curso de biologÍa animal unidad reproductiva es el individuo 1 reproducción asexual •fisión...

CURSO DE BIOLOGÍA ANIMAL

CIO – Licenciatura en Gestión ambiental

Dra. Estela Delgado Profesor Adjunto Polo de Desarrollo Universitario “Centro de Manejo Costero Integrado” Centro Universitario Regional Este - CURE Sede Maldonado Universidad de la República Oriental del Uruguay

8.- Reproducción

Dra. Estela Delgado Profesor Adjunto Polo de Desarrollo Universitario “Centro de Manejo Costero Integrado” Centro Universitario Regional Este - CURE Sede Maldonado Universidad de la República Oriental del Uruguay

1

Reproducción Asexual

Reproducción Asexual Reproducción Asexual

•Proceso por el cual un único organismo es capaz de originar otros individuos, que son copias genéticas del progenitor.

• Producción de descendencia cuyos genes provienen de un único progenitor, no hay fusión de gametos.

La unidad reproductiva es el individuo

1


• Fisión binaria o bipartición • Gemación • Gemulación • Fragmentación y regeneración • Partenogénesis


1

1

División binaria: en bacterias y protozoos

División múltiple - formación de esporas en protozoos parásitos


Fotografía Dr. Eugene Burreson

Perkinsus olseni

1

Gemación División desigual del organismo. El nuevo individuo surge como una saliente (yema) desde el progenitor, desarrolla órganos semejantes a los del organismo parental y entonces se separa de él.


1

Gemulación Formación de un individuo a partir de una gémula que es un agregado de células rodeadas por una cápsula resistente.


Muchas esponjas de agua dulce forman gémulas en otoño las que pasan el invierno dentro del interior del cuerpo seco o congelado del progenitor. En primavera las células del interior de la gémula se activan, salen de la cápsula y crecen hasta formar un nuevo individuo.

1

Fragmentación y regeneración El animal se divide en dos o más fragmentos, cada uno de los cuales es capaz de convertirse en un individuo completo por regeneración de las partes ausentes


1

Fragmentación y regeneración

La regeneración en equinodermos es diferente a la reproducción por fragmentación. Pueden regenerar brazos rotos pero sólo el género Linckia puede formar nuevos individuos a partir de éstos


1

Partenogénesis Involucra el desarrollo de un individuo a partir de un óvulo no fertilizado. • Partenogénesis ameiótica (“asexual”): no hay meiosis durante la formación del óvulo, se forma por mitosis. Los descendientes son clones del progenitor. • Partenogénesis meiótica: los óvulos se producen por meiosis y por tanto son haploides. La condición diploide se puede reestablecer por duplicación de los cromosomas o por autogamia (unión de núcleos haploides).


1

Partenogénesis En muchos casos requiere comportamiento de apareamiento para estimular el desarrollo del óvulo. Se pone en marcha por factores ambientales, químicos, descarga eléctrica, etc. Platelmintos, rotíferos, anélidos, ácaros, crustáceos, insectos, algunos peces, lagartijas y anfibios.


1

• Rapidez rápido crecimiento poblacional – ideal para colonizar nuevas áreas. • Simplicidad (sin gametos,↓tiempo y energía). • No requiere locomoción. • Permite reproducción en animales solitarios, evitando búsqueda de pareja. • Ventajoso en ambientes estables y favorables porque reproduce genotipos exitosos con precisión.


Inconvenientes • Descendencia sin variabilidad genética. • Dificultad para adaptarse a cambios ambientales.

VENTAJAS

1

Los animales que se reproducen exclusivamente de forma asexual son escasos.


Rotíferos de la clase Bdelloidea se han reproducido exclusivamente por partenogénesis durante los últimos 85 millones de años!!!!!!


Muchos animales combinan los modos asexual y sexual de reproducción. Alternancia de generaciones

en Cnidarios: Fase sexual – medusa Fase asexual - pólipo 1


1

Daphnia se reproducen por partenogénesis cuando las condiciones son favorables; ante estrés ambiental usan la reproducción sexual

Los áfidos (pulgones) pueden reproducirse sexualmente o por

partenogénesis, dependiendo de factores ambientales como la estación

del año o la disponibilidad de alimento.


1

Sería un error concluir que la reproducción asexual es una forma defectuosa de reproducción, limitada a organismos de pequeño tamaño. Las reproducción asexual se han mantenido sobre la faz de la Tierra durante 3500 millones de años. La gran mayoría de los animales recurre a la reproducción sexual en algún momento del ciclo vital.

2

Reproducción Sexual

Reproducción Asexual Reproducción Sexual

2

Presencia de células especializadas: gametos (haploides) óvulos ♀ y espermatozoides ♂. - Sexos separados (gonocorismo) – especies dioicas -Sexos en el mismo individuo (hermafroditismo) – especies monoicas

• Los gametos se unen por un proceso denominado fecundación formando un cigoto (diploide). • Descendencia es diferente a los progenitores diversidad genética originada por reparto cromosómico, recombinación y la Fecundación

La unidad reproductiva es la pareja


2

GAMETOS Anisogamia Haploidía


2

Un acontecimiento fundamental que distingue la reproducción sexual de la asexual es la meiosis, una forma especial de división celular para formar gametos.

¿Cómo se originan los gametos?


2

Ovogénesis (en ovario) cada ovocito primario se divide para formar 1 óvulo y 2-3 cuerpos polares


2

Ovogénesis

Histología gonadal mostrando los el desarrollo de los ovocitos En Emerita brasiliensis (“tatucito”cangrejo de playa)


2

Ovogénesis

Donax hanleyanus “berberecho” molusco bivalvo

Gonoporos Femeninos 3º par de pereiópodos

Cx III

Cx IV

Cx V

Cx I

Cx II


Ovogénesis

Ejemplo de estadio ováricos macroscópicos – camarones peneidos ESTADIO I. Lóbulos ováricos translúcido y de menor diámetro que el intestino; oocitos iniciando el desarrollo ESTADIO II. Lóbulos ováricos opacos y de diámetro similar al intestino; oocitos aumentando de tamaño. ESTADIO III. Lóbulos ováricos amarillentos y de diámetro mayor al intestino; oocitos acumulando vitelo. ESTADIO IV. Lóbulos ováricos muy pigmentados y ocupando el dorso del cuerpo; oocitos maduros. ESTADIO V. Ovarios vacíos, lóbulos fláccidos y muy enrrollados; ovocitos en reabsorción.


Ovogénesis

I II III IV V

Artemesia longinaris (Petriella & Díaz, 1987)

ESTADIO OVÁRICOS MACROSCÓPICOS


Ovogénesis


2

Espermatogénesis (en testículo) cada espermatocito primario se divide para formar 4 espermatozoides


2

Espermatogénesis (en testículo)

Donax hanleyanus “berberecho” molusco bivalvo

Glándula androgénica

Testículos

Ampollas terminales

Vasos deferentes

Extraído y modificado de Dall et al., 1991.

Gonoporos masculinos 5º par de pereiópodos

Cx III

Cx IV

Cx V

Cx I

Cx II

MACHOS


Espermatogénesis

Espermatogonias

Espermatocitos I

Espermatocitos II

Espermátidas

Espermatozoides ESPERMATÓFOROS PAQUETE DE ESPERMA QUE SE TRANSFIERE A LA HEMBRA


Espermatogénesis

Hembra «impregnada» de camarón peneido ( el macho a colocado el espermatóforo sobre ella)

Espermatóforos



2

Fusión de óvulo y espermatozoide en una célula única y diploide = CIGOTO – Externa – Interna Durante la fecundación: • Se restaura diploidía. • Se fusionan genes parentales. • Se activa el ovocito. • Inicia el desarrollo.

Fecundación


2

Se produce fuera del cuerpo de los progenitores. • Debe ocurrir en un medio acuoso: - evita resecamiento de los gametos. - permite el movimiento de los espermatozoides. • Desove debe ser sincronizado temporal y espacialmente - usan “pistas” ambientales que provocan que toda una población libere gametos a la vez. Desventaja • Producen enormes cantidades de gametos que resultan en cigotos perdidos : - alta depredación - pocos sobreviven hasta la reproducción

Fecundación - EXTERNA


2

Ejemplos: moluscos bivalvos, camarones peneidos


Almeja emitiendo gametos masculinos

Ostras emitiendo gametos femeninos y masculinos

Penaeus monodon

Extraído y modificado de Dall et al., 1991.

1º FASE

2º FASE

Pseudocópula



Ocurre en el espacio comprendido entre las coxas del 3º y 4º par de pereiópodos de la HEMBRA, delimitado por las setas ventrales de estas estructuras.

Cx III Cx IV Cx V Cx I Cx II

Extremo anterior

Extremo posterior



Vista ventral del cefalotórax de una HEMBRA

Los espermatozoides liberados del espermatóforo se dirigen hacia delante acumulándose en esta zona y los ovocitos maduros expulsados de los orificios genitales de las coxas del 3º par de pereiopodos, son fertilizados antes de pasar directamente al agua

Cx III Cx IV Cx V Cx I Cx II

Extremo anterior

Extremo posterior

Vista ventral del cefalotórax de una HEMBRA




2

Los espermatozoides se introducen en el cuerpo de la hembra, donde tiene lugar la fecundación (Inseminación) • La entrada de los espermatozoides al oviducto puede ser mediante órgano copulador o por contacto estrecho entre oviducto y espermiducto. • Adaptación importante a la vida terrestre: los espermatozoides deben permanecer en líquido hasta que llegan a los óvulos. • En general requiere comportamientos especiales que lleven a la cópula. En artrópodos, peces cartilaginosos, algunos peces óseos, algunos anfibios y en todos los amniotas.

Fecundación - INTERNA


2

Mecanismos – Desarrollo de órgano copulador: pene. Insectos, muchos vertebrados. – Modificación de apéndices como órgano intromisor. Crustáceos, arañas. – Algunos peces usan modificaciones muy especializadas de papilas urogenitales y aletas anales (peces cartilaginosos – claspers). – Anuros: machos realizan aposición cloacal durante el desove, agarrando a las hembras con sus patas anteriores (amplexo). – Mayoría de aves realizan aposición de cloacas, colocando el esperma en cloaca invertida de las ♀. – Producción de espermatóforos (paquete de esperma) (Aunque no siempre que hay espermatóforo la fecundación es interna, por ejemplo camarones peneidos).



2

Mecanismos



2

Estructura básica es semejante en la mayoría de los animales, aunque los diferentes hábitos de reproducción y métodos de fecundación hacen que haya una enorme variabilidad.

1) órganos primarios: las gónadas que producen óvulos/espermatozoides y

hormonas sexuales

2) órganos accesorios: ayudan a las gónadas en los procesos de formación y liberación de los gametos, y en muchos casos también sirven para acoger y proteger al embrión.

- gonoductos (espermiductos y oviductos) - para la transferencia de espermatozoides - para el almacenamiento - formadores de cubiertas protectoras para los huevos -nutritivos como las glandulas vitelogenas y la placenta.

ORGANOS REPRODUCTORES


2


• órganos poco complejos, son simplemente centros para la gametogénesis. Una vez maduros, los gametos son liberados a través de conductos excretores o celomáticos, e incluso hay casos en los que salen al exterior a través de roturas en la pared del cuerpo.

INVERTEBRADOS con Fecundación Externa

Poríferos – no hay gónadas; coanocitos forman gametos. Cnidarios – céls. Intersticales se agrupan y forman gónadas. Poliquetos - órganos reproductores no son permanentes, los gametos se forman a partir de la proliferación de células que tapizan la cavidad general del cuerpo


2

Fecundación interna necesitan órganos y conductos que faciliten la transferencia de esperma del macho a la hembra, y en algunos casos pueden ser tan complejos como en vertebrados

INVERTEBRADOS con Fecundación Interna



2



1cm 1 cm

A B

1cm 1cm 1 cm1 cm

A B


2




2

HERMAFRODITISMO

CRAYFISH Cherax quadricarinatus Estrategia Reproductiva

1. Gonocorismo 2. Dimorfismo sexual 3. Fecundación

Externa 4. Intersexualidad 5. Hermafroditismo

Sucesivo 6. Con cuidado

parental de huevos y larvas

CRAYFISH Cherax quadricarinatus Individuos intersexos

Macho Intersexo


4

Macho Intersexo


4

Hembra Intersexo


2

MODALIDADES REPRODUCTIVAS

1. GONOCORISMO 2. DIMORFISMO SEXUAL 3. SEMELPARIDAD 4. OVOVIVIPARIDAD 5. DESARROLLO DIRECTO 6. INCUBACIÓN DE EMBRIONES

“Marsupio”


Semelparidad Ejemplo Excirolana braziliensis

Martínez & Defeo, 2006


Semelparidad

O.5 mm

ESTADÍO I: HUEVO

0.5 mm

ESTADÍO III: PREMANCA

0.5 mm

ESTADÍO IV: MANCA

0.5 mm

ESTADÍO II: NAUPLIUS

Martínez & Defeo, 2006

Rapana venosa

Rapana venosa

Macho

1 cm 1 cm

Hembra

0

50

100

150

200

250

0 40 80 1200

50

100

150

200

250

0 40 80 120LARGO (mm)

PESO

(g)

0

50

100

150

200

250

0 40 80 120

Hembras

LARGO (mm)

PESO

(g)

LARGO (mm)

PESO

(g)

1 cm1 cm

Rapana venosa

Hembras

LARGO (mm)

PESO

(g)

LARGO (mm)

PESO

(g)

1 cm1 cm

Rapana venosa

A

OI

V

C D

B

0

50

100

150

200

250

300

0 40 80 120

Machos 1 cm1 cm1 cm

LARGO (mm)

PESO

(g)

Rapana venosa

Rapana venosa

A

Ci

Es

Et

GoB

EP

M

C

Imposex

LARGO (mm)

PESO

(g)

0

50

100

150

200

250

300

0 20 40 60 80 100 120

1 cm

Rapana venosa

IMPOSEX

Nº 74 Largo 98.18 Peso 182.8

E n e r o 2011

Rapana venosa

Nº 103

Nº 105

Largo 85.71mm Peso 143.3 g

Largo 76.11 mm Peso 96.7 g

F e b r e r o 2011

Rapana venosa

Largo 98.18 Peso 182.8

Rapana venosa


2

CANGREJO ANOMURO Emerita brasiliensis Estrategia Reproductiva

2

1. Gonocorismo 2. Dimorfismo sexual 3. Fecundación Externa 4. Poliginia 5. Neotenia 6. Desarrollo indirecto – Fase larval planctónica 7. Con cuidado parental de embriones

HEMBRAS OVÍGERAS

HEMBRAS

MACHOS

MACHOS CON ESPERMATÓFOROS

MACHOS NEOTÉNICOS

HEMBRAS TEMPRANAS

INDIVIDUOS INTERSEXO

JUVENILES

MEGALOPAS

CANGREJO ANOMURO Emerita brasiliensis Aparato Reproductor

2

al: lóbulo anterior ovario ib: conexión ovárica pl: lóulo posterior ovario

OVARIOS

PRIMARIOS

Delgado & Defeo, 2006

GONOPOROS FEMENINOS 3º par de pereiópodos

Cx III Cx IV Cx V

Cx I Cx II

SECUNDARIOS


2


Cx III Cx IV Cx V

Cx I Cx II

SECUNDARIOS


Cx III Cx IV Cx V

Cx I Cx II

HEMBRAS

SECUNDARIOS

Cx III

Cx IV

Cx V

Cx I

Cx II

PAPILAS MASCULINAS 5º par de pereiópodos

PRIMARIOS

TESTÍCULOS VASOS

DEFERENTE Y EFERENTE

ESPERMATÓFOROS

MACHOS


2

CARACTERES SEXUALES I y II

HEMBRAS TEMPRANAS MACHOS NEOTÉNICOS

MACHOS ADULTOS HEMBRAS ADULTAS INDIVIDUOS INTERSEXO

JUVENILES

Las escalas equivalen a 1mm


2

CANGREJO ANOMURO Emerita brasiliensis Neotenia

2

NEOTENIA en MACHOS El crecimiento somático aparece retrasado con respecto al desarrollo de

las estructuras reproductivas

TALL

TALLA MEDIA INDIVIDUAL

LAR

GO

DE

CA

RA

PAC

HO

(mm

)

2

6

10

14

18

22

HOV H INT MSP M JUV MEG HT MN

Media ± DE Media ± EE Media 2

1

3 3

6 6 6

4 4 5 5

CANGREJO ANOMURO Emerita brasiliensis Morfos Sexuales

2

TALLA INDIVIDUAL FR

ECUE

NCI

A

MEGALOPAS

10 20 30 40

HEMBRAS TEMPRANAS 10

20

MACHOS NEOTÉNICOS

0

10

20

3.0 3.4 3.8 4.2 4.6 5.0 5.4 LARGO DE CARAPACHO (mm)


2

3 4 5 6 7 8 9 10 11

MACHOS

MACHOS CON ESPERMATÓFOROS

0

10

20

30 0

10 20 30 40 50 60

10

20 JUVENILES

FREC

UEN

CIA

LARGO DE CARAPACHO (mm)

TALLA INDIVIDUAL CANGREJO ANOMURO Emerita brasiliensis Morfos Sexuales

2

TALLA INDIVIDUAL

0

10

20

30

40

5 10 15 20 25

0

10

20 FR

ECU

ENC

IA


HEMBRAS ADULTAS

HEMBRAS ADULTAS

OVÍGERAS

HEMBRAS ADULTAS

ARACHANIA

BARRA DEL CHUY


2

ESTADIO III – OVARIO MADURO

OVOCITOS MADUROS Diámetro 150-330 um

OVOGONIAS Diámetro 10-15 um

OVOCITOS PREVITELOGÉNICOS Diámetro 15-40 um

CANGREJO ANOMURO Emerita brasiliensis Estadios ováricos

2

ESTADIO IV – OVARIO DESOVADO

OVOCITO EN REABSORCIÓN

OVOGONIAS Diámetro 10-15 um

OVOCITOS PREVITELOGÉNICOS Diámetro 15-40 um

CANGREJO ANOMURO Emerita brasiliensis Estadios Ováricos

2

ESTADIO I

ESTADIO II

ESTADIO III

ESTADIO IV

ARACHANIA PR

OPO

RCIÓ

N

2003 2004 M A M J J A S O N D E F M

0

0.2

0.4

0.6

0.8

1.0

0.2

0.4

0.6

0.8

1.0

0 0

BARRA DEL CHUY

N=75

N=219


2

ARACHANIA BARRA DEL CHUY ESTADIO OVÁRICO I 7 7 ESTADIO OVÁRICO II 8 10 ESTADIO OVÁRICO III 3 10 ESTADIO OVÁRICO IV 5 11

DURACIÓN DE ESTADIOS OVÁRICOS (EN MESES)

MENOR DURACIÓN DEL PERÍODO REPRODUCTIVO EN LA PLAYA REFLECTIVA

CICLO OVÁRICO


2

PRO

PORC

IÓN

DE

HEM

BR

AS

0.2 0.4 0.6 0.8 1.0

DIFERENCIACIÓN

VITELOGÉNESIS

0.2 0.4 0.6 0.8 1.0

0.2 0.4 0.6 0.8 1.0

MADUREZ OVÁRICA

0 5 10 15 20 25 30 35

0.2 0.4 0.6 0.8 1.0

MADUREZ COMPLETA


DIFERENCIACIÓN

LARGO DE CARAPACHO (mm) 0 5 10 15 20 25 30 35

0.2

0.4

0.6

0.8

1.0

0.2

0.4

0.6

0.8

1.0

MADUREZ COMPLETA

PRO

PORC

IÓN

DE

MAC

HOS

MAYOR TALLA DE MADUREZ EN LA PLAYA REFLECTIVA

CANGREJO ANOMURO Emerita brasiliensis Talla de Madurez

2

Incubación de HUEVOS

CANGREJO ANOMURO Emerita brasiliensis Cuidado Parental

2

Macho neoténico

Individuos intersexo

?

Hembra

temprana

Delgado & Defeo, 2006

MEGALOPA

HEMBRA

MACHO

ZOEA

JUVENIL

HUEVOS

HEMBRA OVÍGERA

Zooplancton

C

M

R

A

Teoría de Historias de vidaTeoría de Asignación de energía

COMPROMISOS ENERGÉTICOS

PLAYAS ARENOSASHipótesis Exclusión de Swash

Hipótesis de Rigurosidad Ambiental

EXTREMO DISIPATIVO

EXTREMOREFLECTIVO

RIGUROSIDADRR

INVERTEBRADOSINTERMAREALES

CrecimientoMantenimientoAlmacenamientoReproducción

TÁCTICAS VARIABLES TÁCTICAS VARIABLES

PROPORCIÓN SEXUALDESVIADA


MECANISMOS REPRODUCTIVOSCICLO GAMETOGÉNICOESTACIONAL

MADUREZ SEXUALRETRASADA / ACELERADA

RECLUTAMIENTOESCASO

DIMORFISMO SEXUAL

MODALIDAD REPRODUCTIVA

FECUNDACIÓN Y APAREAMIENTO

CUIDADO PARENTAL

CICLO GAMETOGÉNICOCONTINUO


RECLUTAMIENTO INTENSO

ESTRATEGIA REPRODUCTIVA

RESTRICCIONES FILOGENÉTICASY ALOMÉTRICAS

TÁCTICAS CONSERVADAS






RECLUTAMIENTOESCASO

DIMORFISMO SEXUAL



CUIDADO PARENTAL







ESTRUCTURA POBLACIONALESTRUCTURA POBLACIONALESTRUCTURA POBLACIONAL0 5 10 15 20 25 300 5 10 15 20 25 300 5 10 15 20 25 30

5 10 15 20 25 305 10 15 20 25 305 10 15 20 25 30

Donax hanleyanus

Emerita brasiliensis

0 5 10 15 20 25 300 5 10 15 20 25 300 5 10 15 20 25 30

5 10 15 20 25 305 10 15 20 25 305 10 15 20 25 30

Donax hanleyanus


5 10 15 20 25 305 10 15 20 25 305 10 15 20 25 30

5 10 15 20 25 305 10 15 20 25 305 10 15 20 25 30

Donax hanleyanus


5 10 15 20 25 305 10 15 20 25 305 10 15 20 25 30

5 10 15 20 25 305 10 15 20 25 305 10 15 20 25 30

Donax hanleyanus


C

M

R

AC

M

R

A

Teoría de Historias de vidaTeoría de Asignación de energía

COMPROMISOS ENERGÉTICOS

PLAYAS ARENOSASHipótesis Exclusión de Swash

Hipótesis de Rigurosidad Ambiental

EXTREMO DISIPATIVO

EXTREMOREFLECTIVO

RIGUROSIDADRRRRRR

INVERTEBRADOSINTERMAREALES

CrecimientoMantenimientoAlmacenamientoReproducción






RECLUTAMIENTOESCASO

DIMORFISMO SEXUAL



CUIDADO PARENTAL












RECLUTAMIENTOESCASO

DIMORFISMO SEXUAL



CUIDADO PARENTAL







ESTRUCTURA POBLACIONALESTRUCTURA POBLACIONALESTRUCTURA POBLACIONAL0 5 10 15 20 25 300 5 10 15 20 25 300 5 10 15 20 25 30

5 10 15 20 25 305 10 15 20 25 305 10 15 20 25 30

Donax hanleyanus


0 5 10 15 20 25 300 5 10 15 20 25 300 5 10 15 20 25 30

5 10 15 20 25 305 10 15 20 25 305 10 15 20 25 30

Donax hanleyanus


5 10 15 20 25 305 10 15 20 25 305 10 15 20 25 30

5 10 15 20 25 305 10 15 20 25 305 10 15 20 25 30

Donax hanleyanus


5 10 15 20 25 305 10 15 20 25 305 10 15 20 25 30

5 10 15 20 25 305 10 15 20 25 305 10 15 20 25 30

Donax hanleyanus


CONCLUSIONES

Callinectes sapidus “cangrejo sirí”

CANGREJO BRAQUIURO Estrategia reproductiva

3

1. Gonocorismo 2. Dimorfismo

sexual 3. Fecundación

Interna 4. Poliginia 5. Desarrollo

indirecto – Fase larval planctónica

6. Con cuidado parental de embriones

7. Cuidado pre y poscopulatorio

8. Muda Terminal?

Abdomen en forma de semicírculo Pleópodos para incubar huevos

Abdomen en forma de T invertida

Callinectes sapidus

CANGREJO BRAQUIURO Aparato Reproductor

3

HEMBRA

MACHO

Callinectes sapidus

HEMBRA MACHO


3

1cm 1 cm

A B

1cm 1cm 1 cm1 cm

A B


3


3

ESTADIOS OVÁRICOS


3

ESPERMATECAS

CANGREJO BRAQUIURO Cuidado Parental

3

HEMBRA OVÍGERA

CANGREJO BRAQUIURO Cuidado Parental

3

MUDA Y CÓPULA

CANGREJO BRAQUIURO Apareamiento con Hembra Blanda

3

MUDA

CANGREJO BRAQUIURO Apareamiento con Hembra Blanda

3

CANGREJO BRAQUIURO Ciclo de Vida

3

curso de biologÍa animal unidad reproductiva es el individuo 1 reproducción asexual •fisión...

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