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Centro de Biología Molecular y Celular studios estructurales de los fragmento mino terminal de los canales de potasi tipo Shaker B nativo (ShB) y mutado (ShBL7E)

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Page 1: Centro de Biología Molecular y Celular Estudios estructurales de los fragmentos amino terminal de los canales de potasio tipo Shaker B nativo (ShB) y mutado

Centro de Biología Molecular y Celular

Estudios estructurales de los fragmentosamino terminal de los canales de potasio

tipo Shaker B nativo (ShB) y mutado (ShBL7E)

Page 2: Centro de Biología Molecular y Celular Estudios estructurales de los fragmentos amino terminal de los canales de potasio tipo Shaker B nativo (ShB) y mutado

Posible topología de los segmentos transmembrana de cada

una de las subunidades de un canal de K+ tipo Shaker.

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OBJETIVOS

1.- Explicar la diferente capacidad funcional de los péptidos ShB y ShBL7E en términos estructurales, confrontándolos con una diana modelo que contenga elementos que imiten los sitios de unión de la bola inactivante en el canal.

2.- Postular un modelo estructural del péptido inactivante ShB cuando se encuentra unido a la diana modelo.

3.- Explorar la posible regulación de la actividad de estos péptidos, y consecuentemente de los canales de potasio que los contienen, a través de modificaciones post-traduccionales que introduzcan cambios semejantes a los que diferencian al péptido ShB del péptido mutante ShBL7E.

4.- Sintetizar y caracterizar adecuadamente un análogo fotoactivable del péptido ShB, diseñado para marcar covalentemente por fotoafinidad el sitio de la proteína canal al que se une la “bola” inactivante.

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200 220 240200 220 240-20

-10

0

10

20

30

0 4 0 8 0

-12

-8

-4

0

Longitud de onda (nm)

1

7

1

7

% TFE

2

20

[] M

.R.M

. x 1

0-3 (g

rad

o. c

m2 .d

mo

l-1) A B

Fig. 1: Espectros de dicroismo circular de los péptidos ShB (A) y ShBL7E (B) tomados en H2O (1), TFE (7) y en mezclas H2O/ TFE.

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1700 1650 1600 1700 1650 1600

Número de onda, cm-1

A B

Fig. 2: Espectros de FTIR de los péptidos ShB y ShBL7E tomados en distintos tampones acuosos: efecto de la fuerza iónica (A) y bandas componentes (B).

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Temperatura, ºCNúmero de onda, cm-1

1700 1650 1600

1700 1650 1600

30 45 60 7560

70

80

90

100

163

3/1

64

3 c

m-1

(%)

A

B

C

Fig. 4: Efecto del colato 5 mM (A) y 20 mM (B) sobre la banda amida I del espectro de FTIR de los péptidos ShB y ShBL7E. ShB presenta componentes de estructura , muy estables a la temperatura (C).

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- 38.

9

15

ShBL7E- 3

4

- 39

ShB

ShB + Tripsina

- 44

ShBL7E + Tripsina

Tiempo (min)30 45 60 750

Fig. 5: Cromatogramas de HPLC de los péptidos ShB y ShBL7E y los fragmentos resultantes de la hidrólisis con tripsina de estos.

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Fig. 6: Efecto de la tripsina sobre la banda amida I del espectro de FTIR de los péptidos ShB (A) y ShBL7E (B) en presencia de vesículas de PG: pérdida de los componentes de estructura .

Número de onda, cm-1

1760 1680 1600

A

1760 1680 1600

B

Control

Digestióntripsina

Fragmento1-14 purificado

por HPLC

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Fig. 7: Banda amida I del espectro de FTIR del péptido ShB en presencia de vesículas de PG en distintas situaciones experimentales: gran estabilidad de los componentes de estructura .

1700 1650 1600

Número de onda, cm-1

Control

100 mM EDTA

1 M NaCl

2 % n-octil--glucopiranósido

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1700 1650 1600 1700 1650 1600

pD=7.4 pD=8.9

PA/PC

PG/PC

PA/PC

PG/PC

ShB

ShBL7E

G)

E)

C)

A) B)

D)

F)

H)

100%90%50%30%

Número de onda, cm-1

Fig. 10: La adopción de estructura requiere una gran densidad de carga negativa superficial.

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Tabla I: Máximos de emisión de fluorescencia (max) y coeficiente de partición superficial que presentan los péptidos marcados con NBD en presencia de vesículas de fosfolípido.

max (nm) K p* x 10

-4 (M

-1)

Nombre del

péptidopH tampón PC PA PG PC PA PG

ShB -NBD

ShBL7E-NDB

ShB -NBD

ShBL7E-NBD

7 555 551 531 531 no unión 77.1±11.6 2.80±1.1

7 554 551 533 534 no unión 3.05±1.45 0.72±0.2

8.5 552 --- 530 536 --- 1.95±0.65 0.64±0.09

8.5 553 --- 536 552 --- 0.62±0.025 0.05

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Fig. 13: Ni el péptido ShB ni el ShBL7E se unen a vesículas de PC. Sin embargo, ambos péptidos se unen con gran eficiencia y de forma saturable a vesículas de PA y, en menor medida, de PG.

42

1

2

3

x 10 (M) 8fC *

Xb

* x

103

ShB

Fosfolípido/péptido (M/M)

Flu

ore

scen

cia

de

Em

isió

n a

530

nm

(un

idad

es a

rbit

rari

as)

0 2000 4000 6000

ShBL7E

PA

PA

PG

PG

PC

PC

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Fig. 14: El péptido ShB estabiliza la forma dianiónica del PA.

pKa = 7.66

5 6 7

20

40

100

8 9 10 11

0

60

80

pKa = 8.0

pKa = 7.45

PA

PA + ShBPA + ShBL7E

pH

Áre

a 98

0 cm

-1/1

180

cm-1 n

orm

aliz

ada

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Fig. 15: Inserción del péptido ShB en vesículas fosfolipídicas aniónicas.

2

4

6

2

4

6

0 .0 0 .1 0 .2 0 .30 .0

0 .2

0 .4

0 .6

0 .8

1.0

A

B

C

Razón molar (péptido/lípido)0.00 0.05 0.10 0.15

Razón molar (péptido/lípido)

ShBL7E

ShBL7E

ShB

ShB

H/

H0

H(K

ca

l/mo

l líp

ido

)

DMPG

DMPA

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Tabla II: Secuencia de aminoácidos de derivados del péptido ShB (con el extremo C-terminal amidado) y sus análogos marcados con una sonda fluorescente.

# nombre delpéptido

grado demarcaje

secuencia del péptido

1 5 10 15 20

1 ShB M A A V A G L Y G L G E D R Q H R K K Q

2 ShBL7E M A A V A G E Y G L G E D R Q H R K K Q

3 ShB-21C M A A V A G L Y G L G E D R Q H R K K Q C

4 ShBL7E-21C M A A V A G E Y G L G E D R Q H R K K Q C

5 ShB-21C-NBD 89 % M A A V A G L Y G L G E D R Q H R K K Q C-NBD

6 ShBL7E-21C-NBD 88 % M A A V A G E Y G L G E D R Q H R K K Q C-NBD

7 ShB-21C-Rho 76 % M A A V A G L Y G L G E D R Q H R K K Q C-Rho

8 ShBL7E-21C-Rho 73 % M A A V A G E Y G L G E D R Q H R K K Q C-Rho

9 ShB-21C-Pyr 75 % M A A V A G L Y G L G E D R Q H R K K Q C-Pyr

10 ShBL7E-21C-Pyr 94 % M A A V A G E Y G L G E D R Q H R K K Q C-Pyr

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Fig. 16: La inserción del péptido ShB en la bicapa aniónica es dependiente del pH.

1

2

3

4

5

6

7

pH

5.0 6.0 7.0 8.0

H(K

cal/

mo

l)DMPA

DMPA + ShB

DMPA + ShBL7E

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Fig. 22: Esquema de reacción entre el 1-(p-azidosalicilamido)-4-(iodoacetamido)butano (ASIB) y un péptido que contenga cisteina para dar lugar a un péptido derivatizado con ASIB.

Péptido-SH + 2 222I CH C N CH CH CH CH N C2

H O

O HHO

3N

ASIB

2 222 CH C N CH CH CH CH N C2H O

O HHO

3NPéptido-S+HI

ASIB-péptido

Longitud de onda (nm)

Ab

so

rban

cia

250 275 300 325 350 375 4000.0

1.0

1.5

0.5

péptido ShBL7E-21C-ASIBpéptido ShB-21C-ASIB

péptido ShBASIB

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Fig. 24: Ningún péptido alteró la velocidad de activación del canal Shaker4-46.

potencial de membrana (mV)

Canal ShB4-46 (5)+ péptido ShBL7E (6)+ péptido ShBL7E-ASIB (5)+ péptido ShB (5)+ péptido ShB-ASIB (5)

-20 -10 0 10 20 30 401

2

3

4

5

6

t 1/2 a

cti

vac

ión

(m

s)

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Fig. 25: El péptido ShB-ASIB es un análogo funcional del péptido ShB.

+ péptido ShBL7E

+ péptido ShBL7E-ASIB

+ péptido ShB + péptido ShB-ASIB

ShB4-46 ShB4-46

Inactivación tipo-N

Inactivación tipo-C50 ms

500 ms

ShB4-46+ péptido ShBL7E

+ péptido ShBL7E-ASIB

A B

C

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Fig. 30: El péptido ShBY8(P) se comporta estructuralmente como ShBL7E.

1700 1650 1600

PG

23 º C70 º C

23 º C

Número de onda, cm-11700 1650 1600

PA

23 º C

70 º C

23 º C

Número de onda, cm-1

PC

1700 1650 1600

23 º C70 º C

23 º C

Número de onda, cm-1

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Tabla III: Efecto de diferentes péptidos sobre el curso temporal de la activación e inactivación de corrientes de K+ en canales ShB6-46. La constante de activación (1/2) se mide como el tiempo necesario para alcanzar el 50 % de la amplitud máxima de la corriente a diferentes potenciales. El valor de la constante de inactivación () se estima ajustando el tramo de disminución de la corriente a una función exponencial de caida simple. Media desviación estándar (n).

t1/2 activación (ms) t1/2 inactivación (ms)

Péptido 0 mV Control (sin péptido) 5.631.12 (7) 3.280.43 (8) 2.320.21 (8) 1300160 (6)ShB 4.910.95 (5) 3.170.39 (7) 2.220.23 (6) 21548 (6)ShB-Y8(P) 5.871.03 (5) 3.390.47 (5) 2.380.36 (5) 76687 (6)ShB-Y8(P)(Quinasa Src)

5.650.89 (4) 3.350.32 (4) 2.170.29 (4) 63481 (5)

-20 mV +20 mV +20 mV

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Fig. 32: El péptido ShBY8(P) presenta componentes de estructura que dependen de la relación lípido-péptido.

1700 16001650

PA

1700 16001650

Razón molarShB-Y8(P)/fosfolípido

0.13

0.06

0.03

23 ºC

70 ºC

22 ºC

Número de onda, cm-1

PG

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Fig. 33: El péptido ShBY8(P) no se inserta en vesículas fosfolipídicas.

0,00 0,04 0,08 0,122

3

4

5

6

7

0,00 0,04 0,08 0,122

3

4

5

6

7

Razón molar (péptido/PLs)

H

(Kca

l/mol

lípi

do)

DMPC

DMPG DMPA

Razón molar (péptido/PLs)

0,00 0,04 0,08 0,122

3

4

5

6

7

PéptidoShB-Y8(P)

Razón molar (péptido/PLs)

PéptidoShB

PéptidoShB-Y8(P)

PéptidoShB

PéptidoShB-Y8(P)

PéptidoShB

H(K

cal/m

ol lí

pido

)

H

(Kca

l/mol

lípi

do)

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Fig. 34: Propuesta de dos modelos alternativos de estructura en “horquilla “ para el péptido ShB insertado en vesículas fosfolipídicas aniónicas. El giro necesario para que se forme esta estructura puede tener lugar a partir de dos secuencias de tetrapéptido: VAGL (panel A) y AGLY (panel B).

456

12

7

8 5

12

67

A

B

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Porcentajes de unión de los péptidos marcados con NBD a distintos fosfolípidos.

Po

rcen

taje

de

pép

tid

ou

nid

o a

PL

s

Relación molar PLs/péptido

pH 7.0 pH 8.5

100

80

60

40

20

0

0 1400 2800 4200 5600 0 1400 2800 4200 5600

100

80

60

40

20

0

PA/ShB

PG/ShBPA/ShBL7E

PG/ShBL7E

PA/ShB

PG/ShB

PA/ShBL7E