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Determinación Experimental de Estructuras de Proteínas Universitat de València - Grado en Bioqímica y Ciencias Biomédicas Estructura de Macromoléculas y Enzimología P1 - Representación y Análisis de Estructuras de Proteínas Actualizado: 09/27/2019 14:52:12 Introducción Bases de Datos de Información Estructural En la actualidad se conocen con detalle atómico casi 160,000 estructuras tridimensionales de macromoléculas biológicas. Cada una de ellas ha sido determinada experimentalmente, utilizando distintos métodos, principalmente Difracción de Rayos-X (~90% de los casos), Resonancia magnética Nuclear (RMN) (~9% de los casos), y en menor medida, Microscopía Electrónica y otras técnicas de difracción. Toda esta enorme información estructural está disponible de forma libre para la enseñanza, la investigación la sanidad o la industria. Para su almacenamiento y utilización los datos estructurales se encuentran escritos en ficheros de texto sencillo que contienen las coordenadas de los átomos de cada molécula escritas con arreglo a un formato estandarizado ( formato pdb). Cada estructura presente en la base de datos se encuestra escrita en un fichero pdf y a ella se asigna una etiqueta propia y única de identificación que se conoce como pdb-ID. Todos los ficheros de estructuras se depositan y organizan en un archivo único accesible sin restricciones a través de Internet. El archivo único de estructuras 3D de macromoléculas es gestionado a nivel Mundial a través del Consorcio Worldwide Protein Data Bank (wwPDB), formado por cuatro miembros: dos en USA (RCSB PDB y BMRB), uno en Europa ( PDBe) y uno en Japón ( PDBj ). Cada uno de ellos organiza el deposito de nuevas estructuras, a la vez que mantiene una copia del archivo de estructuras completo, a través de las bases de datos RCSB PDB, PDBe y PDBj . Las bases de datos facilitan el acceso a la información estructural a través de herramientas de búsqueda. Además, proporcionan información estadística sobre el contenido del archivo e información bibliográfica sobre cada registro, y complementan la información estructural depositada por los autores con una amplia gama de nuevos datos obtenidos a partir del análisis de las estructuras , tales como: Modelos gráficos de estructuras terciaria y cuaternaria . Evaluación de la calidad de las estructuras. Esquemas de estructura primaria y secundaria. Localización de dominios. Estudio de ligandos y sitios de unión . Vínculos a entradas de la misma molécula en otras bases de datos (de secuencias, de clasificación estructural , de función, etc.). https://www.uv.es/bbm/EME/P1/ Estructura de Macromoléculas y Enzimología - P1 1

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Determinación Experimental de Estructuras de Proteínas

Universitat de València - Grado en Bioqímica y Ciencias Biomédicas Estructura de Macromoléculas y Enzimología

P1 - Representación y Análisis de Estructuras de Proteínas

Actualizado: 09/27/2019 14:52:12

Introducción

Bases de Datos de Información EstructuralEn la actualidad se conocen con detalle atómico casi160,000 estructuras tridimensionales demacromoléculas biológicas. Cada una de ellas hasido determinada experimentalmente, utilizandodistintos métodos, principalmente Difracción deRayos-X (~90% de los casos), Resonancia magnéticaNuclear (RMN) (~9% de los casos), y en menormedida, Microscopía Electrónica y otras técnicasde difracción.

Toda esta enorme información estructural estádisponible de forma libre para la enseñanza, lainvestigación la sanidad o la industria. Para sualmacenamiento y utilización los datosestructurales se encuentran escritos en ficherosde texto sencillo que contienen las coordenadas delos átomos de cada molécula escritas con arreglo aun formato estandarizado (formato pdb). Cada estructurapresente en la base de datos se encuestra escritaen un fichero pdf y a ella se asigna una etiquetapropia y única de identificación que se conoce como pdb-ID.Todos los ficheros de estructuras se depositan yorganizan en un archivo único accesible sinrestricciones a través de Internet.

El archivo único de estructuras 3D demacromoléculas es gestionado a nivel Mundial através del Consorcio Worldwide Protein Data Bank (wwPDB), formado por cuatro miembros: dos enUSA (RCSB PDB y BMRB), uno en Europa (PDBe) y uno en Japón (PDBj). Cada uno de ellos organizael deposito de nuevas estructuras, a la vez que mantiene una copia del archivo de estructurascompleto, a través de las bases de datos RCSB PDB, PDBe y PDBj.

Las bases de datos facilitan el acceso a la información estructural a través de herramientas debúsqueda. Además, proporcionan información estadística sobre el contenido del archivo e informaciónbibliográfica sobre cada registro, y complementan la información estructural depositada por losautores con una amplia gama de nuevos datos obtenidos a partir del análisis de las estructuras,tales como:

Modelos gráficos de estructuras terciaria y cuaternaria.Evaluación de la calidad de las estructuras.Esquemas de estructura primaria y secundaria.Localización de dominios.Estudio de ligandos y sitios de unión.Vínculos a entradas de la misma molécula en otras bases de datos (de secuencias, declasificación estructural, de función, etc.).

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Representación y Análisis de EstructurasLas estructuras de macromoléculas biológicas corresponden a una escala nanométrica, por que suobservación óptica directa no es posible (la resolución de la microscopía óptica se encuentralimitada por el rango de valores de longitud de onda de la luz visible). Tampoco es fácil suobservación directa con detalle atómico por métodos nanoscópicos (como las microscopias electrónicay de fuerza atómica) ya que para ello la resolución de la imagen debería ser del orden de unospocos Ångström (como corresponde a las distancias de enlace). Por todo ello, para su estudio sellevan a cabo representaciones gráficas a partir de los ficheros de coordenadas atómicasexperimentales y con ayuda de programas informáticos. Dichas representaciones computacionalesson modelos moleculares tridimensionales que pueden ser rotados, anotados y re-escalados y que enmuchos casos permiten el cálculo de propiedades moleculares.

El proceso de creación de imagenes de moléculas en general se conoce como modelado o modelización.Existe una gran variedad de programas informáticos adecualdos para llevar a cabo representacionesde macromoléculas biológicas, y pueden clasificarse en:

1. Programas de visualización molecular. Permiten una exploración rápida de la molécula a través dedistintos modos de ilustración. Se integran fácilmente en sitios web, aunque su capacidadgráfica y de análisis molecular es limitada. Dos buenos ejemplos son Jmol y NGL Viewer.

2. Programas de caracterización estructural. Permiten llevar a cabo representaciones acopladas a diversasherramientas de modelización y análisis de la estructura. DeepView - SwissPdbViewer es de los mássencillos dentro de este grupo, aunque incorpora herramientas de alineamiento estructural devarias moléculas, sustitución de residuos, búsqueda de cavidades y detección de contactos.Otros casos, como PyMol y VMD presentan una alta calidad gráfica y multiples posibilidades deanálisis que además pueden expandirse mediante el uso de scripts y plugins.

Resumen del Desarrollo de la PrácticaEn la Parte 1, "visitaremos" una de las bases de datos del consorcio wwPDB y revisaremosbrevemente el tipo de información general que proporciona. Tomaremos ejemplos de estructurasconcretas y las analizaremos directamente en la base de datos. Estudiaremos las característicasde sus ficheros estructurales en formatos PDB y FASTA y llevaremos a cabo una observaciónpreliminar de modelos de esas estructuras utilizando in situ el visualizador NGL (WebGL).Finalmente descargaremos los ficheros pdb de las estructuras elegidas para trabajar con ellos ennuestro propio ordenador.

En la Parte 2, llevaremos a cabo representaciones de las estructuras elegidas partiendo de susficheros DPB y con la ayuda de un programa avanzado de análisis molecular. Visualizaremos lamolécula con detalle atómico a través de diversos modelos. Paralelamente, llevaremos a cabo unestudio de algunos detalles de las estructuras que nos permitirá conocer las propiedades de susniveles tridimensionales (estructuras secundaria, terciaria y cuaternaria), las característicasde su sitio de unión de ligandos, la búsqueda de interacciones específicas, o las diferenciasentre distintas formas estructurales de la misma molécula.

Objetivos

(1)Conocer la base de datos de estructuras tridimensionales de macromoléculas biológicas.

(2)Llevar a cabo búsquedas y acceder a información estructural concreta.

(3)Conocer en qué consiste la información estructural depositada en la base de datos, así comolas características de los formatos de fichero estructural más comunes.

(4)Llevar a cabo representaciones de modelos moleculares a partir de datos estructuralesobtenidos de la base de datos.

(5)Visualizar y analizar con detalle y comparar distintas estructura de una misma proteína.

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Protein Data Bank, en www.rcsb.org

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P1 - Representación y Análisis de Estructuras de Proteínas

Actualizado: 09/27/2019 14:54:36

Parte 1

INSTRUCCIONESEn el terminal de trabajo en el Aula Informática solo tienes permiso temporal de escritura ylimitado a unas pocas carpetas. Durante la práctica generarás ficheros que vas a necesitardespués. Para salvarlos haz lo que sigue:

1. Crea una carpeta dentro de "Descargas" o en el "Escritorio" con un nombre reconocible.2. Guarda en ella las imágenes y notas que generes durante la práctica.3. Al terminar la práctica, comprime la carpeta en un fichero zip.4. Envía el fichero zip a tu propria dirección de e-mail.

El texto que sigue es un guion de la práctica.

Los cuadros con fondo gris contienen instrucciones concretas sobre lo que debes hacer así comoalgunas preguntas sencillas. Anota las respuestas a las preguntas, ya que podrías necesitarlaspara completar el formulario de resultados.

El formulario de resultados está disponible en Aula Virtual. Es obligatorio entregarloindividualmente y antes de la fecha límite a través de la Tarea Pr1 del Aula Virtual.

Bases de Datos del wwPDBComo se ha descrito en la Introducción, wwPDBmantiene un repositorio único de estructuras demacromoléculas determinadas experimentalmente quepuede consultarse a través de distintos puntos deacceso. Vamos a utilizar el gestionado por RCSB(Research Collaboratory for Structural Bioinformatics), cuyabase de datos se denomina RCSB PDB.

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Vista general de la base de datos

Accede a RCSB PDB y revisa su contenido.

En la página inicial encontrarás un campo pararealizar búsquedas y el cuadro principal condistintos tabuladores (con opciones que tambiénpuedes encontrar en el menú superior).

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Los apartados Welcome y Learn contienen informacióngeneral, divulgativa y educativa. Los apartados Deposit y Analyze son utilizados por usuariosavanzados. Permiten insertar nuevas estructuras, estudiar su calidad o comparar distintasestructuras. En el apartado Search podemos navegar a través del archivo y localizar estructurasindividuales o por tipos. Por último, en el apartado Visualize encontraremos herramientassencillas para crear y observar modelos gráficos de estructuras.

Revisaremos brevemente la distribución de información en el archivo, a través de Search. Buscarespuestas a las preguntas del recuadro:

1. ¿De qué organismos existe un mayor número estructuras conocidas?2. A pesar del nombre de la base de datos, no todas las estructuras que se encuentran en ella

son proteínas. ¿Qué otros tipos de moléculas hay?

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Búsqueda de estructuras de una proteína: Oxi-hemoglobina humana

A cada estructura se le asigna un código de 4 dígitos (PDB-ID). Para acceder a los datos de unaestructura determinada introduce su PDB-ID en la herramienta de búsqueda. Si desconoces ese código parala estructura que te interesa, puedes buscarla utilizando el nombre de la molécula, su función, elnombre del autor de la estructura, etc.

Una de las proteínas con más estructuras en la base de datos es la hemoglobina. La primeraestructura de hemoglobina fue determinada mediante difracción de rayos X por Max Perutz,galardonado premio Nobel de química (1962) junto a John Kendrew (descubridor de la estructura de lamioglobina mediante el mismo método). Estas estructuras inauguraron en 1976, junto a otras 10, la primeraversión del Protein Data Bank.

Vamos a estudiar la estructura de la hemoglobina humana determinada en presencia de oxígeno.Utilizaremos datos recientes, publicados por J. R. Tame y colaboradores en 2006 (puedesencontrarla a través de la siguiente búsqueda "human oxy haemoglobin 2006).

1. ¿Cuál es el PDB-ID de la primera estructura de hemoglobina (de Perutz)? ¿De qué organismo es esahemoglobina? ¿En qué revista y año se publicó la estructura?

2. ¿Qué método se ha utilizado para resolver la estructura de la oxi-hemoglobina humana publicadapor J. R. Tame y colaboradores en 2006? ¿Con qué nivel de resolución se ha obtenido? Toma notadel PDB-ID de esa estructura; vas a necesitarlo después.

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Ficheros de datos estructurales. Formatos FASTA y PDB

La estructura de cualquiera de las moléculas incluidas en la base de datos se escribe en ficherosde texto con formatos especiales. Cuando accedemos a un registro, sus ficheros estructurales seencuentran en el apartado "Display Files".

El primero de los ficheros disponibles contiene solo la estructura primaria (secuencia de residuos),escrita en formato FASTA. Después se encuentran varios ficheros de estructura tridimensional, quecontienen principalmente las coordenadas espaciales o cartesianas {x,y,z} de los átomos de lamolécula. Por lo general se incluyen solo las coordenadas de los átomos pesados (C, O, N, S, P u

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Información estructural en el formato PDB

otros, si los hay, pero no H). El formato deestructura 3D más intuitivo y más utilizado recibeel nombre de formato "PDB".

En los ficheros PDB suele haber una primera parte,denominada HEADER con información complementaria acercadel origen de la proteína, el método usado para ladeterminación estructural, la calidad de laestructura, la secuencia de residuos, la estructurasecundaria, etc. La estructura 3D como tal se encuentraa continuación y corresponde a todas las líneas quecomienzan por ATOM. Si existen grupos químicos noproteicos en la molécula, su estructura se escribe enlas lineas que comienzan por HETATM. En amboscasos, cada linea se organiza en columnas quecontienen el número de orden del átomo, su nombre,elnombre y orden de secuencia del residuo correspondiente adicho átomo y las tres coordenadas cartesianas que dictan la posición espacial puntual de ese átomo. Seguidoa estos valores se encuentran normalmente dos más, con el número de ocupación (frecuencia de esaposición espacial entre varias conformaciones posibles) y el factor "B" o factor isotrópico de temperatura(desplazamiento de la posición del átomo con respecto a un valor medio). Estos dos últimosnúmeros son una medida de la flexibilidad de la molécula en el punto correspondiente al átomoconsiderado.

Algunos autores proporcionan también para cada átomo, los factores de temperatura anisotrópicos(relacionados con el factor B), en líneas adicionales que comienzan por ANISOU

Revisa los ficheros FASTA y PDB de estructura de la oxi-hemoglobina humana (determinada porTame en 2006) y responde:

1. ¿Qué código se utiliza para definir la secuencia de residuos en el formato FASTA?2. ¿Cuántas cadenas aparecen en el fichero FASTA de esta estructura? ¿Cómo se nombran esas cadenas?

Compara esas cadenas, ¿son idénticas o diferentes?3. Anota los 4 primeros residuos de cada cadena4. ¿Qué partes de la información presente en un fichero PDB son imprescindibles para definir la

estructura de la molécula?5. ¿A qué moléculas o grupos químicos corresponden los átomos no proteicos presentes en esa

estructura?6. ¿Cuántas cadenas hay en el fichero? Anota los 4 primeros residuos de cada una de ellas y

compáralos con los 4 primeros residuos de la secuencia en el formato FASTA. NOTA: El primer residuo de la secuencia (en FASTA) no está presente en el fichero decoordenadas (pdb). La explicación a esta aparente contradicción está en el REMARK 465 delfichero pdb

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Estructuras cuaternarias biológicas en registros PDB

La mayoría de las estructuras de la base de datos han sido determinadas mediante difracción derayos X. Por ello corresponden a una unidad de asimetría, definida como la parte mas simple dela estructura cristalina que permite reconstruir una celda unidad (o unidad repetida delcristal). Sin embargo, la organización molecular supuestamente funcional, llamada agrupación biológica(biological assembly) en muchos casos no coincide con la unidad de asimetría.

Un buen ejemplo de ello es el caso de estructuras de hemoglobina. En esta proteína la agrupaciónbiológica es un tetrámero (α2β2), aunque en algunas estructuras de hemoglobina la unidad deasimetría es dímerica (αβ).

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La unidad de asimetría de 2DN1 (oxi-hemoglobina) es un dímeroαβ, distinto de la agrupación biológica esperada (tetrámero α2β2).

Cuando la agrupación biológica y la unidad deasimetría no coinciden, la primera puedeconstruirse a partir de la segunda utilizando lamatriz de transformación proporcionada en elpropio fichero PDB, en las lineas del HEADERmarcadas con REMARK 350. El programa libredisponible on line MakeMultimer.py, a través de laUniversidad de Waterloo (Ontario, Canadá), permiteobtener de manera fácil ficheros pdb conestructuras cuaternarias correctas.

En estructura de la oxi-hemoglobina que hemoselegido anteriormente la unidad de asimetría esun dímero αβ. Hemos construido a parte un ficheropdb con la agrupación biológica (tetramérica),utilizando MakeMultimer.py. Descárgalo a través deeste link.

Guarda ambas estructuras en el directorio de Descargas de tu ordenador. Trabajaremos con ellasen la Parte 2.

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Visualización de estructuras "in situ" (WebGL)

La base de datos proporciona herramientas de visualización de modelos moleculares de cadaestructura. La visualización se accede a través del tab 3D View presente en la página de unregistro concreto.

Utiliza el visualizador NGL (WebGL) para obtener modelos sencillos de la de oxi-hemoglobina.

Para el caso de la oxi-hemoglobina prepara una imágen del sitio de unión del oxígeno en la cadena A.Orienta la imagen de manera que se observen bien, al menos, el oxígeno y las histidinas distaly proximal. Anota la numeración de estos residuos así como otros que se aparezcan representadoscon claridad. Guarda esta imagen localmente en tu ordenador.

J. Salgado - 2019, Universitat de València

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Universitat de València - Grado en Bioqímica y Ciencias Biomédicas Estructura de Macromoléculas y Enzimología

P1 - Representación y Análisis de Estructuras de Proteínas

Actualizado: 09/27/2019 15:04:50

Parte 2

Representación y Análisis de la Estructura de laOxi-hemoglobinaComo acabas de ver en la Parte 1, aunque es posible representar la estructura a través deherramientas presentes en la propia base de datos (ver Parte 1.5), sus posibilidades sonlimitadas. Por ello vamos a utilizar el programa VMD (Visual Molecular Dynamics), desarrollado en laUniversidad de Illinois y disponible en código abierto de forma libre. Puedes encontrar un manual deVMD en este enlace.

Con ayuda de este software representaremos y analizaremos la estructura de la oxi-hemoglobina (verParte 1.2).

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Visión general de la estructura

Abre con VMD el fichero PDB de la estructura de la oxi-hemoglobina. Obtendrás inicialmente unarepresentación por defecto de todos los atomos de la molecula. Vamos a crear representacionesmás claras teniendo en cuenta aquello que nos interesa observar o analizar. Para elloutilizaremos las herramientas que aparecen en la ventana de Graphics -->Representations. Podemoscombinar múltiples tipos de representación, de toda la molécula o de partes de ella utilizandoadecuadamente las reglas de selección para cadenas, residuos, etc.

Para empezar sigue, paso a paso, las instrucciones del cuadro siguiente:

Guía:

En la ventana de Representaciones (Graphics -->Representations)...

En la estructura hay cuatro cadenas. De momento vamos a trabajar solo con la cadena A (chainA)...

(1)En el campo Selected Atoms introduce chain A Representa los átomos como puntos (en Drawing Method selecciona Points) y aumenta el tamaño de lospuntos (Size → 10)

Recuerda que no todos los átomos son proteicos. Vamos a separar átomos proteicos y noproteicos...

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(2)Haz click dos veces sobre la linea de la representaciónanterior. Crea una representación nueva (Create Rep) y cambia suspropiedades: En Selected Atoms → not protein and chain A En Drawing Method → CPK

CPK es una representación con bolas y barillas de manera queaparecerán enlaces entre átomos cercanos cuando asícorresponda. Ello te permite observar con claridad que losátomos no proteicos son de dos tipos.

Puedes saber fácilmente de qué átomos se trata marcándolosen el Display. Para ello haz lo siguiente:

(3)Con el cursor dentro de la ventana Display: Pulsa 1, después con el botón izquierdo del ratón pulsa sobre unátomo y verás una marca con el nombre de residuo, numeración y tipo de átomo

- ¿A que tipo de atomos corresponde la selección not protein (a qué moléculas o gruposquímicos corresponden (ver Parte 1.3, pregunta 5)?

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"Construye" la cadena y estudia la estructura secundaria

Para entender mejor la estructura de la proteína vamos a alargar la cadena poco a poco.

Guía:

Esconde la representación que tengas visible (click dosveces sobre la linea de la representación) y crea unanueva (Create Rep)

(1)En la nueva representación ajusta lo siguiente: Drawing Method → Licorice Selected Atoms → protein and chain A and resid 1

NOTA: resid se refiere al número de residuo en el fichero decoordenadas (pdb) de la estructura. Ten en cuenta que eneste fichero la numeración de residuos podría empezar con unnúmero distinto de 1 (ver Parte 1.3). Puedes ver los númerosresid que corresponden a tu estructura entrando en el tabSelections y seleccionando resid en la lista de Keywords.

Cuando logres visualizar el primer residuo, puedes ver sunombre y la denominación de sus átomos seleccionándolos con el ratón:

(2)Con el cursor dentro de la ventana Display: Pulsa 1, después con el botón izquierdo del ratón pulsa sobre un átomo y verás una marca con elnombre de residuo, numeración y tipo de átomo

- ¿Cuál es el primer residuo de la cadena A de tu estructura? ¿Qué numeración tiene? Si esa

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numeración es distinta de 1 explica porqué (ver Parte 1.3, pregunta 6).

Continúa alargando la cadena...

(3)Selected Atoms → protein and chain A and resid 1 to 2, y poco a poco hasta 1 to 20

Quizá veas que la estructura que aparece es bastante regular. Para observar mejor como esduplica la representación de la forma siguiente:

(4)Crea una representación nueva (Create Rep) y cambia sus propiedades: Selected Atoms → protein and chain A and resid 1 to 20 Drawing Method → tube

Alarga esta nueva representación hasta el residuo 40 ( Selected Atoms → protein and chain A and resid 1 to40) y hasta el final de la cadena ( Selected Atoms → protein and chain A)

(5)Completa la cadena y representa de manera especial la estructura secundaria de una de lascadenas cadenas &alfa; de la hemoglobina: Selected Atoms → protein and chain A Drawing Method → cartoon Coloring Method → secondary structure

(6)Para saber que tipos de estructura secundaria presentan las cadenas de tipo β repite el paso(5) seleccionando ahora la cadena B (o D).

- ¿Qué tipo o tipos de estructura secundaria presentan las cadenas α y las cadenas β de lahemoglobina?

La estructura secundaria también puede evaluarse a través del diagrama de Ramachandran, quepodemos obtener utilizando comandos especiales de análisis que se encuentran en el menú deExtensions.

(7)Abre la herramienta de representación de gráficos de Ramachandran: Extensions -->Analysis -->Ramachandran Plot

En la nueva ventana, selecciona una cadena concreta, tipo α (A, o C), o tipo β (B o D). Cadapunto en el diagrama corresponde a un residuo. Si seleccionas un punto con el ratón sabrás deque residuo se trata así como los valores de sus rotámeros φ y ψ.

1. Observa los diagramas de Ramachandran de una de las cadenas α y una de las cadenas β dehemoglobina. ¿A qué estructuras secundarias corresponden estas representaciones? Son estasestructuras las mismas que las que observas en representaciones moleculares de las estructuras(ver tu respuesta a la pregunta anterior)?

2. Compara los diagramas de Ramachandran entre cadenas α (A y C) o entre entre cadenas β (B yD). ¿Son distintos? ¿Y entre una cadena α y una β?

3. En los diagramas de Ramachandran hay algunos residuos en regiones prohibidas. ¿Cuáles son esosresiduos? ¿Porqué pueden presentar conformaciones prohibidas?

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Representación del complejo hemoglobina(cadena α)-O2

Ahora representaremos con detalle el grupo hemo y el O2 en una de las cadenas de la hemoglobina.En la representación destacaremos también dos residuos importantes de la proteína: lashistidinas histidinas proximal y distal. Para utilizar el grupo hemo y el oxígeno te será de utilidad

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recordar sus denominaciones como residuo en el fichero pdb (Parte 1.5). Sigue la guía del cuadro:

Guía:

Recuerda que puedes combinar varias representaciones sinecesitas utilizar estilos diferentes.

(1)Para tener una perspectiva sencilla de la cadena creamosprimero una representación esquemática: Create Rep ⇒ ⇒ Selected Atoms → chain A ⇒ Drawing Method → tube ⇒ Radius → 0.1 ⇒ Coloring Method → ColorID → 2 gray

(2)A continuación, en una nueva representación mostramos elgrupo hemo (resname HEM) el oxígeno ( resname OXY) y lashistidinas (resname HIS): Create Rep ⇒ ⇒ Selected Atoms → chain A and resname HEM OXY HIS ⇒ Drawing Method → Licorice

La histidina proximal es la que se encuentra coordinada alFe2+ del grupo hemo. La distal es la siguiente más cercana,por la cara opuesta del plano del hemo. Pararepresentarlas "a parte" necesitamos conocer su numeraciónde residuo:

(3)Con el cursor dentro de la ventana Display: Pulsa 1, después con el botón izquierdo del ratón pulsa sobre cualquier átomo de las His proximal o distal. Elnombre y numeración de residuo aparecerán en el Display

(4)Reajusta la representación que has hecho en el punto (2): Selected Atoms → chain A and (resname HEM OXY or resid #N1 #N2)

NOTA: sustituye #N1 y #N2 por los números de residuo que debes haber encontrado para lashistidinas proximal y distal. Seguramente has anotado también estos números a partir de lavisualización que hicimos en el apartado anterior (Parte 1.5).

Si quieres completar tu representación con mas residuos cercanos al sitio de unión deoxígeno, puedes tomar el átomo de Fe como referencia y buscar otros átomos cercanos a él:

(5)Crea una nueva representación, con las siguientes características: Create Rep ⇒ ⇒ Selected Atoms → protein and chain A and (not resid 58 87) and within 6 of name FE ⇒ Drawing Method → licorice ⇒ Coloring Method → color ID → 0

Como has hecho ya en el punto (3), averigua los números de residuo a los que corresponden losnuevos átomos que aparecen en la representación. Utiliza esos números para representar lascadenas laterales de esos residuos.

(6)Exporta tu representación como imagen: File → Render → Start Rendering

- Busca una orientación adecuada del sitio de unión de oxígeno. Crea una imagen yguardala en tu carpeta de resultados. Deberás incorporar la imagen, junto con unadescripción de la misma, en tu formulario de resultados.

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Estructura cuaternaria: Interacción entre subunidades

Para terminar estudiaremos la proteína completa, incluyendo sus cuatro subunidades. Para estetipo de representaciones de estructura cuaternaria conviene utilizar visualizaciones de superficie,que nos dan una idea clara de la forma de la molécula y permiten analizar las interaccionesentre subunidades. Dichas superficies pueden colorearse según el tipo de cadena, el tipo deresiduo, etc.

Guía:

Esconde tus representaciones activas (click dos vecessobre la linea de la representación); trabajaremos conotras nuevas.

(1)Create Rep ⇒ ⇒ Selected Atoms → protein ⇒ Drawing Method → QuickSurf ⇒ Coloring Method → Chain

Ahora cada cadena se muestra con un color diferente.Recuerda que las cadenas son iguales dos a dos. Lascadenas A y C son de tipo α. Las cadenas B y D son de tipoβ. Con las cuatro cadenas visibles puedes ver que lasuniones entre ellas no son en todos los casos igual decercanas. Prueba a representarlas en pares (α1 con β1, α1con β2, α1 con α2, β1 con β2,):

(2)Modifica tu última representación, o escóndela y crea una nueva... Coloring Method → Chain, Drawing Method → QuickSurf Selected Atoms → protein and chain A B (o protein and chain A D... etc)

Para ver las características de la superficie de una cadena que interacciona con otra,cambia la representación de una de ellas a un modo esquemático (por ejemplo, Lines) ycolorea la superficie de la otra según el tipo de residuo (ResType):

(3)Esconde tu última representación y crea dos nuevas para dos cadenas distintas, por ejemplo Ay B... En una de las representaciones... Selected Atoms → protein and chain A Coloring Method → ResType, Drawing Method → QuickSurf

En la otra representación... Selected Atoms → protein and chain B Coloring Method → Chain, Drawing Method → Lines

1. ¿Qué pares de cadenas crees que presentan una interacción más fuerte?2. Describe la superficie de interacción entre las cadenas A y B (¿es polar, hidrofóbica,

iónica...?)

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