramas, posteriormente estas se eliminaron.

La aplicación de Trichoderma sobre las plantas viejas o establecidas se realizo en drench,

alrededor de la planta podada, a demás se realizó el mismo procedimientos para las plantas

de los extremos. Los tratamientos aplicados a las plantas nuevas se realizaron en el fondo

del hoyo y antes de colocar la nueva planta. Las cuatro aplicaciones posteriores se

aplicaron en drench.

31

La dosis de los productos biológicos correspondió a la recomendada de la casa comercial.

Los Trichodermas se aplicaron a razón de 1000 cc de solución en cada planta.

a. (Trichoderma viride) a razón de 150 g/ha equivalente a 0,1 g/planta.

b. (Trichoderma harzianum) A 1500 g/ha equivalente a 1 g/planta.

La frecuencia de aplicación para todos los tratamientos fue cada diez días por cuatro

ocasiones. Se dejo un mes de descanso y se volvió a aplicar esta dinámica hasta la cosecha.

Se tomaron muestras de suelo antes y después de las aplicaciones para conocer la cantidad

existente en de cada unidad experimental para determinar las UFC de Trichoderma del

suelo.

El manejo agronómico del huerto estuvo en función de los requerimientos del cultivo, y de

acuerdo a las tecnologías desarrolladas por el programa de fruticultura del INIAP. En lo

que respecta a nutrición de la planta se realizo en base al análisis de suelo (Anexo 17). Los

controles fitosanitarios se aplicaron de acuerdo a la presencia de las plagas y

enfermedades. Y las podas serán de acuerdo a los estados fenológicos de la planta con

relación a los centros de producción.

En las plantas establecidas se realizaron podas de renovación, donde se eliminaron las

ramas viejas, dejando solo las más vigorosas, permitiendo que la planta desarrolle brotes

nuevos.

a. Control fitosanitario.

En el caso de las enfermedades la labor se la realizo manualmente eliminando las partes

afectadas de la planta y adicional a esto se realizó la aplicación de Trichoderma.

32

b. Podas de mantenimiento.

La poda de mantenimiento consistió en las eliminaciones de ramas enfermas y mal

formadas, se realizaron después de la cosecha, cortando las ramas que han producido y

que han sido cosechadas. Se utilizó una solución salina para la desinfección de las ramas

podadas y así evitar una posible propagación de enfermedades.

c. Control de malezas.

El control de malezas se llevo a cabo con herramientas de mano como azadillas, de manera

continua en todo el ciclo de cultivo una vez por mes, se realizaron plateos de un metro

alrededor de la planta.

d. Fertilización.

La fertilización se realizo con bocashi, biowey, abono orgánico descompuesto y

enriquecido por macro y micronutrientes aplicando 2 kg/planta, 100 gramos de 18-46-0 y

100 g de sulfomag por planta durante la plantación y para el mantenimiento a nivel de 360-

60-300Kg./ha/año de N-P y K respectivamente, al suelo manualmente de acuerdo a las

épocas en postcosecha 100% P, 30 N, luego de la poda 40% de N y 40% de K, en

desarrollo de frutos 40de N, 60% de K por dos veces. Se lo realizó de acuerdo a la

recomendaciones de aplicación en corona o en hoyos alrededor de la planta, haciendo

cuatro hoyos de 20 cm de profundidad y 60 cm alrededor de la planta.

V. RESULTADOS Y DISCUSIÓN.

1. PORCENTAJE DE LA MORTALIDAD DE PLANTAS.

Según el cuadro 5 y Gráfico 1, los tratamientos A1B1 (Trichoderma viride en plantas

viejas), A3B1 (Sin Trichoderma en plantas viejas) y A3B2 (Sin Trichoderma en plantas

nuevas) presentaron un 33,3 % de mortalidad, lo que indica que posiblemente la dosis de

Trichoderma viride en plantas viejas no da efecto, ya que el estado de la enfermedad

influye en la escasa efectividad del producto.

Según (http://afecor.com/mora.php) los hongos del suelo son agresivos, razón por la cual

un control biológico es poco efectivo en grandes plantaciones de mora, a demás depende

del grado afectación que tenga la planta y la nutrición de la misma ya que ataca a las raíces

pudriéndolas, entonces el interior del tallo adquiere un tono café, el síntoma se presenta

con una coloración amarillenta de las hojas

CUADRO 5. PORCENTAJE DE MORTALIDAD DE PLANTAS.

Trat. Código Descripción %

T 1 A1B1 Trichoderma viride en plantas viejas 33,3

T 2 A1B2 Trichoderma viride en plantas nuevas 0,0

T 3 A2B1 Trichoderma harzianum en plantas viejas 0,0

T4 A2B2 Trichoderma harzianum en plantas nuevas 0,0

T5 A3B1 Sin Trichoderma en plantas viejas 33,3

T6 A3B2 Sin Trichoderma en plantas nuevas 33,3

Fuente: Datos registrados


34

GRÁFICO 1. PORCENTAJE DE MORTALIDAD.

2. INCIDENCIA DE LA MARCHITEZ DE LA ENFERMEDAD.

Para el ensayo se tuvo, necesariamente que usar plantas que estaban infectadas por

marchitez en mora de castilla (Rubus glaucus Bent) (Cuadro 6), dichas plantas tenían una

valoración de 1 correspondiente a Infectado. Lo que se debió a la presencia de la marchitez

en la plantación. (Gráfico 2)

CUADRO 6. INCIDENCIA DE LA MARCHITEZ.

Trat. Código Descripción Incidencia

T 1 A1B1 Trichoderma viride en plantas viejas 1,00

T 2 A1B2 Trichoderma viride en plantas nuevas 1,00

T 3 A2B1 Trichoderma harzianum en plantas viejas 1,00

T4 A2B2 Trichoderma harzianum en plantas nuevas 1,00

T5 A3B1 Sin Trichoderma en plantas viejas 1,00

T6 A3B2 Sin Trichoderma en plantas nuevas 1,00



35

GRÁFICO 2. INCIDENCIA DE LA MARCHITEZ EN MORA DE CASTILLA (Rubus

glaucus Bent).

3. SEVERIDAD DE LA MARCHITEZ.

a. A los 4 y 6 meses.

La severidad de la marchitez en mora de castilla (Rubus glaucus Bent) nos muestra que en

los tratamientos T1 (Trichoderma viride en plantas viejas), T2 (Trichoderma viride en

plantas nuevas), T5 (Sin Trichoderma en plantas viejas) y T6 (Sin Trichoderma en plantas

nuevas), presentaron un valor de 5 en la escala, que corresponde al 100 % de daño en la

planta, razón por la cual estas plantas no sobrevivieron (Cuadro 7), El resto de tratamientos

ha presentado una variación de severidad entre el 20 % y el 80 % de daño en las plantas.

36

GRÁFICO 7. SEVERIDAD DE LA MARCHITEZ.

Trat. Código Descripción

4 meses 6 meses

Mortalidad Mortalidad

I II III I II III

T 1 A1B1 Trichoderma viride en plantas viejas 2 2 5 1 1 5

T 2 A1B2 Trichoderma viride en plantas nuevas 1 5 1 2 5 1

T 3 A2B1 Trichoderma harzianum en plantas viejas 1 1 1 1 1 1

T4 A2B2 Trichoderma harzianum en plantas nuevas 1 1 1 1 1 1

T5 A3B1 Sin Trichoderma en plantas viejas 5 3 3 5 4 3

T6 A3B2 Sin Trichoderma en plantas nuevas 5 2 2 5 3 3



4. VIGOR DE LA PLANTA.

a. A los 4 meses.

El análisis de varianza para el vigor de la planta (Cuadro8), presentó diferencias

estadísticas significativas en el Factor B (Edad de la planta); mientras que el Factor A

(Fungicidas de orden biológico) y la Interacción (A x B) no presentaron diferencias

significativas.

El promedio del vigor de la planta fue 2.87 y el coeficiente de variación 17.76 %

37

CUADRO 8. ANÁLISIS DE VARIANZA PARA EL VIGOR DE LA PLANTA.

F. Var gl S. Cuad C. Medio

Fisher Nivel de

significancia Cal 0,05 0,01

Total 17 7,73

A (Fungicidas) 2 2,20 1,10 4,24 4,26 6,93 ns

B (Edad de la planta) 1 2,30 2,30 8,89 5,12 9,33 *

Int AB 2 0,90 0,45 1,73 4,26 6,93 ns

Error 12 2,33 0,26

CV % 17,76

Media 2,87



La prueba de Tukey al 5% del vigor de las plantas referente al Factor B (Edad de la planta,

(Cuadro 9) tenemos en el rango “A” el factor B1 (Edad vieja) con un valor de 3.3,

mientras que en el rango “B” se ubica el factor B2 (Edad nueva) con un valor de 2.5.

CUADRO 9. PRUEBA DE TUKEY AL 5% PARA EL VIGOR DE LA PLANTA DEL

FACTOR B (EDAD DE LA PLANTA).

Factor B (Edad de la planta) Media Rango

B1 (Edad vieja) 3,3 A

B2 (Edad nueva) 2,5 B



El vigor de la planta presenta al Factor B1 (Edad vieja) con el mejor vigor en comparación

con las de edad nueva (Gráfico 3).

38

GRÁFICO 3. VIGOR DE LAS PLANTAS REFERENTE A LA EDAD DE LA PLANTA

(FACTOR B).

b. A los 6 meses.

El análisis de varianza para el vigor de la planta a los 6 meses (Cuadro10), presentó

diferencias estadísticas altamente significativas en el Factor A (Fungicidas de orden

biológico); mientras que el Factor B (Edad de la planta) y la Interacción (A X B) no

presentaron diferencias significativas.

El promedio del vigor de la planta a los 6 meses fue 2.50 y el coeficiente de variación

25.22 %.

39

CUADRO 10. ANÁLISIS DE VARIANZA PARA EL VIGOR DE LA PLANTA A LOS

6 MESES.


Fisher Nivel de


Total 17 38,50

A (Fungicidas) 2 22,33 11,17 8,74 3,89 6,93 **

B (Edad de la planta) 1 0,06 0,06 0,04 4,75 9,33 ns

Int AB 2 0,78 0,39 0,30 3,89 6,93 ns

Error 12 15,33 1,28

CV % 25,22

Media 2,50



La prueba de Tukey al 5% el vigor de las plantas referente al Factor A (Fungicidas de

orden biológico), (Cuadro 11) tenemos en el rango “A” el Factor A1 (Trichoderma

harzianum) con un valor de 3.67, mientras que en el rango “C” se ubica el factor A3 (Sin

Trichoderma) con un valor de 1.00

CUADRO 11. PRUEBA DE TUKEY AL 5% PARA EL VIGOR DE LA PLANTA EN

EL FACTOR A (FUNGICIDAS DE ORDEN BIOLÓGICO).

Factor A (Fungicidas de orden biológico) Media Rango

A2 (Trichoderma harzianum) 3,67 A

A1 (Trichoderma viride) 2,83 B

A3 (Sin Trichoderma) 1,00 C



El vigor de la planta lo ha presentado el Factor A1 (Trichoderma harzianum), lo que

concuerda con lo expresado por SANTANA R. (2003), quién manifiesta que los

40

tratamientos en que se aplicó Trichoderma harzianum se evidenció un buen vigor de planta

pasados los 15 días después de su inoculación. (Gráfico 4).

GRÁFICO 4. VIGOR DE LAS PLANTAS REFERENTE A LOS FUNGICIDAS DE

ORDEN BIOLÓGICO (FACTOR A).

En un ensayo realizado por (ALLEN 1987, LOXTON y DONALD 1987), en el cual se

evidenció que las plantas de mora respondieron a las aplicaciones de Trichoderma

harzianum. Ello indicaría que T. harzianum estaría modulando la respuesta en esta

especie que podría ser explicado por un aumento del desarrollo radicular, también

reportado por varios autores como (BLANCHARD y BJÖRKMAN 1996, WINDHAM et

al. 1986), lo que le permitiría a las plantas aprovechar el incremento en la disponibilidad

de nutrientes lo que ha influido directamente en el vigor de las plantas de mora, ya que

como se puede observar en nuestro ensayo que las plantas inoculadas con T. harzianum,

han presentado un mejor vigor de plantas.

Otra posibilidad es que el haya contribuido a que los nutrientes importantes presentes en el

suelo pero en forma no asimilable para las plantas se haya transformado a una forma

disponible para su absorción, siendo el hongo el que mediante diferentes mecanismos

permita su absorción. Esta hipótesis se respalda por la capacidad de liberar ácidos

orgánicos que secuestran cationes y acidifican el microambiente alrededor de las raíces,

41

lo que es un mecanismo de solubilización de fósforo, manganeso, hierro y zinc lo cual

ha sido mencionado por por (ALLEN 1987, LOXTON y DONALD 1987).

5. NÚMERO DE RAMAS PRIMARIAS, SECUNDARIAS Y TERCIARIAS.

a. Ramas primarias.

1) A los 4 meses.

Según el análisis de varianza para el número de ramas primarias (Cuadro12), se observa

diferencias altamente significativas para el Factor B (Edad de la planta), mientras que para

el Factor A (Fungicidas de orden biológico) y para la Interacción (A x B) no presentó

diferencias significativas.

En promedio el número de ramas primarias fue 2.78 y el coeficiente de variación 17.99 %.

CUADRO 12. ANÁLISIS DE VARIANZA PARA EL NÚMERO DE RAMAS

PRIMARIAS.


Fisher Nivel de


Total 17 65,11

A (Fungicidas) 2 0,78 0,39 0,10 3,89 6,93 ns

B (Edad de la planta) 1 14,22 14,22 3,56 4,75 9,33 **

Int AB 2 2,11 1,06 0,26 3,89 6,93 ns

Error 12 48,00 4,00

CV % 17,99

Media 2,78



La prueba de Tukey al 5% para el número de ramas primarias referente al Factor B (Edad

de la planta), (Cuadro 13; Gráfico 5) tenemos en el rango “A” el factor B1 (Edad vieja)

42

con un valor de 3.7, mientras que en el rango “B” se ubica el factor B2 (Edad nueva) con

un valor de 1.9

CUADRO 13. PRUEBA DE TUKEY AL 5% PARA NÚMERO DE RAMAS

PRIMARIAS EN EL FACTOR B (EDAD DE LA PLANTA).

Factor B (Edad Planta) Media Rango





GRÁFICO 5. NÚMERO DE RAMAS PRIMARIAS REFERENTE A LA EDAD DE LA

PLANTA (FACTOR B).

Según estudios realizados por (MARCO ANTONIO VÁSQUEZ, 2004) en el cuál el

número de ramas de mora es superior en plantas de edad madura, ya que estas con el

tiempo han ido aumentando su contenido de lignina la cual le hace más resistente a

enfermedades como la marchitez, motivo por el cual estas ramas en plantas jóvenes se

enferman con facilidad y mueren. En el presente ensayo se evaluaron plantas jóvenes,

como parte de los factores en estudio.

43

2) A los 6 meses.

Según el análisis de varianza para el número de ramas primarias a los 6 meses (Cuadro14),

no presentó diferencias significativas para ningún Factor, incluida la Interacción (A x B).

En promedio el número de ramas primarias a los 6 meses fue 3.39 y el coeficiente de

variación 11.43 %.


PRIMARIAS A LOS 6 MESES.


Fisher Nivel de


Total 17 86,28

A (Fungicidas) 2 10,78 5,39 1,24 3,89 6,93 ns


Int AB 2 7,44 3,72 0,86 3,89 6,93 ns

Error 12 52,00 4,33

CV % 11,43

Media 3,39



b. Ramas secundarias.

1) A los 4 meses.

Según el análisis de varianza para el número de ramas secundarias (Cuadro15), se observa

diferencias significativas para el Factor B (Edad de la planta), mientras que para el Factor

A (Fungicidas de orden biológico) y para la Interacción (A x B) no presentó diferencias

significativas

En promedio el número de ramas secundarias fue 9.83 y el coeficiente de variación 5.12 %.

44


SECUNDARIAS.


Fisher Nivel de


Total 17 664,50

A (Fungicidas) 2 4,00 2,00 0,05 3,89 6,93 ns


Int AB 2 75,11 37,56 0,92 3,89 6,93 ns

Error 12 492,00 41,00

CV % 5,12

Media 9,83



La prueba de Tukey al 5% para el número de ramas secundarias referente al Factor B

(Edad de la planta), (Cuadro 16; Gráfico 6) tenemos en el rango “A” el factor B1 (Edad

vieja) con un valor de 12.1, mientras que en el rango “B” se ubica el factor B2 (Edad

nueva) con un valor de 7.6.


SECUNDARIAS EN EL FACTOR B (EDAD DE LA PLANTA).






45

GRÁFICO 6. NÚMERO DE RAMAS SECUNDARIAS REFERENTE A LA EDAD DE

LA PLANTA (FACTOR B).

Williams y Sobering (1993) señalan valores superiores a 10, en cuanto al número de ramas

secundarias en las plantas de mora con un adecuados manejo agronómico con criterios de

diagnóstico e investigación, el cual viene dado por la correcta poda de las mismas. En esta

investigación se alcanzan valores de 12.1 para las plantas de edad vieja, lo que se puede

atribuir a la presencia de ramas primarias fuertes que sostienen y alimentan estas ramas

secundarias.

2) A los 6 meses.

Según el análisis de varianza para el número de ramas secundarias a los 6 meses

(Cuadro17), se observa diferencias significativas para el Factor B (Edad de la planta),

mientras que para el Factor A (Fungicidas de orden biológico) y para la Interacción (A x

B) no presentó diferencias significativas

En promedio el número de ramas secundarias fue 12.11 y el coeficiente de variación 13.93

%.

46


SECUNDARIAS.


Fisher Nivel de


Total 17 1213,78

A (Fungicidas) 2 176,78 88,39 2,07 3,89 6,93 ns


Int AB 2 252,78 126,39 2,96 3,89 6,93 ns

Error 12 512,00 42,67

CV % 13,93

Media 12,11



La prueba de Tukey al 5% para el número de ramas secundarias referente al Factor B

(Edad de la planta), (Cuadro 18) tenemos en el rango “A” el factor B1 (Edad vieja) con un

valor de 16.0, mientras que en el rango “B” se ubica el factor B2 (Edad nueva) con un

valor de 8.2.


SECUNDARIAS EN EL FACTOR B (EDAD DE LA PLANTA).






El número de ramas secundarias presenta a las planta de edad viejas con el mayor número

de estas en comparación con las de edad nueva (Gráfico 7).

47

GRÁFICO 7. NÚMERO DE RAMAS SECUNDARIAS REFERENTE A LA EDAD DE

LA PLANTA (FACTOR B).

Williams y Sobering (1993) señalan valores superiores a 10, en cuanto al número de ramas

secundarias en las plantas de mora con un adecuado manejo agronómico con criterios de

diagnóstico e investigación, el cual viene dado por la correcta poda de las mismas. En esta

investigación se alcanzan valores de 16 para las plantas de edad vieja, lo que se puede

atribuir a la presencia de ramas primarias fuertes que sostienen y alimentan estas ramas

secundarias. Y al buen manejo con las podas de mantenimiento o poda fitosanitaria que

promueve la emisión de ramas secundarias.

c. Terciarias.

1) A los 4 meses.

Según el análisis de varianza para el número de ramas Terciarias (Cuadro19), existen

diferencias estadísticas altamente significativas para los Factores A (Fungicidas de orden

biológico) y B (Edad de la planta), así también para la Interacción (A x B).

En promedio el número de ramas terciarias fue 4.07 y el coeficiente de variación 15.89 %.

48

CUADRO 19 ANÁLISIS DE VARIANZA PARA EL NÚMERO DE RAMAS

TERCIARIAS.


Fisher Nivel de


Total 14 692,93

A (Fungicidas) 2 212,05 106,03 49,79 4,26 8,02 **


Int AB 2 178,21 89,11 41,84 4,26 8,02 **

Error 9 19,17 2,13

CV % 15,89

Media 4,07



La prueba de Tukey al 5% para la Interacción (A x B) de los fungicidas de orden biológico

con la edad de la planta en el número de ramas terciarias, (Cuadro 20) tenemos en el rango

“A”, a la Interacción A2B1 (Trichoderma harzianum en plantas viejas) con un valor de

17.3, mientras que en el rango “C” se ubican las interacciones A2B2 (Trichoderma

harzianum en plantas nuevas), A3B2 (Sin Trichoderma en plantas nuevas) y A1B2

(Trichoderma viride en plantas nuevas) con valores de 1.3, 1.3 y 1.0 respectivamente. Los

demás tratamientos se ubican en rangos intermedios.

49

CUADRO 20. PRUEBA DE TUKEY AL 5% PARA LA INTERACCIÓN EN EL


Interacción (A x B) Media Rango

A2B1 (Trichoderma harzianum en plantas viejas) 17,3 A

A3B1 (Sin Trichoderma en plantas viejas) 2,0 B

A1B1 (Trichoderma viride en plantas viejas) 1,7 B

A2B2 (Trichoderma harzianum en plantas nuevas) 1,3 C

A3B2 (Sin Trichoderma en plantas nuevas) 1,3 C

A1B2 (Trichoderma viride en plantas nuevas) 1,0 C



En la Interacción (A x B) de los fungicidas de orden biológico con la edad de la planta en

el número de ramas terciarias presenta a Trichoderma harzianum en plantas de edad viejas

con el mayor número de estas en comparación con las de edad nueva (Gráfico 8).

GRÁFICO 8. NÚMERO DE RAMAS TERCIARIAS EN LA INTERACCIÓN (A x B).

(Eastburn y Butler 1988). Dicen que la mayoría de los estudios existentes sobre

estimulación de crecimiento de ramas de plantas generado por Trichoderma spp. no

abordan la dinámica del hongo. Ello concuerda con otros autores que han reportado que

50

poblaciones de T. harzianum estarían asociadas con la nutrición de la planta la cual se daría

de mayor forma en planta adultas por tener mayor cantidad de raíces que asimilen estos

nutrientes que son puestos a disposición por el hongo. Lo que concuerda con nuestra

investigación ya que el tratamiento T3 (A2B1) (Trichoderma harzianum en planta viejas)

ha presentado mayor número de ramas terciarias.

2) A los 6 meses.

Según el análisis de varianza para el número de ramas Terciarias (Cuadro 21), existen

diferencias estadísticas altamente significativas para los Factores A (Fungicidas de orden

biológico) y B (Edad de la planta), así también para la Interacción (A x B).

En promedio el número de ramas terciarias fue 5.72 y el coeficiente de variación 23.98 %.


TERCIARIAS.


Fisher Nivel de


Total 17 1555,61

A (Fungicidas) 2 500,78 250,39 39,54 3,89 6,93 **


Int AB 2 538,78 269,39 42,54 3,89 6,93 **

Error 12 76,00 6,33

CV % 23,98

Media 5,72



La prueba de Tukey al 5% para la Interacción (A x B) de los fungicidas de orden biológico

con la edad de la planta en el número de ramas terciarias, (Cuadro 22) tenemos en el rango

“A”, a la Interacción A2B1 (Trichoderma harzianum en plantas viejas) con un valor de

25.67, mientras que en el rango “E” se ubican las interacciones A2B2 (Trichoderma

51

harzianum en plantas nuevas) y A3B2 (Sin Trichoderma en plantas nuevas) con valores de

0.33 y 0.0 respectivamente. Los demás tratamientos se ubican en rangos intermedios.

CUADRO 22. PRUEBA DE TUKEY AL 5% PARA LA INTERACCIÓN EN EL





A1B2 (Trichoderma viride en plantas nuevas) 2,00 C

A3B1 (Sin Trichoderma en plantas viejas) 1,33 D

A2B2 (Trichoderma harzianum en plantas nuevas) 0,33 E

A3B2 (Sin Trichoderma en plantas nuevas) 0,00 E



En la Interacción (A x B) de los fungicidas de orden biológico con la edad de la planta en

el número de ramas terciarias presenta a Trichoderma harzianum en las planta de edad

viejas con el mayor número de estas en comparación con las de edad nueva (Gráfico 9).

GRÁFICO 9. NÚMERO DE RAMAS TERCIARIAS EN LA INTERACCIÓN (A x B) A

LOS 6 MESES.

52

(Eastburn y Butler 1988). Dicen que la mayoría de los estudios existentes sobre

estimulación de crecimiento de ramas de plantas generado por Trichoderma spp. no

abordan la dinámica del hongo. Ello concuerda con otros autores que han reportado que

poblaciones de T. harzianum estarían asociadas con la nutrición de la planta la cual se daría

de mayor forma en planta adultas por tener mayor cantidad de raíces que asimilen estos

nutrientes que son puestos a disposición por el hongo. Lo que concuerda con nuestra

investigación ya que el tratamiento T3 (A2B1) (Trichoderma harzianum en planta viejas)

ha presentado mayor número de ramas terciarias a los 6 meses de trascurrida la

investigación.

6. INICIO DE LA FLORACIÓN.

El análisis de varianza para el inicio de la floración (Cuadro23), no presentó diferencias

estadísticas significativas para ningún Factor ni la Interacción (A x B).

El promedio de días a la floración fue 23.94 y el coeficiente de variación 19.35 %.

CUADRO 23. ANÁLISIS DE VARIANZA PARA EL INICIO DE LA FLORACIÓN.


Fisher Nivel de


Total 17 2112,94

A (Fungicidas) 2 335,44 167,72 1,20 3,89 6,93 ns


Int AB 2 55,44 27,72 0,20 3,89 6,93 ns

Error 12 1675,33 139,61

CV % 19,35

Media 23,94



53

7. NÚMERO DE YEMAS.

El análisis de varianza para el número de yemas (Cuadro 24), presentó diferencias

significativas para el Factor A (Fungicidas de orden biológico), mientras que para el Factor

B (Edad de la planta) y la Interacción (A x B) no existió diferencias significativas.

El promedio de número de yemas fue 7.33 y el coeficiente de variación 8.32 %.

CUADRO 24. ANÁLISIS DE VARIANZA PARA NÚMERO DE YEMAS.


Fisher Nivel de


Total 17 2684,00

A (Fungicidas) 2 846,33 423,17 4,11 3,89 6,93 *


Int AB 2 565,44 282,72 2,75 3,89 6,93 ns

Error 12 1234,67 102,89

CV % 8,32

Media 7,33



En la prueba de Tukey al 5% para el número de yemas (Cuadro 25), tenemos que en el

rango “A” se ubican el factor A2 (Trichoderma harzianum) con un valor de 17.17;

mientras que en el rango “C” se ubica el Factor “A3 (Sin Trichoderma) con un valor de

2.50; El factor A1 (Trichoderma viride) se encuentra en un rango intermedio.

54

CUADRO 25. PRUEBA DE TUKEY AL 5% PARA EL NÚMERO DE YEMAS


A1 (Trichoderma viride) 17,00 A

A3 (Sin Trichoderma) 3,17 B

A2 (Trichoderma harzianum) 1,83 C



El número de yemas mayor número lo ha presentado Trichoderma viride (Gráfico10).

GRÁFICO 10. NÚMERO DE YEMAS EN LOS FUNGICIDAS DE ORDEN

BIOLÓGICO (FACTOR A).

Según Pati et al., 2004. En promedio general la formación de yemas en el T1 que consistió

en la aplicación de 0.2 g/L/planta de T. viride fue en promedio 9.8, siendo el menor

promedio; con el T2 que consistió en 0.13 g/L/planta de T. viride obtuvo 11.20 yemas

en promedio; mientras que el tratamiento que T3 (dosis baja) que consistió en 0.06

g/L/planta se obtuvo un número de yemas de 16.70. Lo que concuerda con la investigación

55

en la cual se inoculo Trichoderma viride a razón de 150 g/ha equivalente a 0,1 g/planta y

con la cual obtuvimos un número promedio de 17 yemas.

8. NÚMERO DE FLORES ABIERTAS.

Según el análisis de varianza para el número de flores abiertas (Cuadro26), no existen

diferencias estadísticas significativas para los Factores A (Fungicidas de orden biológico) y

B (Edad de la planta), así también para la Interacción (A x B).

En promedio el número de flores abiertas fue 1.28 y el coeficiente de variación 4.07 %.

CUADRO 26. ANÁLISIS DE VARIANZA PARA EL NÚMERO DE FLORES

ABIERTAS.


Fisher Nivel de


Total 17 59,61

A (Fungicidas) 2 6,78 3,39 1,00 3,89 6,93 ns


Int AB 2 5,44 2,72 0,80 3,89 6,93 ns

Error 12 40,67 3,39

CV % 4,07

Media 1,28



9. FRUTO CUAJADO.

El análisis de varianza para el cuajado de fruto (Cuadro27), no presentó diferencias

estadísticas significativas para ningún factor ni para la Interacción (A x B).

El promedio el cuajado de fruto fue 3.17 y el coeficiente de variación 7.08 %.

56

CUADRO 27. ANÁLISIS DE VARIANZA PARA LOS FRUTOS CUAJADOS.


Fisher Nivel de


Total 17 794,50

A (Fungicidas) 2 49,00 24,50 0,57 3,89 6,93 ns


Int AB 2 49,00 24,50 0,57 3,89 6,93 ns

Error 12 516,00 43,00

CV % 7,08

Media 3,17



10. FRUTOS DESARROLLADOS.

El análisis de varianza para los frutos desarrollados (Cuadro28), no presentó diferencias


El promedio los frutos desarrollados fue 2.67 y el coeficiente de variación 0.79 %.

CUADRO 28. ANÁLISIS DE VARIANZA PARA LOS FRUTOS DESARROLLADOS.


Fisher Nivel de


Total 17 640,00

A (Fungicidas) 2 48,00 24,00 0,69 3,89 6,93 ns


Int AB 2 48,00 24,00 0,69 3,89 6,93 ns

Error 12 416,00 34,67

CV % 0,79

Media 2,67



57

11. FRUTOS MADUROS.

El análisis de varianza para los frutos maduros (Cuadro29), no presentó diferencias


El promedio los frutos maduros fue 2.00 y el coeficiente de variación 8.22 %.

CUADRO 29. ANÁLISIS DE VARIANZA PARA LOS FRUTOS MADUROS.


Fisher Nivel de


Total 17 396,00

A (Fungicidas) 2 37,00 18,50 0,89 3,89 6,93 ns


Int AB 2 37,00 18,50 0,89 3,89 6,93 ns

Error 12 250,00 20,83

CV % 8,22

Media 2,00



12. TAMAÑO DEL FRUTO.

a. Diámetro del fruto.

El análisis de varianza para el diámetro del fruto (Cuadro30), presentó diferencias

estadísticas significativas para el Factor A (Fungicidas de orden biológico); mientras que

para el factor B (Edad de la planta) y la Interacción (A x B) no se presentaron diferencias

estadísticas significativas.

El promedio para el diámetro del fruto fue 1.52 cm. y el coeficiente de variación 5.68 %.

58

CUADRO 30. ANÁLISIS DE VARIANZA PARA EL DIÁMETRO DEL FRUTO.


Fisher Nivel de


Total 17 21,16

A (Fungicidas) 2 7,73 3,86 4,86 3,89 6,93 *


Int AB 2 2,21 1,10 1,39 3,89 6,93 ns

Error 12 9,55 0,80

CV % 5,68

Media 1,52



En la prueba de Tukey al 5% para el diámetro del fruto (Cuadro 31), tenemos que en el

rango “A” se ubican el factor A2 (Trichoderma harzianum) con un valor de 2.39 cm.;

mientras que en el rango “B” se ubican los Factores A3 (Sin Trichoderma) y A1

(Trichoderma viride) con valores de 1.37 y 0.80 cm. respectivamente.

CUADRO 31. PRUEBA DE TUKEY AL 5% PARA EL DIÁMETRO DEL FRUTO EN

EL FACTOR A (FUNGICIDAS DE ORDEN BIOLÓGICO).







El mejor diámetro del fruto lo ha presentado Trichoderma harzianum (Gráfico 11).

59

GRÁFICO 11. DIÁMETRO DEL FRUTO EN RELACIÓN A LOS FUNGICIDAS DE


AVILÁN L. 2008. Manifiesta que el fruto tiende a expandirse a un ritmo más lento

conforme se acerca a la época de cosecha, lo cual es aún más notorio en el último período

evaluado, con un aumento de tan solo 7% de su diámetro. Lo cual se ve afectado cuando la

planta está enferma o afectada por algún organismo patógeno que esté afectando las

funciones de absorción de la planta como es el caso de la marchitez la cual daña el sistema

radicular ocasionando que la planta no pueda absorber nutrientes, es ahí donde entra

Trichoderma harzianum, cuyo hongo se encarga de controlar y liberar a la planta de esta

amenaza, logrando que esta pueda nutrirse y sobrevivir al ataque del organismo patógeno y

así también lograr obtener una buena producción y por ende un buen diámetro de frutos.

Así demostrándose en nuestra investigación ya que T. harzianum ha permitido que las

plantas que presentaban marchitez obtengan buenos frutos con un buen diámetro.

b. Longitud del fruto.

El análisis de varianza para la longitud del fruto (Cuadro32), presentó diferencias

estadísticas significativas para el Factor A (Fungicidas de orden biológico); mientras que

para el factor B (Edad de la planta) y la Interacción (A x B) no se presentaron diferencias

estadísticas significativas.

60

El promedio para la longitud del fruto fue 1.36 cm. y el coeficiente de variación 0.12 %.

CUADRO 32. ANÁLISIS DE VARIANZA PARA LA LONGITUD DEL FRUTO.


Fisher Nivel de


Total 17 16,83

A (Fungicidas) 2 5,99 2,99 4,62 3,89 6,93 *


Int AB 2 1,78 0,89 1,37 3,89 6,93 ns

Error 12 7,78 0,65

CV % 0,12

Media 1,36



En la prueba de Tukey al 5 % para la longitud del fruto (Cuadro 33), tenemos que en el

rango “A” se ubica el Factor A2 (Trichoderma harzianum) con un valor de 2.11 cm.;

mientras que en el rango “B” se ubican los Factores A3 (Sin Trichoderma) y A2

(Trichoderma viride) con valores de 1.26 y 0.71 cm. respectivamente.

CUADRO 33. PRUEBA DE TUKEY AL 5% PARA LA LONGITUD DEL FRUTO.







La mejor longitud del fruto lo ha presentado Trichoderma harzianum (Gráfico 12).

61

GRÁFICO 12. LONGITUD DEL FRUTO EN RELACIÓN A LOS FUNGICIDAS DE


(Richardson y Bond 2011), manifiestan que la aplicación de fungicidas de orden

biológico como Trichoderma harzianum en el control de enfermedades como la marchitez

generaría un incremento en el tamaño de los frutos de las plantas que han sido tratadas con

este, ya que aumentan su capacidad de absorción de agua así como nutrientes disueltos en

ella, lo que finalmente mejorarían la capacidad productiva de la planta, alcanzando un

umbral que desencadene la estimulación de producción de las plantas de mora. Lo que se

puede observar en esta investigación que las planta tratadas con T. harzianum han

presentado mayor longitud del fruto.

13. NÚMERO DE RAMAS PRODUCTIVAS Y VEGETATIVAS.

a. Número de ramas productivas.

El análisis de varianza para el número de ramas productivas (Cuadro34), presento

diferencias altamente significativas para el Factor B (Edad de la planta); para el Factor A

(Fungicidas de orden biológico) presentó diferencias significativas; mientras que para la

Interacción (A x B) no presentó diferencias estadísticas significativas.

62

El promedio para el número de ramas productivas fue 19.44 y el coeficiente de variación

12.07 %.


PRODUCTIVAS.


Fisher Nivel de


Total 17 6532,44

A (Fungicidas) 2 3860,11 1930,06 13,25 3,89 6,93 **


Int AB 2 202,33 101,17 0,69 3,89 6,93 ns

Error 12 1748,00 145,67

CV % 12,07

Media 19,44



En la prueba de Tukey al 5 % para el Factor A (Fungicidas de orden biológico); (Cuadro

35), tenemos que en el rango “A” se ubica el factor A2 (Trichoderma harzianum) con un

valor de 37.83; en el rango “B” se ubica el Factor A1 (Trichoderma viride) y finalmente en

el rango “C” se ubica A3 (Sin Trichoderma) con un valor de 2.00.

CUADRO 35. PRUEBA DE TUKEY AL 5% PARA EL NÚMERO DE RAMAS

PRODUCTIVAS.







63

El mayor número de ramas productivas en relación a los fungicidas lo ha presentado

Trichoderma harzianum (Gráfico 13).

GRÁFICO 13. NÚMERO DE RAMAS PRODUCTIVAS EN EL FACTOR A

(FUNGICIDAS DE ORDEN BIOLÓGICO).

En la prueba de Tukey al 5 % para el número de ramas productivas en relación a la edad de

la planta (Cuadro 36), tenemos que en el rango “A” se ubican el factor B1 (Edad vieja) con

un valor de 25.78; mientras que en el rango “B” se ubica el Factor B2 (Edad nueva) con un

valor de 13.11.


PRODUCTIVAS.

Factor B (Edad de la planta) Media Rango





El mayor número de ramas productivas lo ha presentado las plantas de edad vieja (Gráfico

14).

64

GRÁFICO 14. RAMAS PRODUCTIVAS EN LA EDAD DE LA PLANTA (FACTOR

B).

Según INFOJARDIN (2008), los beneficios de Trichoderma harzianum son de estimular el

crecimiento de los cultivos porque posee metabolitos que promueven los procesos de

desarrollo en las plantas, promueve el crecimiento de raíces y pelos absorbentes, mejora la

nutrición y absorción del agua, moviliza nutrientes en el suelo para las plantas, lo que ha

ocasionado que en nuestra investigación obtengamos un promedio de 37,83 ramas

productivas ya que han detenido el ataque de la enfermedad promoviendo el desarrollo de

la planta de mora.

b. Número de ramas vegetativas.

El análisis de varianza para el número de ramas vegetativas (Cuadro37), presentó

diferencias significativas para el Factor A (Fungicidas de orden biológico), para el Factor

B (Edad de la planta) y la Interacción (A x B) no presentó diferencias estadísticas

significativas.

El promedio para el número de ramas vegetativas fue 8.06 y el coeficiente de variación

7.11 %.

65


VEGETATIVAS.


Fisher Nivel de


Total 17 826,94

A (Fungicidas) 2 353,44 176,72 6,05 3,89 6,93 *


Int AB 2 110,33 55,17 1,89 3,89 6,93 ns

Error 12 350,67 29,22

CV % 7,11

Media 8,06



En la prueba de Tukey al 5 % para el número de ramas vegetativas, Factor A (Fungicidas

de orden biológico); (Cuadro 38), tenemos que en el rango “A” se ubica el Factor A2

(Trichoderma harzianum) con un valor de 13.67; en el rango “B” se ubica el Factor A3

(Sin Trichoderma) con un valor de 7.67 y finalmente en el rango “C” se ubica el Factor

A1 (Trichoderma viride) con un valor de 2.83.


VEGETATIVAS.




A1 (Trichoderma viride) 2,83 C



El mayor número de ramas vegetativas en relación a los fungicidas lo ha presentado


66

GRÁFICO 15. NÚMERO DE RAMAS VEGETATIVAS EN EL FACTOR A


Citado por ERAZO (2006), el cual menciona que al aplicar T. Harzianum, este actúa

primeramente como bioestimulante de crecimiento radicular, promoviendo el desarrollo de

la planta de mora, debido a la secreción de fitohormonas, permitiendo así una mejor

asimilación de nutrientes y por ende una mayor producción de ramas entre estas las

vegetativas, lo que concuerda con el ensayo en la que las plantas tratadas con T.

Harzianum ha tenido una mayor cantidad de ramas vegetativas.

14. LONGITUD DE LA RAMA MUESTRA.

a. A los 4 meses.

El análisis de varianza para la longitud de la rama muestra a los 4 meses (Cuadro39), no

presentó diferencias estadísticas significativas para ningún factor ni para la Interacción (A

x B).

El promedio para la longitud de rama muestra fue 12.56 y el coeficiente de variación 18.92

%.

67

CUADRO 39. ANÁLISIS DE VARIANZA PARA LA LONGITUD DE LA RAMA

MUESTRA.


Fisher Nivel de


Total 17 882,44

A (Fungicidas) 2 201,44 100,72 1,84 3,89 6,93 ns


Int AB 2 16,33 8,17 0,15 3,89 6,93 ns

Error 12 656,67 54,72

CV % 18,92

Media 12,56



b. A los 6 meses.

El análisis de varianza para la longitud de la rama muestra a los 6 meses (Cuadro40),

presentó diferencias estadísticas altamente significativas para los Factores A y B; mientras

que para la Interacción (A x B) no presentó diferencias significativas.

El promedio para la longitud de rama muestra fue 36.78 cm. y el coeficiente de variación

10.25 %.

68

CUADRO 40. ANÁLISIS DE VARIANZA PARA LA LONGITUD DE LA RAMA

MUESTRA.


Fisher Nivel de


Total 17 20295,11

A (Fungicidas) 2 8468,11 4234,06 8,62 3,89 6,93 **


Int AB 2 868,11 434,06 0,88 3,89 6,93 ns

Error 12 5892,00 491,00

CV % 10,25

Media 36,78



En la prueba de Tukey al 5 % para la longitud de la rama muestra en el Factor A

(Fungicidas de orden biológico); (Cuadro 41), tenemos que en el rango “A” se ubica el

Factor A2 (Trichoderma harzianum) con un valor de 67.33 cm; en el rango “B” se ubica el

Factor A1 (Trichoderma viride) com um valor de 23.83 cm y finalmente en el rango “C”

se ubica A3 (Sin Trichoderma) con un valor de 19.17 cm.

CUADRO 41. PRUEBA DE TUKEY AL 5% PARA LA LONGITUD DE LA RAMA

MUESTRA.







La mayor longitud de la rama muestra en relación a los fungicidas lo ha presentado


69

GRÁFICO 16. NÚMERO DE RAMAS PRODUCTIVAS EN EL FACTOR A


En la prueba de Tukey al 5% para la longitud de la rama muestra en relación a la edad de la

planta (Cuadro 42), tenemos que en el rango “A” se ubican el Factor B1 (Edad vieja) con

un valor de 53.56; mientras que en el rango “B” se ubica el Factor B2 (Edad nueva) con un

valor de 20.00.


PRODUCTIVAS.

Edad de la planta Media Rango





La mayor longitud de la rama muestra lo ha presentado las plantas de edad vieja (Gráfico

17).

70

GRÁFICO 17. LONGITUD DE LA RAMA MUESTRA EN EL FACTOR B (EDAD DE

LA PLANTA).

Según HANNA (2001), el aplicar T. Harzianum, se estimula de crecimiento y el desarrollo

de la planta de mora, obteniendo una mayor longitud de ramas, lo que concuerda con el

ensayo en la que las plantas tratadas con T. Harzianum ha tenido una mayor longitud de las

ramas muestra. Así también se ha podido observar que la edad de la planta ha influenciado

mucho por ser unas plantas ya implantadas en el medio. Lo que ha sido corroborado por

SANTANA R. (2003), quien manifiesta, que los tratamientos en que se aplico T.

Harzianum, el número de ramas obtuvieron diferencias significativas con respecto a los

testigos, observándose un efecto biostimulante de este hongo.

15. PESO.

El análisis de varianza para el peso en Kg. (Cuadro 43), presentó diferencias estadísticas

altamente significativas para los Factor A (Fungicidas de orden biológico) y B (Edad de la

planta); mientras que para Interacción (A x B) no existió diferencias significativas.

El promedio para el peso en Kg fue 19.53 Kg. y el coeficiente de variación 9.00 %.

71

CUADRO 43. ANÁLISIS DE VARIANZA PARA EL PESO EN Kg.


Fisher Nivel de


Total 17 6399,20

A (Fungicidas) 2 4103,73 2051,86 22,41 3,89 6,93 **


Int AB 2 145,68 72,84 0,80 3,89 6,93 ns

Error 12 1098,83 91,57

CV % 9,00

Media 19,53



En la prueba de Tukey al 5 % para el peso en el Factor A (Fungicidas de orden biológico);

(Cuadro 44), tenemos que en el rango “A” se ubica el Factor A2 (Trichoderma harzianum)

con un valor de 40.67 Kg; en el rango “B” se ubica el Factor A1 (Trichoderma viride) con

un valor de 11.59 Kg. y finalmente en el rango “C” se ubica A3 (Sin Trichoderma) con un

valor de 6.33 Kg.

CUADRO 44. PRUEBA DE TUKEY AL 5% PARA EL PESO EN Kg.







El mayor peso lo obtuvo Trichoderma harzianum (Gráfico 18).

72

GRÁFICO 18. PESO EN Kg. EN EL FACTOR A (FUNGICIDAS DE ORDEN

BIOLÓGICO).

En la prueba de Tukey al 5% para el peso en Kg. en relación a la edad de la planta (Cuadro

45), tenemos que en el rango “A” se ubican el Factor B1 (Edad vieja) con un valor de

27.17 Kg.; mientras que en el rango “B” se ubica el Factor B2 (Edad nueva) con un valor

de 11.89 Kg.

CUADRO 45. PRUEBA DE TUKEY AL 5% PARA EL PESO EN Kg.

Edad de la planta Media Rango





El mayor peso en Kg lo ha presentado las plantas de edad vieja (Gráfico 19).

73

GRÁFICO 19. PESO EN Kg. DE LA MORA EN EL FACTOR B (EDAD DE LA

PLANTA).

Yedidia et al. 2003. Manifiesta que T. Harzianum, es un excelente estimulador del

crecimiento de raíces y raicillas, razón por la cual la planta de mora se ve beneficiada con

este proceso ya que absorbe mayor cantidad de nutrientes presentes en el suelo, lo cual

ayuda a mejorar su capacidad productiva, lo que se puede observar en este ensayo que se

obtuvo mayor peso por planta en aquellas que habían sido inoculadas con este hongo.

16. RENDIMIENTO EN KILOGRAMOS / PLANTA.

El análisis de varianza para el rendimiento en kilogramos/planta (Cuadro46), presentó

diferencias estadísticas altamente significativas para los Factores A y B y para la

Interacción (A x B) presentó diferencias significativas.

El promedio para el rendimiento en Kg/planta fue 26.67 y el coeficiente de variación 15.97

%.

74

CUADRO 46. ANÁLISIS DE VARIANZA PARA EL RENDIMIENTO EN

Kg/PLANTA.


Fisher Nivel de


Total 17 18693,45

A (Fungicidas) 2 12533,78 6266,89 41,69 3,89 6,93 **


Int AB 2 1353,87 676,94 4,50 3,89 6,93 *

Error 12 1803,81 150,32

CV % 15,97

Media 26,67



En la prueba de Tukey al 5 % para la Interacción (A x B) del rendimiento en Kg/planta

(Cuadro 47), tenemos que en el rango “A” se ubica la Interacción A2B1 (Trichoderma

harzianum de edad vieja) con un valor de 84.74 Kg/planta; mientras que en el rango “D”

se ubican lãs Interacciones A1B2 y A3B2 con un valor de 0.00 Kg/planta, las demás

interacciones se ubican en rangos intermedios.

CUADRO 47. PRUEBA DE TUKEY AL 5% PARA EL RENDIMIENTO EN

Kg/PLANTA.



A2B2 (Trichoderma harzianum en plantas nuevas) 41,27 B


A3B1 (Sin Trichoderma en plantas viejas) 2,25 C

A1B2 (Trichoderma viride en plantas nuevas) 0,00 D

A3B2 (Sin Trichoderma en plantas nuevas) 0,00 D



75

La mejor interacción para el rendimiento en Kg./planta lo obtuvo A2B1 (Trichoderma

harcianum en edad vieja) (Gráfico 20).

GRÁFICO 20. RENDIMIENTO EN Kg/PLANTA EN LA INTERACCIÓN (A x B).

76

17. ANÁLISIS ECONÓMICO.

CUADRO 47. CALCULO DE COSTOS VARIABLES EN LOS TRATAMIENTOS.

Tratamientos Descripción Costo/planta Fungicidas

Costos

que varían

(USD)

T1 Trichoderma viride en plantas

viejas

0,13 0,39

T2 Trichoderma viride en plantas

nuevas

1,00 0,13 3,39

T3 Trichoderma harzianum en

plantas viejas

0,38 1,14

T4 Trichoderma harzianum en

plantas nuevas

1,00 0,38 4,14

T5 Sin Trichoderma a en plantas

viejas

0,00 0,00

T6 Sin Trichoderma en plantas

nuevas

1,00 0,00 3



Al evaluación del efecto de la aplicación de Trichoderma harzianum y Trichoderma viride

para el control de marchitez en mora de castilla (Rubus glaucus bent) en el cantón Píllaro,

provincia de Tungurahua, (Cuadro 47), desde el punto de vista económico el tratamiento

que presento menor costo de producción fue T5 (Sin Trichoderma a en plantas viejas) con

0,39 USD, mientras que el tratamiento T4 (Trichoderma harzianum en plantas nuevas)

presento un mayor costo de producción con 4,14 USD. Lo que ocurrió debido a que en

estos tratamientos existió la aplicación de Trichoderma, razón por la cual incrementó los

costos variables.

77

CUADRO 48. BENEFICIO NETO

Trat. Descripción Rend.

Rendimiento

ajustado al

10 %

Beneficio

de campo

(USD)

Costos

que

varían

(USD)

Beneficio

neto

(USD)

T1 Trichoderma viride en

plantas viejas

31,77 28,59 57,19 0,39 56,80

T2 Trichoderma viride en

plantas nuevas

0,00 0,00 0,00 3,39 -3,39

T3 Trichoderma

harzianum en plantas

viejas

84,74 76,27 152,53 1,14 151,39

T4 Trichoderma


nuevas

41,27 37,14 74,29 4,14 70,15

T5 Sin Trichoderma a en

plantas viejas

2,25 2,03 4,05 0,00 4,05

T6 Sin Trichoderma en

plantas nuevas

0,00 0,00 0,00 1,00 -1,00



De acuerdo al beneficio neto de los diferentes tratamientos (Cuadro 48), se determinó que

el tratamiento T3 (Trichoderma harzianum en plantas viejas) presentó mayor beneficio

neto con 151,39 USD, mientras que el tratamiento T5 (Sin Trichoderma a en plantas

viejas) presentó el menor beneficio neto con 4,05 USD. Lo que significa que la aplicación

de Trichoderma realmente ayudó al cultivo a elevar su potencial genético, brindando así

una mejor cosecha, calidad de fruto y por ende mejor beneficio neto.

78

CUADRO 49. ANÁLISIS DE DOMINANCIA PARA LOS TRATAMIENTOS.

Tratamiento Descripción Costos que

varían (USD)

Beneficio neto

(USD) Dominancia

T1 Trichoderma viride

en plantas viejas

0,39 56,80 ND

T2 Trichoderma viride

en plantas nuevas

3,39 -3,39 D

T3 Trichoderma


viejas

1,14 151,39 ND

T4 Trichoderma


nuevas

4,14 70,15 D

T5 Sin Trichoderma a en

plantas viejas

0,00 4,05 D

T6 Sin Trichoderma en

plantas nuevas

1,00 -1,00 D



En el análisis de dominancia para la evaluación del efecto de la aplicación de Trichoderma

harzianum y Trichoderma viride para el control de marchitez en mora de castilla (Rubus

glaucus benth) en el cantón Píllaro, provincia de Tungurahua, (Cuadro 49) presenta 2

tratamientos ND estos son: T1 (Trichoderma viride en plantas viejas) y T3 (Trichoderma

harzianum en plantas viejas), con los cuales se procedió a realizar el análisis de la tasa de

retorno marginal.

79

CUADRO 50. ANÁLISIS MARGINAL DE LOS TRATAMIENTOS NO DOMINADOS.

Tratamiento Beneficio

neto

Costos

variables

Incremento

beneficio neto

marginal

Incremento

costos variables

marginales

Tasa de

retorno

marginal

T1 56,80 0,39

T3 151,39 1,14 94,60 0,75 12612,80



La tasa de retorno marginal calculada (Cuadro 50), nos indica que un retorno de 12612,80

%, al cambiar de un tratamiento (Trichoderma viride) al tratamiento (Trichoderma

harzianum) implica que por cada dólar invertido en la nueva tecnología, el productor puede

esperar recobrar el dólar invertido más un retorno adicional de $ 126.13, cabe resaltar que

no se tomo en cuenta los precios de las plantas de edad vieja que ya se encontraban

instaladas en el sitio en el cual se estableció el presente ensayo.

VI. CONCLUSIONES.

A. Los mejores resultados fueron los brindados por el Fungicida de orden biológico

Trichoderma harzianum, debido a su facilidad para colonizar las raíces de las plantas,

este ha desarrollado mecanismos para atacar y parasitar a otros hongos y así,

aprovechar una fuente nutricional adicional. Libera antibióticos y compuestos

enzimáticos extracelulares que inhiben el desarrollo de los hongos fitopatogenos, razón

por la cual al final del ensayo se obtuvo mortalidad en los tratamientos T1 y T2

(Trichoderma viride); T5 y T6 (Sin Trichoderma) en los cuales murieron una planta

por repetición.

B. Trichoderma harzianum tiene muchas ventajas como agente de control biológico, pues

posee un rápido crecimiento y desarrollo, a parte produce una gran cantidad de

enzimas, inducibles con la presencia de hongos fitopatógenos, su gran tolerancia a

condiciones ambientales extremas y habitad donde los hongos causan enfermedad le

permiten ser eficiente agente de control, de igual forma puede sobrevivir e medios con

contenidos significativos de pesticidas y otros químicos. A demás su gran variabilidad

se constituye en un reservorio de posibilidades de control biológico bajo diferentes

sistemas de producción y cultivos.

C. Cabe resaltar que la edad de la planta también influyó mucho durante todo el ensayo

siendo las de edad vieja las que mejor respuesta obtuvieron, eso se debe al contenido de

lignina que estas contienen ya que estas son sustancias amorfas localizadas como

componente de la lámina media y también en la pared secundaria. Durante el desarrollo

de la célula, la lignina es incorporada como último componente de la pared celular

interpenetrando las fibrillas y fortaleciendo la pared celular.

D. De acuerdo al beneficio el tratamiento T3 (Trichoderma harzianum) presentó mayor

beneficio neto con 151,39 USD, obteniendo también la mejor tasa de retorno marginal.

VII. RECOMENDACIONES.

A. Debido a que Trichoderma harzianum, es un hongo mico-parásito antagonista de

patógenos vegetales con cuatro modos de acción como son la competencia por

nutrientes, la antibiosis, el micoparasitismo y la estimulación de defensas de la

planta; le facilita y lo vuelve eficaz frente a diversos organismos en el suelo entre

estos los hongos que ocasionan la marchitez que se presentan en el cultivo de mora,

lo cual le hace un producto recomendable para su aplicación en lotes ya implantados,

siendo una opción acertada para los fruticultores.

B. Seguir investigando estos productos de orden biológico, que se insertan dentro de la

agricultura orgánica, promoviendo e impulsando una producción sana, sin residuos

químicos, para el consumo humano.

VIII. ABSTRACTO.

La presente investigación propone: Evaluar el efecto de la aplicación de Trichoderma

harzianum y Trichoderma viride para el control de marchitez en mora de castilla (Rubus

glaucus Bent) en el cantón Píllaro. Para el diseño estadístico se utilizo un diseño Completo

al Azar (DCA) con tres repeticiones. El coeficiente de variación se expreso en porcentaje y

se realizo la prueba de Tukey al 5%. Resultado que: El porcentaje de mortalidad se

presentó en un 33.3 % en los tratamientos T1, T5 y T6; el mejor vigor a los 4 y 6 meses lo

presentó Trichoderma harzianum con 3.3 y 3.67 respectivamente que corresponde a

vigorosas; el mayor número de ramas primarias y secundarias se presentó en las plantas de

edad vieja con 3.7 y 12.1 respectivamente y Trichoderma harzianum con un valor de 16

ramas secundarias; el mayor número de ramas terciarias lo mostró la interacción A2B1

(Trichoderma harzianum en plantas viejas) con 25.67; el mayor tamaño del fruto tanto en

diámetro como en longitud, la mayor longitud de rama muestra lo presentó Trichoderma

harzianum con 2.39 y 2.11 (cm.) y 67.33 cm respectivamente y el mejor rendimiento en

Kg/planta lo obtuvo A2B1 con 84,74 Kg/planta. Desde el punto de vista económico, se

determino que el menor costo de producción en T5 (Sin Trichoderma a en plantas viejas)

con 0.0 USD, el mayor lo presentó T4 (Trichoderma harzianum en plantas nuevas) con

4.14 USD, el mayor beneficio neto lo obtuvo T3 (Trichoderma harzianum en plantas

viejas) con 151.39 USD. El tratamiento con mayor tasa de retorno marginal es T3

(Trichoderma harzianum en plantas viejas) con 12612.80 %, lo que significa que por cada

dólar invertido existe una tasa de retorno marginal de 126,13 USD.

IX. SUMMARY.

EVALUACIÓN OF trichoderma harzianum AND trichoderma viride APLICATION

EFFECT FOR DE CONTROL OF WILTING ON CASTILE BLACKBERRY

(Rubus glaucus Benth).

The present investigation proposes to evalue the effect of Trichoderma harzianum and

Trichoderma viride aplication for de control of wilting on Castile blackberry (Rubus

glaucus Benth) in Pillaro canton.

A Random complete Desing (RCD) for the statistical design was used with three

repetitions. The variation coefficient was expressed in percentaje and the Turkey test was

applied at 5%. Result: The mortaly porcentage was presented in a 33.3% in the treatments

T1, T5 and T6; the best energy at 4 and 6 months was presented by Trichoderma

harzianum whith 3.3 and 3.67 respectively, wich corresponds to vigorous; the highest

number of primary and secondary braches was presented in old plantas with 3.7 and 12.1

respectively and Ttrichoderma harzianum with a value of 16 secondary branches; the

highest number of tertiary branches was showed by the interaction A2B1 (Trichoderma

harzianum in old plants) whit 25.67; the biggest fruit size as in diameter and in length: the

biggest simple branch length was presented by Trichoderma harzianum with 2.39 and

2.11(cm) and 67.33 cm respectively and the best performance in Kg/ plant was obtained by

A2B1 with 84.74 kg/plant. From de economical point of view, it was determided that the

lowest production cost was T5 (without Trichoderma a in old plants) with 0.0USD, the

highest was presented by T4 (Trichoderma harzianum in new plants) with 4.14 USD, the

highest net profit was obtained by T3 (Trichoderma harzianum in old plants) whith 151.39

USD. The treatment with the highest marginal return rate was T3(Trichoderma harzianum

in old plants) with 12612.80%, this means that for every invested dollar there is a marginal

return rate of 126.13 USD.

X. BIBLIOGRAFÍA.

1. ACEVEDO, R 1989. Especificidad de Trichoderma sp. en el control biológico

de Sclerotium cepivorum Berk. Venez. Pg.56.

2. ALLEN 1987, LOXTON y DONALD 1987, Solubilization of phosphates and

micronutrients by the plant-growth promoting and biocontrol fungus

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XI. ANEXOS.

ANEXO 1. ESQUEMA DE DISTRIBUCIÓN DEL ENSAYO.

F1 x x x x x x x x x x x x x x x x x x x x x x x x x x x x x

F2 x x x x x T1R1 x T1R2 x x x x T1R3 x x x x T2R3 T2R2 x x T2R1 x T5R1 x x x x x

F3 x x T5R3 x x x x T5R2 x x x x x T3R3 x x x x x T3R2 x x x T3R1 x x x T6R1 x

F4 x x x T4R3 P x x x x x x x x x x x x x x x x x x T4R3 x T4R1 x x x

F5 x x x T6R2 x x x x x x x x x x x x X x x x x x x x x x x x x

F6 x x x x x x x x x x x x x x T6R3 x x x x x x x x x x x x x x


F8

x x x x x x x x x x x x x x x x x x x x x x x x x x x x

F9 x x x x x x x x x x x x x x x x x x x x x x x x x x x x





89

ANEXO 2. PORCENTAJE DE LA MORTALIDAD DE PLANTAS.

Fungicidas

Edad de

la planta

Repetición

Suma Media I II III

Trichoeb Vieja 0,00 0,00 1,00 1,00 0,33

Trichoeb Nueva 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00

Trichoespoch Vieja 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00

Trichoespoch Nueva 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00

SF Vieja 1,00 0,00 0,00 1,00 0,33

SF Nueva 1,00 0,00 0,00 1,00 0,33



ANEXO 3. INCIDENCIA DE LA MARCHITEZ DE LA ENFERMEDAD.

Fungicidas

Edad de

la planta

Repetición

Suma Media I II III

Trichoeb Vieja 1,00 1,00 1,00 3,00 1,00

Trichoeb Nueva 1,00 1,00 1,00 3,00 1,00



SF Vieja 1,00 1,00 1,00 3,00 1,00

SF Nueva 1,00 1,00 1,00 3,00 1,00



90

ANEXO 4. SEVERIDAD DE LA MARCHITEZ.

a. A los 4 y 6 meses.

Fungicidas

Edad de

la planta

Repetición

Suma Media I II III

Trichoeb Vieja 2,00 2,00 5,00 9,00 3,00

Trichoeb Nueva 1,00 5,00 1,00 7,00 2,33



SF Vieja 5,00 3,00 3,00 11,00 3,67

SF Nueva 5,00 2,00 2,00 9,00 3,00



Fungicidas

Edad de

la planta

Repetición

Suma Media I II III

Trichoeb Vieja 1,00 1,00 5,00 7,00 2,33

Trichoeb Nueva 2,00 5,00 1,00 8,00 2,67



SF Vieja 5,00 4,00 3,00 12,00 4,00

SF Nueva 5,00 3,00 3,00 11,00 3,67



91

ANEXO 5. VIGOR DE LA PLANTA.

a. A los 4 meses.

Fungicidas

Edad de

la planta

Repetición

Suma Media I II III

Trichoeb Vieja 3,00 3,00 0,00 6,00 2,00

Trichoeb Nueva 2,00 3,00 2,00 7,00 2,33



SF Vieja 0,00 4,00 3,00 7,00 2,33

SF Nueva 0,00 4,00 3,00 7,00 2,33



b. A los 6 meses.

Fungicidas

Edad de

la planta

Repetición

Suma Media I II III

Trichoeb Vieja 4,00 4,00 0,00 8,00 2,67

Trichoeb Nueva 3,00 3,00 3,00 9,00 3,00



SF Vieja 0,00 1,00 2,00 3,00 1,00

SF Nueva 0,00 1,00 2,00 3,00 1,00



92

ANEXO 6. NÚMERO DE RAMAS PRIMARIAS, SECUNDARIAS Y TERCIARIAS.

a. Primarias.

1) A los 4 meses.

Fungicidas

Edad de la

planta

Repetición

Suma Media I II III

Trichoeb Vieja 6,00 5,00 0,00 11,00 3,67

Trichoeb Nueva 2,00 1,00 3,00 6,00 2,00



SF Vieja 0,00 5,00 4,00 9,00 3,00

SF Nueva 0,00 4,00 2,00 6,00 2,00



2) A los 6 meses.

Fungicidas

Edad de

la planta

Repetición

Suma Media I II III

Trichoeb Vieja 7,00 5,00 0,00 12,00 4,00

Trichoeb Nueva 5,00 3,00 2,00 10,00 3,33



SF Vieja 0,00 5,00 4,00 9,00 3,00

SF Nueva 0,00 3,00 2,00 5,00 1,67



93

b. Secundarias.

1) A los 4 meses.

Fungicidas

Edad de

la planta

Repetición

Suma Media I II III

Trichoeb Vieja 14,00 16,00 0,00 30,00 10,00

Trichoeb Nueva 9,00 9,00 7,00 25,00 8,33



SF Vieja 0,00 18,00 15,00 33,00 11,00

SF Nueva 0,00 14,00 14,00 28,00 9,33



2) A los 6 meses.

Fungicidas

Edad de

la planta

Repetición

Suma Media I II III

Trichoeb Vieja 20,00 22,00 0,00 42,00 14,00

Trichoeb Nueva 12,00 11,00 9,00 32,00 10,67



SF Vieja 0,00 15,00 12,00 27,00 9,00

SF Nueva 0,00 10,00 12,00 22,00 7,33



94

a. Terciarias.

1) A los 4 meses.

Fungicidas

Edad de

la planta

Repetición

Suma Media I II III

Trichoeb Vieja 2,00 2,00 4,00 2,00

Trichoeb Nueva 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00



SF Vieja 3,00 2,00 5,00 2,50

SF Nueva 0,00 0,00 0,00 0,00



2) A los 6 meses.

Fungicidas

Edad de

la planta

Repetición

Suma Media I II III

Trichoeb Vieja 8,00 7,00 0,00 15,00 5,00

Trichoeb Nueva 1,00 2,00 3,00 6,00 2,00



SF Vieja 0,00 2,00 2,00 4,00 1,33

SF Nueva 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00



95

ANEXO 7. INICIO DE LA FLORACIÓN.

Fungicidas

Edad de

la planta

Repetición

Suma Media I II III

Trichoeb Vieja 31,00 31,00 0,00 62,00 20,67

Trichoeb Nueva 29,00 27,00 30,00 86,00 28,67



SF Vieja 0,00 25,00 27,00 52,00 17,33

SF Nueva 0,00 28,00 30,00 58,00 19,33



ANEXO 8. NÚMERO DE YEMAS.

Fungicidas

Edad de

la planta

Repetición

Suma Media I II III

Trichoeb Vieja 1,00 10,00 0,00 11,00 3,67

Trichoeb Nueva 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00



SF Vieja 0,00 11,00 8,00 19,00 6,33

SF Nueva 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00



96

ANEXO 9. NÚMERO DE FLORES ABIERTAS.

Fungicidas

Edad de

la planta

Repetición

Suma Media I II III

Trichoeb Vieja 1,00 2,00 0,00 3,00 1,00

Trichoeb Nueva 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00



SF Vieja 0,00 7,00 1,00 8,00 2,67

SF Nueva 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00



ANEXO 10. FRUTO CUAJADO.

Fungicidas

Edad de

la planta

Repetición

Suma Media I II III

Trichoeb Vieja 10,00 11,00 0,00 21,00 7,00

Trichoeb Nueva 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00



SF Vieja 0,00 4,00 2,00 6,00 2,00

SF Nueva 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00



97

ANEXO 11. FRUTOS DESARROLLADOS.

Fungicidas

Edad de

la planta

Repetición

Suma Media I II III

Trichoeb Vieja 9,00 7,00 0,00 16,00 5,33

Trichoeb Nueva 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00



SF Vieja 0,00 2,00 2,00 4,00 1,33

SF Nueva 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00



ANEXO 12. FRUTOS MADUROS.

Fungicidas

Edad de

la planta

Repetición

Suma Media I II III

Trichoeb Vieja 5,00 6,00 0,00 11,00 3,67

Trichoeb Nueva 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00



SF Vieja 0,00 1,00 1,00 2,00 0,67

SF Nueva 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00



98

ANEXO 13. TAMAÑO DEL FRUTO.

a. Diámetro del fruto.

Fungicidas

Edad de

la planta

Repetición

Suma Media I II III

Trichoeb Vieja 2,39 2,42 0,00 4,81 1,60

Trichoeb Nueva 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00



SF Vieja 0,00 2,10 2,16 4,26 1,42

SF Nueva 0,00 1,99 1,99 3,98 1,33



b. Longitud del fruto.

Fungicidas

Edad de

la planta

Repetición

Suma Media I II III

Trichoeb Vieja 2,13 2,13 0,00 4,26 1,42

Trichoeb Nueva 2,08 1,85 0,00 3,93 1,31



SF Vieja 0,00 1,96 1,86 3,82 1,27

SF Nueva 0,00 1,80 1,92 3,72 1,24



99

ANEXO 14. NÚMERO DE RAMAS PRODUCTIVAS Y VEGETATIVAS.

a. Número de ramas productivas.

Fungicidas

Edad de

la planta

Repetición

Suma Media I II III

Trichoeb Vieja 39,00 47,00 0,00 86,00 28,67

Trichoeb Nueva 0,00 0,00 25,00 25,00 8,33



SF Vieja 0,00 4,00 8,00 12,00 4,00

SF Nueva 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00



b. Número de ramas vegetativas.

Fungicidas

Edad de

la planta

Repetición

Suma Media I II III

Trichoeb Vieja 3,00 8,00 0,00 11,00 3,67

Trichoeb Nueva 2,00 0,00 4,00 6,00 2,00



SF Vieja 0,00 8,00 18,00 26,00 8,67

SF Nueva 0,00 7,00 13,00 20,00 6,67



100

ANEXO 15. LONGITUD DE LA RAMA MUESTRA.

a. A los 4 meses.

Fungicidas

Edad de

la planta

Repetición

Suma Media I II III

Trichoeb Vieja 12,00 14,00 0,00 26,00 8,67

Trichoeb Nueva 0,00 17,00 13,00 30,00 10,00



SF Vieja 0,00 18,00 17,00 35,00 11,67

SF Nueva 0,00 15,00 17,00 32,00 10,67



b. A los 6 meses.

Fungicidas

Edad de

la planta

Repetición

Suma Media I II III

Trichoeb Vieja 75,00 68,00 0,00 143,00 47,67

Trichoeb Nueva 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00



SF Vieja 0,00 52,00 63,00 115,00 38,33

SF Nueva 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00



101

ANEXO 16. PESO.

Fungicidas

Edad de

la planta

Repetición

Suma Media I II III

Trichoeb Vieja 31,54 38,00 0,00 69,54 23,18

Trichoeb Nueva 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00



SF Vieja 0,00 20,00 18,00 38,00 12,67

SF Nueva 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00



ANEXO 17. RENDIMIENTO EN KILOGRAMOS / PLANTA.

Fungicidas

Edad de

la planta

Repetición

Suma Media I II III

Trichoeb Vieja 39,36 55,96 0,00 95,32 31,77

Trichoeb Nueva 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00



SF Vieja 0,00 2,04 4,70 6,74 2,25

SF Nueva 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00



102

ANEXO 18. MANEJO FITOSANITARIO

Cuadro N. Manejo de enfermedades e insectos plaga de la mora de castilla (Rubus glaucus

Benth).

Peronospora

sp (Mildiu velloso)

Oidio sp (mildiu

polvoso)

Botrytis sp Marchitez Gusanos: Cutzo, Alambre al suelo

Ácaros Costos ha

CONTROL INIAP

Caldo Bordelex, 0,5%, Fosfanato de potasio 0,15% Azoxistrobina , Kocide 101 Proxanil 0,1%

Caldo Bordelex N 0,5%, Azufre 0,2%, Score 0,025%

Caldo Bordelex N 0,5%, Score 0,025% Mirage 0,1% Rovral0,1%

Podas, Caldo Bordelex 1%,2lt/plt Drench, Trichodermas 0,1% 2lt/plt Drench Beltanol 0,1% 2lt/plt, Drench Score 0,025%

Materia Orgánica 100% descompuesta Compost, Bioway, Dimetohato 0,1% Basudín 0,2% drench Orthene 0,1%

Caldo bordelez N 0,5%, Limo 0,15%, Acaribom 0,1%, Neem

2000 USD

RENDIMIENTO

27,2 TM

CONTROL ORGÁNICO

Caldo Bordelex, 0,5%, Fosfanato de potasio 0,15% Kocide 101 0,2%

Caldo Bordelex N 0,5%, Azufres 0,2%

Caldo Bordelex N Custom B5 0,15% Trichoderma 0,2%

Podas, Caldo Bordelex 1%, 2lt/plt Drench, Trichodermas 0,1% 2lt/plt, Drench

Bacillus thuringiensis 0,2% Neem Azadirachtina 0,2% Beauveria bassiana 0,2% Nemátodos entomopatógenos en compost

Caldo bordelez N 0,5%, Limbo 0,15%, Rotamix 0,15% Neem 0,2%

1800 USD

RENDIMIENTO

10 TM

PRÁCTICAS CULTURALES GENERALES

Control de malezas Limpieza material podado Desinfección de herramientas

Control de malezas Limpieza material podado Desinfección de herramientas

Recolección de frutos enfermos. Podas Distancias de plantación Desinfección de herramientas

Podas Desinfección de herramientas

Limpieza del área de goteo, MO 100% descompuesta.

Monitoreo permanente

Fuente: Martinez, A, Jácome, R, Ayala, G (2007).

103

ANEXO 19. MANEJO NUTRICIONAL

Cuadro N. Macro y micro elementos para corrección de deficiencias foliares y de suelo.

P CV D1 B2 D1 E E F

Antes

y/o

después

Podas

Crecimie

nto

vegetati

vo

Inicio de

floración

Plena

Floración

Inicia

fructificació

n

Desarrollo de

fruto

Inicio

cosecha

Plena

cosecha

Requeri

miento

de P

Requeri

miento

de N-P-K

Requeri

miento

de P-

Boro

Requerimie

nto de P-

Fe-Zn

Requerimient

o N fruto

Requerimiento

N-K-Ca

Requerimient

o de N-P-K-

Mg

Requerimient

o de Ca-K-N

ALTERNATIVAS DE MANEJO DE NUTRICIÓN

NIVEL DE FERTILIZACIÓN POR /Ha DE MACROELEMENTOS : N = 360Kg , P = 60 Kg, K = 300 Kg (AL SUELO) MICROELEMENTOS : En Quelatos De Boro, Hierro, Zinc, Calcio, Magnesio al 0,1% ( A LA HOJA)

MANEJO INIAP

NITROGENO Urea

52 gr/planta de Urea Cada dos meses/

52 gr/planta Urea

52 gr/planta Urea

52gr/planta Urea

52gr/planta Urea

52gr/planta Urea

52gr/planta Urea

FOSFORO Super Fosfato Triple

75 gr/planta de SFT cada 4 meses

75 Kg/planta de SFT

75 Kg/planta de SFT

MURIATO POTASIO

75 gr/planta Muriato K en desarrollo fruto

100gr/planta Sulpomag/2/veces/año

75 gr/planta Muriato Potasio

75 gr/planta Muriato

Microelementos Quelatos de B, Zn+Fe, Mg Ca.

Quelatos en cada Estado Fenológico Al Follaje

Quelato Boro 0,1% hinchamiento yema

Quelatos Fe+Zn 0,1%c/u amarre frutos

Quelatos Ca=0,1% desarrollo fruto

Quelatos Ca=0,1% enlongación fruto


MO Compost 1Kg/plta Bioway=

1Kg/planta

MO y/o Bioway Cada 6 meses

Bioway=1Kg/plt 1 kg MO/planta

Pachamama = 0,15% en Drench,2 ltr/plt


MANEJO ORGANICO

MO Compost 2Kg/plta

Bioway= 2 Kg/planta

MO y/o Bioway Cada 6 meses

Bioway=2Kg/plt * 2 kg MO/planta



Microelemento-Quelatos de B,Zn+Fe, Mg Ca.

Quelatos en cada Estado Fenológico Al Follaje


Quelatos Fe+Zn 0,1%c/u amarre frutos

Quelatos Ca=0,1% desarrollo fruto

Quelatos Ca=0,1% enlongación fruto


Fuente: Martinez, A, Jácome, R, Ayala, G (2007).

evaluaciÓn del efecto de la aplicaciÓn de...

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