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Micología médica
Capítulo 45
MICOLOGÍA
SECCIÓN V
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SECCIÓN V. MICOLOGÍA Capítulo 45. Micología médica
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Figura 45-1 Artroconidios formados
por la fragmentación de hifas, que se transforman en
conidios compactos. 400×.
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Figura 45-2 Rhizopus. El esporangio de dicho
moho ha liberado sus esporangiosporas, pero
permanece unido a éste que forma un apoyo, y se
advierten rizoides en la base del esporangióforo.
200×.
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Figura 45-3 Cunninghamella bertholletiae. Sus esporangiosporas son producidas en el
interior de los esporangios que están unidos a una vesícula y sostenidos por un
esporangióforo. 400×.
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Figura 45-4 Penicillium. Las cadenas de conidios
son generadas por fiálides, sostenidas por
un conidióforo ramificado. El conidio basal es nuevo. 400×.
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Figura 45-5 Scopulariopsis. Esta cadena de conidios fue
producida por un anélide, otro tipo de célula conidiógena.
400×.
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Figura 45-6 Aspergillus fumigatus. Las fiálides se forman por encima
de la vesícula compacta en el extremo de un conidióforo largo. Los conidios basales son los más
nuevos. Los conidios maduros tienen paredes rugosas. 400×.
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Figura 45-7 Bipolaris. Hongo dematiáceo que produce macroconidios de pared
gruesa, característicos. 400×.
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Figura 45-8 Curvularia. Es un hongo dematiáceo que
produce los característicos macroconidios curvos que
tienen grandes células centrales peculiares. 400×.
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Figura 45-9 Piedra. A: Cabello con piedra blanca y un nódulo
causado por la proliferación de Trichosporon. 200×.
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Figura 45-9 Piedra. B: Cabello con piedra negra y
un nódulo duro y negro causado por proliferación
del moho dematiáceo Piedraia hortae. 200×.
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Figura 45-10 Ejemplos de tres géneros de dermatofitos. A: Trichophyton tonsurans se
caracteriza por la generación de microconidios alargados, unidos a una hifa
de sostén. B: Microsporum gypseum produce macroconidios individuales de
paredes finas y también ásperas.
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Figura 45-10 Ejemplos de tres géneros de dermatofitos. C: Epidermophyton
floccosum tiene macroconidios en forma de clava y paredes finas y lisas
que se disponen típicamente en pequeños cúmulos.
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Figura 45-11 Dermatofitosis. Preparación de raspaduras de una lesión tiñosa sin teñir, a la que se ha agregado hidróxido de potasio para estudio microscópico. EL hidróxido ocasiona lisis de las células epidérmicas y quedan al descubierto las hifas hialinas ramificadas y tabicadas. 100×.
(Reproducida con autorización de Ryan KJ, Ray CG [editors]: Sherris Medical Microbiology, 5th ed. McGraw-Hill, 2010, Figura 41-6, p 700. © The McGraw-Hill Companies, Inc.)
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Figura 45-12 Esporotricosis. En el
tejido cutáneo se observan levaduras
esféricas pequeñas y alargadas gemantes (3 a
5 µm) de Sporothrix schenckii que captaron
el color negro mediante el colorante de
metenamina argéntica de Gomori (GMS). 400×.
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Figura 45-13 Cromomicosis. Se advierten en la biopsia de piel, con tinción de hematoxilina y eosina, las células escleróticas diagnósticas y
melanizadas (4 a 12 µm de diámetro). 400×.
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Figura 45-14 Conidios característicos
producidos en cultivo, de los dos agentes más
comunes de la cromomicosis. A: Phialophora
verrucosa produce conidios de estas fiálides
en forma de vasija con collaretes. 1 000×.
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Figura 45-14 Conidios característicos producidos en
cultivo, de los dos agentes más comunes de la
cromomicosis. B: Fonsecaea pedrosoi por lo común
presenta cadenas de blastoconidios de ramas
cortas y otros tipos de conidiogénesis. 1 000×.
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Figura 45-15 Feohifomicosis. En el tejido se observan hifas
melanizadas. 400×.
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Figura 45-16 Radiografía de tórax de un enfermo
de coccidioidomicosis, en que se observan linfadenomegalia
hiliar y una cavidad en el pulmón izquierdo.
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Figura 45-17 Especies de Coccidioides e imagen de la coccidioidomicosis. A: En el cultivo a temperatura ambiental, Coccidioides posadasii produce
hifas tabicadas hialinas y artroconidios. 400×.
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Figura 45-17 Especies de Coccidioides e imagen de la coccidioidomicosis. B: En este corte del pulmón se advierten grandes
esférulas que contienen endosporas. Hematoxilina y eosina. 200×.
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Figura 45-18 En personas que no tienen SIDA los títulos de anticuerpos de inmunoglobulina G (IgG) contra coccidioidina guardan relación inversa con la intensidad de la coccidioidomicosis.
Abreviaturas: IgM, inmunoglobulina M. Reproducida con autorización de Ryan KJ, Ray CG [editors]: Sherris Medical Microbiology, 5th ed. McGraw-Hill, 2010, Figura 46-10 p 753. © The
McGraw-Hill Companies, Inc.)
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Figura 45-19 Histoplasmosis e Histoplasma capsulatum.
A: Levaduras pequeñas ovales (2 a 4 µm), en forma
compacta dentro de macrófagos. Tinción de Giemsa. 1 000×.
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Figura 45-19 Histoplasmosis e
Histoplasma capsulatum. B: En el
cultivo a temperatura ambiental Histoplasma
capsulatum produce hifas tabicadas hialinas
que llevan microconidios y grandes macroconidios esféricos.
400×.
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Figura 45-20 Blastomicosis y Blastomyces dermatitidis. A: Son
notables las levaduras grandes, esféricas y de pared gruesa (8 a 15
µm de diámetro) en este corte de un absceso cutáneo. Hematoxilina y
eosina. 400×. B: En cultivo a temperatura ambiental Blastomyces dermatitidis produce hifas tabicadas
hialinas y conidios únicos. 400×.
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Figura 45-21 Paracoccidioidomicosis.
Grandes levaduras multigemantes
(15-30 µm) se observan en una lesión cutánea.
Preparación con hidróxido de potasio.
400×.
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Figura 45-22 Candida albicans. Se observan levaduras gemantes
(blastoconidios), hifas y seudohifas. 400×.
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Figura 45-23 Tubo germinativo. A diferencia de otras especies de
Candida, Candida albicans produce hifas verdaderas, levaduras gemantes y seudohifas. Después de incubación en
suero a 37°C durante 60 a 90 min en el laboratorio, Candida albicans obtenidas
de personas, son estimuladas para formar hifas, proceso iniciado con la
generación de tubos germinativos con estructuras más finas y más uniformes
que las seudohifas. (Consúltese la figura 45-20.) 1 000×.
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Figura 45-24 Candidosis. Levaduras y seudohifas en tejidos, teñidas con ácido
peryódico de Schiff. 1 000×.
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Figura 45-25 Criptococosis. En esta muestra obtenida por lavado pulmonar se advierte netamente la cápsula de Cryptococus
neoformans. Tinción de Giemsa. 1 000×.
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Figura 45-26 Evolución natural de la criptococosis.
(Reproducida con autorización de Heitman J. Kozel TR; Kwon-
Chung KJ, Perfect JR, Casadevall A [editors]:
Cyptococcus. From Human Pathogen to Model Yeast.
Washington, DC, ASM Press, 2011, Figura 1, p. 238.)
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Figura 45-27 Aspergilosis invasora. A: Hifas uniformes,
tabicadas y ramificadas (anchura cercana a 4 µm) de
Aspergillus fumigatus en tejido pulmonar teñido con
metenamina argéntica de Gomori. 400×.
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Figura 45-27 Aspergilosis invasora. B: Preparación similar con colorante de
Grocott. 1 000×.
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Figura 45-28 Mucormicosis. A: Hifas poco tabicadas, anchas,
similares a cintas (10 a 15 µm de ancho) de Rhizopus orizae en
tejido pulmonar. Hematoxilina y eosina, 400×. B: Muestra
histopatológica similar tomada con metenamina argéntica de
Gomori. 1 000×.
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Figura 45-29 Estructuras de azólicos antimicóticos. (Con autorización de Katzung BG [ed.]: Basic and Clinical Pharmacology, 11th ed. McGraw Hill, 2009. © The McGraw-Hill Companies, Inc.)
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Figura 45-30 Nuevos antimicóticos. A: Posaconazol.
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Figura 45-30 Nuevos antimicóticos. B: Caspofungina.
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Figura 45-30 Nuevos antimicóticos. C: Micafungina.
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Figura 45-30 Nuevos antimicóticos. D: Terbinafina.