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ESCUELA POLITÉCNICA NACIONAL
FACULTAD DE INGENIERÍA QUÍMICA Y AGROINDUSTRIA
EVALUACIÓN DE SANITIZANTES ALTERNATIVOS AL HIPOCLORITO DE SODIO EN LA CALIDAD DE LECHUGA DE
HOJA (Lactuca sativa L. var. Romana) DE IV GAMA EMPACADA CON DOS TIPOS DE EMPAQUE
PROYECTO PREVIO A LA OBTENCIÓN DEL TÍTULO DE INGENIERA AGROINDUSTRIAL
NATALIA BEATRIZ MOSCOSO RODAS [email protected]
DIRECTORA: ING. SILVIA AZUCENA VALENCIA CHAMORRO, PhD. [email protected]
Quito, Octubre 2015
© Escuela Politécnica Nacional 2015 Reservados todos los derechos de reproducción
DECLARACIÓN
Yo, Natalia Beatriz Moscoso Rodas declaro que el trabajo aquí descrito es de mi autoría; que no ha sido previamente presentado para ningún grado o calificación profesional; y, que he consultado las referencias bibliográficas que se incluyen en este documento. La Escuela Politécnica Nacional puede hacer uso de los derechos correspondientes a este trabajo, según lo establecido por la Ley de Propiedad Intelectual, por su Reglamento y por la normativa institucional vigente.
__________________________ Natalia Beatriz Moscoso Rodas
CERTIFICACIÓN
Certifico que el presente trabajo fue desarrollado por Natalia Beatriz Moscoso Rodas bajo mi supervisión.
_______________________________ Ing. Silvia Valencia Chamorro, PhD.
DIRECTORA DE PROYECTO
AUSPICIO
La presente investigación se realizó con el auspicio financiero del proyecto semilla
PIS 13-08 “Aplicación de tratamientos poscosecha para extender la vida útil de
hortalizas de IV gama producidas artesanalmente”, que se desarrolló en el
Departamento de Ciencia de alimentos de Biotecnología (DECAB)
AGRADECIMIENTOS
Quiero agradecer a mis padres Dolores y Fernando a quienes les debo todo, por su esfuerzo diario, por su paciencia y por su apoyo enorme. A mis hermanas Maru y Li por su confianza, apoyo y ejemplo. A Andrés por ser mi soporte y la locura de mi vida. A Sintya y Anita, por sus oportunos consejos, por su amistad y motivación a lo largo de todos estos años juntas. A Ruth, Jess, Carlos, Darío, Cristina, Wladimir, Anita y Eve por su tiempo y su ayuda valiosa en el desarrollo de este proyecto. Al Ing. Victor Sevilla y a Janeth Gonza de la empresa “La Huerta” por su colaboración. Al Ing. Pablo Pólit por su tiempo y sus conocimientos. A todo el personal del DECAB por su ayuda. Y en especial quiero agradecer a la Dra. Silvia Valencia Chamorro por darme la oportunidad de trabajar en este proyecto, por brindarme sus conocimientos, su tiempo, su dedicación e inmensa paciencia.
Para Dolores, Fernando,
Maru, Li, Abi y
Andrés
Naty
i
ÍNDICE DE CONTENIDOS
PÁGINA
GLOSARIO viii RESUMEN ix
INTRODUCCIÓN xi
1. REVISIÓN BIBLIOGRÁFICA 1
1.1. PRODUCTOS DE IV GAMA 1
1.1.1. Cambios metabólicos 1
1.1.1.1. Respiración 2
1.1.1.2. Producción de etileno 3
1.1.1.3. Pardeamiento enzimático 4
1.1.1.4. Pérdida de agua 5
1.1.2. Microorganismos en productos de IV gama 6
1.1.3. Parámetros de calidad en productos IV gama 8
1.1.3.1. Apariencia visual 8
1.1.3.2. Textura 8
1.1.3.3. Aroma 8
1.1.3.4. Calidad nutricional 9
1.2. MÉTODOS PARA EXTENDER LA VIDA ÚTIL DE PRODUCTOS DE IV GAMA 9
1.2.1. Métodos Químicos 9
1.2.1.1. Hipoclorito de sodio 9
1.2.1.2. Dióxido de cloro 10
1.2.1.3. Clorito de sodio acidificado 11
1.2.1.4. Ácidos orgánicos 12
1.2.1.5. Peróxido de hidrógeno 13
1.2.1.6. Sales de calcio 13
1.2.1.7. Ozono 14
1.2.1.8. Agua electrolízada 15
1.2.2. Métodos Físicos 15
1.2.2.1. Procesos térmicos 16
1.2.2.2. Atmósferas modificadas 16
1.2.2.3. Irradiación 17
1.2.2.4. Radiación Ultravioleta 18
1.2.2.5. Ultrasonido 19
1.2.2.6. Empaques activos e inteligentes 20
1.2.2.7. Recubrimientos comestibles 21
1.3. ELABORACIÓN DE VERDURAS DE HOJA DE IV GAMA 23
1.3.1. Lechuga (Lactuca sativa L.) 23
1.3.2. Procesamiento de productos de IV gama 25
1.3.2.1. Selección del cultivo 25
1.3.2.2. Cosecha 26
1.3.2.3. Lavado 26
1.3.2.4. Pelado 26
1.3.2.5. Corte 26
ii
1.3.2.6. Tratamiento sanitizante 27
1.3.2.7. Escurrido 27
1.3.2.8. Empaque 27
1.3.2.9. Almacenamiento 28
2. PARTE EXPERIMENTAL 29
2.1. DETERMINACIÓN DE LAS CARACTERÍSTICAS FÍSICAS, QUÍMICAS Y MICROBIOLÓGICAS
DE LA MATERIA PRIMA 29
2.1.1. Materia prima 29
2.1.2. Caracterización física 29
2.1.2.1. Inspección visual de la materia prima 30
2.1.2.2. Peso 30
2.1.2.3. Longitud 30
2.1.2.4. Diámetro 31
2.1.2.5. Color 31
2.1.3. Caracterización química 31
2.1.3.1. Medición de pH 31
2.1.3.2. Medida de acidez titulable 31
2.1.4. Caracterización microbiológica 32
2.1.5. Análisis sensorial 33
2.2. ESTUDIO DEL EFECTO DE DOS SANITIZANTES NO CONVENCIONALES EN LA CALIDAD
DE LECHUGA DE HOJA DE IV GAMA 33
2.2.1. Procesamiento para elaboración de lechuga de hoja de IV gama 33
2.2.2. Sanitizantes no convencionales en la calidad de lechuga de hoja de IV gama 35
2.2.3. Caracterización física 36
2.2.3.1. Pérdida de peso 36
2.2.3.2. Evaluación de la calidad visual 36
2.2.3.3. Color 37
2.2.4. Caracterización química 37
2.2.5. Análisis microbiológicos y sensoriales 37
2.2.6. Determinación de CO2 en el interior de los empaques 38
2.2.6.1. Análisis estadístico 38
2.3. ESTUDIO DEL EFECTO DE LA APLICACIÓN DE HIPOCLORITO DE SODIO Y UN
SANITIZANTE ALTERNATIVO EN LA CALIDAD DE LECHUGA DE HOJA DE IV GAMA
EMPACADA 39
2.4. ESTUDIO DE LA FISIOLOGÍA POSCOSECHA DE LA LECHUGA DE HOJA DE IV GAMA 40
2.5. ANÁLISIS ECONÓMICO 41
3. RESULTADOS Y DISCUSIÓN 43
3.1. CARACTERÍSTICAS FÍSICAS, QUÍMICAS Y MICROBIOLÓGICAS DE LA MATERIA PRIMA
43
3.1.1. Caracterización física 43
3.1.2. Inspección visual 44
3.1.3. Caracterización química 44
3.1.4. Caracterización microbiológica 45
iii
3.1.5. Análisis sensorial 46
3.2. EFECTO DE DOS SANITIZANTES NO CONVENCIONALES EN LA CALIDAD DE LECHUGA
VAR. ROMANA DE IV GAMA 47
3.2.1. Pérdida de peso 47
3.2.2. Evaluación de la calidad visual de lechuga var. romana de IV gama 48
3.2.3. Color 50
3.2.4. pH y acidez titulable 51
3.2.5. Análisis microbiológico de lechuga var. romana de IV gama 54
3.2.6. Analisis sensorial de lechuga var. romana de IV gama 57
3.2.7. Concentración de CO2 en el interior de los empaques 60
3.3. EFECTO DE LA APLICACIÓN DE HIPOCLORITO DE SODIO Y UN SANITIZANTE NO
CONVENCIONAL EN LA CALIDAD DE LECHUGA DE HOJA DE IV GAMA EMPACADA
CON DOS TIPOS DE EMPAQUE 62
3.3.1. Pérdida de peso 62
3.3.2. Evaluación del índice de la calidad visual 65
3.3.3. Color 67
3.3.4. pH y acidez titulable 68
3.3.5. Análisis microbiológico 72
3.3.6. Análisis sensorial 75
3.3.7. Concentración de CO2 en el interior de los empaques 77
3.4. ESTUDIO DE LA FISIOLOGÍA POSCOSECHA DE LA LECHUGA VAR. ROMANA DE IV
GAMA 80
3.5. ANÁLISIS ECONÓMICO 83
3.5.1. Estimación de costos de implementación del procesamiento de LR de IV gama 83
3.5.2. Flujo de caja e índices financieros del proyecto 85
4. CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES 91
4.1. CONCLUSIONES 91
4.2. RECOMENDACIONES 93
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS 94
ANEXOS 108
iv
ÍNDICE DE TABLAS
PÁGINA
Tabla 1.1. Permeabilidad de polímeros empleados en alimentos 17
Tabla 1.2. Composición de 100 g de lechuga var. romana 24
Tabla 2.1. Tratamientos del primer ensayo 35
Tabla 2.2. Tratamientos del ensayo final 39
Tabla 3.1. Caracterización física, química, microbiológica y sensorial de la materia prima 45
Tabla 3.2. Índice de evaluación de la calidad visual de Lechuga (Lactuca sativa) var. romana de IV gama almacenada hasta los 10 días a 4 °C y 90 % HR. 49
Tabla 3.3. Evaluación de la calidad visual para la LR de IV gama. 50
Tabla 3.4. Resultados del análisis sensorial de LR de IV gama sumergida en dos sanitizantes no convencionales. 59
Tabla 3.5. Índice de evaluación de la calidad visual de Lechuga (Lactuca sativa
L) var. romana de IV gama almacenada hasta los 10 días a 4 °C y 90 % HR. 66
Tabla 3.6. Índice de la calidad visual de la LR de IV gama hasta los 10 días de almacenamiento a 4 ± 1 °C y 90 % HR. 66
Tabla 3.7. Acidez titulable de la LR de IV gama almacenada hasta 10 días a 4 °C y 90 %HR en g ácido cítrico/g lechuga de IV gama 71
Tabla 3.8. Resultados del análisis sensorial de LR de IV gama almacenada a 4 ± 1°C y 90 % HR 76
Tabla 3.9. Materia prima, insumos, suministros, mano de obra, equipos 86
Tabla 3.10. Estado de pérdidas y ganancias del proyecto de elaboración de LR de IV gama 88
Tabla 3.11. Flujo de caja neto del proyecto de elaboración de LR de IV gama 89
Tabla AIII.1. Atributos y escala de valoración para evaluar la calidad visual de LCG 112
Tabla AIII.2. Rangos de calificación y clasificación final para la valoración de la calidad visual de la LCG 112
Tabla AIV.1. Condiciones de trabajo del equipo analizador de CO2-O2 114
Tabla VI.1.Costos y área total del terreno y construcciones para la producción de LR de IV gama 118
Tabla VI.2.Costos adicionales de transporte y equipamiento para la elaboración de LR de IV gama 118
Tabla VI.3.Características de la cámara de frío para el procesamiento de LR de IV gama 119
Tabla VI.4.Depreciación de instalaciones y los equipos para la producción de LR de IV gama 120
Tabla VI.5.Tabla de amortización del préstamo para el financiamiento del proyecto 120
Tabla VI.6.Capital de trabajo para cada año 121
v
ÍNDICE DE FIGURAS
PÁGINA
Figura 1.1. Vías alternativas para el pardeamiento enzimático en frutos y vegetales 4
Figura 2.1. Diagrama de bloques del procesamiento mínimo de lechuga IV gama variedad Romana. 34
Figura 3.1. Pérdida de peso registrada en la LR de IV gama sumergida en agua destilada (C), 0,5 % ác. cítrico + 0,5 % ác. ascórbico (MZ1), 1 % ác. cítrico + 1 % ác. ascórbico (MZ2), 200 ppm CSA (CSA1) y 300 ppm CSA (CSA2), almacenada hasta 10 días a 4 °C y 90 % de HR. Para cada día, las columnas de cada tratamiento que tienen letras diferentes presentan diferencias estadísticamente significativas por la prueba de Fisher (LSD) (p<0,05) aplicada después del ANOVA 48
Figura 3.2. Valores de pH de LR de IV gama sumergida en sumergida en agua destilada (C), 0,5 % ác. cítrico + 0,5 % ác. ascórbico (MZ1), 1 % ác. cítrico + 1 % ác. ascórbico (MZ2), 200 ppm CSA (CSA1) y 300 ppm CSA (CSA2), almacenada hasta 10 días a 4 °C y 90 % HR. Para cada día, las columnas de cada tratamiento que tienen letras diferentes presentan diferencias estadísticamente significativas por la prueba de Fisher (LSD) (p<0,05) aplicada después del ANOVA 52
Figura 3.3. Valores de AT de LR de IV gama sumergida en agua destilada (C), 0,5 % ác. cítrico + 0,5 % ác. ascórbico (MZ1), 1 % ác. cítrico + 1 % ác. ascórbico (MZ2), 200 ppm CSA (CSA1) y 300 ppm CSA (CSA2), almacenada hasta 10 días a 4 °C y 90 % HR. Para cada día, las columnas de cada tratamiento que tienen letras diferentes presentan diferencias estadísticamente significativas por la prueba de Fisher (LSD) (p<0,05) aplicada después del ANOVA 54
Figura 3.4. Resultados del contaje microbiológico de aerobios totales (A), coliformes totales (B) y mohos y levaduras (C) en LR de IV sumergida en agua destilada (C), 0,5 % ác. cítrico + 0,5 % ác. ascórbico (MZ1), 1 % ác. cítrico + 1 % ác. ascórbico (MZ2), 200 ppm CSA (CSA1) y 300 ppm CSA (CSA2), almacenada hasta 10 días a 4 °C y 90 % HR. 56
Figura 3.5. Concentración de CO2 en el interior de los empaques de LR de IV gama sumergida en agua destilada (C), 0,5 % ác. cítrico + 0,5 % ác. ascórbico (MZ1), 1 % ác. cítrico + 1 % ác. ascórbico (MZ2), 200 ppm CSA (CSA1) y 300 ppm CSA (CSA2), almacenada hasta 10 días a 4 °C y 90 % HR. 60
Figura 3.6. Pérdida de peso registrada en LR de IV gama sumergida en tratamientos sanitizantes C: agua destilada, H: 150 ppm NaClO, A: 300 ppm CSA, empacada con P: polipropileno, E: polietileno de baja densidad y almacenada hasta 10 días a 4 °C y 90 % HR. Para cada día, las columnas de cada tratamiento que tienen letras diferentes presentan diferencias estadísticamente significativas por la prueba de Fisher (LSD) (p<0,05) aplicada después del ANOVA 63
Figura 3.7. Gráficos de interacciones e intervalos LSD de las variables: sanitizante (A) y empaque (B), para la pérdida de peso en la LR de IV gama a los 5 días de almacenamiento 64
Figura 3.8. Valores de pH obtenidos en la LR de IV gama sumergida en agua destilada (C), 150 ppm NaClO (H), 300 ppm CSA (A), empacada en PEBD (E) y PP (P), almacenada hasta 10 días a 4 °C y 90 %HR. Para cada día, las columnas de cada tratamiento que tienen letras diferentes presentan diferencias estadísticamente significativas por la prueba de Fisher (LSD) (p<0,05) aplicada después del ANOVA 69
vi
Figura 3.9. Gráficos de interacción de las variables sanitizante (A) y empaque (B) para el pH de la LR de IV gama en la salida 1 70
Figura 3.10. Gráficos de interacción de las variables sanitizante (A) y empaque (B) para el pH de la LR de IV gama en la salida 2 71
Figura 3.11. Contaje microbiológico de aerobios totales (X), coliformes totales (Y) y mohos y levaduras (Z) en LR de IV gama sumergida en agua destilada (C), 150 ppm NaClO (H), 300 ppm CSA (A), empacada en PEBD (E) y PP (P), almacenada a 4 ± 1 °C y 90 % HR. 73
Figura 3.12. Concentración de CO2 en el interior de los empaques de LR de IV gama sumergida en agua destilada (C), 150 ppm NaClO (H), 300 ppm CSA (A), empacada en PEBD (E) y PP (P), almacenada hasta 10 días a 4 °C y 90 %HR 78
Figura 3.13. Gráfico de medias e intervalos LSD para las variables empaque (A) y sanitizante (B) para la concentración de CO2 en el interior de los empaques de LR de IV gama a los 5 días de almacenamiento. 79
Figura 3.14. Gráfico de medias e intervalos LSD de las variables sanitizante (a) y empaque (b) para la concentración de CO2 en el interior de los empaques de LR de IV gama a los 10 días de almacenamiento 80
Figura 3.15. Tasa de respiración de la LR entera y de IV gama almacenada por 14 días 81
Figura 3.16. Diagrama de bloques del procesamiento de LR de IV gama sumergida en CSA y empacada con PP 84
Figura 3.17. Punto de equilibrio del proyecto de elaboración de LR de IV gama 90
Figura AI.1. Cultivo a cielo abierto de lechuga var. romana y col en las instalaciones de la empresa “La Huerta” 109
Figura AI.2. Cosecha de lechuga var. romana 109
Figura AIV.1. Septum colocado en las bolsas de LCG 113
Figura AIV.2. Extracción de muestra para análisis de CO2 en el interior de los empaques de LCG 113
Figura AIV.3. Analizador rápido de CO2-O2 Post Harvest Research, modelo CG-1000, USA 114
Figura AV.1.Tablero de mezcla de gases y sus componentes. A: Sistema de manguera de conexión para transporte de gases. D: Válvula de cobre para el paso de aire desde el compresor hacia el tablero de mezcla. E: perillas de regulación (O2, CO2, N2 y CH4). F: medidor de flujo 115
Figura AV.2. Sistema dinámico de respiración continua empleado(a) y obtención de una muestra de gases a la entrada de una jarra de respiración con lechuga entera (b). A: Microválvulas de regulación de flujo, B: mangueras de conexión, C: tablero de gases, D: humidificadores y E: jarras de respiración con LR. X: jeringa de 1 mL, Y: manguera de salida de la jarra, Z: manguera de entrada de la jarra 117
vii
INDICE DE ANEXOS
PÁGINA
ANEXO I. Cultivo de la empresa “La Huerta” y cosecha de lechuga var. Romana 109 ANEXO II. Formato de análisis sensorial: prueba descriptiva de escalas no estructuradas 110 ANEXO III. Escala para el análisis de la calidad visual de LCG 111 ANEXO IV. Concentración de CO2 en el interior de los empaques 113 ANEXO V. Fisiología poscosecha de la materia prima y de la LR de IV gama 115 ANEXO VI. Detalle de construcciones y costos para el procesamiento de LR de IV gama 118
viii
GLOSARIO
Acidulante: Es una sustancia o aditivo alimentario que otorga y/o aumenta la
acidez de un alimento con el fin de mejorar el sabor, evitar el crecimiento
microbiano y alargar el tiempo de vida útil (Farré, Barberá y Lagarda, 2010, p.
437).
Fenoles: Son compuestos orgánicos que se crean a partir de la reacción de
benceno con propeno y se encuentran en algunos productos hortícolas. En
contacto con el oxígeno reaccionan y dan como resultado sustancias pardas
responsables del oscurecimiento de algunos frutos y vegetales (Daintith, 2004,
p.236).
Higroscópica: Sustancia que atrae y fija la humedad de la atmósfera (Daintith,
2004, p.149).
Madurez fisiológica: Es el estado de desarrollo de un fruto o de una hortaliza en
el que son cosechados, en esta etapa se presenta el crecimiento máximo y el
fruto presenta las características adecuadas para continuar el desarrollo fuera de
la planta (FAO, 2015, p.3).
Madurez comercial: Es el estado de desarrollo de un fruto o de una hortaliza en
el que se presentan los requerimientos del mercado para su consumo, como
brotes (apio, soya, espárragos, lechuga, entre otros), frutos parcialmente
desarrollados (pepino, maíz dulce, vainitas, entre otros), frutos completamente
desarrollados (manzana, pera, cítricos, entre otros) o semillas (frejol seco) (FAO,
2015, p. 3).
Mutagénesis: modificación o mutación del material genético (ADN) que es
estable y transmisible a las células hijas (Bello y López, 2001, p. 127).
ix
RESUMEN
Los alimentos de IV gama en el Ecuador se encuentra en aumento, generalmente
estos productos son desinfectados con hipoclorito de sodio (NaClO), cuyo uso
actualmente es cuestionado. Por otro lado, la lechuga (Lactuca sativa L.) es una
de las hortalizas más consumidas y la variedad romana contiene más vitaminas y
minerales. Esta investigación busca evaluar la aplicación de sanitizantes
alternativos al NaClO en la calidad de la lechuga (Lactuca sativa L.) var. romana
(LR) de IV gama empacada con dos tipos de empaque.
En el primer ensayo, se aplicaron: una mezcla de ácidos en dos concentraciones
(0,5 % ác. cítrico + 0,5 % ác. ascórbico y 1 % ác. cítrico + 1 % ác. ascórbico),
clorito de sodio acidificado (CSA) en dos concentraciones (200 ppm y 300 ppm) y
agua destilada (control).
Se realizaron análisis físicos, químicos, microbiológicos y sensoriales, se evaluó
la calidad visual y se determinó la concentración de CO2 en el interior de los
empaques a los 0, 5 y 10 días de almacenamiento a 4 ± 1 °C y 90 % humedad
relativa (HR).
El tratamiento con 300 ppm de CSA con 2 min de inmersión (CSA2) presentó: la
mejor calidad visual, mejor apariencia y menores contajes de coliformes (8,5x103
UFC/g) y de aerobios totales (1x104 UFC/g) a los 5 días de almacenamiento.
En el segundo ensayo, el tratamiento CSA2 se comparó con: una solución de
NaClO (150 ppm con 15 min de inmersión) y con el control. Se usaron
polipropileno (PP) y polietileno de baja densidad (PEBD) como empaque.
El tratamiento con CSA y PP, registró la menor pérdida de peso (0,75%), el valor
más alto de acidez titulable (AT) (0,52 g de ácido cítrico/ g de LR de IV gama), su
pH (6,42) no varío y no se registraron sabores extraños, a los 5 días de
almacenamiento
x
Las tasas de respiración obtenidas se encontraron entre 6,18 y 8,93 mg CO2/kg h
y entre 14,44 y 16,38 mg CO2/kg h para la lechuga entera y de IV gama,
respectivamente.
El análisis económico mostró que el proyecto no es viable. El VAN obtenido fue
igual a 2,08 dólares, la TIR igual a 8,21 %, el punto de equilibrio fue superior a la
producción total en 3 510 unidades.
El CSA puede ser empleado como reemplazo del NaClO en la LR de IV gama con
un tiempo de comercialización de hasta 5 días.
xi
INTRODUCCIÓN
La lechuga (Lactuca sativa L.) es una hortaliza que generalmente se consume en
ensaladas y tiene gran importancia a nivel mundial. Esta hortaliza se encuentra
dentro de las especies de mayor consumo y registra un crecimiento de alrededor
de 4,1 % anual a nivel mundial (USDA y NASS, 2014, p. 34). Dentro de las
lechugas de hoja, la lechuga var. romana (LR) es usualmente demandada por los
consumidores debido a su textura, su sabor, su aroma y apariencia característica.
El consumo de LR se encuentra en aumento debido a que contiene compuestos
fenólicos y a diferencia de las otras variedades (como red oak leaf, lollo rosso y
iceberg) es una fuente de vitamina A, vitamina C, tiamina, niacina, calcio y fósforo
(Dishpande y Salunkhe, 2003, p. 511).
El cultivo de lechuga en el Ecuador ocupa alrededor de 1 278 ha con 7,9 kg/ha de
rendimiento promedio. Las provincias con mayor producción en el país son
Cotopaxi (481 ha), Tungurahua (325 ha) y Carchi (96 ha). Donde la lechuga criolla
es la más cultivada, seguida por la lechuga de hoja (INEC, 2010).
A nivel mundial el consumo de productos de IV gama (PCG), ha aumentado
debido a que cada vez las personas tienen menos tiempo para la preparación de
alimentos (Artés-Hernandez, Aguayo, Gómez, y Artés, 2009, p. 52). Un ejemplo
de esto, se dio en Estados Unidos, en donde en 2007 se registraron ventas de
15,5 mil millones de dólares (James y Ngarmsak, 2010, p. 16), mientras que entre
el 2012 y el 2013 las ventas al por menor de vegetales de IV gama aumentaron
en alrededor de 85 millones (Cook, 2012, p 2).
Los PCG son alimentos hortofrutícolas sometidos a un tratamiento mínimo
(lavado, corte, desinfección y empaque), que conservan su calidad nutricional y
organoléptica. Pero durante su procesamiento, se pueden producir lesiones en las
membranas, pérdida de agua e incremento de la tasa de respiración. Todo esto,
acelera la senescencia y afecta la calidad (sabor, aroma, textura y apariencia) de
estos productos (Cantos, Espín, y Tomás-Barberán, 2001, p. 322).
Generalmente los PCG se someten a desinfección, donde el sanitizante más
empleado al momento es el hipoclorito de sodio (NaClO). Las ventajas que posee
este sanitizante son: su bajo costo, la fácil obtención del producto, fácil
dosificación y uso, amplia y rápida acción contra varios microorganismos y es
xii
incoloro. Sin embargo, en algunos países como Alemania, Bélgica, Suiza y
Holanda, su uso en PCG está actualmente prohibido (Ahmed, Martín-Diana, Rico,
Barry-Ryan, Frías y Henehan, 2012, p. 3), debido a: la inestabilidad que presenta
durante su almacenamiento, es corrosivo, es tóxico en altos niveles (ICMSF,
2005, p. 293) y en solución, se forman compuestos organoclorados y
trihalometanos como cloroformo y bromoformo. Estos compuestos son
potencialmente cancerígenos y representan un peligro para la seguridad de los
trabajadores y para el consumidor final (Hoorfar, 2014, p. 77).
En los últimos años se está estudiando la aplicación de sanitizantes alternativos al
NaClO en los PCG, que permitan mejorar su vida útil, disminuir su carga
microbiana y mantener sus características de calidad. Entre los sanitizantes
aprobados por la FDA para la aplicación en alimentos, se encuentran el clorito de
sodio acidificado con ácido cítrico (CSA) y ácidos orgánicos solos o en mezcla.
En los supermercados del Ecuador se encuentra una oferta variada de PCG como
vegetales frescos cortados, mezclas de hortalizas para ensaladas y para sopas.
Los vegetales que se comercializan en estas presentaciones son lechuga, col,
zanahoria, zapallo, sambo, brócoli y apio, entre otros. Sin embargo en la
actualidad no existe la comercialización de LR de IV gama sola.
En esta investigación se estudió el efecto de dos sanitizantes no convencionales
en la calidad de LR de IV gama empacada y se seleccionó el tratamiento que
presente las mejores características, a fin de comparar su efecto y el del NaClO
en la calidad de la lechuga de IV gama empacada con dos tipos de empaque.
Finalmente se busca estudiar la fisiología poscosecha de la LR entera y de IV
gama. Además de realizar el análisis económico de la implementación del
tratamiento poscosecha que presentó los mejores resultados.
1
1. REVISIÓN BIBLIOGRÁFICA
1.1. PRODUCTOS DE IV GAMA
Los productos de IV gama (PCG) han sido desarrollados por la industria
alimenticia para satisfacer las demandas de servicios de catering y restaurantes
de comida rápida desde 1970 (Garrett, 2002, p.13) y por la reducción del tiempo
de preparación de alimentos como consecuencia de la integración de la mujer en
el campo laboral desde 1971 (Kader, 2002b, p. 11).
En el 2010 el mercado de estos alimentos presentó una tasa de crecimiento del
14 % y se vendieron alrededor de 4 millones de toneladas. Estados Unidos y el
Reino Unido se encuentran entre los mayores consumidores, mientras que
Francia es el mayor productor (Linde, 2010, p. 9).
Se considera un PCG a cualquier vegetal o fruta que ha sido lavada, pelada,
troceada o rallada, desinfectada, empacada y refrigerada para obtener un
producto totalmente comestible (solo o en mezcla) (Rojas-Graü, Garner, y Martín-
Belloso, 2011, p. 1).
Los PCG tienen que cumplir las siguientes características: mantener las
propiedades que presentan los frutos y vegetales enteros, presentar calidad
uniforme, reducir el tiempo de elaboración de alimentos, facilitar el consumo,
reducir el espacio de almacenamiento y los desechos (Gil y Ana, 2012, p. 105).
Su conservación, transporte y comercialización se realiza en refrigeración (2-5 °C)
y su tiempo de consumo oscila entre 7 y 14 días (Linde, 2010, p. 9) en función del
producto y la técnica de conservación aplicada.
1.1.1. CAMBIOS METABÓLICOS
En la producción de PCG, la materia prima es sometida a varias operaciones
entre las cuales están: lavado, pelado, deshuesado, troceado y desinfección,
2
estas operaciones varían en función de la materia prima y el producto a obtener, y
provocan cambios metabólicos en los frutos y las hortalizas (Goulao, Almeida, y
Oliveira, 2010, p. 98).
1.1.1.1. Respiración
La respiración es un proceso bioquímico que se desarrolla a nivel celular y según
la concentración de oxígeno (O2) en el ambiente que rodea al producto, esta
puede ser anaerobia o aerobia (Barreiro y Sandoval B., 2006, p. 21).
La respiración aerobia se realiza en presencia de O2 y tiene como resultado la
conversión de nutrientes como carbohidratos proteínas y grasas en dióxido de
carbono (CO2), vapor de agua, energía y otros componentes en menor
proporción, tal y como se observa en la ecuación química (1.1) (Kader, 2002a, p.
39; Barreiro y Sandoval B., 2006, p. 21).
(Ecuación 1.1)
Por otro lado, la respiración anaerobia se realiza en concentraciones muy bajas o
en ausencia de O2 y tiene como resultado la formación de alcoholes, aldehídos y
cetonas que afectan la calidad organoléptica de los productos hortofrutícolas
(Barreiro y Sandoval B., 2006, p. 21).
En los productos hortícolas, el CO2 producido se disuelve a nivel celular y es
desprendido al exterior, mientras el agua formada se transforma en agua celular.
Parte de la energía producida en la respiración se transforma en calor de
respiración lo que aumenta su tasa de respiración y consecuentemente acelera su
senescencia y disminuye la calidad organoléptica (Barreiro y Sandoval B., 2006,
p. 21).
Los frutos y los vegetales se pueden clasificar según la tasa de respiración que
presenten. Ésta puede ser: muy baja como la mayoría de las hortalizas (< 5 mg
3
CO2/kgh), baja (de 5 a 10 mg CO2/kgh), moderada (de 10 a 20 mg CO2/kgh), alta
(de 20 a 40 mg CO2/kgh), muy alta (de 40 a 60 mg CO2/kgh) y extremadamente
alta (> 60 mg CO2/kgh) (Kader, 2002a, p. 40).
El CO2 producido por los frutos y las hortalizas se encuentra en la atmósfera y el
exceso afecta su calidad. En el caso de la lechuga de IV gama (LCG) las
concentraciones altas de CO2 causan oscurecimiento de los bordes de las hojas
(Adams, 2010, p. 27).
En el procesamiento de los PCG las operaciones unitarias a las que se somete la
materia prima como pelado y troceado provocan un aumento de la tasa de
respiración (Baldwin y Bai, 2011, p. 88). Martínez y Chiesa (2005) registraron una
tasa de respiración entre 6 y 8 mLCO2/kgh para lechuga iceberg entera y
registraron una tasa de respiración entre 10 a 16 mL CO2/kgh a 5 °C para lechuga
iceberg de IV gama (p. 357). El aumento de la tasa de respiración modifica las
propiedades organolépticas de los PCG y disminuye su vida útil (Kader, 2002a, p.
22).
1.1.1.2. Producción de etileno
El etileno es una fitohormona y se la considera como un regulador natural del
crecimiento vegetal. Su producción se realiza en las etapas de maduración está
relacionada con: la degradación de carotenoides y antocianinas, la pérdida de la
clorofila (cambio de coloración), el ablandamiento en los frutos (Baldwin y Bai,
2011, p. 92), el aumento de la tasa de respiración, la pérdida de las
características organolépticas de los frutos y acelera la senescencia (Kalia y
Gupta, 2006, p. 17).
Las tasas de producción de etileno para productos frescos disminuye cuando se
mantiene el producto en refrigeración y con niveles de O2 bajos (< 8 %) y niveles
de altos de CO2 (>2 %) (Kader, 2002a, p. 40).
4
El procesamiento de los PCG y la manipulación adicional de la materia prima,
incrementa la producción de etileno de los frutos y vegetales IV gama (Baldwin y
Bai, 2011, p. 87). En LCG los daños presentados por la exposición al etileno en
refrigeración se presentan como punteado marrón (russet spotting) en la
nervadura central (Adams, 2010, p. 27).
1.1.1.3. Pardeamiento enzimático
El pardeamiento enzimático en frutos y vegetales es el resultado de la reacción de
oxidación de compuestos fenólicos que es catalizada inicialmente por la enzima
fenilalanina amonio liasa (PAL) y por la enzima polifenoloxidasa (PPO) o por la
enzima peroxidasa (POD). A continuación los fenoles oxidados se polimerizan y
dan lugar a las melaninas (Carou, Izquierdo, y Veciana, 1999, p. 453). En la
Figura 1.1 se observa las vías alternativas para el pardeamiento enzimático en
frutos y vegetales.
Figura 1.1. Vías alternativas para el pardeamiento enzimático en frutos y vegetales (Adams, 2010, p. 21)
Los cuatro compuestos que se acumulan en la lechuga y se asocian con la
producción de compuestos fenólicos y el pardeamiento son: la PAL como
catalizadora, el ácido cafeico producido por la fenilalanina, ácido cafeol tartárico y
el ácido dicafeol tartárico (Saltveit, 2000, p. 62).
5
Las reacciones de naturaleza enzimática, como las reacciones de pardeamiento
pueden controlarse o evitarse, mediante la aplicación de tratamientos que
inactiven o desnaturalicen a las enzimas (Barreiro y Sandoval B., 2006, p. 35).
Entre los tratamientos a aplicar están: escaldado o shock térmico, aplicar
compuestos azufrados (sulfitos, bisulfitos o metabisulfitos), reducir el pH
(soluciones de ácido cítrico, ascórbico, fosfórico, entre otros), eliminar el O2
(empaque al vacío, atmósferas modificadas, uso de N2, uso de salmuera o
almíbar), y emplear temperaturas de refrigeración (Barreiro y Sandoval B., 2006,
p. 35). La aplicación de 1,5 % O2 con 11 % CO2 en lechuga reduce la actividad de
PAL al igual que el contenido de los compuestos fenólicos solubles en
comparación con lechuga expuesta al aire con 11 % CO2 a 5 °C (Ayala-Zavala y
González-Aguilar, 2011, p. 242).
1.1.1.4. Pérdida de agua
Los frutos y vegetales poseen una cubierta o cutícula protectora que se encarga
de regular la pérdida de agua. Ésta cubierta posee diferente grosor, estructura y
composición química según el fruto u hortaliza y el estado de desarrollo del
mismo. El agua de los productos hortofrutícolas se pierde por transpiración, donde
la liberación de vapor de agua a la atmósfera es continua (Kader, 2002a, p. 41).
Los factores que aceleran la pérdida de agua pueden ser internos (características
morfológicas, anatómicas, daños superficiales, estado de madurez, especie y
cultivar) y externos o ambientales (temperatura y humedad relativa (HR)) (Kader,
2002a, p. 41).
La pérdida de agua causa alteración directa e indirecta de las características
nutricionales y organolépticas (ablandamiento, flacidez, disminución de jugosidad
y crocancia, marchitamiento, entre otras) y disminuye el peso (Kader y Barrett,
2004, p. 14). Agüero, Ponce, Moreira y Roura (2011) registraron que la pérdida de
peso en lechuga entera fue de 4 a 5 % almacenada a los 20 días a 1 ± 1°C con
6
HR de 95 a 98 % y de 18 % en las mismas condiciones ambientales, almacenada
por 5 días (p. 126).
La disminución de la pérdida de agua se puede lograr con el uso de empaques o
recubrimientos, con la aplicación de HR alta y controlando la circulación del aire
(Kader, 2002c, p. 315).
1.1.2. MICROORGANISMOS EN PRODUCTOS DE IV GAMA
Los PCG son particularmente sensibles al ataque microbiano debido a que las
operaciones a las que se les somete en el procesamiento (pelado, corte y
troceado) causan daño severo a los tejidos y a la estructura celular de los
productos hortícolas, provoca pérdidas de nutrientes y fluidos celulares, lo que
lleva a un incremento de la contaminación microbiana. Se recomienda el
almacenamiento de PCG en atmósferas modificadas o controladas y en
refrigeración para reducir la proliferación de microorganismos (Heard, 2002, p.
196)
Los frutos y los vegetales están compuestos por nutrientes (azúcares, ácidos,
almidón, fibra, etc.), presentan actividades de agua (aw) altas iguales o mayores a
0,90 y presentan valores de pH en un rango amplio de 2 a 6 (Kalia y Gupta, 2006,
p. 21). Por otro lado, los microorganismos presentan un crecimiento óptimo en
características similares, en amplios rangos de pH y aw mayores o iguales a 0,98
(Montville y Matthews, 2008, pp. 20-23), estas características permiten el
crecimiento de microorganismos patógenos en PCG, principalmente hongos y
levaduras y en menor cantidad bacterias.
La lechuga presenta valores de pH entre 6,58 a 7,33 y aw igual a 0,985 (Vásquez,
2011, p. 12).
Los microorganismos presentes en los PCG provienen del contacto de la materia
prima con el suelo o con aguas residuales que pueden poseer patógenos como la
7
Escherichia coli (E.coli) O157:H7 o Salmonella spp. De igual forma la presencia
de microorganismos es el resultado de la contaminación cruzada en el
procesamiento, por contacto humano directo y con materiales infectados.
En la actualidad únicamente se ha registrado una regulación común en la Unión
Europea para los niveles máximos de tolerancia de Salmonella spp.y E. coli para
los PCG, estos son: para E. coli es de 100 UFC/g, mientras que no debe
presentarse Salmonella spp. en 25 g de muestra (Europea, 2005, pp. 17-30). En
Francia se estableció un valor máximo de 107 UFC/g para el crecimiento
bacteriano. En España se estableció un valor máximo de 105 UFC/g para contaje
de aerobios totales en el día de proceso y 107 para el día de consumo, con
ausencia de E. Coli, Listeria monocytogenes y Salmonella spp en 25 g de muestra
(Artés, Gómez, y Artés-Hernández, 2007, p. 184).
Luna, Tudela, Martínez-Sánchez, Allende, y Gil (2013) registraron contajes
microbiológicos en LCG después del corte y después de 10 días de
almacenamiento, para coliformes el contaje varió entre 3 a 3,9 log UFC/g y entre
4,6 a 5,7 log UFC/g, respectivamente (p. 15). El contaje para mohos y levaduras
registrado en LCG después de 7 días a 12 °C fue de 7 log UFC/g (Gopal,
Coventry, Wan, Roginski, y Ajlouni, 2010, p. 213).
Para evitar el ataque microbiano en PCG es indispensable realizar controles
preventivos en las industrias, implementar buenas prácticas de manufactura
(BPM), el sistema análisis de peligros y de puntos de control (HACCP) (Artés,
Gómez, y Artés-Hernández, 2007, p. 183).
El tiempo corto de vida en percha se debe a varios factores, entre ellos está el
crecimiento microbiano, ya que los microorganismos deterioran los alimentos de
dos formas: la primera, crecen en los alimentos y disminuyen las características
organolépticas y nutricionales (saprófitos) y la segunda, producen toxinas en los
alimentos de tal forma que causan enfermedades al ser humano (patógenos)
(Heard, 2002, p. 196). La vida en percha recomendada para LCG es de 7 días a
8
5 °C (Allende, Aguayo, y Artés, 2004, p. 109) por la carga microbiana registrada y
la evaluación sensorial.
1.1.3. PARÁMETROS DE CALIDAD EN PRODUCTOS IV GAMA
Los parámetros de calidad que tanto productores como consumidores de PCG
toman en cuenta para la producción y consumo son: apariencia, textura, sabor y
calidad nutricional (Kader, 2002b, p. 22).
1.1.3.1. Apariencia visual
En este parámetro se consideran: tamaño, forma, color, ausencia de defectos y
deterioro (Garcia y Barrett, 2004, p. 64). En los PCG se puede presentar
pardeamiento, elongación y curvaturas del tallo como sucede con los espárragos
(Kader, 2002c, p. 22).
1.1.3.2. Textura
En este parámetro se consideran: la firmeza, la jugosidad y harinosidad. Este
parámetro se puede ver afectado por la temperatura de almacenamiento y el
ablandamiento a causa de los cortes realizados a frutos y hortalizas (Kader,
2002b, p. 22).
En los PCG generalmente se emplean dos aditivos para mantener la textura: un
inhibidor de etileno (1-metilciclopropeno) y calcio (lactato de calcio, propianato de
calcio, gluconato de calcio, clorito de calcio) que además puede aumentar la
calidad nutricional (Ayala-Zavala y González-Aguilar, 2011, p. 243).
1.1.3.3. Aroma
9
Este parámetro incluye la percepción de aromas y sabores de varios compuestos,
se consideran: el dulzor, la acidez, la astringencia, el amargor, el aroma y la
presencia de sabores extraños. En el procesamiento de PCG algunos
compuestos asociados a este parámetro pueden desaparecer o en lugar de estos
pueden aparecer sabores o aromas extraños (off-flavor), como producto de
cambios fisiológicos o por la presencia de microorganismos (Garcia y Barrett,
2004, p. 65).
1.1.3.4. Calidad nutricional
La calidad nutricional de PCG depende de la variedad de cada fruto o vegetal y de
la materia prima. Considerando el inicio de la pérdida de la calidad, degradación u
oxidación de compuestos o nutrientes como carotenoides, vitamina C, ácido
ascórbico, entre otros, se pueden determinar las condiciones de almacenamiento
y la vida útil de los PCG (Garcia y Barrett, 2004, p. 65).
1.2. MÉTODOS PARA EXTENDER LA VIDA ÚTIL DE PRODUCTOS
DE IV GAMA
La industria de los PCG ha sido cuestionada por los posibles brotes de
enfermedades asociadas al crecimiento microbiano en estos productos durante
los días finales de su vida útil (Smetanska, Hunaefi, y Barbosa-Cánovas, 2013, p.
376). Por esta razón la industria se ha enfocado en incrementar la vida útil de los
PCG con la aplicación de métodos químicos y/o físicos, de tal forma que sean
productos sanos y seguros para el consumo.
1.2.1. MÉTODOS QUÍMICOS
1.2.1.1. Hipoclorito de sodio
10
El NaClO es un sanitizante aprobado por la FDA para su uso en la etapa de
desinfección ya sea por inmersión o por aspersión en frutos y vegetales frescos y
cortados. Es recomendable que la solución sanitizante se mantenga entre un
rango de pH de 6 a 7,5 para que el tratamiento sea efectivo, posterior a la
inmersión se requiere de un enjuague con agua. Las concentraciones de uso
varían entre 50 a 200 ppm a temperatura ambiente (James y Ngarmsak, 2010, p.
37).
Biazotto, Álvarez y Benedetti (2013) aplicaron 150 ppm de NaClO con 15 min de
inmersión en LCG empacada en PEBD y obtuvieron reducciones iguales a 5x101
UFC/g, 1x103 UFC/g y 1x102 UFC/g para coliformes totales, aerobios totales y
mohos y levaduras respectivamente. Estos investigadores, registraron un tiempo
de vida útil largo de 12 días a 2°C ± 1 °C y 95 ± 5% de HR (pp. 674, 676).
1.2.1.2. Dióxido de cloro
El uso del dióxido de cloro (ClO2) en la industria de PCG se realiza de la misma
forma que con el NaClO, mediante inmersiones en soluciones en la etapa de
desinfección. Este compuesto es más efectivo contra microorganismos en
concentraciones más bajas que el NaClO, reacciona levemente con la materia
orgánica y posee mayor actividad a pH cercano a 7 (James y Ngarmsak, 2010, p.
37). Esto se explica por el tipo de reacción que se produce al momento de la
descomposición del desinfectante, así: el cloro reacciona a través de la oxidación
y la sustitución electrófila mientras que el ClO2 sólo reacciona por oxidación
(WHO, 2000) y con esto bloquea el transporte de nutrientes a través de la
membrana celular de los microorganismos.
El tratamiento con 100 mg/L de ClO2 aplicado en lechuga (Lactuca sativa L.) var.
angustana sumergida en agua por 20 min logró aumentar el tiempo de vida en
percha de la LCG de 4 a 14 días a 4 °C (Chen, Zhu, Zhang, Niu, y Du, 2010, p.
237).
11
1.2.1.3. Clorito de sodio acidificado
El clorito de sodio acidificado (CSA) se emplea en solución en la etapa de
desinfección. Es una solución de clorito de sodio (NaClO2) con adición de
cualquier ácido GRAS (Generally Recognized as Safe) como el ácido cítrico,
ácido málico, ácido clorhídrico entre otros. Debido a su pH de trabajo y a los
subproductos formados en solución es considerado un antimicrobiano altamente
efectivo.
La interacción de un ácido con el NaClO2 produce ácido cloroso (HClO2) que a su
vez produce tres oxidantes: el clorito (ClO2-), el clorato (ClO3
-) y el dióxido de cloro
(ClO2), los cuales se encargan de conferir la actividad antimicrobiana al CSA
mediante la oxidación de los enlaces sulfito de los aminoácidos y los enlaces
disulfito de las enzimas con lo cual se logra interrumpir la función celular. El HClO2
actúa sobre la membrana celular, causa una ruptura y oxida sus constituyentes
(Rao, 2007, p. 6).
Las dosis recomendadas para el uso de CSA son: de 50 a 150 ppm a pH de 2,8 a
3,2 y las dosis altas de 500 a 1200 ppm a pH de 2,8 a 2,9 (FDA, 2001, p. 5).
No existen reportes de aplicación de CSA en lechuga de IV gama, sin embargo,
en otros vegetales como la espinaca (Brassica rapa) var. rosularis se probaron
dosis moderadas por 5 s y se almacenó por 11 días a 5 °C, las reducciones de E.
coli registradas fueron: 0,51, 1,11 y 1,89 log UFC/g para los tratamientos con 50,
300 y 500 ppm respectivamente, (Tomás-Callejas, López-Velasco, Artés, y Artés-
Hernández, 2011, p. 884).
La aplicación de 100 ppm de CSA en zanahoria (Daucus carota) rallada reduce el
contaje de mohos y levaduras en 2 log UFC/g y el tratamiento con 250, 500 y
1000 ppm reduce el contaje en 6 log. UFC/g. La aplicación de 1000 ppm de CSA
permitió extender la vida en percha de la zanahoria rallada hasta el día 14 de
almacenamiento a 5°C (Allende, Gonzalez, McEvoy, y Luo, 2008, p. 57).
12
Bastidas (2015) reportó la aplicación de 100 ppm de CSA en zanahoria (Daucus
carota) rallada sumergida por 2 min y obtuvo como resultado la reducción de la
concentración de CO2 en el interior de los empaques y registró una carga
microbiana igual a 8x101 y de 5x101 UFC/g para aerobios totales y coliformes
totales respectivamente, a los 8 días de almacenamiento. Y en el tratamiento con
500 ppm con 2 min de inmersión y empacada al vacío, se disminuyó la pérdida de
peso hasta 0,07%, registró bajo índice de blancura y registró un contaje
microbiológico para E.coli coliformes y aerobios totales menores a 10 UFC/g a los
4 y 8 días de almacenamiento (p.113).
1.2.1.4. Ácidos orgánicos
Los ácidos orgánicos se emplean en solución en la etapa de desinfección en el
procesamiento de PCG. Reducen el ataque microbiano ya que la mayoría de
microorganismos patógenos no crecen a valores de pH menores a 4,5. Además
modifican la permeabilidad de la membrana celular y reducen el pH interno de la
célula por la disociación de iones hidrógeno (Parish, et al., 2003, p. 167). Los
ácidos orgánicos se pueden emplear como acidulantes para controlar el
pardeamiento enzimático junto con otros agentes antipardeantes.
El ácido ascórbico es considerado un antioxidante GRAS (FDA, 2014), posee
capacidad antipardeante y antimicrobiana debido a su bajo pH cuando se
encuentra en solución.
El ácido cítrico es una sustancia que elimina de la membrana celular los iones de
cobre (Manolopoulou y Varzakas, 2011, p. 957) que catalizan la oxidación, de tal
forma que el cobre se sitúa en los sitios activos de la PPO y se evita el
pardeamiento.
La mezcla de ácidos como el ácido cítrico y el ácido ascórbico para incrementar la
eficacia del tratamiento ha sido probada en varias hortalizas y frutos con
concentraciones que varían entre 0,1 y 1,25 % (Ma, Wang, Hong, y Cantwell,
13
2010). La aplicación de 1 % de ácido ascórbico con 1 % ácido cítrico en LCG
presentó un efecto antipardeante hasta los 7 días de almacenamiento a 4 °C y 85
% de HR (Toledo, 2009, p. 30). Por otra parte pitahaya amarilla (Selenicereus
megalanthus) tratada con 0,25 % de ácido ascórbico y 0,25 % ácido cítrico
durante 1 o 3 min inhibió el pardeamiento hasta el día 8 de almacenamiento a
4 °C (Tinitana, 2014, p. 81)
1.2.1.5. Peróxido de hidrógeno
El peróxido de hidrógeno (H2O2) es un compuesto químico clasificado como
GRAS (FDA, 2014) y se emplea principalmente como agente antimicrobiano,
oxidante y agente reductor (Ukuku, Bari, y Kawamoto, 2012, p. 198). Es usado en
la etapa de desinfección mediante inmersión, para reducir la carga microbiana en
los PCG sin alterar su calidad organoléptica. No obstante suele ser fitotóxico para
algunos productos frescos como la lechuga (Lactuca sativa L.) y los champiñones
(Agaricus bisporus) en los cuales causa pardeamiento. En las frambuesas (Rubus
idaeus) y las fresas (Fragaria vesca) puede causar blanqueamiento de las
antocianinas (Gil, Alende, y Selma, 2011, p. 220).
La eficiencia de tratamientos con H2O2 para eliminar patógenos como la E. coli
depende de la concentración usada y el tiempo de exposición. Las dosis
recomendadas para la inactivación de E. coli. son 1 o 2 mM de H2O2, las cuales
causan daño al ADN, hasta provocar mutagénesis y posteriormente la muerte
(Ukuku et al., 2012, p. 198).
El uso de H2O2 en el lavado de PCG con 1 % de H2O2 mantiene la aceptabilidad y
extiende la vida útil de estos productos (Ukuku et al., 2012, p. 209).
1.2.1.6. Sales de calcio
14
El calcio mantiene la estructura celular mediante la alta afinidad con ácido de
pectina para formar puentes de calcio. Las sales de calcio empleadas en PCG
tienen la capacidad de incrementar el número de sitios de unión a calcio (Martín-
Belloso, Soliva-Fortuny, y Oms-Oliu, 2006, p. 136), de tal forma que permiten
mantener la textura y disminuir la pérdida de clorofila y proteína (Martín-Diana,
Rico, Barry-Ryan, Frías y Henehan 2005, p. 2260) e inhibir el deterioro de los
frutos y vegetales frescos y cortados. Entre los compuestos que se emplean están
el cloruro de calcio y el lactato de calcio, este último se emplea en
concentraciones de 0,5 % hasta 1 % como agente para incrementar y mantener la
firmeza sin otorgar acidez indeseable a los PCG (Martín-Belloso et al., 2006, p.
135).
1.2.1.7. Ozono
El ozono (O3) es un antimicrobiano efectivo por su alto poder oxidativo y
esterilizante. Es considerado un sanitizante GRAS (FDA, 2014) y no produce
compuestos residuales. Desde el año 2000 ha sido probado en PCG y estos han
presentado reducción de poblaciones microbianas y reducción de pardeamiento
(Smetanska et al., 2013, pp. 387-392).
El modo de empleo es en solución acuosa en la etapa de desinfección en el
procesamiento, su vida media en solución se estima en 20 a 30 min a 20 °C
(Aguayo, Escalona, y Artés, 2005, p. 37) y las concentraciones empleadas son de
0,5 a 4 ppm (Gil et al., 2011, p. 220).
Biazotto et al., (2013) probaron el uso de agua ozonizada en LCG, aplicaron 1,2
mg/L con 1 minuto de inmersión y fue almacenada a 2 ± 1 °C, se obtuvo una
reducción de 0,7 log NMP/g de coliformes y 1 log NMP/g de mesófilos, comparado
con la materia prima. Sin embargo su vida en percha solo fue de 6 días (pp. 675,
677).
15
1.2.1.8. Agua electrolizada
El agua electrolizada o EW (por sus siglas en inglés), es preparada por electrolisis
de una solución diluida de cloruro de sodio (NaCl) donde se obtienen dos
fracciones, una básica y una ácida (AcEW) (Al-Zenki y Al-Omariah, 2006, p. 252).
Ésta última permite inactivar microorganismos sin afectar drásticamente la calidad
nutricional de los PCG y ha sido probado para la reducción de la carga bacteriana
con buenos resultados.
Las características que presenta la AcEW como: alto potencial de óxido reducción
(1100 mV), su bajo pH de valor 2,7 y la producción de ácido hipocloroso, le
confiere el potencial antimicrobiano contra E. coli O157:H7 y S. enteridis, L.
monocytogenes y contra bio películas (Al-Zenki y Al-Omariah, 2006, p. 252).
Adicionalmente se puede preparar una agua electrolizada neutra NEW a partir de
la fracción básica obtenida inicialmente y se mezcla con parte de la AcEW para
obtener un pH de 7 ± 0,1 (James y Ngarmsak, 2010, p. 24).
La efectividad de AcEW y agua electrolizada neutra (NEW) se refleja en el
tratamiento de hojas de Mizuna (Brassica rapa) var. japonica. El tratamiento se
realizó por 2 min a 5 °C con 40 mg/L de cloro disponible y se realizó un enjuague
posterior. Los valores de pH que presentaron fueron de 3,1 ± 0,1 y 7,0 ± 0,1
respectivamente. La reducción en el contaje de microorganismos psicrófilos fue
de 1,89 y 1,77 log UFC/g para la AcEW y NEW respectivamente, después de 7
días los aerobios mesófilos alcanzaron la fase estacionaria y no se presentó
incremento del contaje a lo largo de su vida útil. El tratamiento no afecto el pH de
los vegetales, ni su calidad visual general hasta el día 7 de almacenamiento
(Tomás-Callejas, Martínez-Hernández, Artés, y Artés-Hernández, 2011, pp.
299,303).
1.2.2. MÉTODOS FÍSICOS
16
1.2.2.1. Procesos térmicos
Los procesos térmicos han permitido a lo largo de los años extender la vida útil de
los alimentos, pero la aplicación de estos métodos en productos frescos puede
provocar una degradación de nutrientes y disminuir la textura de los PCG
(Smetanska et al., 2013, p. 376). Sin embargo, en algunos PCG aún se aplican
tratamientos de altas temperaturas (50-60 °C) en tiempos cortos (1-2 min) para
desactivar las enzimas responsables de pardeamiento. Avalos, Sgroppo y Chaves
(2012) trataron pimientos (Capsicum annuum, L. cv. cherry) de IV gama a 55 °C
por 60 segundos, y fueron almacenados hasta los 15 días a 10 °C. Los pimientos
tratados presentaron mejor apariencia y el ataque microbiano se observó a los 12
días de almacenamiento (p. 47).
1.2.2.2. Atmósferas modificadas
La atmósfera modificada (AM) en el interior de un empaque polimérico se puede
crear de dos formas. La primera conocida como atmósfera modificada activa,
donde se crea un ligero vacío en el empaque, posteriormente se inyecta la mezcla
gaseosa deseada en el interior del empaque. En la segunda, conocida como
atmósfera modificada pasiva, la permeabilidad de los empaques y la respiración
del producto crearán la atmósfera en el interior del empaque (Kader, 2002a,
pp.142, 143).
La permeabilidad es la capacidad del material que, sin modificar su estructura
interna permite el flujo de un gas o vapor a través de él, mediante la solubilidad
(disolución de un gas en un polímero) y la difusión (movimiento de las partículas a
través del polímero) (Welti-Chanes, Vergara-Balderas, Guerrero-Beltrán, García-
Torres, y Villa-Rojas, 2005, p. 9).
La AM permite disminuir: la pérdida de agua, la tasa de respiración, la producción
de etileno, la actividad metabólica, el ataque microbiano y el deterioro, de tal
17
forma que se consigue aumentar la vida en percha de los PCG (Garcia y Barrett,
2004, p. 66).
La composición atmosférica adecuada para el almacenamiento de LR de IV gama
a 5 °C es de 0,5 a 3 % de O2 y de 5 a 10 % de CO2 (Farber, et al., 2003, p. 146).
Los polímeros que más se emplean en el empaque en AM son polipropileno (PP)
y el polietileno de baja densidad (PEBD) de diferentes espesores, por su
permeabilidad y por ser adecuados para el sellado térmico (Pólit, Suquilanda,
Velásquez, y Hidalgo, 2007, p. 25). La permeabilidad es un parámetro importante
para seleccionar correctamente el empaque. En la Tabla 1.1 se presenta la
permeabilidad de estos y otros polímeros usados como material de empaque para
alimentos.
Tabla 1.1. Permeabilidad de polímeros empleados en alimentos
Polímero
Permeabilidad
10-13cm3cm/(cm2·s·Pa)
O2 CO2 H2O
Poliestireno (PS) 1,90 - 1350,00
Polietileno de baja densidad (PEBD) 5,18 21,00 93,00
Polietileno de alta densidad (PEAD) 0,83 3,23 13,50
Polipropileno (PP) 1,70 6,90 51,00
Policloruro de polivinilo (PVC) 0,03 0,12 206,00
Nylon 6 60 % 0,03 0,07 0,14
(Welti-Chanes et al., 2005, p. 17)
Los empaques empleados en experimentaciones con lechuga var. romana son
bolsas de polipropileno (Luna et al., 2013, p. 10), policloruro de vinilo, peak fresh y
polietileno (Velásquez Velásquez, 2007, p. 51).
1.2.2.3. Irradiación
18
Este método consiste en exponer los PCG a irradiación ionizante, donde se aplica
la energía suficiente para romper los enlaces químicos y expulsar electrones de
los átomos y se logra ionizar las moléculas. La irradiación inactiva eficazmente a
bacterias, levaduras y hongos, causa mínimos cambios en apariencia y mantiene
la calidad nutricional (Smetanska et al., 2013, p. 383). La Organización Mundial de
la Salud (OMS) concluyó que en la aplicación de éste método no se tiene
formación de compuestos tóxicos, ni aumenta el riesgo biológico. Adicionalmente
la FAO junto con la OMS concluyeron que los alimentos irradiados son seguros e
inocuos (Sendra, Capellas, y Guamis, 2001, p. 134).
Las fuentes de radiaciones ionizantes autorizadas para el uso en alimentos son
de fuentes mecánicas como equipos generadores de rayos X o de electrones
acelerados o de sustancias radioactivas como Cobalto 60 (60Co) y Cesio 137 (Cs).
Las unidades de medida empleadas son: los electronvoltios (eV) para medir la
energía y el Gray (Gy) que es la energía media comunicada por la radiación
ionizante a la materia por unidad de masa (Sendra et al., 2001, p. 133).
La dosis de irradiación máxima efectiva para eliminar patógenos no esporulados y
parásitos en frutos, vegetales frescos y en PCG es de 10 kGy (Sendra et al.,
2001, p. 129).
Trigo, et al. (2009) irradió lechuga (Lactuca sativa L). cv frisada con una fuente de 60Co con una dosis de 0,5, 1, 1,5 y 2 kGy almacenada a 4 °C. Como resultado del
tratamiento se registró una reducción de 2 a 4 log UFC/g en el contaje de
microorganismos mesófilos y sicrófilos, se registró también una disminución de
textura de 61 a 56 N/g. Sin embargo la calidad visual permitió extender la vida en
percha de 8 hasta 12 días (pp. 660,661).
1.2.2.4. Radiación Ultravioleta
Este método es una irradiación no ionizante de aplicación superficial. La radiación
ultravioleta (UV) que tiene más importancia en la industria alimentaria es la UV-C
19
que corresponde a las longitudes de onda entre 200 y 280 nm dentro del espectro
electromagnético (Gómez-López, 2012, p. 366).
Altas dosis de radiación ultravioleta puede causar la producción de sabores
extraños, sin embargo también presenta algunas ventajas: no afecta la textura de
los productos, no deja residuos, no es un método costoso y no se requiere
excesiva protección para los operarios (Smetanska et al., 2013, p. 392).
Cuando un microorganismo es sometido a UV, en su ADN se producen
reacciones fotoquímicas y se forman atenuadores o bloqueadores que impiden su
reproducción (Gómez-López, 2012, p. 366).
Para obtener buenos resultados y lograr extender el tiempo de vida en percha de
los PCG se debe tomar en cuenta: la forma del producto, la longitud de onda, la
configuración geométrica del reactor, la trayectoria de la radiación (Smetanska et
al., 2013, p. 392) y la energía incidente (J/m2) en la superficie de los productos
(Gómez-López, 2012, p. 367)
Andrade-Cuvi, Moreno-Moreno, Herníquez-Bucheli, Gómez-Gordillo y Concellón
(2010) aplicaron un tratamiento con UV-C a los frutos de carambola (Averroha
carambola L.) de IV gama, donde se aplicó una dosis de 13 kJ/m2 en rodajas de 5
mm de ancho que fueron almacenadas por 21 días a 5 °C. Los productos tratados
presentaron 4,7 % de pérdida de peso, daños leves y desarrollo fúngico a los 21
días del almacenamiento, a diferencia del control donde se observó crecimiento
microbiano a los 14 días del tratamiento. Adicionalmente se presentó acumulación
de fenoles totales y flavonoides en un 28 % y 17 % respectivamente (pp. 22-24).
1.2.2.5. Ultrasonido
Ultrasonido consiste en ondas sonoras con frecuencias (número de oscilaciones
de un movimiento por unidad de tiempo) que están por encima del umbral del oído
humano, es decir superiores a 16 kHz (Zhou, 2010, p. 19; Gómez-Díaz y López-
20
Malo, 2009, p. 62). El ultrasonido se puede clasificar por su intensidad (alta y
baja). El ultrasonido de baja intensidad (UBI) se usa para diagnóstico mientras
que el ultrasonido de alta intensidad (UAI) es el empleado en la modificación de
procesos. Este último, es el empleado en la industria alimentaria, trabaja en bajas
frecuencias (20 a 100 kHz) y genera niveles altos de poder entre 10 y 100 W/cm2
(Gómez-Díaz y López-Malo, 2009, p. 72). Estas ondas alteran los sistemas
biológicos a nivel celular hasta provocar una ruptura de la pared celular
(cavitación) (Zhou, 2010, p. 19; Smetanska et al., 2013, p. 395).
El UAI es empleado en la industria de los PCG para inactivar microorganismos,
limpiar superficies e inactivar la actividad enzimática (Gómez-Díaz y López-Malo,
2009, p. 65). Esté método permite extender la vida en percha, garantizar la
calidad nutricional de los PCG, disminuir el tiempo total de procesamiento,
mejorar el rendimiento y reducir el consumo energético (Smetanska et al., 2013,
p. 395; Robles-Ozuna y Ochoa-Martinez, 2012, p. 113).
Amaral, Benedetti, Pujola, Achaerandio y Bachelli (2014) probaron el efecto de
UAI en papa (Solanum tuberosum L) fresca cortada. El tratamiento fue de 40 kHz,
200W por 1, 5 y 10 min de exposición y fue almacenada a 3 ± 1 °C por 12 días.
En el tratamiento de 5 min se obtuvo como resultado inhibición del 50 % de la
actividad de la PPO durante los primeros 4 días de almacenamiento (pp. 4,8).
1.2.2.6. Empaques activos e inteligentes
Los empaques activos son aquellos que poseen sustancias antimicrobianas
(ácidos orgánicos, aceites esenciales, etanol, ésteres, sorbatos, benzoatos,
zeolita, oxido de magnesio, óxido de zinc, entre otros), antioxidantes y
saborizantes. Se mantienen en interacción constante con el producto ya que
pueden cambiar de permeabilidad continuamente y, con el uso de absorbedores
de gases y de humedad se modifica la concentración de O2, CO2 y C2H4 en el
espacio de cabeza disponible en el empaque (Hurme, Sipiläinen-Malm, y
Ahvenainen, 2002, p. 88).
21
Los empaques inteligentes, poseen etiquetas o indicadores que monitorizan las
condiciones desde el interior y/o exterior, y generalmente cambian de color para
indicar el estado del producto. Los indicadores empleados son de: tiempo-
temperatura, temperatura, O2, CO2, crecimiento microbiano y deterioro. Estos
últimos se activan con sustancias volátiles que se producen como resultado del
deterioro químico, enzimático o microbiano. De esta forma se extiende el tiempo
de vida útil y se mantiene la calidad en los PCG (Hurme et al., 2002, pp. 88-98;
ERDF, 2012, pp. 5-7)
Las ventajas del empleo de este método son: el aumento del tiempo de vida útil y
la calidad, la facilidad de detección de fugas y los costos de inversión son
menores comparados con otros métodos como atmósferas modificadas (Hurme,
Sipiläinen-Malm, y Ahvenainen, 2002, p. 89).
Uno de los empaques empleados en la comercialización de lechuga son los
PEAKfresh. Estos empaques son de PEBD y tienen minerales impregnados, los
cuales son higroscópicos, absorben etileno y modifican la permeabilidad del
empaque (Pólit et al., 2007, p. 25).
Montero-Prado y Nerín (2014) probaron envases activos con aceite esencial de
canela como agente activo, en el envasado de melón (Cucumis melo) IV gama. La
materia prima fue cosechada, pelada, troceada y empacada, no se le realizó
desinfección. Utilizaron envases de polietileno tereftalato (PET) impregnados
directamente y con etiquetas autoadhesivas con 0,041 g/m2 y de 0,36 % g/m2 de
agente activo respectivamente. Se almacenó a 4 y 8 °C por 6 días, donde el
melón IV gama empacado en PET con etiqueta activa presentó mejor sabor,
mejor firmeza y menor grado de oxidación, lo que permitió su comercialización
(pp. 23-25).
1.2.2.7. Recubrimientos comestibles
22
El recubrimiento comestible se define como una capa fina (espesor < 3 mm) de un
material comestible (polisacáridos, proteínas y/o compuestos lipídicos) sintético o
natural sobre la superficie de los frutos y vegetales de tal forma que se logra
obtener una barrera semipermeable a los gases, al vapor de agua y a los
compuestos volátiles (Corbo, Speranza, Campaniello, D´Amato, y Sinigaglia,
2010, p. 1148). Los recubrimientos comestibles también contienen plastificantes o
emulsificantes que incrementan sus propiedades mecánicas y forman emulsiones
estables. También se emplean junto con aditivos, agentes antipardeantes,
antimicrobianos, colorantes, sabores, nutrientes, entre otros para incrementar la
aceptabilidad (Porta, et al., 2013, p. 2).
Algunos de los materiales empleados en el recubrimiento en frutas de IV gama
son: concentrado de proteína de suero de leche, carboximetilcelulosa,
metilcelulosa, aislado de proteína de suero de leche, celulosa microcristalina,
monoglicerido acetilado, ácido ascórbico, ácido oxálico, ácido cítrico, cloruro de
calcio, cloruro de sodio, sorbato de potasio, ácido benzoico, polietilenglicol, entre
otros (Olivas y Barbosa-Cánovas, 2013, p. 662). La aplicación de estas sustancias
en manzanas en rodajas y en cubos incrementó el tiempo de vida en percha,
redujo la tasa de respiración y la humedad, inhibió el pardeamiento y redujo la
producción de CO2. (Olivas y Barbosa-Cánovas, 2013, p. 662).
Los recubrimientos comestibles se forman directamente en la superficie del
producto con soluciones líquidas aplicadas por: inmersión, pulverización y
fluidización. Su aplicación en PCG permite extender el tiempo de vida en percha
debido a que se reduce la tasa de respiración, la pérdida de agua, el intercambio
de humedad entre los trozos de frutas y se mantienen el aroma, la textura y el
color (Olivas y Barbosa-Cánovas, 2013, p. 658).
Patiño, Moreno y Chaparro (2010) emplearon un recubrimiento comestible
antimicrobiano y antioxidante a base de aceite esencial de orégano (Origanum
vulgare) 1 % y 2 %, con 6 % de pectina y 5 % de gelatina. Este recubrimiento se
aplicó en lechuga (Lactuca sativa L.) de IV gama donde se registró la disminución
de la tasa de respiración, la humedad y la pérdida de peso en un 30 % y 94 %
23
respectivamente. Mientas que se presentó un aumento de los sólidos solubles
totales y de proteína en un 35 % y 30 % respectivamente. Su vida en percha se
incrementó de 9 a 20 días (pp. 48-57)
Los métodos para extender la vida útil de los PCG son una parte fundamental del
proceso de elaboración. Se pueden aplicar uno o varios métodos con el fin de
incrementar la vida en estante y garantizar la calidad nutricional, organoléptica y
microbiológica de los PCG.
1.3. ELABORACIÓN DE VERDURAS DE HOJA DE IV GAMA
En el Ecuador, en los últimos años la producción y consumo de los alimentos de
IV gama se ha incrementado. En la actualidad, existen alrededor de 24 empresas
dedicadas a la elaboración y comercialización de frutos y vegetales de IV gama.
Pero lamentablemente, la investigación sobre el uso de la materia prima
adecuada, los grados de madurez óptimos y que tratamientos poscosecha son los
más adecuados para incrementar el tiempo de vida útil de las hortalizas de IV
gama no ha sido desarrollada (Bastidas, 2015, p.72).
Entre los productos de IV gama que elaboran las empresas ecuatorianas se
encuentran vegetales como lechuga, col, apio, zapallo, coliflor, sambo y en mayor
proporción choclo, zanahoria, yuca y brócoli, solos o en mezcla para ensaladas o
para elaboración de sopas (Bastidas, 2015, p. 74).
1.3.1. LECHUGA (Lactuca sativa L.)
La lechuga es de la familia Astereaceae de género lactuca y de especie sativa por
lo que su nombre científico es Lactuca sativa. Es una planta con raíz pivotante
ramificada, posee un tallo que es corto, cilíndrico y ramificado. Sus hojas son
basales, con gran tamaño, de forma ovalada y color verde oscuro (Pólit et al.,
2007, p. 4).
24
Según sus características morfológicas se tiene 4 variedades: capitata, longifolia,
crespa y asparagina Bailey. Las de variedad longifolia, cos o Romana son
aquellas que tienen hojas verticales, de textura crujiente y forman una cabeza
suelta de color verde oscuro (Mou, 2008, p. 79).
La lechuga se compone de agua, proteínas, carbohidratos, compuestos fenólicos,
vitaminas y minerales y su cantidad depende de la variedad. En la Tabla 1.2, se
presenta la composición de una porción de 100 g de lechuga var. romana.
Tabla 1.2. Composición de 100 g de lechuga var. romana
Composición Cantidad Composición Cantidad
Agua 94,61 g Zn 0,23 mg
Proteína 1,23 g Cu 0,048 mg
Lípidos totales 0,30 g Mn 0,155 mg
Carbohidratos totales 3,29 g Se 0,4 µg
Ca 33 mg Vitamina A 780 μg retinol
Fe 0,97 mg Vitamina C 24 mg
Mg 14 mg Tiamina 0,10 mg
P 30 mg Niacina 0,5 mg
K 247 mg Calcio 36 mg
Na 8 mg
(Dishpande y Salunkhe, 2003, p. 511)
La lechuga se desarrolla en rangos de temperaturas diurnas y nocturnas entre 15
y 18 °C y entre 3 a 8 °C respectivamente. El aumento de la temperatura
recomendada produce acumulación de látex amargo en su sistema vascular y se
presenta un crecimiento acelerado del tallo floral. Por otro lado, si las
temperaturas bajas se mantienen por más de 10 días se puede tener presencia
de tallos florales (Pólit et al., 2007, p. 5).
La lechuga se siembra como monocultivo directa o indirectamente en el interior de
invernaderos o a cielo abierto. Para la siembra indirecta se emplean semilleros
para la germinación y posterior trasplante (a las 4 o 5 semanas) (Suquilanda,
2003, p. 67).
25
Entre las plagas que afectan al cultivo de lechuga se encuentran a los pulgones,
la mosca blanca, el gusano trozador, la babosa gris y nemátodos que pueden
causar deformaciones y pérdidas considerables en la cosecha. Los patógenos
causantes de enfermedades que se pueden presentar en esta hortaliza son:
Rhizoctonia solani que causa pudrición en las hojas, Sclerotinia sclerotiorum que
puede causar marchitamiento y caída de hojas, Cercospora beticola que causa
manchas foliares de color café con bordes rojizos y Oidium sp que seca las hojas
y se presenta como un polvo blanco. (Pólit et al., 2007, p. 9).
Debido a que esta hortaliza es una de las más consumidas a nivel mundial, su
producción como producto o alimento de IV gama se ha desarrollado en los
últimos años.
1.3.2. PROCESAMIENTO DE PRODUCTOS DE IV GAMA
Durante el procesamiento de PCG es indispensable equipar al personal con los
equipos de protección personal adecuada, guantes, mascarilla, cofia, mandil,
botas plásticas y aplicar BPM.
La elaboración de verduras IV gama tiene varias etapas, a partir de la etapa de
lavado el procedimiento se debe realizar a temperaturas de refrigeración de tal
forma que se cree el ambiente adecuado para reducir el crecimiento microbiano y
la tasa de respiración. A continuación se detallan las etapas del procesamiento de
vegetales de IV gama.
1.3.2.1. Selección del cultivo
Para la selección del cultivo adecuado se debe tomar en cuenta la vida en estante
(larga, media, alta), el comportamiento metabólico de cada variedad y el sistema
de producción del que proviene (Artés-Hernandez et al., 2009, p. 53). En el cultivo
se deben aplicar Buenas Prácticas Agrícolas y la contaminación se debe prevenir
26
desde la cosecha con utensilios limpios y el transporte en condiciones asépticas
(Division of plant and Dairy Food Safety, 2008).
1.3.2.2. Cosecha
La cosecha de la materia prima seleccionada se realiza cuando la verdura
presenta su madurez comercial y con cuidado para no provocar daño físico ni
mecánico. La verdura es separada de su sistema radicular mediante cortes con
cuchillos afilados. Este proceso puede ser realizado manual o mecánicamente.
1.3.2.3. Lavado
Esta etapa se realiza con agua potable a una temperatura menor a 5 °C (Corbo et
al., 2010, p. 1144), por medio de aspersión o inmersión. El objetivo del lavado es
eliminar materia orgánica, residuos de pesticidas y para disminuir la carga
microbiana (Gil et al., 2011, p. 213).
1.3.2.4. Pelado
Algunas verduras requieren ser peladas para lo cual se emplean métodos
manuales, mecánicos, químicos o con peladores de vapor a alta presión.
1.3.2.5. Corte
En esta etapa se emplean métodos manuales y métodos mecánicos como
cuchillas de acero inoxidable o cuchillos de disco giratorio bien afilados. Los PCG
pueden ser cortados de diferentes formas, en cuadros, tiras, rodajas, en juliana,
entre otros, con diferentes espesores. Es recomendable limpiar y afilar las
27
cuchillas una o dos veces a día para minimizar el daño provocado (Varoquaux y
Mazollier, 2002, p. 43).
1.3.2.6. Tratamiento sanitizante
Esta etapa se realiza para disminuir o inactivar microorganismos presentes y
prevenir el pardeamiento. El empleo de agua clorada en esta etapa es común sin
embargo debido a la posible producción de compuestos tóxicos, ha sido prohibido
en algunos países (Varoquaux y Mazollier, 2002, p. 44). Actualmente se aplican
tratamientos alternativos para disminuir la carga microbiana entre ellos están la
aplicación de sanitizantes no convencionales (ClO2, ácidos orgánicos, CSA, H2O2,
O3, sales de calcio y EW) mediante inmersión en solución. También se usan
tratamientos térmicos, UV-C, UAI, entre otros. La efectividad de los tratamientos
varía según el producto, la carga microbiana inicial, el tiempo de exposición o
inmersión y las concentraciones empleadas.
1.3.2.7. Escurrido
Esta etapa se realiza para eliminar la mayor cantidad de agua de la superficie de
los vegetales con el fin de prevenir el crecimiento microbiano. Se realiza
mecánicamente con el empleo de centrífugas o túneles de aire. Se debe conocer
el tiempo y la velocidad apropiada para causar el mínimo daño mecánico a los
vegetales.
Un túnel de secado de aire que puede ser empleado para PCG, se compone de
bandas transportadoras vibratorias, una unidad de secado y un tubo de UV (250-
280 nm) (Varoquaux y Mazollier, 2002, p. 46).
1.3.2.8. Empaque
28
En esta etapa el vegetal troceado se empaca manual o mecánicamente en
láminas poliméricas y se sella. Se puede emplear el método de atmósferas
modificadas activas o pasivas, o se pueden usar empaques activos e inteligentes.
1.3.2.9. Almacenamiento
El almacenamiento de los vegetales IV gama se realiza en cámaras de
refrigeración a temperaturas entre 0 a 5 °C.
La elaboración y consumo de los PCG se encuentra en crecimiento en el
Ecuador, sin embargo la producción que existe en el país se realiza de forma
empírica. Por otro lado, la lechuga es una de las hortalizas más consumidas en
diferentes presentaciones, la LR contiene minerales y vitaminas esenciales para
la alimentación y se consume usualmente troceada en ensaladas. Con esta
investigación se busca causar un impacto positivo a nivel comercial en la calidad
e inocuidad de la LR de IV gama a fin de incrementar su consumo y la
comercialización a nivel nacional y eventualmente a nivel internacional.
29
2. PARTE EXPERIMENTAL
2.1. DETERMINACIÓN DE LAS CARACTERÍSTICAS FÍSICAS,
QUÍMICAS Y MICROBIOLÓGICAS DE LA MATERIA PRIMA
2.1.1. MATERIA PRIMA
La materia prima empleada en la caracterización fisicoquímica, el análisis
sensorial y en el estudio de la fisiología poscosecha fue lechuga de variedad
Romana, cosechada en los meses de Julio y Noviembre de 2014 en los cultivos
orgánicos a cielo abierto de la empresa “La Huerta”, ubicada en la parroquia El
Quinche al nororiente de Quito.
A primera hora de la mañana se realizó la cosecha de las lechugas que se
encontraron en su madurez comercial (70 a 75 días a partir de la siembra). Al
momento de la cosecha de realizó un corte a bisel en el tallo, cercano a las hojas
primarias. Se eliminaron las hojas viejas o con daños mecánicos. En el Anexo I se
presentan fotografías del cultivo y cosecha de la lechuga de hoja.
La materia prima se empacó en kavetas de 5 kg cada una, se transportó bajo
cubierta y con buena ventilación por aproximadamente 60 min hacia la planta
piloto del Departamento de Ciencia de Alimentos y Biotecnología (DECAB) de la
Escuela Politécnica Nacional en Quito. Posteriormente se almacenó la materia
prima en un cuarto frío a temperatura controlada de 4 ± 1 °C, hasta iniciar el
procesamiento.
Se empleó un total de 82 kg de lechuga variedad Romana en la presente
experimentación.
2.1.2. CARACTERIZACIÓN FÍSICA
30
Para determinar las características físicas, químicas y microbiológicas de la
materia prima se empleCaaron 50 lechugas var. romana con madurez comercial.
Se realizó una inspección visual y se determinó: el peso, la longitud, el diámetro,
el color, el pH, AT y la calidad microbiológica (aerobios totales, coliformes totales,
mohos y levaduras). Adicionalmente se realizó un análisis sensorial.
2.1.2.1. Inspección visual de la materia prima
Se realizó una inspección visual de la materia prima y, debido a que no existe una
norma ecuatoriana de clasificación para lechuga, se clasificó según la norma
técnica mexicana. En esta norma se especifican tres tipos de defectos (daños,
cortes o signos de enfermedad) en función del tamaño del área donde se
presentan: defectos menores (<2 cm2), defectos mayores (2 a 4 cm2) o defectos
críticos (>4 cm2), y también se especifican los tres grados de calidad: grado extra
(sin defectos visuales), grado 1 (un defecto menor por unidad) y grado 2 (un
defecto mayor por unidad) (Serra, 1982, p.3).
2.1.2.2. Peso
Se determinó el peso de cada hortaliza, colocándola directamente en una balanza
electrónica marca BOECO BBA51, Alemania, 4 100 g, 0,01 g.
2.1.2.3. Longitud
Se midió la longitud desde la base de las hojas externas hasta el final de las hojas
interiores más largas con un calibrador marca GOLDFISH-BRAND, China, 60 plg
(150 cm).
31
2.1.2.4. Diámetro
Se midió el diámetro en la zona central de las hojas externas presentes en cada
hortaliza con un calibrador marca GOLDFISH-BRAND, China, 60 plg (150 cm).
2.1.2.5. Color
Se determinó el color en el haz y envés de la zona central de las hojas de la
hortaliza con la cromaticidad L*, a* y b* determinados con el colorímetro marca
Minolta, Japón.
2.1.3. CARACTERIZACIÓN QUÍMICA
Para realizar la caracterización química de la materia prima se preparó el extracto
de las hojas de la hortaliza, para lo cual se retiró el tallo, se trocearon las hojas y
se colocaron en el interior de una licuadora, donde se licuaron durante 1 min, y se
realizó el filtrado con una malla de nylon manualmente hasta extraer
aproximadamente 25 mL de extracto.
2.1.3.1. Medición de pH
Se determinó el pH del extracto con un pH-metro electrónico, marca Fisher
Scientific AB150, USA, con calibración previa dentro de un rango de 4 a 10. El
electrodo se sumergió en una solución de 25 mL del extracto de la hortaliza
(A.O.A.C., 2005).
2.1.3.2. Medida de acidez titulable
32
Para obtener el valor de la acidez titulable (AT) se sumergió el electrodo del pH-
metro marca Fisher Scientific AB150, USA, en una solución de 50 mL de agua
destilada y 5 mL del extracto de la hortaliza, se tituló con NaOH 0,1 N, f=0,9775
hasta que la solución alcanzó un pH de 8,2 según lo descrito por el método AOAC
942.15 (A.O.A.C., 2005). El resultado se reportó como porcentaje de ácido cítrico
y se calculó con la Fórmula 2.1.
(Fórmula 2.1)
En donde:
AT: Acidez titulable (% de ácido cítrico)
NNaOH: Concentración de NaOH (N)
VNaOH : Volumen de NaOH gastado (mL)
fa: Factor del ácido cítrico 0,064
f: Factor de corrección de NaOH
Vo: Volumen de la muestra del jugo (mL)
2.1.4. CARACTERIZACIÓN MICROBIOLÓGICA
La determinación de la calidad microbiológica de la hortaliza se realizó mediante
los análisis microbiológicos para: aerobios totales, hongos y levaduras y
coliformes totales, siguiendo los métodos AOAC 990.12 (Guía3M, 2001), AOAC
997.02 (Guía3M, 2004) y AOAC 991.14 (Guía3M, 1999), respectivamente.
El Ecuador no posee una norma técnica para frutos y vegetales frescos, en donde
se especifiquen los límites aceptables de microorganismos (coliformes, aerobios
totales, mohos y levaduras) para su procesamiento y consumo. Por esta razón se
tomaron como referencia los límites establecidos por la legislación española
(Moragas y De Pablo Busto, 2013, p. 22), en donde, el límite máximo aceptable
para coliformes es de 104 UFC/g, para aerobios totales es de 105 UFC/g y para
mohos y levaduras es de 104 UFC/g (Moragas y De Pablo Busto, 2013, p. 22.)
33
2.1.5. ANÁLISIS SENSORIAL
El análisis sensorial consistió en una prueba descriptiva de escalas no
estructuradas (Beeren, 2010, pp. 88,89).
Para el análisis sensorial se realizó el entrenamiento a 12 panelistas en donde se
les presentaron muestras para el reconocimiento de: acidez, sabor característico
de la lechuga y la apariencia general. Además, se les mostró el formato para la
realización del análisis que se muestra en el Anexo II y se explicó su uso.
Los análisis se realizaron a los 0, 5 y 10 días en un horario de 10 a 11 de la
mañana en las cabinas para análisis sensorial con luz amarilla, ubicados en la
planta piloto del DECAB.
Cada panelista recibió una muestra de 25 g de LR lavada, troceada y escurrida,
en envases desechables.
2.2. ESTUDIO DEL EFECTO DE DOS SANITIZANTES NO
CONVENCIONALES EN LA CALIDAD DE LECHUGA DE
HOJA DE IV GAMA
2.2.1. PROCESAMIENTO PARA ELABORACIÓN DE LECHUGA DE HOJA DE
IV GAMA
El procesamiento para la elaboración de bolsas de 0,15 kg de LCG se observa en
la Figura 2.1 y fue el utilizado en las dos experimentaciones realizadas. Se trabajó
dentro de una cámara de refrigeración a 4 °C y 90 % de HR. Se utilizaron equipos
y materiales previamente desinfectados con agua clorada (200 ppm) y se empleó
todo el equipo necesario (cofia, mascarilla, guates, botas y mandil) para mantener
la higiene en el proceso.
34
Con el lavado se eliminó la tierra retenida en las hojas como consecuencia del
tipo de cultivo del que proviene la materia prima. En el procesamiento se
eliminaron los tallos y se trocearon las hojas según las cuadrículas de 3 x 4 cm de
la tabla de picar con cortes limpios para evitar mayor daño mecánico en la
hortaliza. El producto troceado se depositó directamente en una bolsa de malla de
nylon, para su posterior inmersión en los tratamientos sanitizantes.
En el escurrido se empleó la modalidad de centrifugado en una lavadora de ropa
marca Electrolux, modelo ELAV 8450 previamente lavada y desinfectada, en
donde se introdujeron las bolsas de malla de nylon después de ser sumergidas en
la solución sanitizante respectiva y se centrifugaron a 850 rpm durante 1 min.
Posteriormente se pesó y empacó la LCG en PP para obtener las bolsas de
0,15 kg que se almacenaron durante 10 días en refrigeración a 4 ± 1 °C con una
HR de 90 %.
Cosecha
Limpieza
Lavado
Picado(trozos de 4 x 3 cm)
Escurrido850 rpm, 1 min
Empacado
Transporte
Hojas viejas,amarillentas o con
daño mecánico
Aguapotable
Solución sanitizantesobrante
Tallos
Tierra, hojas dañadas,amarillentas, viejas
AlmacenamientoT: 4 ± 1°C, HR: 90 %,
t: 10 días
Lechuga variedad Romana enmadurez comercial
InmersiónSanitizante
Figura 2.1. Diagrama de bloques del procesamiento mínimo de lechuga IV gama variedad Romana.
35
2.2.2. SANITIZANTES NO CONVENCIONALES EN LA CALIDAD DE
LECHUGA DE HOJA DE IV GAMA
En el primer ensayo se empleó un diseño completamente al azar donde la
variable del proceso fue el sanitizante. Los sanitizantes empleados, sus códigos y
la concentración aplicada se presentan en la Tabla 2.1. El tiempo de inmersión
para todos los tratamientos fue de 2 min.
Tabla 2.1. Tratamientos del primer ensayo
Código Sanitizante Concentración
CSA1 Clorito de Sodio Acidificado 200 ppm
CSA2 Clorito de Sodio Acidificado 300 ppm
MZ1 Mezcla de ácidos: cítrico y ascórbico 0,5 %
MZ2 Mezcla de ácidos: cítrico y ascórbico 1 %
C Control (agua destilada) -
Estos tratamientos se aplicaron según el procesamiento observado en la Figura
2.1. Las soluciones se prepararon según el sanitizante empleado. Para CSA se
preparó una solución de ácido cítrico al 10 % para acidificar el dióxido de cloro
hasta un pH entre 2,3 y 2,9 (Madduri V., 2007, p. 2).
La relación entre el peso (kg) de la lechuga troceada y el volumen (L) de solución
sanitizante para la inmersión fue de 1:3.
Se prepararon un total de 92 bolsas de lechuga IV gama que se utilizaron en los
análisis (físicos, químicos, microbiológicos, sensoriales y en la determinación de
CO2 en el interior de los empaques) a los 0, 5 y 10 días, estos períodos se
denominaron entrada, salida 1 y salida 2, respectivamente. Las muestras se
mantuvieron en refrigeración a 4 ± 1 °C y HR de 90 % hasta el día de su análisis.
En la entrada se analizaron 7 bolsas, en la salida 1 se analizaron 35 bolsas, y en
la salida 2 se analizaron 35 bolsas. Adicionalmente, se destinaron 15 bolsas para
determinar la concentración de CO2 en el interior de los empaques en las salidas 1
y 2.
36
2.2.3. CARACTERIZACIÓN FÍSICA
En la caracterización física de la LR de IV gama se tomaron muestras al azar, se
realizaron los análisis: pérdida de peso, evaluación de la calidad visual y color,
cada análisis se realizó con 4 réplicas por tratamiento.
2.2.3.1. Pérdida de peso
Durante este análisis se pesaron las bolsas a la entrada y en las salidas 1 y 2, en
una balanza electrónica marca BOECO BBA51, Alemania, 4 100 g, 0,01 g. Los
resultados se obtuvieron en porcentaje de pérdida de peso según la siguiente
Fórmula (2.2)
Pérdida de peso (%) = 100 x (Fórmula 2.2)
Donde:
Po: Peso inicial (g)
Pf: Peso final (g)
2.2.3.2. Evaluación de la calidad visual
Para este análisis, el contenido de cada muestra (0,15 kg) destinada para esta
evaluación se dividió en 3 grupos (50 g) y en cada uno se evaluaron los atributos:
marchitez de las hojas y presencia de patógenos. Se evaluó un total de 12 grupos
por tratamiento.
En el Anexo III se presenta la escala para análisis de calidad visual con
fotografías (Figura AIII.1), la escala de valoración (Tabla AIII.1), rango de
calificación (Tabla AIII.2) y la fórmula de cálculo del índice de la calidad visual
(Fórmula AIII.1).
37
2.2.3.3. Color
Durante este análisis se usó el colorímetro Minolta, Japón, para medir el color en
el haz y envés de 4 trozos de LR de IV gama escogidos al azar de cuatro
muestras de cada tratamiento a la entrada y a las salidas 1 y 2.
Para expresar la variación de color registrada en los días de almacenamiento se
calculó el índice de color con la Fórmula 2.3, ya que los cambios que se producen
no son fácilmente perceptibles por el ojo humano (Martínez-Sánchez, Tudela,
Luna, Allende, y Gil, 2011, p. 36).
ΔE*=[(Lo* - L*)2+(ao* - a*)2+(bo* - b*)2]1/2 (Fórmula 2.3)
Donde:
ΔE: índice de color
Lo, ao, bo: cromaticidad L*, a* y b* en la entrada
L, a y b: cromaticidad L*, a* y b* en cada salida
2.2.4. CARACTERIZACIÓN QUÍMICA
Para la caracterización química se tomaron muestras al azar en la entrada y las
salidas 1 y 2. La obtención del extracto de las hojas de la hortaliza, y los análisis
de pH y AT se realizaron de la misma forma que para la materia prima como se
detalló en el acápite 2.1.3, con 4 réplicas por tratamiento.
2.2.5. ANÁLISIS MICROBIOLÓGICOS Y SENSORIALES
Los análisis microbiológicos y sensoriales se realizaron en la entrada y en las
salidas 1 y 2 siguiendo los métodos detallados para la materia prima en los
acápites 2.1.4. y 2.1.5.
38
El Ecuador tampoco posee una norma técnica para frutos y vegetales de IV gama,
en donde se especifiquen los límites aceptables de microorganismos (coliformes
totales, aerobios totales, mohos y levaduras) para su procesamiento y consumo.
Por esta razón se tomaron como referencia los límites establecidos por la
legislación española (Moragas y De Pablo Busto, 2013, p. 16) para productos de
IV gama (reconocidos como comidas preparadas envasadas a base de vegetales
crudos), en donde, el límite máximo aceptable para aerobios y coliformes totales
es de 106 UFC/g (Moragas y De Pablo Busto, 2013, p. 16). Esta legislación no
presenta límites aceptables para el contaje de mohos y levaduras, por lo que se
usó como referencia el límite máximo especificado por Ragaert, Jacxsens,
Vanderkinderen, Baert y Devlieghere (2011) para productos de IV gama que es
105 UFC/g (p.60).
2.2.6. DETERMINACIÓN DE CO2 EN EL INTERIOR DE LOS EMPAQUES
Para la determinación de CO2 en el interior de los empaques se adaptó un septum
a las bolsas empleadas.
Se introdujo una jeringa en el interior de los empaques por medio del septum y se
extrajeron muestras de gases del interior. Posteriormente se procedió a inyectar
en el analizador rápido de CO2 -O2 marca Post Harvest Research, modelo CG-
1000, USA provisto de un detector infrarrojo (Saltveit y Kader, 1997, p. 32), como
se muestra en el Anexo IV.
2.2.6.1. Análisis estadístico
Las interacciones de las variables en la presente experimentación se analizaron
estadísticamente mediante el empleo del análisis de varianza (ANOVA) en el
programa STATGRAPHICS Centurion XVI.
39
2.3. ESTUDIO DEL EFECTO DE LA APLICACIÓN DE
HIPOCLORITO DE SODIO Y UN SANITIZANTE
ALTERNATIVO EN LA CALIDAD DE LECHUGA DE HOJA
DE IV GAMA EMPACADA
Para este ensayo se siguió el procedimiento que se presentó en la Figura 2.1. Se
empleó un diseño factorial 3 x 2, donde las variables del proceso fueron:
sanitizante y el tipo de empaque empleado, como se detalla en la Tabla 2.2. Los
empaques empleados fueron PP y PEBD, ambos de 0,21 x 0,35 m y se comparó
el uso de NaClO y de CSA.
La solución sanitizantes de CSA se preparó de igual forma que para el primer
ensayo. En la solución de NaClO se ajustó el pH en 6,5.
La relación entre el peso de la lechuga troceada y el volumen de solución
sanitizante para la inmersión fue igualmente que en el ensayo inicial de 1 en 3.
Tabla 2.2. Tratamientos del ensayo final
Código Sanitizante Concentración (ppm) Tipo de empaque
AP CSA 300 PP
AE CSA 300 PEBD
HP Hipoclorito de sodio 150 PP
HE Hipoclorito de sodio 150 PEBD
CP Control (agua destilada) - PP
CE Control (agua destilada) - PEBD
El tiempo de inmersión de los tratamientos fue de 2 min, excepto para los
tratamientos con hipoclorito de sodio. La inmersión de dichos tratamientos se
realizó durante 15 min y se enjuagó con agua destilada a 0 °C por 2 min (Biazotto
et al., 2013, p. 674).
Se prepararon un total de 109 bolsas de LCG que se utilizaron en los análisis en
la entrada (7 bolsas), en la salida 1 (42 bolsas), y en la salida 2 (42 bolsas), y
además para la determinación del CO2 en el interior de los empaques (18 bolsas).
40
Las muestras se mantuvieron en refrigeración a 4 ± 1 °C y HR de 90 % hasta el
día de su análisis.
Las muestras se utilizaron en los análisis físicos (evaluación de la calidad visual,
pérdida de peso y color), químicos (pH, AT), microbiológicos, sensoriales y para la
determinación del CO2 en el interior de los empaques. Los análisis se realizaron
siguiendo los mismos procedimientos que se detallaron en los acápites 2.2.3.,
2.2.4., 2.2.5 y 2.2.6, con 4 repeticiones por tratamiento.
El análisis estadístico de este ensayo se realizó da la misma forma y con el
mismo programa utilizado en el primer ensayo.
2.4. ESTUDIO DE LA FISIOLOGÍA POSCOSECHA DE LA
LECHUGA DE HOJA DE IV GAMA
El estudio de la fisiología poscosecha se realizó mediante el uso del sistema
dinámico de respiración, que consistió en un compresor de aire, un tablero de
mezcla de gases, tres tableros secundarios, 12 jarras de respiración, 12
humidificadores, y mangueras conectados entre sí, el tablero de mezcla se
muestra detallado en el Anexo V (Figura AV.1).
En las jarras de respiración se introdujeron alrededor de 0,4 kg de lechuga entera
(materia prima) y LCG la cual se procesó con los tratamientos sanitizantes
señalados en el subcapítulo 2.4. El análisis se realizó por triplicado para cada
tratamiento sanitizante y para la hortaliza entera.
El sistema se ubicó en el interior de una cámara de refrigeración a 4 ± 1°C y HR
de 90 % por 14 días.
El flujo de aire que ingresó a las jarras se dejó pasar al tablero de mezcla de
gases con el uso de un compresor. El aire se reguló mediante las microválvulas
del tablero de mezcla de gases y del tablero secundario con un medidor de flujo
41
marca Cole Parmer, modelo 32648-10, USA, 0-500 sccm. El cálculo del flujo que
se ingresó a cada jarra se muestra en el Anexo V.
Se realizaron las mediciones de CO2 en la entrada y en la salida de cada jarra de
respiración por triplicado con una jeringa de 1mL (Figura AV.3) y se analizaron en
el equipo analizador rápido de CO2-O2 que se muestra en el Anexo IV.
Las mediciones de CO2 se realizaron hasta los 14 días, se registró el flujo de aire
que ingresó a cada cámara de respiración con el medidor de flujo y se verificó
visualmente que los humidificadores se encuentren trabajando correctamente.
2.5. ANÁLISIS ECONÓMICO
Dentro del análisis económico se realizó: la estimación de costos de
implementación del proceso de producción de LR de IV gama, el costeo del
producto final, el análisis de pérdidas y ganancias, el flujo de caja neto y se
calcularon los índices financieros del proyecto. Los cálculos se realizaron con
EXCEL 2010, se emplearon hojas de cálculo y se aplicaron formulas financieras
(Borgenvall, Jarskog, Murray y Palmer, 2003, pp.7-9).
La producción anual de lechuga var. romana de la empresa “La Huerta” se
consideró para la estimación de costos y se tomaron en cuenta 22 días
laborables.
El costo del producto final se determinó mediante la elaboración de un balance de
masa para establecer los materiales, insumos, suministros, entre otros,
necesarios para el procesamiento. Se consideraron los costos actuales directos
(materia prima, insumos y mano de obra), los costos actuales indirectos
(suministros, mano de obra indirecta) y la depreciación de equipos (a 10 años) e
instalaciones (20 años). Se consideró 15 % de utilidad en venta (incremento al
precio de venta al público).
42
Se estableció una vida útil del proyecto igual a 10 años, en base a este tiempo se
realizó el estado de pérdidas y ganancias para obtener el flujo de caja bruto. Se
calcularon las ventas para cada año en base a la producción anual de la empresa
“La Huerta” y se consideró un crecimiento anual del 5 %. Se calculó la utilidad en
operación y se consideraron los impuestos (renta 23 % y participación de
trabajadores 15%).
A partir del flujo de caja bruto se realizó el flujo de caja neto, para lo cual se
consideraron los ingresos (flujo de caja bruto, valor residual activo fijo, valor
residual del capital de trabajo y préstamo bancario) y los egresos (incremento del
capital de trabajo 10 % y amortizaciones) totales para cada año.
Finalmente se calcularon: los índices financieros Valor Actual Neto (VAN) y Tasa
Interna de Retorno (TIR), Punto de Equilibrio y la relación beneficio/costo del
proyecto. En base a esta información se determinó la rentabilidad del uso de
sanitizantes alternativos al NaClO.
43
3. RESULTADOS Y DISCUSIÓN
3.1. CARACTERÍSTICAS FÍSICAS, QUÍMICAS Y
MICROBIOLÓGICAS DE LA MATERIA PRIMA
Para determinar las características físicas, químicas y microbiológicas de la
materia prima se emplearon 50 lechugas var. romana (LR) con madurez
comercial. Se realizó una inspección visual y se determinó: el peso, la longitud, el
diámetro, el color, el pH, la acidez titulable (AT) y la calidad microbiológica
(aerobios totales, coliformes totales, mohos y levaduras). Adicionalmente se
realizó un análisis sensorial.
3.1.1. CARACTERIZACIÓN FÍSICA
Los resultados de la caracterización física se presentan en la Tabla 3.1. El peso
promedio fue de 0,234 kg y los pesos mínimos y máximos registrados fueron
0,185 y 0,368 kg, respectivamente.
Los pesos mínimos registrados en esta experimentación se asemejan al peso
promedio obtenido por Pólit et al., (2007), quienes emplearon en su
experimentación LR orgánica cosechada en su madurez comercial cuyo peso
promedio fue de 0,179 kg ± 0,074 (p. 12). Por otro lado, Luna et al., (2013)
investigaron diferentes regímenes de riego en el cultivo de LR que fue cosechada
a los 70 días después del trasplante, al igual que las lechugas empleadas en esta
experimentación, donde registraron valores altos de 0,6 kg para el peso (p. 10).
Este valor es superior a los obtenidos en esta experimentación y refleja la
importancia del riego en el cultivo de esta hortaliza.
Según Serra (2005) la LR se clasifica según el valor del diámetro ecuatorial. El
valor registrado para este parámetro fue de 24,65 cm y corresponde a un tamaño
A (p. 4).
44
Los parámetros de color: cromaticidad L* (luminosidad), cromaticidad a* (rojo-
verde), cromaticidad b* (azul-amarillo), obtenidos en la materia prima para esta
experimentación se presentan en la Tabla 3.1. Los valores para el haz se
asemejan a los valores de L* y b* observados por Pólit et al., (2007) los cuales
fueron 46,10 ± 1,79, y 24,98 ±1,76 respectivamente (p.12).
3.1.2. INSPECCIÓN VISUAL
La inspección visual de la materia prima se realizó según la norma técnica
mexicana (Serra, 2005, p.2) debido a que no existe una norma ecuatoriana de
clasificación para la hortalizas.
Las hojas sufrieron daño mecánico en el transporte debido a un mal
almacenamiento de los vegetales en las kavetas una vez cosechadas. En general,
en la materia prima que registraron daños menores, mayores y críticos, por lo
tanto, en la materia prima cosechada se presentaron los tres grados de calidad
que señala la norma técnica mexicana. El 81,4 % que no registró ningún tipo de
daño correspondió al grado extra, el 3,6 % al grado 1 y el 3 % al grado 2 (Serra,
2005, p. 3).
3.1.3. CARACTERIZACIÓN QUÍMICA
Los resultados de la caracterización química de la materia prima se muestran en
la Tabla 3.1. La AT registrada fue 0,5 g de ácido cítrico/100 g de lechuga fresca y
el valor de pH obtenido fue de 6,42 que es semejante al valor de 6 de referencia
para lechuga fresca (Jay, 2004, p. 42).
El valor de AT registrado es cercano al valor descrito por Olfati et al., (2011),
quienes evaluaron la AT para tres tipos de lechuga, en diferentes fechas de
cosecha. En este estudio, el valor para LR entera cosechada a los 100 días
(trasplante + siembra) fue de 0,44 %. Al cosechar 7 o 14 días después la acidez
disminuyó a 0,14 % y 0,12 %, respectivamente (p. 1649), lo cual indica que la
45
fecha de cosecha de la LR para esta experimentación fue la apropiada para
obtener una materia prima con alta cantidad de ácidos orgánicos.
Tabla 3.1. Caracterización física, química, microbiológica y sensorial de la materia prima
Variable Valor
Características físicas1
Peso (g) 233,9 ± 36,8
Longitud (cm) 37,9 ± 5,0
Diámetro (cm) 24,7 ± 2,5
Color (haz)
L* 46,4 ± 2,0
a* -21,2 ± 2,3
b* 24,9 ± 3,3
Color (envés)
L* 43,4 ± 1,6
a* -19,6 ± 1,5
b* 22,8 ± 3,0
Características químicas1
pH 6,4 ± 0,1
Acidez titulable (g ácido cítrico/100 g producto) 0,5 ± 0,0
Características microbiológicas2
Aerobios totales (UFC/g) 1,12 E+3
Coliformes totales (UFC/g) 2,10 E+3
Mohos y levaduras (UFC/g) 1,35 E+3
Análisis Sensorial3
Apariencia 8,3 ± 1,2
Sabor 7,5 ± 2,4
Acidez 1,9 ± 2,7
Sabores extraños 0,8 ± 1,4 1Físicas y químicas: x ± (n= 50) 2Microbiológico: x ± (n= 1) 3Sensorial: x ± (n= 12)
3.1.4. CARACTERIZACIÓN MICROBIOLÓGICA
46
En la materia prima se registró presencia de mohos, levaduras, aerobios y
coliformes totales, los resultados obtenidos en unidades formadoras de colonia
por gramo de vegetal fresco (UFC/g), se observan en la Tabla 3.1.
Smeu y Popa (2011) describieron contajes para aerobios totales, mohos y
levaduras con valores de 4,7x106 UFC/g y 1,5x104 UFC/g, respectivamente para
LR entera. Estos valores son mayores a los registrados en la materia prima usada
en esta experimentación (Tabla 3.1). Por otro lado, estos investigadores
reportaron un contaje de 1,5x102 UFC/g para coliformes totales (p. 141), que es
menor al presentado por la materia prima de esta experimentación.
El contaje de aerobios totales y coliformes totales cumplieron con los
requerimientos de la legislación española (Moragas y De Pablo Busto, 2013, p.
16), en donde se señala como requerimiento para vegetales frescos un contaje
máximo de aerobios totales de 105 UFC/g y el límite máximo permitido en el
contaje de coliformes es de 104 UFC/g (Moragas y De Pablo Busto, 2013, p. 16).
Por otro lado, para el contaje de mohos y levaduras se especifica un límite
máximo de 104 UFC/g (Ragaert et al., 2011, p. 60) este valor es superior al
registrado en esta experimentación, por lo tanto el contaje microbiológico para
mohos y levaduras en la materia prima también se mantuvo dentro de los rangos
permitidos de crecimiento microbiano.
3.1.5. ANÁLISIS SENSORIAL
Los resultados obtenidos de la prueba descriptiva de escalas no estructuradas de
la materia prima realizada con 12 panelistas señalaron que, la LR presentó una
apariencia fresca, con calificación mayor a 7, también presentó un sabor intenso y
no se detectó presencia de sabores extraños.
Por otro lado, no se presentó una acidez intensa pues los valores registrados de
acidez fueron inferiores a 2. Las valoraciones obtenidas para cada atributo se
presentan en la Tabla 3.1.
47
3.2. EFECTO DE DOS SANITIZANTES NO CONVENCIONALES EN
LA CALIDAD DE LECHUGA var. ROMANA DE IV GAMA
En el primer ensayo, se emplearon: CSA y una mezcla de ácidos (ác. cítrico y ác.
ascórbico) como sanitizantes y agua destilada como tratamiento control (C). Las
concentraciones del CSA fueron: 200 ppm (CSA1) y 300 ppm (CSA2). Para la
mezcla de ácidos se empleó: 0,5 % cítrico y 0,5 % ascórbico (MZ1) y 1 % cítrico y
1 % ascórbico (MZ2).
Se determinó la pérdida de peso, el color, el pH y la AT, se realizó una evaluación
a la calidad visual, análisis sensoriales, análisis microbiológicos y se determinó la
concentración de CO2 en el interior de los empaques. Se realizaron 4 repeticiones
de cada análisis a la entrada y a las salidas 1 y 2, las muestras se mantuvieron a
4 ± 1 °C y 90 % de HR.
3.2.1. PÉRDIDA DE PESO
La pérdida de peso registrada en cada tratamiento sanitizante se observa en la
Figura 3.1. Ésta pudo ser consecuencia del aumento de la tasa de respiración por
el corte realizado en el procesamiento y por la transpiración. Según el análisis
estadístico, no existió diferencia significativa entre la pérdida de peso registrada
en cada tratamiento en las salidas 1 y 2.
Los valores obtenidos en esta experimentación para la pérdida de peso se
encontraron entre 1,1 % y 1,2 % en la salida 1 y entre 1,5 % y 1,6 % en la salida
2, respectivamente. Estos valores fueron menores a los obtenidos por Smeu y
Popa (2011), quienes obtuvieron una pérdida de peso de 24,93 % y 21,38 % para
LR de IV gama sin empacar, tratada con agua potable y agua clorada,
respectivamente, al segundo día de almacenamiento a 4 °C. En el tercer día de
almacenamiento se registró una pérdida de 35,11% y 27,12 % respectivamente
(p. 141).
48
Figura 3.1. Pérdida de peso registrada en la LR de IV gama sumergida en agua destilada (C), 0,5 % ác. cítrico + 0,5 % ác. ascórbico (MZ1), 1 % ác. cítrico + 1 % ác. ascórbico
(MZ2), 200 ppm CSA (CSA1) y 300 ppm CSA (CSA2), almacenada hasta 10 días a 4 °C y 90 % de HR. Para cada día, las columnas de cada tratamiento que tienen letras diferentes
presentan diferencias estadísticamente significativas por la prueba de Fisher (LSD) (p<0,05) aplicada después del ANOVA
Las pérdidas de peso registradas en esta experimentación, comparadas con las
obtenidas con Smeu y Popa (2011) señalan la importancia de usar empaques en
los productos mínimamente procesados para extender su vida útil.
3.2.2. EVALUACIÓN DE LA CALIDAD VISUAL DE LECHUGA VAR. ROMANA
DE IV GAMA
Se evaluó la calidad visual de 12 grupos de LR de IV gama por cada tratamiento
aplicado. Los atributos evaluados fueron: marchitez y presencia de patógenos en
una escala de valoración. Los índices de evaluación de la calidad visual obtenidos
para cada tratamiento y para cada atributo se muestran en la Tabla 3.2.
Las muestras de LR de IV gama sometidas a los tratamientos C, MZ2 y CSA2
presentaron menor marchitez, los valores que registraron en la escala de
valoración fueron los mayores, se encontraron entre 3,3 y 3,5, en la salida 1, en
comparación con el valor inicial igual a 5, se observa que existió un considerable
aumento de la marchitez en los primeros días de almacenamiento, esto pudo ser
0,0
0,2
0,4
0,6
0,8
1,0
1,2
1,4
1,6
1,8
5 10
Pér
did
a d
e p
eso
(%)
Tiempo de almacenamiento (días)
C
MZ1
MZ2
CSA1
CSA2
a a a a
a
a a a a a
49
resultado de la manipulación y corte realizados a la hortaliza en la producción de
LR de IV gama.
Tabla 3.2. Índice de evaluación de la calidad visual de Lechuga (Lactuca sativa) var. romana de IV gama almacenada hasta los 10 días a 4 °C y 90 % HR.
Tratamiento
Atributo Día C MZ1 MZ2 CSA1 CSA2
Marchitez
Entrada 5,0±0,0a 5,0±0,0a 5,0±0,0a 5,0±0,0a 5,0±0,0a
Salida 1 3,3±0,5b 3,0±0,0a 3,3±0,5ab 3,1±0,3a 3,5±0,5b
Salida 2 2,4±0,5a 2,3±0,5a 2,5±0,5a 3,0±0,4b 3,0±0,0b
Presencia patógenos
Entrada 5,0±0,0a 5,0±0,0a 5,0±0,0a 5,0±0,0a 5,0±0,0a
Salida 1 4,7±0,5a 4,8±0,5a 4,8±0,4a 4,6±0,5a 5,0±0,0a
Salida 2 2,3±0,5a 2,5±0,5a 2,4±0,5a 2,3±0,5a 2,6±0,5a
Las letras diferentes indican las diferencias estadísticamente significativas por la prueba de Fisher (LSD) (p<0,05) aplicada después del ANOVA. C: tratamiento control, MZ1: 0,5 % ác. cítrico + 0,5 % ác. ascórbico, MZ2: 1 % ác. cítrico + 1 % ác. ascórbico, CSA1: 200 ppm CSA, CSA2: 300 ppm CSA
x ± (n= 12)
Por otro lado, las muestras sometidas a los tratamientos CSA1 y CSA2,
presentaron menor marchitez y los valores registrados fueron iguales a 3, a
diferencia de los tratamientos C, MZ1 y MZ2 que presentaron valores entre 2,3 y
2,5, en la salida 2, lo que indica que el mayor aumento de la marchitez fue hasta
la salida 1.
En las muestras de todos los tratamientos no se registró presencia de patógenos
en la salida 1, a diferencia de lo observado en la salida 2, en donde se observó la
presencia de patógenos en todas las muestras, como manchas oscuras alrededor
de las nervaduras de las hojas de LR de IV gama.
Los valores de los índices de evaluación permitieron determinar la calidad visual
de la LR de IV gama sometida a los tratamientos C, MZ1, MZ2, CSA1 y CSA2, en
la entrada y en las salidas 1 y 2, la cual se muestra en la Tabla 3.3.
50
En general la calidad de la LR de IV gama de los tratamientos C y MZ1 no
presentó las características para su comercialización en la salida 1. A diferencia
de la LR de IV gama con los tratamientos MZ2, CSA1 y CSA2, que si presentó las
características para su comercialización. Por otro lado, en la salida 2, la LR de IV
gama de todos los tratamientos presentó deterioro y no fue apta para la
comercialización.
Tabla 3.3. Evaluación de la calidad visual para la LR de IV gama.
C: tratamiento control, MZ1: 0,5 % ác. cítrico + 0,5 % ác. ascórbico, MZ2: 1 % ác. cítrico + 1 % ác. ascórbico, CSA1: 200 ppm CSA, CSA2: 300 ppm CSA
I= 4 - 5, mantiene las características iniciales
II= 3 - 4, presenta deterioro pero es consumible
III=<3, no apto para comercialización
3.2.3. COLOR
El principal factor sensorial considerado por los consumidores y el limitante de la
vida poscosecha de los PCG es el color (León, Frezza, Chiesa, 2007, p.669).
El índice de color (ΔE) del haz y del envés de las muestras de LR de IV gama con
los tratamientos sanitizantes aplicados se encontró entre 2,86 y 5,67 para el haz,
entre 2,50 y 4,86 para el envés, en la salida 1, entre 2,97 y 6,73 para el haz, y
entre 4,30 y 6,52 para el envés en la salida 2.
Pace, Cardinali, D´Antuono, Serio y Cefola (2014), trabajaron con lechuga iceberg
troceada, que fue lavada con agua clorada (100 ppm), empacada en PEBD y
almacenada a 4°C hasta 16 días, el ΔE registrado a los 6 días fue de 6,50 y a los
10 días fue de 11,82, las variaciones de color que obtuvieron se debieron al
Tratamientos sanitizantes
Día C MZ1 MZ2 CSA1 CSA2
Entrada I I I I I
Salida 1 III III II II II
Salida 2 III III III III III
51
incremento de la actividad enzimática en la lechuga de IV gama como resultado
del corte efectuado en el procesamiento (pp. 21, 23).
Los valores de ΔE obtenidos en esta experimentación para el haz y el envés en
las salidas 1 y 2 son inferiores a los presentados por Pace et al., (2014) y
pudieron ser resultado de la manipulación y corte de la materia prima ya que no
se registró diferencia significativa del ΔE entre los tratamientos aplicados.
Por otro lado, los ΔE registrados en esta experimentación difieren de los valores
presentados por Martínez-Sánchez et al., (2011). Estos investigadores aplicaron
luz de alta intensidad en LR de IV gama para extender su vida útil y los valores de
ΔE obtenidos fueron 80 y 18 para un almacenamiento con luz y en oscuridad
respectivamente, las muestras se almacenaron a 4 °C por 3 días y a 7 °C por 7
días (p. 38). Estos valores son superiores a los registrados por los tratamientos
con sanitizantes químicos lo que sugiere que los tratamientos químicos no
modifican el color de los vegetales.
3.2.4. pH Y ACIDEZ TITULABLE
Los valores de pH que reportaron las muestras de LR de IV gama tratadas con los
sanitizantes alternativos en ésta experimentación se presenta en la Figuras 3.2.
El pH de la LR de IV gama se incrementó en el almacenamiento. El sanitizante
empleado y las concentraciones aplicadas influyeron en el valor del pH. Entre los
tratamientos aplicados se registraron diferencias estadísticamente significativas.
En la salida 1, el tratamiento C incrementó su valor de pH en alrededor de 4,73 %,
mientras que el tratamiento CSA2 registró el valor menor de pH. Por su parte el
tratamiento MZ2 presentó el valor de pH más alto igual a 6,77.
52
Figura 3.2. Valores de pH de LR de IV gama sumergida en sumergida en agua destilada (C), 0,5 % ác. cítrico + 0,5 % ác. ascórbico (MZ1), 1 % ác. cítrico + 1 % ác. ascórbico
(MZ2), 200 ppm CSA (CSA1) y 300 ppm CSA (CSA2), almacenada hasta 10 días a 4 °C y 90 % HR. Para cada día, las columnas de cada tratamiento que tienen letras diferentes
presentan diferencias estadísticamente significativas por la prueba de Fisher (LSD) (p<0,05) aplicada después del ANOVA
Escobar, Márquez, Restrepo y Pérez (2014) también señalaron incrementos de
los valores de pH en el almacenamiento de una mezcla de vegetales IV gama
(brócoli, zucchini, apio y zanahoria) sometidos a tratamiento térmico y con un
recubrimiento comestible. En la mezcla de vegetales almacenados a 4 °C y 95 %
de HR, el pH aumentó alrededor de 4 unidades a los 6 días de almacenada la
mezcla (p. 7241). En esta experimentación, los cambios de pH no fueron mayores
a la unidad, esto señala que el tratamiento térmico y la aplicación de
recubrimientos comestibles pueden causar mayores cambios de pH a diferencia
de los tratamientos químicos.
En la salida 2, el tratamiento MZ2 aumentó su valor de pH en alrededor de
8,93 %, y nuevamente registró el valor de pH más alto igual a 7,38. Por otro lado,
5,8
6,0
6,2
6,4
6,6
6,8
7,0
7,2
7,4
7,6
0 5 10
pH
Tiempo de almacenamiento (días)
C
MZ1
MZ2
CSA1
CSA2
a a a a a
a a b bc c
bc cd d
a ab
53
el tratamiento CSA2 aumentó en alrededor de 8,50 % y fue el tratamiento que
registró el valor más bajo igual a 7,22. Los valores de pH mostraron un
incremento que pudo ser resultado del consumo de ácidos orgánicos propios del
vegetal (Escobar et al., 2014, p.7241).
Por otro lado, Alegria, Pinheiro, Gongalves, Fernandes, Moldäo y Abreu (2009)
señalan que las variaciones de pH pueden deberse al crecimiento microbiano,
estos investigadores trabajaron con zanahoria rallada (Daucus carota L. cv.
Nantes) almacenada por 10 días a 5 °C, sometida a tratamiento térmico (100 °C
por 45 s) y sumergida en agua clorada (200 ppm por 1 min a 5 °C), registraron un
aumento leve del pH a los 7 días de almacenamiento (p. 159).
En general los valores de pH que se presentaron en la salida 2 fueron mayores a
los que se presentaron en la salida 1.
Por otro lado, la AT se redujo para todos los tratamientos en las dos salidas como
se observa en la Figura 3.3. Los tratamientos sanitizantes no influyeron en el valor
de la AT hasta la salida 1 y los valores se encontraron entre 0,30 y 0,36 g de
ácido cítrico / g de LR de IV gama.
En la salida 2, se registraron diferencias estadísticamente significativas. El
tratamiento CSA2 registró la menor reducción igual a 17,4 % y el valor registrado
fue 0,30 g de ácido cítrico/g de LR de IV gama.
Los tratamientos que presentaron los valores más bajos de AT fueron MZ1 y
CSA1 con un valor de 0,22 y 0,23 g de ácido cítrico/g de LR de IV gama,
respectivamente en la salida 2. Lo obtenido en este ensayo coincide con lo
obtenido por Mattos, Moretti, Chitarra y Prado (2007), quienes registraron los
valores más bajos de AT en lechuga de cabeza var. veronica de IV gama al final
del almacenamiento a 5 °C. Esto se debió a que los ácidos orgánicos son
sustratos utilizados en la actividad respiratoria, por lo que un aumento de la
misma, incrementa su consumo (p. 506).
54
Figura 3.3. Valores de AT de LR de IV gama sumergida en agua destilada (C), 0,5 % ác. cítrico + 0,5 % ác. ascórbico (MZ1), 1 % ác. cítrico + 1 % ác. ascórbico (MZ2), 200 ppm CSA (CSA1) y 300 ppm CSA (CSA2), almacenada hasta 10 días a 4 °C y 90 % HR. Para
cada día, las columnas de cada tratamiento que tienen letras diferentes presentan diferencias estadísticamente significativas por la prueba de Fisher (LSD) (p<0,05) aplicada
después del ANOVA
3.2.5. ANÁLISIS MICROBIOLÓGICO DE LECHUGA VAR. ROMANA DE IV
GAMA
Los resultados de los análisis microbiológicos realizados a la LR de IV gama
sumergida en tratamientos sanitizantes no convencionales, almacenada a 4 °C y
90 % HR se presentan en la Figura 3.4.
Los contajes microbiológicos para aerobios totales, coliformes totales, mohos y
levaduras de todos los tratamientos se analizaron en base a los límites máximos
aceptables de la legislación española que son de 106 UFC/g para aerobios y
coliformes totales (Moragas y De Pablo Busto, 2013, p. 16), y de 105 UFC/g para
mohos y levaduras (Ragaert et al., 2011, p.60).
0,0
0,1
0,2
0,3
0,4
0,5
0,6
0,7
0 5 10
AT
(g
de
ácid
o cí
tric
o/10
0g le
chu
ga)
Tiempo de almacenamiento (días)
C
MZ1
MZ2
CSA1
CSA2
a a a a a
a a a
a a
a a
ab a
b
55
Los tratamientos aplicados a la LR de IV gama fueron efectivos para reducir la
carga microbiana de aerobios totales, coliformes totales, mohos y levaduras.
El tratamiento C presentó una reducción considerable en el contaje de aerobios y
coliformes totales, sin embargo en el contaje de mohos y levaduras no se
presentó ninguna reducción en la salida 1. En este tratamiento todos los contajes
aumentaron en la salida 2.
El tratamiento con CSA en las dos concentraciones (200 y 300 ppm) demostró
tener una actividad sanitizante efectiva para reducir el contaje de coliformes
totales ya que en la salida 1, el tratamiento CSA2 registró la mayor reducción
igual a 8,5x103 UFC/g. En la salida 2, los contajes de coliformes totales de los
tratamientos CSA1 y CSA2 fueron los menores iguales a 1,5x104 y 5x103 UFC/g,
respectivamente y se mantuvieron dentro del límite aceptable para la
comercialización.
En el contaje de coliformes, las concentraciones aplicadas de CSA mostraron una
relación inversa, a mayor concentración de CSA, menor contaje microbiológico.
Por otro lado el CSA presentó efectividad para prevenir el crecimiento de aerobios
totales. En la salida 1, el contaje de aerobios totales de los tratamientos MZ2 y
CSA2 fue el más bajo, igual a 103 UFC/g y en la salida 2 el contaje del tratamiento
CSA1 fue el menor registrado igual a 1,60x104 UFC/g.
El tratamiento de LR de IV gama con la mezcla de ácidos cítrico y ascórbico en
las dos concentraciones (0,5 y 1 %) registró una efectividad menor a la
presentada por los dos tratamientos con CSA en el contaje de coliformes totales
en la salida 2. Por otro lado, los dos sanitizantes presentaron efectividad similar al
trabajar con las concentraciones altas (300 ppm CSA y 1 % ac. cítrico y 1 % ac.
ascórbico) para el contaje de aerobios totales en la salida 1.
Los contajes de aerobios totales registrados en los tratamientos MZ1 y MZ2 en la
salida 1 fueron de 104 UFC/g y 103 UFC/g y en la salida 2 fueron de 5,8x104 y
4,40x104 UFC/g, respectivamente. Estos resultados coinciden con lo presentado
56
Figura 3.4. Resultados del contaje microbiológico de aerobios totales (A), coliformes totales (B) y mohos y levaduras (C) en LR de IV sumergida en agua destilada (C), 0,5 % ác. cítrico + 0,5 % ác. ascórbico (MZ1), 1 % ác. cítrico + 1 % ác. ascórbico (MZ2), 200
ppm CSA (CSA1) y 300 ppm CSA (CSA2), almacenada hasta 10 días a 4 °C y 90 % HR.
0E+0
2E+4
4E+4
6E+4
8E+4
0 5 10
Aer
obio
s to
tale
s (U
FC
/g)
Tiempo de almacenamiento (días)
C
MZ1
MZ2
CSA1
CSA2
A
0E+0
2E+4
4E+4
6E+4
8E+4
0 5 10
Col
ifor
mes
tot
ales
(U
FC
/g)
Tiempo de almacenamiento (días)
C
MZ1
MZ2
CSA1
CSA2
B
0E+0
2E+4
4E+4
6E+4
8E+4
0 5 10
Moh
os y
leva
du
ras
(UF
C/g
)
Tiempo de almacenamiento (días)
C
MZ1
MZ2
CSA1
CSA2
C
57
por Toledo (2009), quien aplicó 1 % de ácido cítrico y 1 % de ácido ascórbico en
tres variedades de lechuga y las almacenó a 4 °C y 85 % HR por 7 días. En estas
condiciones el contaje de aerobios totales fue de 3,7x104 UFC/g en lechuga var.
escarola, 0,8x104 UFC/g en lechuga var. cos o romana y 8.104 UFC/g en lechuga
var. milanesa (p. 16).
Los tratamientos con CSA mostraron efectividad para la reducción de mohos y
levaduras. La LR de IV gama con CSA2 registró el menor contaje en la salida 1,
mientras que la muestra con CSA1 registró el menor contaje en la salida 2.
En general, los resultados de los contajes microbiológicos para aerobios,
coliformes totales, mohos y levaduras, se encuentran dentro de los límites
aceptables establecidos por la legislación española (Moragas y De Pablo Busto,
2013, p.16) para aerobios totales y coliformes totales y, los establecidos por
Ragaert et al., (2011) para mohos y levaduras (p.60).
La presencia de microorganismos como mohos, levaduras y aerobios totales
puede provocar la degradación comercial de los productos. Los resultados
obtenidos de los análisis microbiológicos coinciden con los resultados de la
evaluación de la calidad visual. En donde los tratamientos C, MZ1 y MZ2
presentaron mayor deterioro en la salida 2.
3.2.6. ANALISIS SENSORIAL DE LECHUGA VAR. ROMANA DE IV GAMA
El análisis sensorial se realizó con 12 panelistas semi entrenados en la entrada y
en las salidas 1 y 2. Consistió en una prueba descriptiva de escalas no
estructuradas en donde se evaluaron los parámetros: apariencia, acidez, sabor y
presencia de sabores extraños. Los resultados obtenidos se presentan en la
Tabla 3.4.
Los tratamientos sanitizantes no convencionales aplicados afectaron
significativamente la aBpariencia de la LR de IV gama en la salida 2. Las
58
muestras con CSA1 y CSA2 presentaron calificaciones superiores a 6,5 y fueron
las mejores a lo largo del almacenamiento. En la salida 2, los tratamientos MZ1 y
MZ2 registraron calificaciones iguales a 3,21 y 3,54, respectivamente. El
tratamiento control se mantuvo en una valoración cercana a 5 en las salidas 1 y 2.
Estos resultados coinciden con los resultados del análisis de la evaluación de la
calidad visual y el análisis microbiológico en donde los tratamientos con CSA
presentaron menor marchitez y menores contajes microbiológicos.
Las calificaciones registradas para el parámetro acidez no presentaron diferencias
significativas. Las calificaciones fueron menores a 3 en la salida 1 y menores a 2
en la salida 2, por lo tanto la LR de IV gama presentó baja acidez durante el
ensayo.
En esta experimentación, la acidez registrada por los panelistas fue baja, mientras
que los valores de pH fueron cercanos a la neutralidad, esto se explica ya que el
pH no es la única característica que ayuda a la predicción del sabor, la
característica que predice de mejor manera el sabor es la AT (Sandler y Murphy,
2010, p. 221), lo cual coincide con los resultados obtenidos.
En la evaluación del parámetro sabor, no se presentaron diferencias significativas
entre los tratamientos sanitizantes aplicados, en la salida 1. Las calificaciones
asignadas para este parámetro se mantuvieron entre 4,8 y 6,4, lo cual señala que
la LR de IV gama con los tratamientos alternativos no perdió su sabor
característico en la salida 1.
Por otro lado, los tratamientos aplicados afectaron significativamente el sabor de
LR de IV gama en la salida 2. Los tratamientos C, MZ1 y CSA2 presentaron
diferencias significativas, los valores registrados para estos tratamientos fueron de
2,5, 3,7 y 5 respectivamente. Con la aplicación de los tratamientos C y MZ1 el
sabor de la LR de IV gama se registró como insípido en la salida 2.
La aplicación de tratamientos sanitizantes alternativos en LR de IV gama no
provocó la presencia de sabores extraños en el producto final. No se registraron
59
Tab
la 3
.4. R
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Sal
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1 S
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Sal
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2 E
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Sal
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1 S
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a 2
En
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a S
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a 1
Sal
ida
2
C
8,2±
1,1a
5,5±
2,3ab
5,
0±1,
8bc
2,3±
2,4a
2,4±
2,4a
1,7±
1,2ab
6,
7±2,
4a 6,
1±2,
6a 2,
5±2,
5a 2,
4±2,
5a 1,
9±2,
0a 2,
7±2,
3a
MZ
1 8,
2±1,
1a 5,
0±2,
7ab
3,2±
1,4a
2,3±
2,4a
2,0±
2,0a
2,9±
2,6b
6,7±
2,4a
5,4±
2,5a
3,7±
2,0a
2,4±
2,5a
2,9±
2,7ab
3,
1±2,
9a
MZ
2 8,
2±1,
1a 4,
7±2,
5a 3,
5±2,
2ab
2,3±
2,4a
2,6±
1,6a
1,3±
1,2a
6,7±
2,4a
4,8±
2,2a
3,8±
2,5a
2,4±
2,5a
4,1±
2,5b
2,5±
2,5a
CS
A1
8,2±
1,1a
5,9±
1,5ab
4,
7±2,
2ab
2,3±
2,4a
2,6±
2,2a
1,4±
1,3a
6,7±
2,4a
5,3±
2,0a
3,3±
2,2ª
2,
4±2,
5a 2,
9±1,
9ab
2,3±
2,4a
CS
A2
8,2±
1,1a
6,7±
2,7b
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2,4a
2,6±
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1,7±
1,6ab
6,
7±2,
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4±2,
9a 5,
0±2,
5a 2,
4±2,
5a 2,
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2a 2,
1±2,
3a
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0,5
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c. c
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c. a
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, MZ
2: 1
% á
c. c
ítri
co +
1 %
ác.
asc
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co, C
SA
1: 2
00 p
pm C
SA
, CS
A2:
300
ppm
CS
A
x ±
(n
= 1
2)
60
diferencias significativas entre los tratamientos sanitizantes aplicados para el
parámetro sabores extraños. En su mayoría las evaluaciones de los panelistas
reportaron valores menores que 3 en la salida 1, lo que indica ausencia de
sabores extraños. De manera similar se registraron bajas calificaciones para la LR
de IV gama en la salida 2.
3.2.7. CONCENTRACIÓN DE CO2 EN EL INTERIOR DE LOS EMPAQUES
Las muestras empleadas en esta experimentación se encontraron en atmósfera
modificada pasiva, que es creada por la respiración del producto y la
permeabilidad de los empaques (Kader, 2002a, p. 142).
Las concentraciones de CO2 en el interior de los empaques de PP con LR de IV
gama sumergida en sanitizantes no convencionales, se presentan en la Figura
3.5.
Figura 3.5. Concentración de CO2 en el interior de los empaques de LR de IV gama sumergida en agua destilada (C), 0,5 % ác. cítrico + 0,5 % ác. ascórbico (MZ1), 1 % ác.
cítrico + 1 % ác. ascórbico (MZ2), 200 ppm CSA (CSA1) y 300 ppm CSA (CSA2), almacenada hasta 10 días a 4 °C y 90 % HR.
0
1
2
3
4
5
6
7
8
9
0 5 10
Con
cent
raci
ónn
de C
O2
(%
)
Tiempo de almacenamiento (días)
C
MZ1
MZ2
CSA1
CSA2
61
Los tratamientos sanitizantes aplicados en la LR de IV gama influyeron en la
concentración de CO2 en el interior de los empaques.
En las bolsas con LR de IV gama con los tratamientos MZ2 y MZ1 se registraron
las concentraciones más altas iguales a 7,92 y 7,88 % respectivamente, mientras
que los tratamientos C, CSA1 y CSA2 presentaron concentraciones similares
entre 5,5 y 6 %, en la salida 1.
Las bolsas de los tratamientos MZ1, MZ2 y CSA2 registraron reducciones de
20, 9,8 y 14,2 % respectivamente, en la salida 2. Sin embargo, la concentración
de CO2 registrada por las bolsas del tratamiento MZ2, continuó siendo la más alta
igual a 7,1 %.
Los datos registrados en esta experimentación coinciden con lo presentado por
Toledo (2009), quien obtuvo una disminución de la concentración de CO2 en el
interior de los empaques de lechuga var. milanesa tratada con 1 % de ác.
ascórbico + 1 % ác cítrico, almacenada a 4 °C y 85 % HR por 7 días, el valor
obtenido al final del almacenamiento fue igual a 7,29 % y fue el más alto en esa
experimentación (p.12). Esto pudo ser debido al crecimiento microbiano y por el
deterioro del producto a lo largo del almacenamiento.
Por otro lado, los tratamientos C y CSA1 reportaron incrementos de 16,6 % y
14,2 % respectivamente, en la salida 2.
En general las concentraciones de CO2 se mantuvieron entre 5,59 % y 7,92 %, en
la salida 1 y entre 4,96 % y 7,14 %, en la salida 2. Las concentraciones obtenidas
se encuentran dentro del rango recomendado por Farber, et al., (2003) para la
composición atmosférica de LR de IV gama, que es de 5 a 10 % de CO2 (p. 146).
Sin embargo en los tratamientos MZ1 y MZ2, se observó pardeamiento en la
nervadura central en la salida 1, debido a las concentraciones registradas.
62
3.3. EFECTO DE LA APLICACIÓN DE HIPOCLORITO DE SODIO Y
UN SANITIZANTE NO CONVENCIONAL EN LA CALIDAD DE
LECHUGA DE HOJA DE IV GAMA EMPACADA CON DOS
TIPOS DE EMPAQUE
El NaClO es un sanitizante efectivo y de bajo costo, es el más empleado en la
industria en la elaboración de productos IV gama. Se lo aplica en la etapa de
lavado y desinfección para reducir la carga microbiana de los productos. Sin
embargo, su capacidad para producir residuos tóxicos para el ser humano como
trihalometanos y cloraminas hace necesaria la búsqueda de sanitizantes
alternativos que permitan su reemplazo.
En este estudio del efecto de la aplicación de NaClO y un sanitizante no
convencional en la calidad de lechuga de hoja de IV gama empacada con dos
tipos de empaque, los tratamientos fueron: 300 ppm de CSA y PP como material
de empaque (AP), 300 ppm de CSA y PEBD como material de empaque (AE),
150 ppm de NaClO y PP como material de empaque (HP), 150 ppm de NaClO y
PEBD como material de empaque (HE), agua destilada como tratamiento control y
PP como material de empaque (CP) y tratamiento control con PEBD como
material de empaque (CE).
Se realizaron análisis físicos (pérdida de peso y color) y químicos (pH y AT).
Adicionalmente se realizó una evaluación de la calidad visual, análisis
microbiológicos, análisis sensorial y se determinó la concentración de CO2 en el
interior de los empaques. Se realizaron 4 repeticiones por análisis, en la entrada y
en las salidas 1 y 2. Las muestras se mantuvieron a 4 ± 1 °C y 90 % de HR.
3.3.1. PÉRDIDA DE PESO
La pérdida de peso registrada en las salidas 1 y 2 se muestra en la Figura 3.6. El
empaque usado influyó significativamente en la pérdida de peso, a diferencia de
63
los tratamientos aplicados, en los cuales no se registraron diferencias
significativas en la pérdida de peso, en la salida 1.
Figura 3.6. Pérdida de peso registrada en LR de IV gama sumergida en tratamientos sanitizantes C: agua destilada, H: 150 ppm NaClO, A: 300 ppm CSA, empacada con
P: polipropileno, E: polietileno de baja densidad y almacenada hasta 10 días a 4 °C y 90 % HR. Para cada día, las columnas de cada tratamiento que tienen letras diferentes presentan diferencias estadísticamente significativas por la prueba de Fisher (LSD) (p<0,05) aplicada
después del ANOVA
Los tratamientos CE, HE y AE presentaron los mayores valores de pérdidas de
peso, iguales a 2,27, 3,82 y 2,67 %, respectivamente, mientras que el tratamiento
que presentó la pérdida de pesó más baja fue el HP en la salida 1. Las pérdidas
de peso disminuyeron en todos los tratamientos aplicados, en la salida 2. En esta
experimentación, se observó que la pérdida de peso en los primeros días fue
superior a la registrada al final del almacenamiento. Lo cual coincide con lo
presentado por Agüero et al., (2011), quienes trabajaron con lechuga mantecosa
cv. Lores, empacada en PEBD, almacenada hasta 20 días a 1 ± 1 °C con 95 a 98
% de HR. Estos investigadores registraron pérdidas de peso altas a los 5 días de
almacenamiento y al final del almacenamiento registraron pérdidas bajas (p.126).
Esto pudo haber sido resultado de la manipulación y los cortes realizados en el
0,0
0,5
1,0
1,5
2,0
2,5
3,0
3,5
4,0
4,5
5 10
Pér
did
a d
e p
eso
(%)
Tiempo de almacenamiento (días)
CP
CE
HP
HE
AP
AE
b
b
a
c
a
b
a a a a a
b
64
procesamiento, que pudieron acelerar la transpiración y provocar la pérdida de
peso alta al inicio del almacenamiento.
La interacción del empaque y los sanitizantes en la pérdida de peso se presenta
en la Figura 3.7. En donde se observa que la LR empacada con PEBD presentó
altas pérdidas de peso independientemente del sanitizante aplicado, mientras que
el uso de PP en tratamientos con CSA y NaClO presentó bajas pérdidas de peso
en la salida 1.
Figura 3.7. Gráficos de interacciones e intervalos LSD de las variables: sanitizante (A) y empaque (B), para la pérdida de peso en la LR de IV gama a los 5 días de almacenamiento
Las diferencias de pérdidas de peso registradas pudieron deberse a la diferencia
de permeabilidad entre los empaques usados, el PEBD presentó una
permeabilidad alta comparada con la permeabilidad del PP (Welti-Chanes et al.,
2005, p.17).
En la salida 2, la pérdida de peso se redujo drásticamente en todos los
tratamientos y se registraron diferencias estadísticamente significativas entre los
tratamientos sanitizantes y también entre el tipo de empaque usado. Los
tratamientos con mayor reducción fueron el CE y el HE en 93,37 y en 97,96 %
respectivamente, mientras que el tratamiento AE presentó la mayor pérdida de
peso igual a 0,98%, en la salida 2 como se observó en la Figura 3.6. La reducción
EmpaquePPPEBD
Sanitizante
0
1
2
3
4
5
Pér
dida
de
peso
(%
)
CSA Control NaClO
SanitizanteCSAControlNaClO
Empaque
0
1
2
3
4
5
Pér
dida
de
peso
(%
)
PP PEBD
A B
65
de la pérdida de peso registrada en la salida 2 se debe a que el vegetal en el
almacenamiento continúa respirando y transpirando, después de varios días de
almacenamiento la tasa de respiración y la transpiración se redujeron.
En la salida 2 la LR de IV gama tratada con CSA y empacada en PEBD presentó
la mayor pérdida de peso, mientras que el tratamiento con NaClO con el mismo
empaque presentó la menor pérdida de peso.
3.3.2. EVALUACIÓN DEL ÍNDICE DE LA CALIDAD VISUAL
La valoración obtenida en la evaluación del índice de la calidad visual de la LR de
IV gama se presenta en la Tabla 3.5.
El tratamiento que presentó menor marchitez fue el AP con valoración más alta
igual a 4, en la salida 1, mientras que los tratamientos con NaClO (HE y HP)
presentaron marchitez moderada, que pudo ser resultado del tiempo de inmersión
del tratamiento.
En la salida 2, el tratamiento AP presentó la menor marchitez con un valor de
3,33, que según la escala de valoración para la calidad visual (Tabla AIII.1),
califica como una marchitez de discreta a moderada. Mientras que los
tratamientos CP, HE y AE, presentaron menor marchitez, considerada como
severa, con valoraciones de 2,50, 2,33 y 2,25 respectivamente.
Los tratamientos HP, AE y AP presentaron los valores mayores para la presencia
de patógenos iguales a 3,50, 3,75 y 3,83, respectivamente, en la salida 1. Lo que
indica que la presencia de patógenos en las muestras fue baja de 10 a 30 %
según la escala de valoración.
En la salida 2, los tratamientos AE y AP registraron los valores más altos para
presencia de patógenos iguales a 3,83 y 3,50, respectivamente, a diferencia de
los tratamientos CP, CE, HE y HP que registraron presencia de patógenos en la
LR de IV gama entre 30 a 60 % según la escala de valoración.
66
Tabla 3.5. Índice de evaluación de la calidad visual de Lechuga (Lactuca sativa L) var. romana de IV gama almacenada hasta los 10 días a 4 °C y 90 % HR.
Tratamiento
Atributo Día CE CP HE HP AE AP
Marchitez
Entrada 5,0±0,0a 5,0±0,0a 5,0±0,0a 5,0±0,0a 5,0±0,0a 5,0±0,0a
Salida 1 3,5±0,5c 2,92±0,5b 2,3±0,5a 3,2±0,4bc 3,0±0,4b 4,0±0,4d
Salida 2 3,2±0,7b 2,5±0,5ª 2,3±0,5ª 3,0±0,4b 2,3±0,5ª 3,3±0,7b
Presencia de
patógenos
Entrada 5,0±0,0a 5,0±0,0a 5,0±0,0a 5,0±0,0a 5,0±0,0a 5,0±0,0a
Salida 1 2,9±0,5ª 3,0±0,0a 3,1±0,3ª 3,5±0,5b 3,8±0,5bc 3,8±0,4c
Salida 2 2,7±0,5ª 3,0±0,0b 3,0±0,7b 2,9±0,3ab 3,8±0,4d 3,5±0,5c
Las letras diferentes indican las diferencias estadísticamente significativas por la prueba de Fisher (LSD) (p<0,05) aplicada después del ANOVA. C: agua destilada, H: 150 ppm NaClO, A: 300 ppm CSA, E: polietileno de baja densidad, P: polipropileno
± (n= 12)
El índice de la calidad visual se presenta en la Tabla 3.6. En donde se observa
que los tratamientos HP, AE y AP presentaron deterioro. Sin embargo estos
productos son consumibles hasta los 5 días de almacenamiento. Mientras que en
la salida 2 ningún tratamiento presentó las características para la
comercialización.
Tabla 3.6. Índice de la calidad visual de la LR de IV gama hasta los 10 días de almacenamiento a 4 ± 1 °C y 90 % HR.
Tratamiento
Día CE CP HE HP AE AP
Entrada I I I I I I
Salida 1 III III III II II II
Salida 2 III III III III III III
C: agua destilada, H: 150 ppm NaClO, A: 300 ppm CSA, E: PEBD, P: PP
I= 4 - 5, mantiene las características iniciales
II= 3 - 4, presenta deterioro pero es consumible
III=<3, no apto para comercialización
Los resultados obtenidos en este análisis mostraron que el tiempo de vida útil de
la LR de IV gama con los tratamientos aplicados fue solo de 5 días. Lo cual difiere
de lo obtenido por Biazotto et al., (2013), quienes reportaron un tiempo de vida útil
67
largo de 12 días a 2 °C para LCG con la aplicación de 150 ppm de NaClO con 15
min de inmersión (HE) (p. 65). Esto pudo ser debido a la variedad de lechuga
empleada en cada experimentación y por la temperatura de almacenamiento. Por
otro lado, el tiempo de vida útil para LCG recomendada por Allende et al., (2004),
es de 7 días a 5 °C (p. 109), el cual también difiere de lo obtenido en esta
experimentación.
3.3.3. COLOR
El índice de color (ΔE) registrado en el haz y en el envés de la LR de IV gama
sumergida en tratamientos sanitizantes y empacada con PP y PEBD, se
encontraron entre 3,32 y 9,86 en el haz, entre 5,98 y 8,58 en el envés en la salida
1 y entre 5,02 y 7,38 en el haz, entre 4,15 y 9,16 en el envés en la salida 2. No se
presentaron diferencias significativas entre los tratamientos, debido a que en el
procesamiento no se separaron las hojas según el área foliar (hoja totalmente
expandida, medianamente expandida y no expandida), ni según la zona de la hoja
(superior, media y basal), para su posterior empaque. Esto no permitió observar
las diferencias significativas que podrían haberse presentado en este ensayo.
León et al., (2007) trabajaron con lechuga mantecosa cv. Lores de IV gama, para
la medición de color clasificaron las hojas según el área foliar y después del corte
según la zona de la hoja. Estos investigadores reportaron que el troceado de las
hojas afectó significativamente el color, reflejado en el aumento del color verde
durante el almacenamiento y, la inmersión en Cl2Ca disminuyó la cromaticidad L*
(p.669).
Los valores obtenidos en esta experimentación difieren de los obtenidos por Pace
et al., (2014), en lechuga iceberg troceada, que fue lavada con agua clorada (100
ppm), empacada en PEBD, que a los 10 días de almacenamiento presentó
valores del ΔE cercamos a 11,82, las variaciones de color que obtuvieron se
debieron al incremento de la actividad enzimática en la lechuga de IV gama como
resultado del corte efectuado en el procesamiento (pp. 21, 23). En este ensayo, el
tratamiento con NaClO y PEBD (CE) presentó valores de 7,17 y 9,16 para el haz y
68
el envés, respectivamente en la salida 2, estos valores son inferiores a los
presentados por Pace et al., (2014), esto pudo deberse a la variedad de la
hortaliza y la concentración del NaClO con la que se trabajó en esta
experimentación.
Los tratamientos aplicados en LR de IV gama y el tipo de empaque usado no
afectaron el ΔE en el haz y en el envés de las hojas en las salidas 1 y 2.
La mayor reducción del ΔE en la salida 2 se registró en los tratamientos CP y AP,
las reducciones fueron de 53,87 y 26,14 % en el envés, respectivamente. Las
reducciones de color registradas pueden ser el resultado de la disminución de la
concentración de clorofila en las hojas a lo largo del almacenamiento (León et al.,
2007, p. 669).
Por otro lado, los tratamientos que registraron incrementos del ΔE en la salida 2,
fueron: el AE en el haz de las hojas, y CE y HP en el haz y en el envés.
Lo registrado en esta experimentación difiere de lo presentado por Mattos et al.,
(2007) quienes reportaron la influencia del empaque en el color de la lechuga de
cabeza var. verónica, almacenada a 5 °C por 14 días. A los 8 días de
almacenamiento observaron que las muestras empacadas en PEBD presentaron
mayor brillo que las empacadas en PP (p. 506). La disminución de cromaticidades
puede deberse al contacto entre enzimas y sustratos como resultado del estrés
mecánico sufrido por los tejidos, de tal forma que se produce el pardeamiento,
además puede estar relacionado con la degradación de la vitamina C (Mattos et
al., 2007,p. 506).
3.3.4. pH Y ACIDEZ TITULABLE
El pH de la LR de IV gama empacada en PP y PEBD almacenada hasta 10 días a
4 °C y 90 % HR, se presentan en la Figura 3.8.
Los valores más altos de pH se registraron en los tratamientos HP y HE y fueron
iguales a 6,53 y 6,55 respectivamente, en la salida 1 y son similares al valor
69
Figura 3.8. Valores de pH obtenidos en la LR de IV gama sumergida en agua destilada (C), 150 ppm NaClO (H), 300 ppm CSA (A), empacada en PEBD (E) y PP (P), almacenada hasta 10 días a 4 °C y 90 %HR. Para cada día, las columnas de cada
tratamiento que tienen letras diferentes presentan diferencias estadísticamente significativas por la prueba de Fisher (LSD) (p<0,05) aplicada después del ANOVA
registrado por la materia prima que fue 6,42. Por otro lado, los tratamientos CP,
CE y AE presentaron disminuciones de pH y presentaron valores de 6,39, 6,26 y
6,25, respectivamente, las reducciones registradas fueron menores que la unidad
y pudieron ser debido al crecimiento microbiano de bacterias ácido lácticas, que
también se refleja en el leve aumento de la acidez (Alegria, et al., 2009, p. 159) en
la LR de IV gama como se detalla en los acápites 3.3.5. y 3.3.6.
En la salida 2 los tratamientos HP y AP presentaron los valores más altos iguales
a 6,46 y 6,45, respectivamente.
Los tratamientos aplicados y los empaques usados, influyeron significativamente
en el pH de la LR de IV gama.
La Figura 3.9 muestra los gráficos de interacción entre las variables sanitizante y
empaque para el pH de la LR de IV gama en la salida 1. En donde se observa que
independientemente del sanitizante aplicado, los valores de pH son altos cuando
se emplea PP como material de empaque.
6,0
6,1
6,2
6,3
6,4
6,5
6,6
6,7
6,8
6,9
7,0
0 5 10
pH
Tiempo de almacenamiento (días)
CP
CE
HP
HE
AP
AE
a a a a a a b
a
c c
b
a
b a
c
a
c
a
70
De igual forma, los valores de pH son altos para los tratamientos en donde se
empleó NaClO como sanitizante, en la salida 1.
Figura 3.9. Gráficos de interacción de las variables sanitizante (A) y empaque (B) para el pH de la LR de IV gama en la salida 1
En la Figura 3.10 se muestran los gráficos de interacción de las variables
sanitizante y empaque en la LR de IV gama en la salida 2. El tratamiento con
NaClO y PP presentó los valores de pH más altos, sin embargo cuando se
empleó el mismo sanitizante con PEBD el pH registrado fue el más bajo. El
tratamiento C y en el que se aplicó CSA presentaron valores de pH similares al
emplear PEBD como material de empaque, pero el pH del tratamiento con CSA
aumentó al usar PP como empaque. Lo que muestra la influencia del tipo de
empaque en el pH en la salida 2. Esto pudo ser el resultado de la atmósfera
modificada creada por la permeabilidad del PP que reguló la actividad metabólica
en función de la respiración de la LR de IV gama (García y Barrett, 2004, p. 66).
El PP que presenta una permeabilidad baja, pudo reducir la actividad metabólica
de la LR de IV gama y como resultado se observaron valores de pH altos,
mientras que con el PEBD sucede lo contrario, la actividad metabólica es alta
debido a su alta permeabilidad (Welti-Chanes et al., 2005, p. 17).
Las variaciones de pH se encuentran relacionadas con los valores de AT
registrados en la LR de IV gama empacada en PP y PEBD a 4 °C y 90 % de HR.
Sanitizantes
6,2
6,3
6,4
6,5
6,6
pH
NaClO CSA Control
EmpaquesPEBDPP
SanitizantesNaClOCSAControl
Empaques
6,2
6,3
6,4
6,5
6,6
pH
PEBD PP
A B
71
Figura 3.10. Gráficos de interacción de las variables sanitizante (A) y empaque (B) para el pH de la LR de IV gama en la salida 2
En general la AT presentó valores altos en los tratamientos que registraron
valores de pH bajos. Los resultados de AT para cada tratamiento se presentan en
la Tabla 3.7.
Los tratamientos sanitizantes y los empaques empleados no afectaron la AT de la
LR de IV gama en las salidas 1 y 2. Los valores de AT registrados se encontraron
entre 0,47 y 0,52 g ácidos cítrico/g LR de IV gama en la salida 1. En la salida 2, se
presentó un incremento ya que los valores se encontraron entre 0,53 y 0,55 g
ácido cítrico/g LR de IV gama.
Tabla 3.7. Acidez titulable de la LR de IV gama almacenada hasta 10 días a 4 °C y 90 %HR en g ácido cítrico/g lechuga de IV gama
Tratamientos
Día CP CE HP HE AP AE
Entrada 0,50±0,00a 0,50±0,00a 0,50±0,00a 0,50±0,00a 0,50±0,00a 0,50±0,00a
Salida 1 0,50±0,00a 0,50±0,07a 0,48±0,04a 0,47±0,06ª 0,52±0,04ª 0,50±0,00a
Salida 2 0,53±0,06ª 0,53±0,06ª 0,55±0,06ª 0,55±0,06ª 0,55±0,06ª 0,55±0,06ª
Las letras diferentes indican las diferencias estadísticamente significativas por la prueba de Fisher (LSD) (p<0,05) aplicada después del ANOVA. C: agua destilada, H: 150 ppm NaClO, A: 300 ppm CSA, E: PEBD y P: PP
EmpaquesPEBDPP
Sanitizantes
6,2
6,3
6,4
6,5
6,6
pH
NaClO CSA Control
Empaques
6,2
6,3
6,4
6,5
6,6
pH
PEBD PP
SanitizantesNaClOCSAControl
A B
72
Mattos et al., (2007), registraron reducciones e incrementos de la AT a lo largo del
almacenamiento de lechuga de IV gama. Estos autores trabajaron con PP y
PEBD como materiales de empaque y el almacenamiento fue a 5 °C por 14 días.
La AT registró valores similares a los 5 días de almacenamiento para los dos tipos
de empaque y se redujo hasta los 10 días de almacenamiento y finalmente se
registraron incrementos que el día 14 alcanzaron valores cercanos a 2 (meq ác.
cítrico /kg) (p. 505). Estos resultados coinciden con las variaciones de AT que se
registraron en esta experimentación en la salida 1, en donde no se presentaron
diferencias estadísticamente significativas entre los tratamientos y al final del
tratamiento se presentaron incrementos de AT hasta valores de 0,55 g ácidos
cítrico/g LR de IV gama.
3.3.5. ANÁLISIS MICROBIOLÓGICO
Los resultados de los análisis microbiológicos (coliformes totales, aerobios totales,
mohos y levaduras) realizados a la LR de IV gama sumergida en agua destilada,
NaClO y CSA, empacada con dos tipos de empaque, se presentan en la Figura
3.11.
Los contajes microbiológicos para aerobios totales, coliformes totales, mohos y
levaduras de todos los tratamientos se encontraron dentro de los límites máximos
aceptables para el consumo según la legislación española que son de 106 UFC/g
para aerobios y coliformes totales (Moragas y De Pablo Busto, 2013, p. 16), y el
establecido por Ragaert et al., (2011) de 105 UFC/g para mohos y levaduras
(p.60).
Los tratamientos con NaClO y CSA (HP, HE, AE y AP) registraron los contajes
más bajos para aerobios totales en la salida 1, a diferencia de los tratamientos
control CE y CP los cuales registraron contajes de 4,9x104 UFC/g y 4,2x104
UFC/g, respectivamente. En la salida 2, los contajes de los tratamientos HE y AE
presentaron los menores incrementos en 1,2x104 UFC/g y en 1,33x103 UFC/g,
respectivamente. Mientras los tratamientos CE y CP continuaron presentando los
73
Figura 3.11. Contaje microbiológico de aerobios totales (X), coliformes totales (Y) y mohos y levaduras (Z) en LR de IV gama sumergida en agua destilada (C), 150 ppm
NaClO (H), 300 ppm CSA (A), empacada en PEBD (E) y PP (P), almacenada a 4 ± 1 °C y 90 % HR.
0E+0
2E+4
4E+4
6E+4
8E+4
1E+5
0 5 10
Aer
obio
s to
tale
s (U
FC
/g)
Tiempo de almacenamiento (días)
CE
CP
HE
HP
AE
AP
X
0E+0
2E+4
4E+4
6E+4
8E+4
1E+5
0 5 10
Col
ifor
mes
tot
ales
(U
FC
/g)
Tiempo de almacenamiento (días)
CE
CP
HE
HP
AE
AP
Y
0E+0
2E+4
4E+4
6E+4
8E+4
1E+5
0 5 10
Moh
os y
leva
du
ras
(UF
C/g
)
Tiempo de almacenamiento (días)
CE
CP
HE
HP
AE
AP
Z
74
mayores contajes iguales a 8,7x104 y 1,1x105 UFC/g. El tratamiento con NaClO
fue efectivo para disminuir el contaje microbiológico de aerobios totales y
coliformes totales de la LR de IV gama. El tratamiento HP, presentó una reducción
de 2,9x104 UFC/g en el contaje de aerobios totales en la salida 1, esta reducción
es mayor a la presentada por Allende et al., (2004), quienes registraron una
reducción de 103 UFC/g en LCG, tratada con 180 ppm de NaClO por 1 min,
empacada en PP y almacenada a 5 °C por 7 días (p.113). Además, registraron
una reducción de 102 UFC/g para coliformes totales, que es menor a la reducción
obtenida por el tratamiento HP en esta experimentación, que fue de 1,7x104
UFC/g en la salida 2. Por otro lado, no se registraron reducciones en el contaje de
mohos y levaduras en el tratamiento HE en la salida 1. En la salida 2, el
tratamiento HP presentó una reducción de 7,75x103 UFC/g.
Luna et al., (2013), trabajó con LR de IV gama lavada con 100 ppm de NaClO por
30 s y empacada en bolsas de PP, registró contajes microbiológicos para
coliformes totales entre 1x103 y 7,9x103 UFC/g a los 10 días de almacenamiento,
estos datos son menores a los registrados por el tratamiento HP en esta
experimentación.
Los tratamientos con CSA presentaron reducciones en el contaje microbiológico
de aerobios totales y coliformes totales. Las reducciones de los tratamientos AE y
AP para aerobios totales fueron de 1,02x104 y 9,67x103 UFC/g, respectivamente
en la salida 1, sin embargo, su efectividad no se mantuvo hasta el final del
almacenamiento en ambos tratamientos ya que presentaron contajes altos iguales
a 2x103 y 1,3x103 UFC/g, respectivamente. Por otro lado, las reducciones para
coliformes totales fueron de 6,10x104 y 1,17x104 UFC/g, respectivamente en la
salida 2. El tratamiento AE presentó una reducción de 1x103 UFC/g en el contaje
de mohos y levaduras, a diferencia del tratamiento AP que presentó un
incremento de 4,17x103 UFC/g en la salida 1, ambos tratamientos presentaron
incrementos en el contaje de mohos y levaduras en la salida 2. Por lo tanto, la
efectividad del CSA para reducir el contaje de mohos y levaduras es baja, ya que
solo se visualizó en la salida 1, sin embargo los contajes se mantuvieron dentro
de los límites máximos permitidos.
75
La aplicación de agua destilada en la LR de IV gama solo permitió la reducción en
el contaje de coliformes totales, no fue efectiva para reducir el contaje de mohos y
levaduras ni de aerobios totales. Los tratamientos CE y CP registraron
reducciones de 4,3x104 y 5,6x104 UFC/g, respectivamente.
Los dos tipos de empaques usados presentaron una relación en el contaje de
aerobios totales y coliformes totales. Las muestras empacadas con PP (CP, HP y
AP) presentaron los contajes de aerobios totales más bajos en la salida 1 y en la
salida 2, fueron los más altos. Por otro lado, los contajes de coliformes totales
fueron los más altos en la salida 1 y en la salida 2, los tratamientos CP y AP
registraron los contajes más bajos. En el contaje de mohos y levaduras no se
presentó ninguna relación entre el tipo de empaque empleado y los contajes
registrados en el almacenamiento.
3.3.6. ANÁLISIS SENSORIAL
Los resultados del análisis sensorial realizado en la entrada y las salidas 1 y 2,
donde se evaluó la apariencia, la acidez, el sabor y la presencia de sabores
extraños se muestran en la Tabla 3.8.
Los tratamientos aplicados y los tipos de empaque usados no influyeron en la
apariencia de la LR de IV gama en todo el almacenamiento. En la salida 1, las
evaluaciones registraron valores de entre 5,35 y 7,2. Por otro lado, en la salida 2,
los valores registrados fueron entre 4,19 y 6,64. En general la LR de IV gama en
esta experimentación presentó una apariencia aceptable en la salida 1 y la
apariencia fue inaceptable al final del almacenamiento. Los datos obtenidos en
esta experimentación coinciden con los obtenidos por Allende et al., (2004),
quienes trabajaron con lechuga var. rollo rosso de IV gama, lavada con 180 ppm
de NaClO empacada en PP, el valor obtenido para la apariencia general fue de 6
± 1,02 a los 5 días de almacenamiento a 5 °C (p.114).
76
Tab
la 3
.8. R
esul
tado
s de
l aná
lisi
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4 ±
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Sal
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2
CP
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3±1,
2ª
6,6±
2,9ª
5,
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4ª
7,5±
2,4ª
6,
5±2,
7ª
5,5±
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1,
9±2,
7ª
2,3±
1,8ª
2,
4±1,
8ª
0,8±
1,4ª
2,
0±2,
1a 2,
9±2,
5ª
CE
8,
3±1,
2ª
5,6±
2,9ª
4,
2±4,
2ª
7,5±
2,4ª
6,
9±2,
4ª
5,7±
2,3ª
1,
9±2,
7ª
3,2±
3,2ª
3,
6±2,
4ª
0,8±
1,4ª
2,
3±1,
5a 4,
1±3,
0a
HP
8,
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1,5a
3,7±
2,5ª
77
De la misma forma los tratamientos y los tipos de empaques usados no influyeron
en la acidez registrada por la LR de IV gama en las salidas 1 y 2, a pesar de que
las muestras fueron sumergidas en CSA a pH de 2,5 por 2 min. En general, la
acidez aumentó levemente para todos los tratamientos a lo largo del
almacenamiento. Los valores registrados en la salida 1 se encontraron entre 2,28
y 3,51 que, según la prueba descriptiva de escalas no estructuradas, señala como
débil a la acidez de los tratamientos. Por otro lado, en la salida 2 los valores de
acidez se encontraron entre 2,41 y 3,73. Estos resultados señalan que la LR de IV
gama presentó una acidez débil en esta experimentación. La baja acidez de los
PCG es una consecuencia del metabolismo normal del CO2 o la respuesta del
tejido para neutralizar la acidez generada por el CO2 (Mattos et al., 2007, p. 506)
No se registraron diferencias estadísticamente significativas en las calificaciones
obtenidas para el parámetro sabor en las salidas 1 y 2. Los valores registrados
para el sabor se encontraron entre 6,91 y 5,81 en la salida 1, mientras que las
calificaciones fueron similares para todos los tratamientos en la salida 2.
Los resultados obtenidos señalan que la LR de IV gama presentó un sabor natural
poco intenso en las salidas 1 y 2.
Los tratamientos aplicados presentaron diferencias en las calificaciones del
parámetro sabores extraños, en la salida 1. Los tratamientos en donde se empleó
NaClO (HP y HE) como sanitizante presentaron sabores extraños. Esto pudo ser
resultado del tiempo de inmersión largo aplicado.
Los tratamientos con CSA (AE y AP) registraron bajos valores para sabores
extraños iguales a 3,73 y 2,53, lo que señala que en el tratamiento AP la
presencia de sabores extraños fue la menor en la salida 2.
3.3.7. CONCENTRACIÓN DE CO2 EN EL INTERIOR DE LOS EMPAQUES
Los resultados obtenidos en la concentración de CO2 en el interior de los
empaques de LR de IV gama en las salidas 1 y 2, se presentan en la Figura 3.12.
78
Los tratamientos aplicados y los tipos de empaque usados influyeron en la
concentración de CO2 en el interior de los empaques en la salida 1.
Los tratamientos que presentaron mayor acumulación de CO2 en el interior de los
empaques fueron los tratamientos AP y HP con valores de 5,67 y 4,55
respectivamente en la salida 1, y de 4,78 y 5,14 respectivamente en la salida 2.
Por otro lado, la menor acumulación registrada fue del tratamiento CP con valores
de 2,56 y 2,40 en las salidas 1 y 2. Los valores no se encontraron dentro del
rango recomendado para la LR de IV gama que es de 5 a 10 % de CO2 (Farber,
et al., 2003, p. 146)
Figura 3.12. Concentración de CO2 en el interior de los empaques de LR de IV gama sumergida en agua destilada (C), 150 ppm NaClO (H), 300 ppm CSA (A), empacada en
PEBD (E) y PP (P), almacenada hasta 10 días a 4 °C y 90 %HR
En la Figura 3.13 se muestra el gráfico de medias e intervalos LSD para las
variables empaque y sanitizante para la concentración de CO2 en el interior de los
empaques de LR de IV gama en la salida 1.
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1
2
3
4
5
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trac
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de
CO
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)
Tiempo de almacenamiento (días)
CP
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HP
HE
AP
AE
79
Donde se observa que el tratamiento control presentó menor acumulación, a
diferencia de los tratamientos con NaClO y CSA. Además se observa que la LR
de IV gama empacada con PP presentó la mayor acumulación de CO2 en el
interior de los empaques, esto debido a su baja permeabilidad al CO2 en relación
con el PEBD.
La influencia del sanitizante empleado en la concentración de CO2 en el interior
de los empaques de LR de IV gama se mantuvo hasta la salida 2, a diferencia del
empaque empleado, el cual no influyo significativamente al final del
almacenamiento.
Figura 3.13. Gráfico de medias e intervalos LSD para las variables empaque (A) y sanitizante (B) para la concentración de CO2 en el interior de los empaques de LR de IV
gama a los 5 días de almacenamiento.
En la Figura 3.14 se observa que el tratamiento control continuó presentando la
menor acumulación en la salida 2, de la misma forma que la LR de IV gama con
NaClO presentó la mayor acumulación.
Co
nce
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PEBD PP
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ntr
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(%
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Sanitizante
1,8
2,3
2,8
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3,8
4,3
4,8A B
80
3.4. ESTUDIO DE LA FISIOLOGÍA POSCOSECHA DE LA
LECHUGA VAR. ROMANA DE IV GAMA
La tasa de respiración de la LR de IV gama se obtuvo mediante el empleo de un
sistema dinámico de respiración, se trabajó con 3 réplicas para cada tratamiento
(Control, NaClO y CSA) y para LR entera. Se pesaron alrededor de 0,4 kg de LR
de IV gama por jarra de respiración y se los colocó en su interior. Se sellaron las
jarras y se conectaron al sistema de respiración. Las muestras de CO2 obtenidas
a la entrada y a la salida de cada jarra se estudiaron en equipo analizador rápido
de CO2-O2 Post Harvest Research. Los resultados obtenidos se reportaron en mg
CO2/kg h.
Figura 3.14. Gráfico de medias e intervalos LSD de las variables sanitizante (a) y empaque (b) para la concentración de CO2 en el interior de los empaques de LR de IV
gama a los 10 días de almacenamiento
En la Figura 3.15 se presentan las tasas de respiración obtenidas para la LR
entera y de IV gama tratada con agua destilada (control), NaClO y CSA. La tasa
de respiración se determinó durante 14 días a 4 ± 1 °C y 90 % HR. La LR de IV
gama presentó crecimiento microbiano a los 9 días de almacenamiento por esta
razón en estas muestras, se suspendió la determinación de la tasa de respiración.
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(%)
NaClO CSA Control
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PEBD PP
Empaque
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81
Figura 3.15. Tasa de respiración de la LR entera y de IV gama almacenada por 14 días
La lechuga var. romana entera presentó una baja tasa de respiración comparada
con la tasa de respiración obtenida para la LR de IV gama. Las tasas de
respiración más altas registradas fueron de 8,29 y 8,93 mg CO2/kg h al 1 y a los 2
días del almacenamiento, respectivamente. En general la tasa de respiración de
la LR de IV gama almacenada a 4 ± 1 °C y 90 % HR se mantuvo alrededor de
7,30 mg CO2/kg h a lo largo del almacenamiento, la menor tasa de respiración fue
de 6,18 mg CO2/kg h que se registró al final del almacenamiento. La LR de IV
gama presentó tasas de respiración altas por efecto del procesamiento (Baldwin y
Bai, 2011, p. 88), en donde se incrementó la respiración mitocondrial debido a la
oxidación de enzimas como la citocromooxidasa y la fosfofructoquinasa (Deza-
Durand y Petersen, 2011, p. 11).
Martínez, Chiesa, Tovar y Artés (2005) registraron tasas de respiración entre
11,65 a 15,53 mg CO2/kg h para lechuga iceberg entera almacenada a 5 °C y 90
a 95 % de HR (p. 356), estos valores no coinciden con los registrados en esta
experimentación, esto puede deberse a la variedad de lechuga empleada ya que
utilizaron lechuga iceberg.
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Tiempo de almacenamiento (días)
Control
NaClO
CSA
Entera
82
Por otro lado, Cantwell y Suslow (2007) señalaron que la tasa de respiración de la
lechuga iceberg y romana de IV gama (troceada), solo es 20 a 40 % mayor a la
tasa de respiración de la lechuga entera, además señalaron que la tasa de
respiración de la lechuga IV gama (rallada) presentó incrementos de 200 a 300 %
con respecto a la tasa de respiración de la lechuga entera (p. 446). Lo registrado
en esta experimentación, difiere de lo presentado por Cantwell y Suslow (2007),
ya que la tasa de respiración de la LR de IV gama (troceada) de los tratamientos
aplicados: Control, NaClO y CSA, presentó incrementos de 103, 120 y 111 %,
respectivamente.
Por otro lado, las tasas de respiración obtenidas para la LR de IV gama, coinciden
con los valores menores obtenidos por Deza-Durand y Petersen (2011), quienes
almacenaron lechuga IV gama a 6°C y registraron una tasa de respiración
promedio igual a 31,7 ± 22,4 mg CO2/kg h (p. 85).
Los tratamientos aplicados a la LR de IV gama no influyeron en la tasa de
respiración hasta los 9 días de almacenamiento.
La LR entera de esta experimentación presentó una tasa de respiración
moderada, mientras que la LR de IV gama presentó tasas de respiración altas
(Raju, Chauhan, y Bawa, 2011, p. 187).
El índice de calidad visual señaló que la LR de IV gama con los tratamientos HP,
AE y AP puede ser comercial hasta los 5 días de almacenamiento, puesto que en
la salida 2 las muestras de todos los tratamientos presentaron características
visuales no aptas para su comercialización. El análisis sensorial señaló que en la
salida 2 la apariencia de la LR de IV gama de todos los tratamientos fue
inaceptable, a pesar de que los contajes microbiológicos de la LR de IV gama de
todos los tratamientos se mantuvieron dentro de los límites máximos permitidos
hasta el final del almacenamiento.
La aplicación de CSA y el empleo de PP (tratamiento AP) como material de
empaque permitió mantener la mejor calidad poscosecha de la LR de IV gama
almacenada por 5 días a 4 ± 1 °C y 90 % HR. Este tratamiento, registró la pérdida
de peso más baja igual a 0,75%, valores de pH similares en el almacenamiento
83
entre 6,42 y 6,45 y el valor más alto de AT igual 0,52 g de ácido cítrico/ g de LR
de IV gama en la salida 1. En el análisis sensorial, este tratamiento presentó
valores bajos entre 2,84 y 2,53 para el parámetro sabores extraños, es decir que
la presencia de los sabores extraños en esta muestra fue mínima. Por estas
razones, el tratamiento AP se empleó para realizar el análisis económico de la LR
de IV gama.
3.5. ANÁLISIS ECONÓMICO
En el análisis económico se realizó la estimación de costos de la implementación
del procesamiento de LR de IV gama, el costeo del producto, el análisis de
pérdidas y ganancias, el flujo de caja neto y se calcularon los índices financieros
del proyecto.
3.5.1. ESTIMACIÓN DE COSTOS DE IMPLEMENTACIÓN DEL
PROCESAMIENTO DE LR DE IV GAMA
El proceso sugerido y el respectivo balance de masa para la producción de LR de
IV gama se presenta en la Figura 3.16. La cantidad promedio anual de LR
producida por la empresa “La Huerta” es de alrededor de 18 t/año. En base a
esto, la estimación de los costos para la implementación de la producción de LR
de IV gama se realizó para 68 kg/día de LR entera. Se obtiene como producto
lechuga var. romana troceada (4 x 3 cm), empacada en bolsas de polipropileno de
dimensiones 25 x 31 cm, con un peso neto aproximado de 150 g. El número total
de bolsas a obtener serán 223 diarias, el proceso tendrá un rendimiento del 49 %
ya que los tallos corresponden al desecho del proceso.
Para el procesamiento se adquirirá un terreno ubicado en la parroquia El Quinche
con un área total de 77 m2, en el Anexo VI se presentan las construcciones
necesarias para el procesamiento de LR de IV gama y su respectivo costo. El
cuarto frío a 4 ± 1 °C para procesar y almacenar el producto terminado es el que
84
presenta el mayor costo por metro cuadrado. El costo de la construcción de la
cámara de refrigeración supera en 116,7 dólares/m2 el costo de construcción de
las oficinas, como se observa en la Tabla VI.1. En general el costo de
construcción es alto debido a que la cámara de frío requiere de material aislante
como se observa en la Tabla VI.3.
Cosecha
Limpieza
Lavado
Troceado
Escurrido
Empaque
Transporte
1 kg hojas viejas ocon daño mecánico
102 kg aguapotable
72 kg soluciónsanitizante sobrante
24 kg tallos
10 kg tierra, hojas dañadas102 kg agua potable
Almacenamiento4 ± 1°C, Hr: 90 %
Inmersión(300 ppm CSA-2 min)
33,4 kg = 223 bolsas deLR de IV gama (150 g)
72 kg soluciónsanitizante
68 kg Lechuga var.Romana
Figura 3.16. Diagrama de bloques del procesamiento de LR de IV gama sumergida en CSA y empacada con PP
En base las operaciones unitarias presentadas en la Figura 3.16 para la
elaboración de LR de IV gama, se determinó el personal (dos personas en
85
producción, un gerente general y un contador), las herramientas y los equipos
necesarios para el procesamiento. Los costos de la materia prima, de los
insumos, de los suministros, la contratación del personal y los equipos se
presentan en la Tabla 3.9. En donde se observa que el mayor costo es el de la
energía eléctrica esto se debe a que se trabaja dentro de un cuarto frío.
En la Tabla VI.2 también se presentan los costos adicionales de alquiler de
vehículo para transporte de la materia prima y del producto terminado sin romper
la cadena de frío. Adicionalmente se presentan los materiales de oficina y con su
respectivo costo.
La inversión total necesaria para implementar la elaboración de la LR de IV gama
es de 98 328 dólares, que se plantea ser financiada con un préstamo bancario de
50 000 dólares e inversión propia, la tabla de amortización para el préstamo
bancario a 10 años se presenta en el Anexo VI (Tabla VI.5).
El precio estimado para cada bolsa de LR de IV gama de 0,15 kg es de 2,51
dólares con una utilidad de 15 % sobre el precio de venta al público (PVP).
Actualmente en el mercado no se encuentra a la venta LR de IV gama, solo
entera. El costo elevado de la LR de IV gama se debe a los elevados costos de la
materia prima y el consumo de energía eléctrica, además del bajo rendimiento del
proceso (49 %) ya que de 1 kg de LR se obtienen 0,49 kg de LR de IV gama.
3.5.2. FLUJO DE CAJA E ÍNDICES FINANCIEROS DEL PROYECTO
El flujo de caja se determinó a partir del estado de pérdidas y ganancias que se
presenta en la Tabla 3.10. En los costos fijos se consideró la mano de obra
indirecta y el transporte, mientras que en los costos variables constan: la materia
prima, los insumos, los suministros y la mano de obra directa. La depreciación de
los equipos y las instalaciones se presentan en la Tabla VI.4. Considerando estos
datos se obtuvo que el flujo de caja bruto sea 14 944,03 dólares para el primer
año del proyecto.
86
Tabla 3.9. Materia prima, insumos, suministros, mano de obra, equipos
Denominación Costo unitario Cantidad/mes Costo/mes (USD)
MATERIA PRIMA
Lechuga var. romana 1,20 USD/kg 1 500,00 kg 1 800,0
Agua desmineralizada 0,40 USD/L 1 575 L 630,0
Clorito de sodio 17,50 USD/kg 47,25 kg 826,9
Ácido cítrico 2,18 USD/kg 1 kg 2,2
INSUMOS
Empaques PP 0,02 USD/u 4 922,27 u 79,6
Etiquetas 0,01 USD/u 4 922,27 u 49,2
SUMINISTROS
Agua potable 0,36 USD/m3 2 250 m3 810,0
Energía eléctrica 0,08 USD/kW-h 40 429,32 Kw-h 3 292,1
MANO DE OBRA
Denominación Salario/h Cantidad # horas/mes Costo/mes (USD)
Gerente general y de producción
5 1 160 800
Contador 3,75 1 160 600
Operarios 2,21 2 160 708
EQUIPOS
Denominación Valor unitario (USD) # unidades Valor total (USD)
Cuchillos de acero inoxidable de hoja lisa
40,05 2 80,1
Balanza (proceso) 75 1 75
Báscula (materia prima) 240 1 240
Kavetas 11,57 30 347,1
Tanque de lavado 325 1 325
Tanque de inmersión 325 1 325
Mesas de trabajo 517,86 1 517,86
Selladora 70 2 140,0
Por otro lado, en la Tabla 3.11 se presenta el flujo de caja neto del proyecto en
donde se observa que para el primer año se obtiene un valor positivo y los años
siguientes se presentan con valores negativos lo que indica que en el segundo,
tercer, cuarto y quinto años no se recuperará la inversión.
87
Los indicadores financieros obtenidos indican que el proyecto de elaboración de
LR de IV gama no es factible. El VAN obtenido fue bajo igual a 2,08 lo cual señala
que el proyecto no genera utilidad, por otro lado, la TIR obtenida fue de 8,21 %, la
cual es menor a la tasa bancaria referencia (9,33 %), es decir que invertir en el
proyecto no generaría mayor ganancia que el depositar el dinero en un banco.
Esto se refleja en el punto de equilibrio que se presenta en la Figura 3.17.
El punto de equilibrio mostró que es necesario vender alrededor de 62 310
unidades o 156 254 dólares anuales para no perder ni ganar dinero. Sin embargo,
la producción total anual de LR de IV gama calculada en base a la producción
anual de LR de la empresa “La Huerta” es de 58800 unidades que equivalen a
147 451 dólares, lo cual es inferior a lo requerido para que la producción genere
utilidad.
En general el proyecto no es viable, la relación beneficio costo es igual a 0 y
señala que por cada dólar invertido no se tiene ninguna ganancia.
88
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65
202
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85
90
Figura 3.17. Punto de equilibrio del proyecto de elaboración de LR de IV gama
0
20000
40000
60000
80000
100000
120000
140000
160000
180000
200000
0 10000 20000 30000 40000 50000 60000 70000 80000
Ven
tas
(US
D)
Producción anual (unidades)
Costo fijo Ingreso total Costo total Máxima producción
PE
91
4. CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES
4.1. CONCLUSIONES
ü La materia prima con la que se trabajó en esta experimentación presentó
una buena calidad organoléptica y el contaje microbiológico se mantuvo
dentro de los rangos permitidos para coliformes totales y aerobios totales.
ü Los tratamientos con CSA presentaron mejores resultados en la evaluación
de la calidad visual en comparación con los tratamientos control y con la
mezcla de ácidos. El CSA (300 ppm) presentó mayor efectividad para
reducir coliformes y aerobios totales, además presentó mayor cantidad de
ácidos orgánicos (AT) y buena apariencia a lo largo del almacenamiento.
ü La LR de IV gama con los sanitizantes alternativos y con el NaClO tuvo un
tiempo de comercialización hasta 5 días.
ü Los empaques empleados influyeron significativamente en la pérdida de
peso registrada en cada tratamiento. El uso de PP como material de
empaque presentó menor pérdida de peso a lo largo del almacenamiento.
ü Los panelistas no percibieron sabores extraños en los tratamientos con
CSA independientemente del empaque usado.
ü El CSA es un sanitizante no convencional que presenta resultados
similares a los tratamientos con NaClO en el contaje microbiológico por lo
tanto podría ser empleado como reemplazo de este sanitizante.
ü La LR de IV gama almacenada a 4 ± 1 °C y 90 % HR presentó tasas de
respiración altas entre 14,44 y 16,38 mg CO2/kg h y la LR entera presentó
92
tasas de respiración moderada entre 6,18 y 8,93 mg CO2/kg h a lo largo del
almacenamiento.
ü El proyecto de elaboración de LR de IV gama con CSA no es factible ya
que genera un VAN igual a 2,08 dólares, una TIR igual a 8,21 % que es
inferior a la tasa bancaria referencial (9,33%), el punto de equilibrio es
superior a la producción total anual y la relación beneficio/costo es de
0 dólares
93
4.2. RECOMENDACIONES
ü Estudiar la aplicación de métodos físicos como tratamientos térmicos,
irradiación o recubrimientos comestibles en LR de IV gama con el fin de
incrementar el tiempo de vida útil de este producto
ü Realizar estudios de la evolución del pardeamiento en la LR de IV gama a
fin de mejorar su calidad visual y alargar su vida útil.
ü Realizar estudios de la composición del tallo de la lechuga var. romana con
el fin de promover su aprovechamiento como subproducto del proceso.
ü Realizar un análisis de mercado con el fin de determinar la aceptación del
producto y el mercado existente a nivel nacional.
ü Desarrollar una norma técnica ecuatoriana que establezca los límites
aceptables de crecimiento microbiano tanto para hortalizas enteras como
para hortalizas de IV gama.
94
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
1. A.O.A.C. (2005). Official methods of analysis of the Association of Official
Analytical Chemists. (18ava. ed.). Arlinton, USA: AOAC International.
2. Adams, J. B. (2010). Effect of enzymatic reactions on color of fruits and
vegetables. En Bayindirli, A. (Ed.). Enzymes in Fruit and Vegetable
Processing (pp. 20-38). Boca Ratón, USA: CRC Press.
3. Aguayo, E., Escalona, V., y Artés, F. (2005). Revisión: El ozono y su utilización
en la industria agroalimentaria. Alimentaria, 48, 34-45. Recuperado de:
http://hdl.handle.net/10317/309
4. Agüero, M., Ponce, A., Moreira, M., y Roura, S. (2011). Lettuce quality loss
under conditions that favor the wilting phenomenon. Postharvest
Biology and Technology, 59(2011), 124-131. Doi:10.1016/j.po
stharvbio.2010.08.018
5. Ahmed, L., Martín-Diana, A., Rico, D., y Barry-Ryan, C. (2012). Extending the
shelf-life of tomato using by-product from cheese industry. Dublin,
Irlanda. Recuperado de: Dublin Institute of Technology:
http://arrow.dit.ie/schfsehart (Febrero, 2014)
6. Alegria, C., Pinheiro, J., Gongalves, E., Fernandes, I., Moldäo, M. y Abreu, M.
(2009). Evaluation of a pre-cut heat treatment as an alternative to
chlorine in minimally processed sheredded carrot. Innovative Food
Science and Emerging Technologies, 11(2010). 155-161.
doi:10.1016/j.ifset.2 009.10.008
7. Allende, A., Aguayo, E., y Artés, F. (2004). Microbial and sensory quality of
commercia fresh processed red lettuce throughout the production chain
and shelf life. International Journal of Food Microbiology, 91(2004).
109-117. doi:10.1016/S0168-1605(03)00373-8
8. Allende, A., Gonzalez, R., McEvoy, J., y Luo, Y. (2008). Assessment of Sodium
Hypochlorite and Acidified Sodium Chlorite as Antimicrobial Agents to
Inhibit Growth of Escherichia coli O157:H7 and Natural Microflora on
Sheredded Carrots. International Journal of Vegetable Science, 13(3),
51-63. doi:10.1300/J512v13n03_05
95
9. Al-Zenki, S., y Al-Omariah, H. (2006). Fruits: Sanitation and Safety. En Hui, Y.
(Ed), Barta, J., Cano, P., Gusek, T. S. y Sinha, N. Handbook of Fruits
and Fruit Processing (pp. 245-261). Iowa, USA: Blackwell Publishing.
10. Amaral, R., Benedetti, B., Pujola, M., Achaerandio, I., y Bachelli, M. L. (2014).
Effect of Ultrasound on Quality of Fresh-Cut Potatoes During
Refrigerated Storage. Springer Science, 1-9. doi: 10.1007/s12393-
014-9091-x
11. Andrade-Cuvi, M., Moreno-Guerrero, C., Henríquez-Bucheli, A., Gómez-
Gordillo, A., y Concellón, A. (2010). Influencia de la radiacion UV-C
como tratamiento postcosecha sobre carambola (Averroha carambola
L.) mínimamente procesada almacenada en refrigeración. Revista
Iberoamericana de Tecnología Poscosecha, 11(1), 18-27.
Recuperado de http:// http://www.redalyc.org/articulo.oa?id
=81315093004 (Enero, 2014)
12. Artés, F., Gómez, P., y Artés-Hernández, F. (2007). Physical, Physiological
and Microbial Deterioration of Minimally Fresh Processed Fruits and
Vegetables. Food Science and Technology International, 13(3), 177-
188. doi: 10.1177/1082013207079610
13. Artés-Hernandez, F., Aguayo, E., Gómez, P., y Artés, F. (2009). Innovaciones
tecnológicas para preservar la calidad: Productos vegetales
mínimamente procesados o de la "cuarta gama". Horticultura
Internacional(69), 52-57. Recuperado de: http://www.horticom.com
/revistasonline/extras/extra09/52_57.pdf (Mayo, 2014).
14. Avalos, K., Sgroppo, S., y Chaves, A. (2012). Efecto de un tratamiento térmico
sobre la calidad de pimientos cherry cortados refrigerados. Agrociencia
Uruguay, 16(1), 45-50. Recuperado de:
http://www.scielo.edu.uy/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S2301-
15482012000100006&lng=pt&nrm=iso (Enero, 2015)
15. Ayala-Zavala, F. y González-Aguilar, G. (2011). Use of Additives to Preserve
the Quality of fresh-cut Fruits and Vegetables. En Martín-Belloso, O. y
Soliva-Fortuny, R. (Ed). Advances in Fresh-cut Fruits and Vegetables
Processing (pp. 231-254). Boca Ratón, USA: CRC Press.
96
16. Baldwin, E., y Bai, J. (2011). Physiology of Fresh-Cut Fruits and Vegetables.
En Martín-Belloso, O. y Soliva-Fortuny, R. (Ed). Advances in Fres-Cut
Fruits and Vegetables Processing (pp. 87-113). Lleida, España: CRC
Press.
17. Barreiro, J. y Sandoval B., (2006). Operaciones de conservación de alimentos
por bajas temperaturas (1ra ed.). Caracas, Venezuela: Equinoccio.
18. Bastidas, R. (2015). Estudio del Efecto de la Aplicación de Sanitizantes en la
Calidad de Zanahoria (Daucus carota L.) de IV gama.(Proyecto previo a
la obtención de título de ingeniero Agroindustrial). Escuela Politécnica
Nacional, Quito, Ecuador.
19. Beeren, L. (2010). Establishing product sensory specifications. En Kilcast, D.
(Ed). Sensory analysis for food and beverage quality control. A practical
guide (pp.75-95) Reino Unido: Woodhead Publishing.
20. Bello, J. y López, A. (2001). Mutagénesis. En Bello, J. y López, A.(Ed.)
Fundamentos de ciencia toxicológica (pp.125-155). España: Díaz de
Santos.
21. Biazotto, M., Álvares, R., y Benedetti, B. (2013). Alternative sanitization
methods for minimally processed lettuce in comparison to sodium
hypochlorite. Brazilian Journal of Microbiology, 44(3), 673-678. doi:
10.1590/S1517-83822013005000065
22. Borgenvall, M., Jarskog, H., Murray, B. y Palmer, C. (2003). Mejore su negocio
básico: 4 Costeo. (4ta ed.). Perú: OTI: Oficina Subregional para los
paises andinos.
23. Cantos, E., Espín, J., y Tomás-Barberán, F. (2001). Effect of Wouding on
Phenolic Enzymes in Six Minimally Processed Lettuce Cultivars upon
Storage. American Chemical Society, 49(1), 322-330.
doi:10.1021/jf000644q
24. Cantwell, M., y Suslow, T. (2011). Fres-cut Fruits and Vegetables: Aspects of
Physiology, Preparation and Handling that Affect Quality. En Kader, A.
(Ed). Postharvest Technology Horticulture Crops (pp. 445-465).
California, USA: Agriculture and Natural Resources ANR.
97
25. Carou, M., Izquierdo, M., y Veciana, M. (1999). Estabilidad y métodos de
conservación de los alimentos. En Hernández, M. y Sastre, A. (Ed).
Tratado de nutrición (pp. 451-464). Madrid, España: Díaz de Santos.
26. Chen, Z., Zhu, C., Zhang, Y., Niu, D., y Du, J. (2010). Effects of aqueous
chlorine dioxide treatment on enzymatic browning and shelf-life of fresh-
cut asparagus lettuce (Lactuca sativa L.). Postharvest Biology and
Technology, 58(3), 232-238. doi:10.1016/j.postharvbio.2010.06.004
27. Cook, R. (2013). Trends in the Marketing of Fresh Value Produce and Fresh-
Cut/Value-added Produce: Nielsen 52 weeks ending July 13 2013
*Select US Retailers Freshcut.com, UC Davis 2012 Study. Recuperado
de: www.pma.com/.../us-fresh-cut-f_v-markets-2014.pp. (Marzo, 2015)
28. Corbo, M., Speranza, B., Campaniello, D., D´Amato, D., y Sinigaglia, M.
(2010). Fresh-cut fruits preservation: current status and emerginig
technologies. Technology and Education Topics in Applied Microbiology
and Microbial Biotechnology, 1143-1154.Recuperado de:
http://www.formatex.info/microbiology2/1143-1154.pdf (Enero, 2015)
29. Deza-Durand, K., y Petersen, M. (2011). The effect of cutting direction on
aroma compounds and respiration rate of frash-cut lettuce (Lactuca
sativa L.). Postharvest Biology and Technology, 61(2011), 83-90. doi:
10.1016/j.postharvbio.2011.02.011
30. Daintith, J. (2004). Oxford Dictionary of Chemistry. (5ta. ed.). Oxford, Reino
Unido: Market House Books Ltd.
31. Dishpande, S., y Salunkhe, D. (2003). Tratado de ciencias y tecnología de as
hortaliza: producción, composición, almacenamiento y procesado.(1ra
ed.). Zaragoza, España: Acribia S.A.
32. Division of plant and Dairay Food Safety, F. (2008). U.S. Food and Drug
Administration. Guidance for Industry: Guide to Minimize Microbial Food
Safety Hazards of Fresh-cut Fruits and Vegetables. Recuperado de:
http://www.fda.gov/food/guidanceregulation/guidancedocumentsregulat
oryinformation/ucm064458.htm#ftn1 (Enero, 2015)
33. ERDF. (2012). Informe sobre envases activos e inteligentes. Parma, Italia:
ERVET.
98
34. Escobar A., Márquez, C., Restrepo C., Pérez, L.. (2014). Aplicación de
Tecnología de Barreras para la conservación de Mezclas de Vegetales
Mínimamente Procesados. Revista Facultad Nacional de Agronomía
Medellín, 67(1), 7237-7245. Recuperado de:
http://www.bdigital.unal.edu.co/38908/ (Enero, 2015)
35. Europea, C. (2005). Reglamento (CE) n° 2073/2005 de la comision de 15 de
noviembre de 2005 relativo a los criterios microbiológicos aplicables a
los productos alimenticios. Union Europea. Recuperado de
https://www.um.es/casan/documentos/legislacion/ALIMENTARIA/CRIT
ERIOS%20MICROBIOLOGICOS/reglamento-2073-2005.pdf. (Enero,
2015)
36. FAO, (2015). Manual para el mejoramiento del manejo poscosecha de frutas y
hortalizas. Recuperado de: http://www.fao.org/docrep/x5055s/
x5055S03.htm (Enero, 2015)
37. Farber, J., Parish, M., Beuchat, L., Suslow, T., Busta, F. (2003).
Microbiological Safety of Controlled and Modified Atmosphere
Packaging of Fresh and Fresh-cut Produce. Food Science and Food
Safety, 142-160. doi: 10.1111/j.1541-4337.2003.tb00032.x
38. Farré, R., Barberá, R., Lagarda, M.J. (2010). Aditivos alimentarios. En
Hernandez, A. Tratado de nutrición: Composición y calidad nutritiva de
los alimentos.(2da ed.). España: Médica Panamericana.
39. FDA. (2001). Secondary Direct Food Additives Permitted in Food for Human
Consumption. Code of Federal Regulations Title 21 part 173.New
Hampshire, USA. Recuperado de: http://www.accessdata.fda.gov/
scripts/cdrh/cfdocs/cfCFR/CFRSearch.cfm?CFRPart=173. (Febrero,
2015)
40. FDA. (2014). Electronic code of federal regulations. Food and drugs.
SUBSTANCES GENERALLY RECOGNIZED AS SAFE. United States
of America. Recuperado de: http://www.ecfr.gov/cgi-
in/textidx?c=ecfrysid=786bafc6f6343634fbf79fcdca7061e1&rgn=div5&
view=text&node=21:3.0.1.1.13&idno=21#21:3.0.1.1.13.4.1.1 (Febrero,
2015)
99
41. Garcia, E., y Barrett, D. (2004). Fresh-cut Fruits. En Barrett, D., Somogyi, L. y
Ramaswamy, H. (Ed). Processing Fruits Sciene and Technology (pp.
53-72). Boca Raton, USA: CRC Press.
42. Garrett, E. (2002). Fresh-cut Produce:Tracks and Trends. En Lamikanra, O.
(Ed). Fresh-cut Fruits and Vegetables(pp.11-20). Boca Raton, USA
CSC Press.
43. Gil, M., Alende, A., y Selma, M. (2011). Treatments to Ensure Safety of Fresh-
cut Fruits and Vegetables. En Marín-Belloso, O. y Soliva-Fortuny, R.
Advances in Fresh-Cut Fruits and Vegetables Processing (pp. 211-
224). Boca Raton, USA: CRC Press.
44. Gil, M., y Ana, A. (2012). Minimal processing. En Gómez-López, V. (Ed.).
Decontamination of Fresh and Minimally Processed Produce (pp. 105-
117). Pondicherry, India: John Wiley & Sons, Inc.
45. Gómez-Díaz, J., y López-Malo, A. (2009). Aplicaciones del ultrasonido en el
tratamiento de alimentos. Temas Selectros de Ingeniería de Alimentos,
3(1), 59-73. Recuperado de: www.udlap.mx/WP/tsia/files/.../TSIA-3(1)-
Gomez-Diaz-et-al-2009.pdf (Enero, 2015)
46. Gómez-López, V. (2012). Continuous UV-C light. En Gómez-López, V.
Decontamination of Fresh and Minimally Processed Produce (pp. 365-
378). Iowa, USA: John Wiley & Sons, Inc.
47. Gopal, A., Coventry, J., Wan, J., Roginski, H., y Ajlouni, S. (2010). Alternative
desinfection techniques to extend the shelf life of minimally processed
iceberg lettuce. Food Microbiology, 27(2010), 210-219. doi:
10.1016/j.fm.2009.10.006
48. Goulao, L., Almeida, D., y Oliveira, C. (2010). Effect of Enzymatic Reaction on
Texture of Fruits and Vegetables. En Bayindirli, A. (Ed). Enzymes in
Fruit and Vegetable Processing (pp. 71-122). Boca Ratón, USA: CRC
Press.
49. Guía3M. (1999). Interpretation Guide. 3M Petrifilm Coliform Count Plate. En
USA. Recuperado de: http://www.3m.com/intl/kr/microbiology/
p_coliform/use3.pdf (Junio, 2014)
100
50. Guía3M. (2001). Interpretation Guide. 3M Petrifilm Aerobic Count Plate. En
USA Recuperado de: http://www.3m.com/intl/kr/microbiology/
p_coliform/use3.pdf (Junio, 2014)
51. Guía3M. (2004). Interpretation Guide. 3M Petrifilm Yeast and Mold Count
Plate. En USA. Recuperad de: http://www.protekanalitik.com/
pdf/B5R53KDyeast%20and%20mold%20count%20plates%20interpret
ation%20guide.pdf
52. Heard, G. M. (2002). Microbioogy of Fresh-cut Produce. En Lamikanra, O.
(Ed). Fresh-cut Fruits and Vegetables: Science, Technology, and
Market (pp. 194-243). Boca Raton, USA: CRC Press.
53. Hoorfar, J. (2014). Global safety of fresh produce. A handbook of best practive
innovative commercial solutions and a case studies. Cambridgeshire,
Reino Unido: Woodhead Publishing.
54. Hurme, E., Sipiläinen-Malm, T., y Ahvenainen, R. (2002). Active and intelligent
packing. En Ohlsson, T. y Bengtsson, N. (Ed). Minimal processing
technologies in the food industry (pp. 87-115). Abington, England:
Woodhead Publishing Limited.
55. ICMSF, I. C. (2005). Microbiological ecology of food commodities:
Microorganisms on foods. En Toronto, Canadá. Recuperado de:
http://www.icmsf.org/publications/books.html (Abril, 2014)
56. INEC (2010). Instituto Nacional de Estadísticas y Censo. III Censo Nacional
Agropecuario. Sistema Estadístico Agropecuario Nacional. En
Superficie, producción y ventas, según cultivos transitorios, Quito,
Ecuador. Recuperado de http://sinagap.agricultura.gob.ec/censo-
nacional-agropecuario/24-iii-censo-nacional-agropecuario (Junio, 2014)
57. James, J. y Ngarmsak, T. (2010). FAO. Processing of fresh-cut tropical fruits
and vegetables. A Technical Guide. Bangkok: Rap Publication.
58. Jay, J. M. (2004). Intrinsic and Extrinsic Parameters of Food that Affect
Microbial Growth. En Jay, J. M., Loessner, M., Golden, D., Modern
Food Microbiology (pp. 39-56). New York, USA: Springer Science.
59. Kader, A. (2002)a. Postharvest Biology and Thecnology: An Overview. En
Kader, A. (Ed). Postharvest Technology of Horticultural Crops. (pp. 39-
47). California: Division of Agriculture and Natural Resources.
101
60. Kader, A. (2002)b. Fresh-Cut Fruits and Vegetables: Science, Technology,
and Market. En Lamikanra, O. (Ed). Overview of the European Fresh-
cut Produce Industry (pp. 21-25). Florida: CRC.
61. Kader, A. (2002)c. Quality Parameters of Fresh-cut Frui and Vegetable
Products. En Lamikanra, O. (Ed). Fresh-cut Fruits and Vegetables (pp.
21-31). Florida, USA: CRC Press LLC.
62. Kader, A., y Barrett, D. M. (2004). Classification, Composition of Fruits and
Postharvest Maintenance of Quality. En Barrett, D. M., Somogyi, L. y
Ramaswamy, H. (Ed). Processing Fruits: Science and Technology (pp.
5-21). Boca Raton, USA: CRC Press.
63. Kalia, A., y Gupta, R. (2006). Fruit Microbiology. En Hui, Y., (Ed), Barta, J.,
Cano, P., Gusek, T. S. y Sinha, N. Handbook of fruits and fruit
processing. (pp. 3-28). Iowa, USA: Blackwell Publishing.
64. León, A., Frezza, D., y Chiesa, A. (2007). Evolución del color en lechuga
(Lactuca sativa L.) mantecosa mínimamente procesada: Efecto del
troceado y la inmersión en cloruro de calcio. V Congreso Iberoaericano
de Tecnología Postcosecha y Agroexportaciones, 666-674.
Recuperado de www.horticom.com/pd/imagenes/69/212/69212.pdf
(Febrero, 2014)
65. Linde, A. (2010). Estudio y demostración del procesado de diferentes
productos hortofrutícolas en IV gama (brócoli, patatas, naranja y
mandarina) para el GDR Medio Guadalquivir. (1ra ed.). Cádiz, España:
UME .
66. Luna, M., Tudela, J., Martínez-Sánchez, A., Allende, A., y Gil, M. (2013).
Optimizing water management to control respiration rate and reduce
browning and microbial load of fresh-cut romaine lettuce. Postharvest
Biology and Technology, 80(2013), 9-17. doi:
10.1016/j.postharvbio.2013.01.005
67. Ma, Y., Wang, Q., Hong, G., y Cantwell, M. (2010). Reassessment of
treatments to retard browning of fresh cut russet potato with emphasis
on controlled atmospheres and low concentrations of bisulphite.
International Journal of Food Science & Technology, 45(2010), 1486-
102
1494. Recuperado de ucce.ucdavis.edu/files/datastore/234-1649.pdf
(Agosto, 2014)
68. Madduri V., R. (2007). Acidified Sodium Chorite (ASC). Chemical and
Technical Assessment, 1-12. Recuperado de
www.fao.org/.../Acidified_Sodium_Chlorite.pdf (Novembre, 2014)
69. Manolopoulou, E., y Varzakas, T. (2011). Effect of storage conditions on the
sensory quality, color texture of fresh-cut minimally processed cabbage
with the addition of ascorbic acid, citric acid and calcium choride. Food
and Nutrition Science, 2(2011), 956-963. doi: 10.4236/fns.2011.29130
70. Martín-Belloso, O., Soliva-Fortuny, R., y Oms-Oliu, G. (2006). Fresh-Cut
Fruits. En Hui, Y., (Ed), Barta, J., Cano, P., Gusek, T. S. y Sinha, N.
Handbook of Fruits and Fruit Processing (pp. 129-144). Iowa, USA:
Blackwell Publishing.
71. Martín-Diana, A., Rico, D., Barry-Ryan, C., Frías, J., Mulcahy, J., Henehan, G.,
(2005). Comparison of calcium lactate with chlorine as a washing
treatment for fresh cut lettuce and carrots: quality and nutritional
parameters. Journal of the science of Food and Agriculture, 85(2005),
2260-2268. doi: 10.1002/jsfa.2254
72. Martínez, J., Chiesa, A., Tovar, F., y Artés, F. (2005). Respiration rate and
ethylene production of fresh cut lettuce as affected by cutting grade.
Agricutural and Food Science, 14(2005), 354-361. Recuperado de
http://ojs.tsv.fi/index.php/AFS/article/view/5822 (Mayo, 2014)
73. Martínez-Sánchez, A., Tedula, J., Luna, C., Allende, A., y Gil, M. (2011). Low
oxygen levels and light exposure affect quality of fresh-cut Romaine
lettuce. Postharvest Biology and Technology, 34-42. Recuperado de
http://digital.csic.es/handle/10261/39047?locale=es (Mayo, 2014)
74. Mattos, L., Moretti, C., Chitarra, A., y Prado, M. (2007). Qualidade de alface
crespa minimamente processada armazenada sob refrigeração em dois
sistemas de embalagem. Horticultura Brasileira, 25(4), 504-508. doi:
10.1590/S0102-05362007000400003
75. Montero-Prado, P., y Nerín, C. (2013). Evaluacion del envasado activo del
melocotón pelado y cortado (IV gama). RID Tecnológico, 9(1), 21-27.
103
Recuperado de www.utp.ac.pa/documentos/2013/pdf/ID91__Articulo
3.pdf (Enero, 2015)
76. Montville, T., y Matthews, K. (2008). Factors That Influence Microbes in Foods.
En Montville, T. y Matthews, K. (Ed). Food Microbiology (pp. 11-170).
Washington, USA: ASM Press.
77. Moragas, M., y De Pablo Busto, M. B. (2013). Recopilación. Normas
Microbiológicas de los Alimentos y Asimilados. Otros parámetros
Físicos-Químicos de Interés Sanitario. Bilbao, España.
78. Mou, B. (2008). Lettuce. En Prohens, J. y Nuez, F. (Ed). VEGETABLES I
Ateraceas, Brassicaceae, Chenopodicaceae and Cucurbitaceae (pp.
75-119). Fresno, USA: Springer Science.
79. Olfati, A., Saadatian, M., Peyvast, G., Malakouti, S., Kiani, A., y Poor-Abdollah,
M. (2011). Effect of harvesting Date on Yield and Quality of Lettuce.
Advances in Environmental Biology, 1647-1650. Recuperado de
www.researchgate.net/.../0912f50ea766975be80000 (Mayo, 2014)
80. Olivas, G., y Barbosa-Cánovas, G. (2013). Edible Coating for Fresh-Cut Fruits.
Food Science and Nutrition, 45(7-8), 657-670.
doi:10.1080/10408690490911837
81. Pace, B., Cardinali, A., D´Antuono, I., Serio, F. y Cefola, M., (2014).
Relationship between quality parameters and the overall appearance in
lettuce during storage. International Jounal of Food Processing
Technology, 2014 (1),18-26. Recuperado de:
http://www.cosmosscholars.com/phms/index.php/ijfpt/article/view/62
(Enero, 2015)
82. Parish, E., Beuchat, L., Suslow, T., Harris, L., Garrett, E., Farber, J., y Busta,
F. (2003). Methods to reduce/ Eliminate Pathogens from Fresh and
Fresh-cut Produce. Comprehensive Reviews in Food Science and Food
Safety, 161-173. doi: 10.1111/j.1541-4337.2003.tb00033.x
83. Patiño-Rincón, N., Moreno-Cristancho, H., y Chaparro-González, M. (2010).
Efecto de la aplicación de un recubrimiento comestible antimicrobiano y
antioxidante a partir de aceite de oregano (Origanum vulgare) en la
calidad y vida útil de la lechuga (lactuca sativa L.) mínimamente
procesada refrigerada. Alimentos hoy, 21(26), 43-59. Recuperado de
104
alimentoshoy.acta.org.co/index.php/hoy/article/viewFile /121/115
(Enero, 2015)
84. Pólit, P., Suquilanda, M., Velásquez, S., y Hidalgo, L. (2007). Manejo
postcosecha de lechuga de cultivo orgánico. Quito, Ecuador: DECAB-
EPN.
85. Porta, R., Rossi-Marquez, G., Mariniello, L., Sorrentino, A., Valeria, C.,
Giosafatto, L., Di Pierro, P. (2013). Edible Coating as Packing Strategy
to Extend the Shelf-life of Fresh-cut Fruits and Vegetables.
Biotechnology and Biomaterials, 3(4), 1-3. doi: 10.4172/2155-
952X.1000e124
86. Ragaert, P., Jacxsens, L., Vandekinderen, I., Baert, L., Devlieghere, F. (2011).
Microbiological and safety aspects of fresh cut fruits and vegetables. En
Martín-Belloso, O. y Soliva-Fortuny, R., (Ed.), Advances in fresh cut
fruits and vegetables processing (pp. 54-75). USA:CRC Press.
87. Raju, P., Chauhan, O., y Bawa, A. (2011). Postharvest Handling Systems and
Storage of Vegetables. En Hui, Y., Sinha, N., Özgül, E. , Siddiq, M. y
Ahmed, J. (Ed). Handbook of Vegetables & Vegetable Processing (pp.
185-199). Iowa, USA: Blackwell Publishing Ltd.
88. Rao, M. V. (2007). Chemical and Technical Assessment of food additives
(CTAs). Acidified Sodium Chlorite (ASC) Recuperado de
http://www.fao.org/food/food-safety-quality/scientific-advice/jecfa/techn
ical -assessments/en/ (Junio, 2014)
89. Robles-Ozuna, L., y Ochoa-Martinez, L. (2012). Ultrasonido y sus aplicaciones
en el procesamiento de alimentos. Revista Iberoamericana de
Tecnología Poscosecha, 13(2), 109-122. Recuperado de
www.redalyc.org/articulo.oa?id=81325441002 (Enero, 2015)
90. Rodov, V., Copel, A., Aharoni, N., Wiseblum, A., Horev, B., y Vinokur, Y.
(2000). Nested modified-atmosphere packages maintain quality of
trimmed sweet corn during cold storage and the self-life period.
Postharvest Biology and Technology, 18(3), 259-266. Recuperado de
www.researchgate.net/...Nested_modified-atmospher...(Enero, 2015)
91. Rojas-Graü, M., Garner, E., y Martín-Belloso, O. (2011). The Fresh-Cut Fruit
and Vegetables Industry. Current Situation and Market Trends. En
105
Martín Belloso, O. y Soliva-Fortuny, R. (Ed). Advances in Fresh-Cut
Fruits and Vegetables Processing (pp. 1-2). United States of America:
Taylor and Francis Group.
92. Saltveit, M. E. (2000). Wound induced changes in phenolic metabolism and
tissue browning are altered by heat shock. Postharvest Biology and
Technology, 21(2000), 61-69. doi: 10.1016/S0925-5214(00)00165-4
93. Saltveit, M., y Kader, A. (1997). Postharvest physiology and handling
laboratory. (1ra ed.). California, USA.: University of California Davis.
94. Sandler, G., y Murphy, P. (2010). pH and Titratable Acidity. En Nielsen, S.
(Ed). Food Analysis (pp. 221-237). Iowa, USA: Springer
Science+Business Media, LLC .
95. Sendra, E., Capellas, M., y Guamis, B. (2001). Alimentos irradiados. (1ra ed.).
España: Arbor.
96. Serra, R. (2005). Norma Mexicana NMX-FF-051-1982. Productos alimenticios
no industrializados para uso humano-hortalizas en estado fresco-
Lechuga. México D.F., México: Dirección Genereal de Normas.
97. Smetanska, I., Hunaefi, D., y Barbosa-Cánovas, G. (2013). Nonthermal
Technologies to Extend the shelf life of fresh.cut Fruits and Vegetables.
En Yanniotis, S., Taoukis, P., Stoforos, N. y Karathanos, V. (Ed).
Advances in Food Process Engineering Research and Applications,
Food Engineering Series (pp. 375-402). New York, USA: Springer
Science and Business Media.
98. Smeu, I., y Popa, M. (2011). Effect of minimally processing operations on the
shelf-life and quality characteristic of romanian lettuce. Romanian
Biotechnological Letters, 139-143. Recuperado de www.rombio.eu/.../
21%20Smeu%20Irina.pdf (Enero, 2015)
99. Suquilanda, M. (2003). Producción Orgánica de Hortalizas en Sierra, Norte y
Central del Ecuador. Quito, Ecuador: Universidad Central.
100. Tinitana Bayas, R. M. (2014). Estudio de la calidad poscosecha de pitahaya
amarilla (Selenicereus megalanthus) mínimamente procesada (fresh-
cut). Escuela Politécnica Nacional, Quito, Ecuador.
106
101. Toledo, G. (2009). Efecto de antipardeantes sobre cuatro tipos de lechuga
(Lactuca sativa L.) sometidas a mínimo proceso. Universidad de Chile,
Santiago, Chile.
102. Tomás-Callejas, A., López-Velasco, G., Artés, F., y Artés-Hernández, F.
(2011). Acidified sodium chlorite optimisation assessment to improve
quality of fresh cut tatsoi baby leaves. Society of Chemical Industry,
92(2012), 877-885. doi:10.1016/j.postharvbio.2010.09.013
103. Tomás-Callejas, A., Martínez-Hernández, G., Artés, F., y Artés-Hernández,
F. (2011). Neutral ans acid electrolyzed water as emergent sanitizer for
fresh cut mizuma baby leaves. Postharvest Biology and Technology,
59(2011), 298-306. doi:10.1002/jsfa.4664
104. Trigo, M., Sousa, M. S., Curado, T., Andrada, L., Botelho, M., y Veloso, M.
(2009). Radiation processing of minimally processed vegetables and
aromatic plants. Radiation Physics and Chemistry, 78(2009), 659-663.
doi:10.1016/j.radphyschem.2009.03.052
105. Ukuku, D., Bari, L., y Kawamoto, S. (2012). Hydrogen peroxide. En Gómez-
López, V. M. (Ed). Decontamination of Fresh and Minimally Processed
Produce (pp. 198-214). Iowa, USA: John Wiley & Sons Inc.
106. USDA, U. S., y NASS, N. A. (2014). Vegetables. 2013 Summary. USA:
National Agricultural Statistics Service. Recuperado de
http://www.agcensus.usda.gov/Publications/2012/Full_Report/Volume_
1,_Chapter_1_US/usv1.pdf (Enero, 2015)
107. Varoquaux, P., y Mazollier, J. (2002). Overview of the European Fresh-cut
Produce Industry. En Lamikanra, O. (1ra ed.) Fresh-cut Fruits and
Vegetables. Science, Technology and Market (pp. 31-51). Boca Raton,
USA: CRC Press.
108. Vásquez, F. (2011). Lechuga de IV gama enriquecida con calcio. Evaluación
de algunos parámetros de calidad. (Tesis previa a la obtención del
título de Master en Gestión y Seguridad Alimentaria). Instituto
Universitario de Ingeniería de Alimentos para el desarrollo, Valencia,
España.
109. Velásquez Velásquez, S. E. (2007). Estudio de tecnologías de manejo
postcosecha de lechugas (lactuca sativa) de hoja producidas por cultivo
107
orgánico. Quito, Ecuador: Estudio Previo a la Obtención de Ingeniera
Agroindustrial.
110. Welti-Chanes, J., Vergara-Balderas, F., Guerrero-Beltrán, J., García-Torres,
R., y Villa-Rojas, R. (2005). Métodos, criterios y modelación para la
selección de películas plásticas en atmósferas modificadas. Segundo
Simposio Internacional de Innovación y Desarrollo de Alimentos (2da
ed.). Montevideo, Uruguay: Innova.
111. WHO, W. H. (2000). Environmental Health Criteria 216, disinfectants and
disinfectant by-products. International Programme on Chemical Safety.
Recuperado de: http://www.inchem.org/documents/
ehc/ehc/ehc216.htm#SectionNumber:8.1. (Enero, 2015)
112. Zhou, B. (2010). Investigation on factors influencing ultrasoun-assisted
surface decontamination of fresh and fresh-cut vegetables. (Disertación
doctoral). University of Illinois, Illinois, USA.
108
ANEXOS
109
Figura AI.1. Cultivo a cielo abierto de lechuga var. romana y col en las instalaciones de la empresa “La Huerta”
Figura AI.2. Cosecha de lechuga var. romana
ANEXO I.
CULTIVO DE LA EMPRESA “LA HUERTA” Y COSECHA DE
LECHUGA VAR. ROMANA
110
ANEXO II.
FORMATO DE ANÁLISIS SENSORIAL: PRUEBA DESCRIPTIVA DE
ESCALAS NO ESTRUCTURADAS
111
Escala Marchitez Escala Presencia de patógenos
1
Extrema
1
60-100 %
2
Severa
2
30-60 %
3
Moderada
3
10-30 %
4
Discreta
4
1-10 %
5
Ninguna
5
<1 %
ANEXO III.
ESCALA PARA EL ANÁLISIS DE LA CALIDAD VISUAL DE LCG
112
Tabla AIII.1. Atributos y escala de valoración para evaluar la calidad visual de LCG
Escala
ATRIBUTOS
Marchitez de la hoja
Presencia de patógenos
1 Extrema 60-100 %
2 Severa 30-60 %
3 Moderada 10-30 %
4 Discreta 1-10 %
5 Ninguna <1 %
Para calcular el índice de calidad visual se utilizó la Ecuación AIII.1 (Rodov, et al.,
2000, p. 262)
(Ecuación AIII.1)
Donde:
I: índice de evaluación de la calidad visual
n1-n5: número de muestras que presentan la valoración de 1 a 5 en cada atributo
N: número total de muestras evaluadas
La calidad visual final se obtiene mediante la calificación obtenida dentro de los
rangos que se detallan en la Tabla AIII.2.
Tabla AIII.2. Rangos de calificación y clasificación final para la valoración de la calidad visual de la LCG
Rangos Clasificación Características
4-5 I Mantiene las características iniciales
3-4 II Consumible, presenta deterioro aceptable
<3 III No comercial
(Rodov, et al., 2000)
113
Figura AIV.1. Septum colocado en las bolsas de LCG
Figura AIV.2. Extracción de muestra para análisis de CO2 en el interior de los empaques de LCG
A continuación se muestra en la Figura AIV.3. el equipo analizador de CO2-O2
marca Post Harvest Research, modelo CG-1000, USA provisto de un detector
infrarrojo, empleado para el análisis de las muestras de CO2 en el interior de los
empaques y en el estudio de la fisiología poscosecha de lechuga var. romana
entera y como LCG. Adicionalmente se muestran las condiciones de trabajo para
cada experimentación en la Tabla AIV.1.
ANEXO IV.
CONCENTRACIÓN DE CO2 EN EL INTERIOR DE LOS EMPAQUES
114
Figura AIV.3. Analizador rápido de CO2-O2 Post Harvest Research, modelo CG-1000, USA
Tabla AIV.1. Condiciones de trabajo del equipo analizador de CO2-O2
Condiciones CO2 en el interior de los empaques de LCG
Fisiología poscosecha de lechuga entera y LCG
Volumen de muestra (mL) 10 10
Gas portador N2 N2
Flujo de gas portador (mL/min)
100 100
Presión del gas portador (psi)
15 15
Estándar de CO2 3 % 0,3 %
Rango del detector de CO2 0,8 0,8
Rango del registrador de CO2 (V)
10 1
Registrador
Detector de CO2
marca Horiba
Detector de O2
marca Ametec
Manómetro Tacómetro
Válvula de aguja Abertura para inserción de muestra
115
Figura AV.1. Tablero de mezcla de gases y sus componentes. A: Sistema de mangueras para transporte de gases hasta los tableros secundarios dentro de la cámara de
refrigeración. B: microválvulas de regulación de flujo. C: manguera de conexión para transporte de gases. D: Válvula de cobre para el paso de aire desde el compresor hacia el
tablero de mezcla. E: perillas de regulación (O2, CO2, N2 y CH4). F: medidor de flujo
A continuación se muestra el cálculo del flujo necesario para el estudio de la
fisiología poscosecha de LCG y de la materia prima.
Primero se empleó la Ecuación AV.1 para obtener la tasa de respiración a la
temperatura de trabajo 4°C.
Q10
= TR2
TR1
10
T2-T1 (Ecuación AV.1)
Donde:
: calor de respiración en (J/kg)
: temperatura 1 igual a 5 °C
: temperatura de trabajo igual a 4 °C
ANEXO V.
FISIOLOGÍA POSCOSECHA DE LA MATERIA PRIMA Y DE LA LR
DE IV GAMA
D
A
B
C
E
F
116
: Tasa de respiración a la temperatura 1 para LCG se encuentra dentro del
rango 10 a 16 ml CO2/kg h, en promedio 18 ml CO2/kg h (Martínez, Chiesa, Tovar,
y Artés, 2005, p. 358), se realizó la conversión y se obtuvo el valor de 25,233 en
mgCO2/kg h para la tasa de respiración de la LCG.
: Tasa de respiración a la temperatura 2, incógnita.
Resolviendo la Ecuación AV.1 se obtiene una = 23,543 mg CO2/kg h lo cual se
emplea en la Ecuación AV.2 para el cálculo del flujo necesario de aire para
alimentar a las jarras de respiración.
(Ecuación AV.2)
Donde:
f: flujo de aire en mL/min
m: masa del producto en Kg
TR: tasa de respiración de referencia en mgCO2/kg-h
: densidad de CO2 a presión y temperatura de trabajo en g/L
:concentración de CO2 en el estándar a usarse en %
: concentración de CO2 en el gas de entrada en %
La densidad del CO2 (δCO2) se calculó con la ley de los gases ideales como se
detalla a continuación:
.
Con el valor obtenido se calcular el flujo requerido de aire de alimentación a las
jarras
117
Para la lechuga entera se tiene una tasa de respiración registrada entre 6 y 8
mlCO2/kgh (Martinez, Chiesa, Tovar, y Artés, 2005, p. 356) a 5°C, que da como
resultado de la conversión de unidades 13,587 mgCO2/kgh.
Siguiendo los pasos anteriores y utilizando las ecuaciones (6.1) y (6.2) se obtuvo
que el flujo requerido de aire para la alimentación de las jarras sea de 23,188
mL/min.
Por otro lado, en la Figura AV.2a se muestra el sistema dinámico de respiración
continua empleado en esta experimentación para medir la tasa de respiración de
la materia prima y de la LR de IV gama. La toma de muestras de cada jarra se
realizó con una jeringa de 1 mL como se observa en la Figura AV.2b.
Figura AV.2. Sistema dinámico de respiración continua empleado(a) y obtención de una muestra de gases a la entrada de una jarra de respiración con lechuga entera (b). A:
Microválvulas de regulación de flujo, B: mangueras de conexión, C: tablero de gases, D: humidificadores y E: jarras de respiración con LR. X: jeringa de 1 mL, Y: manguera de
salida de la jarra, Z: manguera de entrada de la jarra
a
b
118
En la Tabla VI.1 se presentan los costos y el área de construcción para la
producción de LR de IV gama.
Tabla VI.1. Costos y área total del terreno y construcciones para la producción de LR de IV gama
Denominación Costo (USD/m2) Área total (m2)
Valor total (USD)
Terreno(1) 40,0 77,0 3080,0
Oficinas (2) 300,0 17,0 5100,0
Sanitarios y vestidores (2) 300,0 13,0 3900,0 Bodega de insumos (2) 300,0 7,0 2100,0
Cámara de procesamiento(3) 416,7 24,0 10000,0
Parqueadero (2) 300,0 16 4800,0
(1) Municipio de El Quinche
(2) Saavedra Arquitectos
(3) Multifrío
En la tabla VI.2 se presentan los costos adicionales del alquiler del vehículo para
transporte de la materia prima y del producto terminado (valor anual) y los costos
de los materiales de oficina requeridos para la elaboración de LR de IV gama.
Tabla VI.2. Costos adicionales de transporte y equipamiento para la elaboración de LR de IV gama
Descripción Costo unitario
Cantidad total
Costo/total (USD)
Alquiler de vehículo
8 USD/hora 1 8448
Escritorio 275 USD 2 550
Archivador 93 USD 2 186
Teléfono 60 USD 2 120
Computador 700 USD 2 1400
Sillas 30 USD 6 180
ANEXO VI.
DETALLE DE CONSTRUCCIONES Y COSTOS PARA EL
PROCESAMIENTO DE LR DE IV GAMA
119
La cámara de procesamiento que es un cuarto frío que trabaja a una temperatura
igual a 4 ± 1 °C con un área total de 24 m2. Dentro de esta cámara se encuentra
la cámara de producto terminado de 4 m2 separada por una pared y por una
cortina de polímero de tiras de 2,5 mm de espesor. En la tabla VI.3 se presentan
las características del cuarto frío.
Tabla VI.3. Características de la cámara de frío para el procesamiento de LR de IV gama
Material Espesor Característica
Sec
ción
Paredes y Techo
Poliuretano inyectado
5,0 cm Densidad 38kg/m3 Termoacustico, sismoresistentes
Lámina prepintada blanca
0,5 mm Sellado hermético
Puertas batientes
Lámina prepintada blanca
0,5 mm Dimensiones 0,90 x 2 m
Poliuretano 8,0 cm Aislamiento
Cortina Polímero 2,5 mm Aislamiento
Eq
uip
o F
rigo
rífi
co Equipo Características
Condensador Marca Tecumseh de 2 HP, 208/230 voltios, 60 Hz. Gas refrigerante R404
Evaporador Marca DELTA FRIO de 16 000 BTU/h, descongelamiento natural
(Multifrio, 2015)
En la Tabla VI.4 se presentan las depreciaciones de las instalaciones y de los
equipos.
Por otro lado, en la Tabla VI.5 se presenta la tabla de amortización del préstamo
bancario para 10 años y en la Tabla VI.6 se presenta el capital de trabajo y el
incremento del 10 % para cada año.
120
Tabla VI.4. Depreciación de instalaciones y los equipos para la producción de LR de IV gama
EQUIPOS COSTRUCCIONES Y TERRENO
Denominación Depreciación Denominación Depreciación
Cuchillos de acero inoxidable de hoja lisa
4,01 Oficinas 510,00
Balanza (proceso) 3,75 Sanitarios y vestidores 390,00
Balanza (materia prima) 12,00 Bodega de insumos 210,00
Kavetas 17,36 Cámara de procesamiento 1000,01
Tanque de lavado 16,25 Parqueadero 480,00
Tanque de inmersión 16,25
Mesas de trabajo 25,89
Selladora 7,00
Computadores 466,67
Tabla VI.5. Tabla de amortización del préstamo para el financiamiento del proyecto
Período (años)
Saldo Inicial (USD)
Intereses (USD)
Cuota (USD)
Amortización (USD)
0 50000,00 468,05 5261,03 4792,97
1 45207,03 423,18 5261,03 4837,84
2 40369,18 377,90 5261,03 4883,13
3 35486,06 332,19 5261,03 4928,84
4 30557,22 286,05 5261,03 4974,98
5 25582,24 239,48 5261,03 5021,55
6 20560,69 192,47 5261,03 5068,56
7 15492,13 145,02 5261,03 5116,00
8 10376,13 97,13 5261,03 5163,89
9 5212,23 48,79 5261,03 5212,23
10 0,00 0,00 - -
121
Tabla VI.6. Capital de trabajo para cada año
Año Capital de trabajo Incremento 10%
1 123624,19 12362,41934
2 135986,61 13598,66127
3 149585,27 14958,5274
4 164543,80 16454,38014
5 180998,18 18099,81816
6 199098,00 19909,79997
7 219007,80 21900,77997
8 240908,58 24090,85797
9 264999,44 26499,94376
10 291499,38 29149,93814
Total 197025,1261